9基因操作

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Septin9基因甲基化检测操作说明

Septin9基因甲基化检测操作说明

Septin9基因甲基化检测
1.3.5ml血浆+3.5ml裂解液,涡旋混匀,RT静置10min。

2.加入90ul混匀磁珠、2.5ml无水乙醇,颠倒混匀5-6次,10-20rpm旋转混匀40-50min。

3.取下15ml离心管,置于磁力吸附架,弃上清。

4.加入1.5ml洗液A,涡旋重悬磁珠,转移到2.0ml离心管,置于磁力吸附架上。

5.吸附磁珠,弃上清;短暂离心,再次吸弃上清。

6.加入100ul洗脱液,涡旋混匀,80℃ 1000rpm震荡10min。

7.短暂离心,置于磁力吸附架,收集洗脱液至新的2.0ml离心管。

(4℃可保存24h,不可冷冻)
8.加入150ul亚硫酸盐溶液、25ul保护液,涡旋混匀,80℃静置孵育40-50min。

9.降温震荡仪至23℃;离心管中加入1000ul洗液A,20ul磁珠,涡旋混匀,23℃1000rpm震荡40-50min。

10.短暂离心,置于磁力吸附架,弃上清。

11.加入800ul洗液A,涡旋洗涤磁珠,离心吸附弃上清;
12.加入800ul洗液B,涡旋洗涤磁珠,离心吸附弃上清;
13.加入400ul洗液B,涡旋洗涤磁珠,离心吸附弃上清;
14.再次离心吸附弃上清x2。

15.室温干燥10min。

16.加入60ul洗脱液,涡旋混匀,23℃1000rpm震荡10 min。

17.短暂离心,吸附。

PCR反应液:
每个反应配置32ulPCR反应液+1.6ulTaq酶。

Septin9基因甲基化检测操作说明

Septin9基因甲基化检测操作说明

Septin9基因甲基化检测
1.3.5ml血浆+3.5ml 裂解液,涡旋混匀,RT静置10min。

2.加入90ul混匀磁珠、2.5ml无水乙醇,颠倒混匀5-6次,10-20rpm旋
转混匀40-50min。

3.取下15ml离心管,置于磁力吸附架,弃上清。

4.加入1.5ml洗液A,涡旋重悬磁珠,转移到2.0ml离心管,置于磁力吸
附架上。

5.吸附磁珠,弃上清;短暂离心,再次吸弃上清。

6.加入100ul洗脱液,涡旋混匀,80℃ 1000rpm震荡10min。

7.短暂离心,置于磁力吸附架,收集洗脱液至新的 2.0ml离心管。

(4℃
可保存24h,不可冷冻)
8.加入150ul亚硫酸盐溶液、25ul保护液,涡旋混匀,80℃ 静置孵育
40-50min。

9.降温震荡仪至23℃;离心管中加入1000ul洗液A,20ul磁珠,涡旋混
匀,23℃1000rpm震荡40-50min。

10.短暂离心,置于磁力吸附架,弃上清。

11.加入800ul洗液A,涡旋洗涤磁珠,离心吸附弃上清;
12.加入800ul洗液B,涡旋洗涤磁珠,离心吸附弃上清;
13.加入400ul洗液B,涡旋洗涤磁珠,离心吸附弃上清;
14.再次离心吸附弃上清x2。

15.室温干燥10min。

16.加入60ul洗脱液,涡旋混匀,23℃1000rpm震荡10 min。

17.短暂离心,吸附。

PCR反应液:
每个反应配置32ulPCR反应液+1.6ulTaq酶。

CRISPR

CRISPR
are associated with DNA repeats in prokaryotes. Molecular microbiology 43, 1565-1575
(2002). [3]方锐,畅飞,孙照霖,李宁,孟庆勇. CRISPR/Cas9介导的基因组定点编辑技术[J]. 生物
欢迎批评指正 化学与生物物理进展,2013,08:691-702.
CRISPR/Cas 9 背景
CRISPR是生命进化历史上,细菌和病毒进行斗争 产生的免疫武器,简单说就是病毒能把自己的基因整合 到细菌内,利用细菌的细胞工具为自己的基因复制服务, 细菌为了将病毒的外来入侵基因清除,进化出很多成簇 的、规律间隔的短回文重复序列(既CRISPR序列)和 CRISPR相关基因,这一序列首先由日本学者于1987年 首次发现(1),于2002年被Jansen等将正式命名(。
CRISPR/Cas 9作用机理
PAM(NGG序列)
CRISPR/Cas 9系统靶向要求
最主要的要求:PAM(protospacer-adjacent motif)为NGG。在人 类基因组中,平均每8bp就出现一个NGG PAM。
CRISPR/Cas 9基因编辑实验流程图
CRISPR/Cas 9的技术应用
2007 年,Barrangou 等首次发现细菌可能利用CRSPR 系统抵抗噬 菌体入侵;2008 年,Marraffini 等发现细菌CRISPR 系统能阻止 外源质粒的转移,首次利用实验验证了CRISPR 系统的功能
2013 年初,MIT 的研究组首次利用CRISPR/Cas9 系统对人293T 细胞EMX1 和PVALB 基因以及小鼠Nero2A 细胞Th 基因实现了定 点突变。同年Mali 利用CRISPR/ Cas9 在人293T 细胞和K652 细胞 基因的靶位点形成双链或单链的切口,从而激活细胞的DNA 修复机 制高效介导外源基因定点插入。

