小鼠侧脑室埋管给药方法的优化
改进的线栓法对不同品系小鼠脑缺血模型的构建-2019年精选文档
改进的线栓法对不同品系小鼠脑缺血模型的构建脑卒中是一种突然起病的脑血液循环障碍性疾病,具有高致死率、高致残率和高复发率的特点,最新研究[1]显示,脑卒中已严重威胁人们的生命和生活质量。
缺血性卒中是由于脑血管(主要为大脑中动脉)或其分支的血栓性或栓子性阻塞所致,约占所有类型卒中的80%[2]。
大脑中动脉栓塞(middle cerebral artery occlusion,MCAO)模型为目前研究局灶性脑缺血再灌注损伤最广泛的模型,该模型的经典方法为线栓法[3],多运用于大鼠的研究。
但大鼠成本高,且不能满足脑缺血基因水平研究,因此小鼠成为该实验动物的首选,但关于构建小鼠MCAO模型的研究不多[4],且大鼠、小鼠体质、血管韧性、解剖结构等各方面的差异,因此需要构建完善的、理想的标准化小鼠脑缺血模型。
1 材料1.1 动物昆明小鼠,20只,雄性,体重(25±2) g,由军事医学科学院实验动物中心SPF实验室提供,许可证号SCXK-(军)2012-0004。
C57BL/6小鼠,20只,雄性,体重(25±2)g,由北京维通利华实验动物技术XX公司提供,许可证号SCXK (京)2012-0001。
随机分为对照组10只,MCAO缺血组10只,术前12 h小鼠自由活动,禁食不禁水。
1.2 试剂水合氯醛和多聚甲醛(国药集团化学试剂XX公司,批号20130321),酒精(邯郸市捷利康商贸XX公司,批号131208),TTC(2,3,5-氯化三苯基四氮唑,美国Sigma公司,批号10109622),小鼠线栓(广州赛迅生物技术XX公司)。
1.3 仪器常规手术器械及显微手术器械(上海医疗器械XX 公司手术器械厂),体式显微镜(上海精密仪器仪表XX公司),激光多普勒血流仪(瑞典Perimed公司)。
2 方法2.1 线栓准备将统一规定规格的线栓(头端直径0.23 mm±0.02 mm)利用记号笔在线栓头端9 mm处用记号笔标记,以便准确的控制进线的深度,将其消毒后备用。
侧脑室注射及脑内置管
我给幼年(5周)SD大鼠侧脑室注射药物,有两个问题请教:1.因为我想增加造模的成功率,想尽可能往侧脑室注射更多的药物。
我想注射50ul,行吗?2.注射后如何验证注射的部位就是侧脑室呢?还仍然是用染色液注射后,多聚甲醛灌流,固定,然后做冰冻切片吗?那样的话,注射液会不会随脑脊液流动而无法辨认呢?能否给一个详细解答,谢谢1.脑室内注射液体量并没有绝对的上限,要看注射的时间,如果是微电泳注射,注射量应该大于压力注射法2.直接注射染液,随即断头,速冻,以刀片切至注射位置,观察染液是否在脑室内鉴于侧脑室的容积有限,不推荐注射50ul这么大的量,尤其是一次注射50ul。
个人推荐sd大鼠侧脑室注射药物控制在3-10ul之间,如果注射体积较大,应控制注射速度,不易过快,以免引起脑室压力过大。
我给幼年(5周)SD大鼠侧脑室注射药物,有两个问题请教:1.因为我想增加造模的成功率,想尽可能往侧脑室注射更多的药物。
我想注射50ul,行吗?2.注射后如何验证注射的部位就是侧脑室呢?还仍然是用染色液注射后,多聚甲醛灌流,固定,然后做冰冻切片吗?那样的话,注射液会不会随脑脊液流动而无法辨认呢?能否给一个详细解答,谢谢-----------------------------------------------------------------------------------------------------------你的实验可能较难做,首先侧脑室的定位是个大问题,估计你可能需要摸索较长时间。
一次注射50ul量太大,建议量控制在5---7ul最好。
我做过SD大鼠的侧脑室注射。
1.牙钻钻开颅骨,按照Paxinox& Watson 大鼠脑立体坐标,取AP=-1.0mm ,ML=2.0mm,DV=4.5mm(250g体重)坐标注射药物,即可进入脑室。
在做实验前先预试验,用胎盘蓝代替药物,注射后半小时取脑观察胎盘蓝的分部。