case9基因编辑技术名词解释微生物

case9基因编辑技术名词解释微生物

第一部分:基因编辑技术名词解释1. 基因编辑技术:基因编辑技术是指通过人为方法对生物体的遗传物质进行精确修饰和改变的技术手段。

常见的基因编辑技术包括CRISPR-Cas9、TALEN和ZFN等。

这些技术可以通过切割DNA链、插入外源DNA或修复已有基因等方式,实现对生物体基因组的调控和改变,具有革命性的生物学和医学意义。

2. CRISPR-Cas9:CRISPR-Cas9是一种基因组编辑技术,利用CRISPR序列和Cas9蛋白质构成的复合物,可以准确找到特定的DNA序列并进行切割、插入或修复操作。

CRISPR-Cas9技术具有高效、快速和成本低的特点,被广泛应用于生物学研究、基因治疗和农业领域。

3. TALEN:TALEN全称为转录激活样化因子效应器核酸酶(Transcription Activator-Like Effector Nucleases),是一种基因组编辑工具,通过独特的DNA结合域和核酸酶活性结合,实现对特定DNA序列进行精确修饰和改变。

4. ZFN:ZFN全称为锌指核酸酶(Zinc Finger Nucleases),是一种由锌指蛋白质结构域和核酸酶结合构成的基因组编辑工具。

ZFN技术可以精确识别和切割特定的DNA序列,实现对基因组的定点修饰和改变。

第二部分:微生物5. 微生物:微生物是一类极小型的生物体,通常包括细菌、真菌、病毒和原生动物等,存在于各种自然环境中,对生态系统和生物界的平衡具有重要的作用。

微生物在食品加工、环境保护、医学研究等领域有着广泛的应用价值。

第三部分:基因编辑技术与微生物的应用6. 基因编辑技术在微生物领域的应用:基因编辑技术可以对微生物的基因组进行精确调控和改变,从而实现对微生物的遗传特性、代谢途径和生长特性等方面的改良和优化。

在食品工业中,基因编辑技术可以应用于改良发酵微生物、提高生物制品的产量和品质;在医学研究领域,基因编辑技术可以用于构建特定的微生物模型,研究疾病的发生机制和药物的开发等。

微生物基因操作实验报告

微生物基因操作实验报告

微生物基因操作实验报告
实验目的:通过基因操作技术对微生物进行基因改造,观察其表现
情况,探讨基因操作对微生物的影响。

实验材料与方法:本实验选取大肠杆菌作为实验对象,使用质粒载
体进行基因操作。

首先,将含有目标基因的质粒载体导入大肠杆菌中,通过热激转化等方法将外源基因成功整合到微生物染色体中。

然后,
培养待观察的转基因微生物,在不同条件下进行观察。

实验结果:经过数天培养后,观察到转基因大肠杆菌呈现出与野生
型不同的生长特点。

在特定培养基质下,转基因微生物呈现更快的生
长速度,并在特定条件下表现出抗性等特性。

实验结论:基因操作技术可以成功地改造微生物的基因,使其表现
出不同于野生型的特征。

这为人类利用微生物生产特定蛋白质、抗生
素等提供了新的途径。

同时,基因操作也会带来一定的风险,需要经
过严格的伦理审核和安全管控。

实验意义:微生物基因操作实验的成功进行,拓展了生物技术领域
的研究与应用。

通过基因操作,人类可以更深入地了解微生物的机制
与特性,为生物科学的发展带来新的可能性。

总结:微生物基因操作实验是一项具有挑战性和潜力的研究领域,
在遵守伦理原则和安全规范的前提下,不断深入探索微生物的基因调
控机制,为人类社会的进步与发展做出贡献。

CRISPR-Cas 9

CRISPR-Cas     9
No Image
.
6
Cas家族
Cas(CRISPR associated):
存在于CRISPR位点附近,是一种双链DNA核酸酶,能在guide RNA引
导下对靶位点进行切割。它与folk酶功能类似,但是它并不需要形成二聚体才
能发挥作用。
.
7
Cas分类
因为Cas 基因多样性异常丰富,简单的分类很难区分那些 同源但功能并不相关的Cas 蛋白[30].多个研究小组共同 提议,考虑多个因素,包括保守性的Cas 蛋白之间的进化 关系及Cas 基因操纵子的组成方式等,将CRISPR/Cas 的 免疫机制分为相对独立的层次:
2 CRISPR-Cas系统赋予原核细胞针对外源DNA特异性免疫, 而这种特异性是由间隔序列 (spacer)决定的。在宿主防御噬菌体攻击中,针对自然界中庞大的噬菌体种群,细 菌进化了CRISPR 介导的适应性免疫。这种免疫功能的发挥是由CRISPR 间隔序列的 动态性变化,即通过增加或删除间隔序列(spacer)来实现的。
.
10
应用
基因敲除动物模型一直以来是在活体动物上开展基因功能研究、寻找合适药物作用靶 标的重要工具。但是传统的基因敲除方法需要通过复杂的打靶载体构建、ES细胞筛选、 嵌合体小鼠选育等一系列步骤,不仅流程繁琐、对技术的要求很高,而且费用大,耗 时较长,成功率受到多方面因素的限制。即使对于技术比较成熟的实验室,利用传统 技术构建基因敲除大、小鼠一般也需要一年以上。[2]
CRISPR-Cas 技术是继锌指核酸酶(ZFN)、ES 细胞打靶和 TALEN 等技术后可用于 定点构建基因敲除大、小鼠动物的第四种方法,且有效率高、速度快、生殖系转移能 力强及简单经济的特点,在动物模型构建的应用前景将非常广阔