最佳线栓头端直径建立对小鼠脑缺血再灌注模型成功率的影响
GABA的镇痛_催眠_遗忘作用及其与GABA_A受体的关系
±015) ℃,记录从足部接触热板到开始舔后足的时 间即 热 板 法 痛 阈 ( pain threshold in hot2p late test, HPPT) 。给药前每只小鼠测 HPPT 2次 ,间隔 5 m in, 取平 均 值 为 基 础 痛 阈 ( Basal HPPT) , 剔 除 B asal HPPT > 30 s或 < 5 s的小鼠 。为避免足部烫伤 ,停 留时间不超过 60 s,超过 60 s者 ,其 HPPT记为 60
H
PP
I
=
B
H PPT a sa lH PPT
1. 4. 2 扭体实验 [ 11 ] 各组小鼠给药 5 m in 后 ,腹
腔注射 016%冰醋酸溶液 0101 m l·g- 1 ,立即记录
15 m in内小鼠扭体次数 (w rithing times) 。
1. 5 催醒实验 小鼠侧脑室分别注射 GABA 200、 400、600 μg,记录小 鼠 从翻 正 反 射 消 失 到 翻 正 反 射
侧脑室注入网膜素对小鼠摄食量及其下丘脑组织NPY、AGRP、CRH、POMC mRNA 表达的影响
侧脑室注入网膜素对小鼠摄食量及其下丘脑组织NPY、AGRP、CRH、POMC mRNA 表达的影响宋娟;孙燕妮;秦熠;郭瑞敏;承解静【摘要】目的:观察侧脑室注入网膜素(omentin)对小鼠摄食量及其下丘脑组织神经肽Y(NPY)、刺鼠相关蛋白(AGRP)、促肾上腺皮质激素释放激素(CRH)、阿片-促黑素细胞皮质素原(POMC)mRNA表达的影响。
方法20只昆明小鼠随机分为实验组及对照组,两组侧脑室置管并保留72 h后分别于侧脑室注射omentin及生理盐水(1.2μg/kg),观察注射后24 h小鼠摄食量有无变化,RT-PCR检测两组小鼠下丘脑组织AGRP、NPY、CRH及POMC mR-NA。
结果实验组、对照组摄食量分别为(4.63±0.17)、(4.51±0.12) g,两组比较,P>0.05。
实验组、对照组NPY mRNA相对表达量分别为0.47±0.24、0.48±0.29,AGRP mRNA分别为24.31±6.21、22.01±7.14,POMC mRNA分别为0.92±0.48、0.83±0.16,CRH mRNA分别为0.93±0.45、0.69±0.12,两组CRH mRNA表达量比较,P <0.05。
结论侧脑室注入omentin对小鼠摄食量及下丘脑组织NPY、AGRP、POMC mRNA表达无影响,但CRH mRNA表达增加。
【期刊名称】《山东医药》【年(卷),期】2015(000)031【总页数】2页(P37-38)【关键词】网膜素;下丘脑食欲中枢;促肾上腺皮质激素释放激素【作者】宋娟;孙燕妮;秦熠;郭瑞敏;承解静【作者单位】上海中医药大学附属普陀医院,上海200062;上海中医药大学附属普陀医院,上海200062;上海中医药大学附属普陀医院,上海200062;上海中医药大学附属普陀医院,上海200062;上海中医药大学附属普陀医院,上海200062【正文语种】中文【中图分类】R338.27脂肪组织是体内最大的能量储备器官和内分泌器官,其分泌大量脂肪因子参与调节脂肪代谢、葡萄糖代谢及炎症反应。
水合氯醛麻醉小鼠实验报告
水合氯醛麻醉小鼠实验报告本人所做的模型需要使用水合氯醛麻醉,所使用的是医院里配制的用于儿科灌肠的10%水合氯醛。
在先前的实验中,剂量为0.3mL/100g(这个剂量来自于师姐使用的经验),麻醉完全清醒时间约4h(当初没有记录开始清醒的时间)现在由于实验方案有所改动,希望麻醉的时间尽量缩短(1~1.5h),而麻醉深度保持不变,这样在侧脑室注射操作后,小鼠能够尽快的恢复清醒状态,便于后续的实验操作。
因此,对水合氯醛麻醉的剂量与药效进行了摸索,我把它贴出来,跟大家分享一下。
动物:雄性SD小鼠4只,平均体重356g(这里就不算标准差了),水合氯醛浓度分为4%、7%、10%三个水平。
结果:如下表格所示:水合氯醛浓度4%7%7%10%10%,0.5mL/100g0.3mL/100g 0.2mL/100g0.2mL/100g0.3mL/100g诱导时间约7min约4min约7min 约4min约4min麻醉深度浅麻醉水平中度麻醉浅。
麻醉开始清醒时间约90min约100min未观察约68min 114min结论:1、麻醉的诱导,似乎从4%到(7%、10%),随着浓度的增加,麻醉诱导的时间缩短。
但在7%及10%这两个浓度,麻醉时间基本一致。
2、麻醉时间的长度与水合氯醛的总剂量可能成正相关。
3、麻醉的深度跟与水合氯醛的浓度可能成正相关在之前甲醛《做动物实验前必须给予阿托品吗?》的这篇中,有战友提出“把水合氯醛配成4%的,而不是10%的,这样就拉开了麻醉剂量和致死剂量之间的差距,可安全了”,我的经验是这样:(1)确实,4%的水合氯醛在实验中比较安全,我们一般用于追加麻醉的时候,4%水合氯醛每次1mL,追加一到两次,安全度颇高。
(2)而水合氯醛的致死剂量,我不是很了解,希望知道的战友能够告知一声。
对于10%的水合氯醛,我们用到0.3mL/100g也很安全,应该距离致死剂量还有一段距离,麻醉深度与维持时间也很确切。
(3)据我认识的一位在伦敦大学获得博士学位的解剖学的教授介绍,英国人喜欢用7%的水合氯醛0.5mL/100g,我看过他的博士论文也是用的是这个剂量。
小鼠侧脑室重复给药
小鼠侧脑室重复给药
小鼠侧脑室重复给药是一种将药物注入小鼠侧脑室内,随后多次重复给药的实验方法。
侧脑室是大脑内一个含有脑脊液的腔体,可以通过脑室内注射给药,使药物迅速分布到整个大脑。
重复给药可以模拟临床上连续给药的情况,观察药物效果在时间上的演变。
小鼠侧脑室重复给药可以用于研究药物在大脑中的分布、药物对神经系统的影响以及疾病模型中药物治疗的效果。
例如,在神经科学研究中,可以通过侧脑室给小鼠注射神经递质激动剂或抑制剂,以研究神经递质对行为和认知功能的调控机制。
在实验中,需要将药物通过微注射泵或手动注射器注入小鼠侧脑室。
为了确保注射准确和安全,可以通过显微镜引导下将注射针精确地插入小鼠的侧脑室。
注射完成后,可以在特定时间点观察药物效果,并进行行为测试或取脑组织进行进一步的分析。
总之,小鼠侧脑室重复给药是一种常用的实验方法,可以用于研究药物在大脑中的作用机制和治疗效果,有助于进一步了解神经系统的功能和疾病的治疗策略。
新生乳鼠侧脑室注射rAAV29递送SNCA构建全脑转基因鼠
2021年4月第31卷㊀第4期中国比较医学杂志CHINESE JOURNAL OF COMPARATIVE MEDICINEApril,2021Vol.31㊀No.4李国祥,潘玥,胡鹏,等.新生乳鼠侧脑室注射rAAV2/9递送SNCA 构建全脑转基因鼠[J].中国比较医学杂志,2021,31(4):91-98.Li GX,Pan Y,Hu P,et al.Neonatal rAAV2/9delivery of SNCA to generate whole-brain transgenic mice [J].Chin J Comp Med,2021,31(4):91-98.doi:10.3969/j.issn.1671-7856.2021.04.014[基金项目]中国医学科学院医学与健康科技创新工程(2016-I2M -2-001;2016-I2M -1-004)㊂[作者简介]李国祥(1994 ),男,在读硕士,研究方向:药理学㊂E-mail:ligx@[通信作者]马开利(1981 ),男,副研究员,博士,研究方向:药理学和毒理学㊂E-mail:makaili@新生乳鼠侧脑室注射rAAV2/9递送SNCA 构建全脑转基因鼠李国祥1,潘㊀玥1,胡㊀鹏1,杜廷福1,2,马开利1,2∗(1.中国医学科学院&北京协和医学院医学生物学研究所药物安全性评价研究中心,昆明㊀650118;2.