cas9基因序列

cas9基因序列

cas9基因序列Cas9基因序列是指CRISPR-associated protein 9的基因序列。

CRISPR-Cas9系统是一种广泛应用于基因编辑和基因治疗领域的技术。

本文将从Cas9的结构、功能、应用等方面进行介绍。

一、Cas9的结构Cas9是一种RNA导向的DNA内切酶,由蛋白质Cas9和CRISPR RNA (crRNA)组成。

Cas9蛋白质由1368个氨基酸组成,分为多个结构域,包括DNA结合结构域、RNA结合结构域和核酸内切酶结构域。

其中,RNA结合结构域用于结合crRNA,DNA结合结构域用于与目标DNA序列结合并形成双链结构,核酸内切酶结构域则负责切割DNA。

二、Cas9的功能Cas9在CRISPR-Cas9系统中起到关键作用。

CRISPR-Cas9系统通过将Cas9与crRNA和tracrRNA(转录RNA)相结合,形成活性复合物,以实现基因编辑。

在基因编辑过程中,crRNA可以通过序列互补性与目标DNA序列结合,然后Cas9蛋白质通过与crRNA结合,将其指导到目标DNA上。

一旦Cas9与目标DNA结合,其核酸内切酶结构域就会发挥作用,切割目标DNA。

通过切割目标DNA,就能够实现基因组的修饰、敲除或插入。

三、Cas9的应用CRISPR-Cas9系统作为一种简单、高效的基因编辑技术,已经被广泛应用于生物学研究、基因治疗等领域。

在生物学研究中,科学家可以利用CRISPR-Cas9系统对特定基因进行敲除或修饰,从而揭示基因在生物体发育和疾病中的功能。

在基因治疗领域,CRISPR-Cas9系统可以用于修复患者基因中的缺陷,治疗遗传性疾病。

此外,CRISPR-Cas9系统还可以用于农业领域,实现作物的基因改良,提高作物的产量和抗逆性。

四、CRISPR-Cas9系统的优势和挑战相比传统的基因编辑技术,CRISPR-Cas9系统具有许多优势。

首先,CRISPR-Cas9系统操作简单、高效,可以快速实现基因编辑。

抽血就能检测结直肠癌septin9基因甲基化检测早提示

抽血就能检测结直肠癌septin9基因甲基化检测早提示

抽血就能检测结直肠癌septin9基因甲基化检测早提示大肠癌呈现出年轻化、高发病率的特点,要想提升患者的长期生存率,就要尽早发现。

以往需要做肠镜及大便暗血实验,取病理活检进行诊断,然而很多人都害怕做肠镜检查,使得一些患者由于肿瘤较大导致肠梗阻才去就诊,已经发展到局部晚期。

当前医学已步入到靶向治疗、基因检测、免疫治疗时期,而septin9基因甲基化检测,可以在大肠癌早期检测中应用,受到了人们的认可。

1、肠癌的高危人群肠癌是一种高发病率的恶性肿瘤,很多患者发现就是晚期。

随着人们的饮食习惯改变等因素影响,疾病的患病率日益提升,且年轻人患疾病的数量不断增加。

有几类人群容易患上肠癌,主要包括:第一,有家族遗传病史。

如果家庭中有直系亲属换过该疾病,那么相较于其他人,其患病概率要高出八倍。

有1/4的患者有家属患病史。

第二,有结肠息肉。

部分大肠癌是从癌前病变发展的,即息肉。

绒毛样腺瘤样息肉更易发展成癌症,几率为25%。

管状腺瘤样息肉变成癌症的概率是1%-5%。

第三,慢性溃疡性结肠炎患者。

第四,中老年人。

患者很多都超过50岁,随着年龄增加,相关的致病因素对于大肠黏膜的刺激时间增加,因此,患者年龄较高,也有一些患者年龄较小。

最后,吸烟喝酒人群。

有研究显示,吸烟的人相较于没有吸烟的人,患大肠癌的风险更高。

如果有大肠息肉及大肠癌的家族病史,每天喝酒超过30g,会提升患大肠癌的概率。

2、什么是septin9基因甲基化检测?septin9基因是直肠癌及结肠癌病人特有的血液标志物,septin9基因甲基化是早期筛查直肠癌的方式之一,特异性较高,通常在95%左右。

通过这一检测,能够了解检测人员的血液样本中是不是有septin9基因的DNA,若是检查发现,代表着患者可能会患结肠癌或直肠癌,需要继续做肠镜以及病理检查,综合检查结果之后做出诊断。

septin9基因甲基化在I期结直肠癌检测中的应用,灵敏度约为60%;在II-III期检测中应用,灵敏度超过80%;在IV期检测中应用,灵敏度超过90%。

第二章基因操作的主要技术原理2

第二章基因操作的主要技术原理2
而将蛋白质从电泳凝胶中转移到硝酸纤维素滤膜上, 然后同放射性同位素125I标记的特定蛋白质之抗体进 行反应,这种技术叫做韦斯顿蛋白质杂交技术 (Western blotting)。
22
nothernblot
Gene engineering
四、斑点印迹杂交和狭线印迹杂交
斑点印迹杂交(dot blotting)和狭线印迹杂 交(slot blotting )是在Southern印迹杂交的基 础上发展的量种类式的快速检测特定核酸 (DNA和RNA)分子的核酸杂交技术。由于在 实验的加样过程中使用了特殊设计的加样装置, 使众多待测样品能够一次同步转移到杂交滤膜 上,并有规律地排列成点阵或线阵。这两项技 术更适应与核酸样品的定量检测。
10
Gene engineering
尼龙膜
很强的抗张性,易于操作,与核酸分子 的结合能力大。 DNA以天然的形式从凝胶上转移到膜上, 在尼龙膜上进行原位碱变性。
11
Gene engineering
尼龙膜或硝酸纤维素膜杂交的步骤
1)核酸印迹转移:将核酸样品转移到固体 支持膜上(毛细管作用)
2)印迹杂交: 将具有核酸印迹的滤膜同带 有标记的DNA/RNA进行杂交。
43
Gene engineering
DNA + DMS
+ Saturating [Protein] Gel Shift
44
Gene engineering
4、甲基化干扰实验(methyltion interference assay)
根据DMS(硫酸二甲酯)能够使G残基甲基化,而六氢吡 啶又能够特异切割甲基化的G残基这一原理,设计出了另一 种研究DNA与蛋白质相互作用的实验方法,即甲基化干扰 实验。这种技术可以检测靶DNA中特异G残基的优先甲基化 对而后的蛋白质结合作用究竟会有什么效应,从而更加详细 地揭示DNA与蛋白质之间相互作用的模式。

基因编辑技术CRISPRCas9的操作指南

基因编辑技术CRISPRCas9的操作指南

基因编辑技术CRISPRCas9的操作指南引言:基因编辑技术CRISPR-Cas9(Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats–CRISPR associated protein 9)是目前最常用且最强大的基因编辑工具之一。

CRISPR-Cas9可以精确地修改细胞或生物体的基因组,并且具有广泛的应用前景,涵盖了从基础生物学研究到基因治疗的众多领域。

本文将为您提供一份操作指南,帮助您了解和掌握CRISPR-Cas9的基本操作步骤。

一、准备工作在使用CRISPR-Cas9之前,您需要做一些准备工作。

1.设计sgRNA(single guide RNA)序列:sgRNA可以指导Cas9蛋白靶向到目标基因的特定位点。

设计合适的sgRNA序列是成功编辑基因的关键。

您可以使用在线的sgRNA设计工具或参考已有的文献来选择合适的sgRNA序列。

2.制备合适浓度的Cas9蛋白:Cas9蛋白是CRISPR系统中负责切割DNA的关键因子。

您可以购买商业化的Cas9蛋白,也可以通过表达和纯化Cas9蛋白的方法进行制备。

确保蛋白质的浓度和纯度是进行CRISPR-Cas9实验的必要条件。

二、转染CRISPR-Cas9系统1.选择合适的细胞类型和培养条件:不同的细胞类型在转染CRISPR-Cas9系统时可能有不同的效率。

因此,选择合适的细胞类型和培养条件对于实现高效的基因编辑是至关重要的。

2.转染CRISPR-Cas9组分:将设计好的sgRNA序列和Cas9蛋白转染到目标细胞中。

您可以使用合适的转染试剂或方法进行转染。

确保转染试剂或方法的选择是适合您的细胞类型的,并根据试剂或方法的说明书进行操作。

三、基因编辑1.筛选和扩增转染细胞:在转染完CRISPR-Cas9系统后,您需要筛选和扩增成功转染CRISPR-Cas9系统的细胞。

您可以使用选择性培养基或标记基因来识别成功转染的细胞群体。

对“基因操作四步曲”的解读

对“基因操作四步曲”的解读

2 第 二步 : 目的基因与运载体结合
所谓运载体 , 指能把 目的基 因送 入受 体细胞 的 是
散弹射击 , 直接获 得 目的基 因 , 是用 “ 弹” 而 子 即限 制 性 内切酶将供体细胞 中的 D A切成许多片段 , N 然后将 这些片段分别载入运载体 , 导入不同 的受体 细胞 , 供 让 体细胞提供的所有 D A片段分 别在 各个受 体细胞 中 N
在教学 中发现 , 教版 高 中《 物》 修教材 “ 人 生 选 基 因工程简介 ” 一节 中有 关基 因操 作 的“ 四步 曲” 绝大 ,
方法把带有 目的基 因的 D A片段分离 出来 。因此 , N 无
论是将 目的基 因载入运 载体 , 是 目的基 因在受体 细 还
多数学生都能熟 记 四个基本 步骤 , 有些环节 不能透 但
彻理解 , 对相关 知识 的认 知甚 至存 在误 区。针对 这些 情况 , 在教学过 程 中, 笔者 通过 定 向质 疑 , 点拨 启发 等 方法 , 有的放矢 , 帮助学生进行 了相关知识的解 读。
l 第一 步 : 取 目的基 因 提
胞 中大量复制 的过程 , 都必然要 遵循 碱基互 补配对 原
文 3篇 , 市级 以上获奖论文十余篇 , 各类报 刊上发表论
文数十篇。提 升 了教 师整体 的教 学理念 和教 学水 准 ,
并逐步形成“ 书即生活 , 即创造 ” 读 教育 的专业精神 。
主要参考文献
于设计优化的反思 型合作 , 较好地 促进 了本 组学科 建
设和 内涵发展。 44 教育随笔 以“ . 个பைடு நூலகம் ” “ 与 随笔 ” 为切 人 口, 引导
发展的全新 的教育理念 , 是现代学校发展 、 教师专业 发