中国医学科学院&北京协和医学院医学灵长类研究中心&神经科学中心,北京㊀100005)㊀㊀ʌ摘要ɔ㊀目的㊀快速高效地构建一种人源SNCA (h SNCA )的全脑转基因鼠,并初步探究α-突触核蛋白过表达对小鼠中枢神经系统的影响㊂方法㊀对新生乳鼠进行双侧侧脑室(intracerebroventricular,ICV)注射携带人源SNCA-EGFP 或EGFP 的重组腺相关病毒2/9(recombinant adeno-associated virus2/9,rAAV2/9)(1.5ˑ1013genome copies(GC)/mL),在2周和3个月龄用免疫荧光及Western blot 检测α-突触核蛋白的表达模式及亚细胞定位,并用免疫荧光及免疫组化探究星形胶质细胞㊁小胶质细胞及病理性α-突触核蛋白的变化㊂结果㊀用rAAV2/9侧脑室注射的方式成功构建了h SNCA 全脑转基因鼠,α-突触核蛋白在整个脑中广泛表达,且趋向于在嗅球㊁皮层㊁海马㊁间脑及中脑中高表达㊂进一步研究发现,在嗅球㊁皮层㊁海马的CA2/3区及小脑的浦肯野细胞中观测到α-突触核蛋白在神经元胞核中表达的现象,α-突触核蛋白过表达引起了胶质增生㊂此外,在嗅球及大脑皮层检测到α-突触核蛋白Ser129磷酸化(pS129)及聚集㊂结论㊀快速成功地构建了一种h SNCA 全脑转基因小鼠模型,其α-突触核蛋白持久地高表达,并出现胶质增生和病理性α-突触核蛋白表达的现象,为研究α-突触核蛋白的生理功能及其在帕金森病(Parkinson s disease,PD)中的作用奠定一定的基础㊂ʌ关键词ɔ㊀α-突触核蛋白;转基因;乳鼠注射;胶质增生ʌ中图分类号ɔR-33㊀㊀ʌ文献标识码ɔA㊀㊀ʌ文章编号ɔ1671-7856(2021)04-0091-08Neonatal rAAV 2/9delivery of SNCA to generate whole-brain transgenicmiceLI Guoxiang 1,PAN Yue 1,HU Peng 1,DU Tingfu 1,2,MA Kaili 1,2∗(1.Institute of Medical Biology,Chinese Academy of Medical Sciences and Peking Union Medical College,Kunming 650118,China.2.Medical Primate Research Center &Neuroscience Center,Chinese Academy ofMedical Sciences and Peking Union Medical College,Beijing 100005)㊀㊀ʌAbstract ɔ㊀Objective ㊀To establish a human SNCA whole-brain transgenic mouse model,and to obtainpreliminarily data on the role of α-synuclein in the central nervous system.Methods ㊀rAAV2/9(1ˑ1013genome copies (GC)/mL)carrying either human SNCA-EGFP or EGFP was bilateral injected intracerebroventricularly in mice at postnatal day 0.The expression pattern and subcellular localization of α-synuclein was examined at 2weeks and 3months ofage by immunofluorescence and Western blot.Glial profile and pathological changes were analyzed by immunofluorescence and immunohistochemical