基因操作技术课程设计

基因操作技术课程设计

基因操作技术课程设计一、课程目标知识目标:1. 学生能够理解基因操作技术的基本原理,掌握基因克隆、基因编辑等核心概念。

2. 学生能够描述基因操作技术的应用领域,如生物医药、农业等,并了解其对社会的意义。

3. 学生能够了解基因操作技术的发展历程,把握国内外研究动态。

技能目标:1. 学生能够运用基因操作技术的基本方法,如PCR、酶切、连接等,进行简单的基因克隆实验。

2. 学生能够运用生物信息学工具,分析基因序列,设计基因编辑策略。

3. 学生能够通过查阅文献、资料,了解基因操作技术在各领域的具体应用案例。

情感态度价值观目标:1. 学生对基因操作技术产生兴趣,增强对生命科学的热爱和探究欲望。

2. 学生能够认识到基因操作技术在实际应用中的伦理、法律和社会问题,培养负责任的科学态度。

3. 学生能够关注基因操作技术的发展,认识到其在国家战略和人类福祉中的重要性。

本课程针对高中生物学科,结合学生年龄特点和知识水平,以基因操作技术为核心内容,旨在提高学生的生物科学素养,培养学生的实践操作能力和创新思维。

课程目标具体、可衡量,为教学设计和评估提供明确方向。

二、教学内容1. 基因操作技术的基本原理- 基因克隆的概念与原理- 基因编辑技术的原理及方法(如CRISPR/Cas9系统)2. 基因操作技术的实验方法- PCR技术的应用与操作步骤- 限制性内切酶与DNA连接酶的作用原理- 基因克隆实验流程及注意事项3. 基因操作技术的应用领域- 生物医药领域的应用案例- 农业领域的应用案例- 环境保护及其他领域的应用4. 基因操作技术的伦理、法律和社会问题- 基因编辑伦理问题探讨- 相关法律法规及政策- 社会责任与公众认知5. 基因操作技术的发展动态与展望- 国内外研究现状与进展- 未来发展趋势及挑战- 基因操作技术在国家战略中的作用教学内容依据课程目标,结合教材相关章节,系统性地安排和组织。

教学大纲明确各部分内容的安排和进度,确保学生在掌握基本原理和实验方法的基础上,深入了解基因操作技术的应用及伦理、法律和社会问题,培养其科学素养和责任感。

septin9基因甲基化检测标准值_解释说明

septin9基因甲基化检测标准值_解释说明

septin9基因甲基化检测标准值解释说明引言部分的内容可以如下所示:1.1 概述随着生物医学研究的深入,基因甲基化检测成为了重要的研究领域之一。

在肿瘤研究中,特定基因的甲基化状态被广泛认为是一种重要的生物标志物。

其中,septin9基因甲基化作为血液中常见的肿瘤标志物,在早期肿瘤诊断和预后评估方面表现出了巨大潜力。

然而,在septin9基因甲基化检测中,如何确定其标准值却成为一个关键问题。

本文将详细阐述septin9基因甲基化检测标准值的重要性和定义,并探讨制定这些标准值所面临的困难和挑战。

1.2 文章结构本文主要包括以下几个方面内容:首先是对septin9基因甲基化检测进行介绍,包括其原理、方法和应用领域等;接着将深入探讨相关研究现状,总结已有文献对septin9基因甲基化检测的报道以及相关进展;随后将着重讨论septin9基因甲基化检测标准值的重要性和定义,包括对其背景与意义的分析以及方法与原则的确定;接下来将探讨septin9基因甲基化检测所采用的技术和方法,包括基于PCR和质谱分析等传统技术,以及近年来涌现的新兴技术;最后,本文将总结已有研究进展,并展望未来septin9基因甲基化检测标准值的发展方向。

1.3 目的本文旨在全面介绍septin9基因甲基化检测标准值这一重要内容,并就其背景、定义、制定过程中所遇到的难题进行详细探讨。

通过对相关技术和方法的探索,为未来该领域的研究提供参考和指导。

同时,本文也旨在为读者提供一个更深入了解septin9基因甲基化检测标准值的文章,并对该领域中存在的问题进行思考和解决。

2. 正文:2.1 septin9基因甲基化检测介绍:septin9基因甲基化是一种通过检测DNA序列上的甲基化修饰来评估癌症风险的方法。

septin9基因在肿瘤细胞中常常表现出异常的甲基化状态,而在正常细胞中则很少发生这种改变。

因此,通过分析septin9基因的甲基化水平,可以作为一种非侵入性的筛查手段来辅助癌症早期诊断。

基因工程操作程序说课稿公开课一等奖课件省赛课获奖课件

基因工程操作程序说课稿公开课一等奖课件省赛课获奖课件

人工合成基因
1)反转录法:
以目的基因转录成 的信使RNA为模板,反
目的基因的mRNA
反转录
转录成互补的单链DNA, 单链DNA(cDNA)
然后在酶的作用下合成
合成
双链DNA,从而获得所
需的基因。
双链DNA
(即目的基因)
人工合成基因
2)根据已知的氨基酸序列合成DNA法 :
蛋白质的氨基酸序列
推测
mRNA的核苷酸序列
提取目的基因的新技术
1)DNA合成仪: 基因比较小,核苷
酸序列又已知,可通 过DNA合成仪直接 合成
2)PCR技术
使目的基因的片段在短时间内成百万 倍地扩增。
基因工程的基本内容
一、基因工程的概念 二、基因操作的工具 三、基因操作的基本环节
1、提取目的基因 2、目的基因与运载体重组
目的基因与运载体重组
推测
构造基因的核苷酸序列
化学合成
目的基因
上述三种目的基因提取的办法有何优缺点?
优点
缺点
鸟枪法
操作简便 广泛使用
工作量大,盲目,分 离出来的有时并非一 种基因
反转录法
操作过程麻烦, 专一性强 mRNA很不稳定,规
定的技术条件较高
根据已知氨基酸 合成DNA法
专一性最强
仅限于合成核苷酸对 较少的简朴基因
基因工程的基本内容
一、基因工程的概念 二、基因操作的工具 三、基因操作的基本环节
1、提取目的基因 (1)从供体细胞的DNA中直接分离基因
(2)人工合成基因
获直接分离基因最惯用的办法——鸟枪法
鸟枪法(散弹射击法):
用限制酶将供体细胞中的DNA切成许多 片段,将这些片段分别载入运载体,然后通 过运载体分别转入不同的受体细胞,让供体 细胞提供的外源DNA的全部片段分别在各个 受体细胞中大量复制(即扩增),从中找出 含有目的基因的细胞,再运用一定发办法将 目的基因的DNA片段分离出来。

crispr cas9原理

crispr cas9原理

crispr cas9原理CRISPR-Cas9(CRISPR-脱氧核糖核酸酶9)是基于一种天然发生在细菌和古细菌身上的防御机制而进行定制的基因编辑技术。

这一系统被设立以抵御外部的 RNA 和 DNA 干扰,并拥有记忆能力,可以自动穿越病毒的感染,在人类和动物体细胞中使用。

它由一条CRISPR RNA 和一条 Cas9 蛋白质组成,可以用于靶向特定的基因序列,并且可以修改和细胞基因组的稳定性有关的基因,这些基因可能会影响我们的健康与疾病相关的表型。

CRISPR-Cas9 系统由发现于病毒和古细菌中的一种叫做 CRISPR 的特殊 RNA 结构和一种叫做 Cas9 的酶连接而成。

CRISPR 由一系列短序列组成,每个序列叫做“spacer”,紧接着是“repeat”,它们构成一个开放的双链结构,可以靶向特定的 DNA 序列。

Cas9将一个 CRISPR-RNA 和一个后方的指南 RNA(gRNA)连接起来,构成一个双 RNA复合体。

两个 RNA 连接在一起有助于对靶位点位置的特异性识别,并将 Cas9 酶结合到靶位置,进而诱导 DNA 碱基拆分反应,以实现基因编辑效果。

借助 CRISPR-Cas9 技术,可以在细胞系和原代细胞里进行操作,改变基因序列中的突变位点,以解决一些疾病的发生发展。

它还可以广泛用于多种应用, exp: 基因治疗、作物改造、基因功能研究、体外诊断等等。

最近,CRISPR-Cas9 已经迅速发展,以满足广泛的应用范围,由于它在操纵基因组方面的准确性、速度和灵活性,已经成为基因操作技术中最具有前景的一种,该技术对于阐明疾病的发病机制和发展方向具有重要意义,并且也为临床和药物研制提供了有希望的方向。

CRISPRCas9基因编辑操作步骤及详细说明

CRISPRCas9基因编辑操作步骤及详细说明

CRISPRCas9基因编辑操作步骤及详细说明实验材料与方法—、细胞培养人宫颈癌细胞HeLa ,常规培养使用含10% FBS的DMEM培养基(含1・5 mg/L-Glutamine f100 U/mL Penicillin,100 pg/mLStreptomycin)中,37°C 5% CCh饱和湿度培养箱中培养。

二、基因信息及双gRNA设计基因信息及分析1. hsa-mir-152 基因信息:pubmed2. hsa-mir-152基因位于蛋白编码基因C0PZ2内含子内,敲除hsa-mir-152基因不会影响该蛋白编码3. hsa-mir-152 precursor 序列(87 bp):TGTCCCCCCCGGCCCAGGTTCTGTGATACACTCCGACTCGGGCTCTGGAGCAGTCAGTGCATGACAGAACTTGGGCCCGGAAGG ACC双gRNA设计使用在线gRNA设计软件在hsa-mir-152 precursor基因组序列两侧设计双gRNA二、慢病毒侵染实验材料及试剂DMEM 培养基 + 10% FBSD-Hank z s SolutionTrypsin-EDTA Solution96孑版24孑断Lentivirus・病毒液(GenePharma )步骤靶细胞侵染实验1. 靶细胞铺板:24-well,加入2.5xl05cells/well (根据细胞种类调整),0.5mL主全培养基f37°C r 5% C02过夜;2. 髒歸:稱載(脚胞的液培养基)400 pL +终浓度5pg/mL Polybrene ,将慢病等原液按1:9加入到稀释液中;3. 移去Stepl中细胞培养液f加入Step2稀释后的病等液,同时建立对照(blank、negative ) , 37°C , 5% CO?过夜;4. 12-24 小勰,力QA0.5 mL 主全培題, 37°C f 5% C02过夜;5•根据细胞状态和类型,如果必要分出1/3-1/5 ,加入0.5 mL主全培养基,继续培养24〜48小时,荧光倒蛊显微镜下观察结果。

基因编辑的操作步骤

基因编辑的操作步骤

基因编辑的操作步骤基因编辑是一种用于改变生物体基因组的技术,可以精确地修改DNA序列,以致使生物体具有特定的特征或特性。

下面将介绍基因编辑的操作步骤。

1. 设计目标基因编辑在进行基因编辑之前,首先需要确定目标基因以及编辑的目的。

可以通过研究相关文献或利用生物信息学工具来确定需要编辑的基因。

2. 选择合适的基因编辑工具目前常用的基因编辑工具有CRISPR-Cas9系统、TALENs和ZFNs等。

根据编辑目标和实验条件的不同,选择合适的基因编辑工具。

3. 获取编辑工具选择合适的基因编辑工具后,需要获取相应的编辑工具。

可以通过购买或合作研究机构等方式获得。

4. 设计和合成编辑工具的核酸序列将选择的基因编辑工具的核酸序列进行设计和合成。

这些核酸序列将用于识别和切割目标基因。

5. 转染编辑工具将编辑工具的核酸序列导入到目标细胞中。

可以通过转染、电穿孔或病毒介导等方式将编辑工具导入到细胞中。

6. 制备和培养细胞在编辑工具转染后,需要制备和培养细胞。

根据实验需要,可以选择不同类型的细胞,如细菌、动物细胞或植物细胞等。

7. 识别和筛选编辑成功的细胞在细胞培养过程中,通过特定的标记或筛选方法,识别和筛选出编辑成功的细胞。

可以利用PCR、测序或荧光显微镜等技术进行识别和筛选。

8. 验证编辑效果对编辑成功的细胞进行验证,确认编辑的效果和准确性。

可以通过PCR、测序、Western blot或细胞功能实验等方法进行验证。

9. 筛选编辑后代对编辑成功的细胞进行繁殖和筛选,选择具有目标基因编辑的后代。

可以根据需要进行多次筛选和鉴定。

10. 分析和应用编辑结果对编辑后的细胞或生物体进行进一步的分析和应用。

可以通过基因表达分析、功能实验或动物模型等方法来验证和应用编辑结果。

基因编辑是一项复杂而重要的技术,可以为研究和应用提供有力的工具。

通过以上步骤,可以实现对生物体基因组的精确编辑,为基因研究和基因治疗等领域带来新的突破和进展。

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三、DNA重组与分子克隆化

为获得所需的基因或特异序列,需 从细胞中分离得到目的基因与载体 DNA重组,并用适当方法在宿主细 胞中表达,扩增得到大量相同的 DNA片段,称为DNA克隆,亦称 分子克隆。
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基本原理与过程:



1、构建重组DNA:分离纯化目的基因 目的基因 + vector =重组DNA分子 2、转化:重组DNA分子导入受体细胞,并在其 内增殖。 3、细胞克隆的筛选: 筛选含有重组DNA的细胞— —细胞克隆(cell clone),将转化的细胞至于琼 脂表面,以刺激细胞克隆生长,这些细胞是由单 个细胞形成的遗传相同的细胞群体,故称细胞克 隆。再将每个克隆移至液体培养基中进行扩增。 4、分离重组DNA克隆:即收获扩增的培养细胞, 并选择分离重组DNA。
4on of a genomic library of human DNA in a bacteriophage λ vector
是将质粒和λ噬菌体改建的一种载体.它含 COS序列,插入一小plasmid –而得名 Cosmid。改建后的粘粒含有λ噬菌体的复 制起点和cos 末端。全长8kb。大片段外 源DNA插入后,在体外包装进而被克隆。 可包装30DNA克隆载体
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常用的质粒如pUC19,多连接子MCS。插入外源基因片 段长度约10kb。将外源基因插入到MCS中,随质粒的表达 而表达,增殖而扩增。外源基因插入到MCS后,β -半乳糖 苷酶的活性丧失而不显兰色-白色菌落。如果不插入外源 基因,则产生兰色色。从而筛选阳性菌落。
EcoRI HindIII
LacZ
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(二)、真核细胞基因在真核细胞中表达
真核宿主细胞提供一个相似但又不相同的环 境。常采用酵母或昆虫细胞作为宿主。 应用于真核细胞蛋白质的大量制备,研究特 定基因的表达。 产物翻译后羟基化,羧基化等,有加强蛋白 的稳定和功ry) 应用DNA重组技术构建的含有基因组的全部 基因的克隆。
人类和哺乳动物的基因组很大,甚 至许多单个基因也相当大(如: DMD gene 2300kb) ,克隆分析就 需要更大的基因载体。如近年来构 建的一些载体:BAC,PI,YAC等。

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1、细菌人工染色体(bacterial artificial chromosome,BAC)



优点:能携带大片段DNA, 约300kb。 在每个细胞中,一个载体 分子能繁殖多个拷贝,高 产DNA。 缺点:会出现插入片段在 结构上的不稳定,导致克 隆DNA部分的缺失或重排。 为克服上述缺点,人们采 用低拷贝数复制子载体, 如,E coli中的F因子。此 质粒含有2种基因(part A, part B)。每个E coli能接 受 >300kbDNA片段。
ligase
重组DNA技术流程简图
host
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重组 DNA 和 分子 克隆 Nhomakorabea34
重组DNA和分子克隆的几种方法:
1、从基因组中分离目的基因在细胞中克隆; 2、由特定mRNA逆转录合成cDNA后再进行 克隆 3、化学合成目的基因进行克隆 4、PCR体外扩增目的片段进行克隆

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筛选含有重组DNA的细胞——细胞克隆(cell clone)


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二、基因运载体及其选择

载体(Vector):将外源目的DNA导入受体细 胞,并能自我复制和增殖的工具。
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载体具以下特征:
1)分子量小,便于携带较大的DNA片段,能进入宿 主细胞并在其中增殖; 2)有多种限制酶切点,每种限制酶最好只有单一切点; 3)被切割后的载体,插入外源DNA后,不影响其复 制能力,并有可选择的标记基因(如,抗药基因)。
5’ - C T G C A - 3’ G - 3’ 3’ - G 3’ - A C G T C - 5’
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互补末端连接
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产生相同序列的突出末端的不同片段 可有三种方式:
1)用同一种限制酶切割;
2)用识别相同靶序列的不同限制酶切割;
3)用识别不同靶序列但可产生一致的粘
性末端的限制酶切割。
根据其来源命名。如: 属名 菌株名 E co R I 种名 编号 EcoRI来源于大肠杆菌E.coli的RY13菌株,I 指在该菌株中分离的第一个限制酶。

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2、限制酶识别序列和切割形式

每种限制酶能识别和切割的通常4~8个核苷酸序列, 称为限制性位点(restriction sites)或切点。 如:Hare III 5’-GGCC- 3’ 3’-CCGG- 5’
Bam HI 5’-GGATCC-3` 3’-CCTAGG- 5’ 平末端(blunt end) 对称轴切,连接效果差
切割形式 粘性末端(sticky end)交错切
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9
限制性内切核酸酶
HaeⅢ
5’ - G G C C - 3’ 3’ - C C G G - 5’ 5’ - G A T C - 3’ 3’ - C T A G - 5’ 5’ - G G A T C C - 3’ 3’ - C C T A G G - 5’ 5’ - G G 3’ - C C C C - 3’ G G - 5’

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置换λ 载体 – 溶解途径 载体和外源DNA整合到宿主菌DNA中。 可克隆23kb的外源DNA。 插入载体 – 裂解途径 DNA在宿主细胞中复制,然后包装成 噬菌体,裂解宿主,释放噬菌体。可 克隆5kb的cDNA。

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裂 解 途 径
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(三).粘粒(cosmid vector)
(30~50kb)
Chapter 9 基因操作
(中国医科大学医学遗传学教研室 )
第一节、重NA多态
1
第九章 重点内容提示



基因操作,重组DNA技术,原理,步骤 限制性内切酶:命名、识别顺序、切口(平末端, 粘末端) 基因载体(vector),条件,常用载体 基因探针,来源 克隆(clone) 探针标记方法:nick translation (缺口平移)、随机 引物法 DNA多态,RFLP ,VNTR,STR ,微卫星DNA PCR 方法、原理、应用 Southern –Blot:方法、原理、应用 Northern-Blot:方法、原理、应用
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2、噬菌体PI载体和PAC
PI噬菌体与λ噬菌体一样,外有蛋白质壳。 内含相当大的(110~115kb)线性DNA, 并在体外包装于PI壳内。PI进入宿主细 胞后环化,扩增。 1994年,有人将PI和F因子克隆结合产生 PI人工染色体克隆系统-----PAC。

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3、酵母人工染色体 (yeast artificial chromosome, YAC)
1987G剔除小鼠
1989位置克隆 1990第一个基因治疗 1995细菌G组序列
4
第一节 重组DNA技术---基因工程
重组DNA技术是现代分子生物技术发展中最 重要的成就之一。即是基因工程(Gene Engineering)的核心技术。 重组DNA技术(Recombinant DNA Technique) 是人类根据需要选择目的基因(DNA片段) 在体外与基因运载体重组,转移至另一细胞 或生物体内,以达到改良和创造新的物种和 治疗人类疾病的目的。 这一技术的发展和应用,关键在于限制酶的 发现和应用。
MboⅠ
5’ - G A T C - 3’ 5’ - - 5’ 3’ - C T A G - 5’ 5’ - G A T C C - 3’ 5’ - G G - 5’ 3’ - C C T A G - 5’
BamHⅠ
PstⅠ
5’ - C T G C A G - 3’ 3’ - G A C G T C - 5’
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目 的 基 因 表 达
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(一).真核细胞的基因在原核细胞(细菌) 中表达
原核细胞中缺乏真核基因表达装置(如,RNA剪接 因子等),因此不能直接表达。 通常采用大肠杆菌为宿主。 真核多肽的表达要求: 1)适当的cDNA(完整的编码序列); 2)适当的表达载体,提供特定多肽信息; 3)外部进行表达调控,表达系统设计有启动子。 产物特征: 1)真核细胞的蛋白由于不能羟基化而不稳定; 2)活性受限或无活性。
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3、特点:
根据上述限制酶的特点,在基因工程和基因诊断 中的重要用途: 不论DNA的来源如何,同一种限制酶切割后产生 的粘性末端容易重新连接。因此可将不同种属的 DNA重组。如人和质粒DNA等。 用于人类基因组的DNA分析,具特定的酶切位点。 Gene突变改变酶切位点的消失或新产生将改变酶 切片段长度。应用于限制性片段多态性分析。

适用于克 隆大片段 DNA, 0.2~2Mb。
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YAC 的主要功能成份有三:
着丝粒:mitosis姊妹染色单体和减I同源染色 体分离之必需。 端粒:保护染色体末端免受核酸酶的侵袭。 自主复制序列(ARS)元件:是染色体自主复 制的复制起点。

构建YAC需要4个短序列:2个端粒,着丝粒, ARS元件,与外源DNA连接成线性DNA分 子,导入酵母细胞克隆。

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一、限制酶
限制性内切核酸酶(restrictive endonucleases),又称限制酶。是特异性地切断DNA链 中磷酸二酯键的核酸酶。(“分子手术刀”) 发现于原核生物体内,现已分离出100多种, 几乎所有的原核生物都含有这种酶。是重组 DNA技术和基因诊断中重要的一类工具酶。

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1、限制酶的命名
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筛查含有目的基因的细胞克隆
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从基因 组中分 离目的 基因在 细胞中 克隆
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四、目的基因表达
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