staining.Results㊀h SNCA transgenic mice were successfully constructed,andα-synuclein was widely expressed throughout the brain,with high expression in the olfactory bulb,cerebral cortex,hippocampus,interbrain and midbrain.Furthermore,nuclearα-synuclein was detected in the olfactory bulb,cerebral cortex,CA2/3of the hippocampus and Purkinje cells of the cerebellum.Overexpression ofα-synuclein caused the proliferation of astrocytes and microglia.In addition,pS129and aggregation ofα-synuclein were observed in the olfactory bulb and cerebral cortex. Conclusions㊀h SNCA whole-brain transgenic mouse model was established successfully,with high long-term expression of α-synuclein and enhanced gliosis andα-synuclein pathology.This model should be useful for studying the physiological function ofα-synuclein and its role in Parkinson s disease.ʌKeywordsɔ㊀alpha-synuclein;transgene;neonatal injection;gliosis㊀㊀帕金森病(Parkinson,s disease,PD)是第二大常见神经系统退行性疾病,其主要特征是中脑黑质多巴胺能神经元的死亡及α-突触核蛋白的聚集[1]㊂然而,α-突触核蛋白在PD中确切的功能尚未完全研究清楚㊂动物模型无疑是研究蛋白质功能及PD 发病机理的一个重要工具,目前迫切地需要一些动物模型去探究α-突触核蛋白确切的生理功能及进行药物研发的评估㊂尽管已经开发出许多模型,如毒素模型和转基因动物模型,部分能表现出黑质及纹状体多巴胺能神经元减少或多巴胺(dopamine, DA)水平降低以及行为障碍[2-6],表明α-突触核蛋白的积累可以显著影响DA能神经元的功能,但在大多数小鼠中都没有发现明显的黑质及纹状体变性[7-9],不能完美地再现PD的病理特征[10],给PD 的研究带来了困扰㊂在最近的研究中,有学者尝试用rAAV在成年鼠中以脑立体定位注射的方式构建α-突触核蛋白局部过表达动物模型,能初步重现PD的原发性运动障碍及部分多巴胺能神经元损伤[11-14],表明rAAV可以作为一种快速靶向的动物模型建立的工具,然而靶向和局部α-突触核蛋白过表达有一定的局限性,局部注射的rAAV只在部分脑区传导表达,而PD的发生发展可能由多个脑区的共同参与㊂最近研究表明,可以通过向胎鼠或乳鼠脑室内注射rAAV来实现整个中枢神经系统的基因表达[15-18],与成年鼠注射病毒相比,这种方法可实现更有效的扩散和感染,且表达在注射后数天内开始,并持续于动物的整个生命周期[19-21]㊂且有报道称rAAV2/ 9能跨越血脑屏障,表现出在中枢神经系统广泛传导的能力[22],并能感染新生神经元[21,23]㊂此外,人源SNCA(h SNCA)转基因小鼠模型已经被广泛应用和认可,人源α-突触核蛋白在小鼠中并不会引起强烈的免疫排斥反应而被清除,可长期表达存在[5-6,24]㊂因此,本文旨在通过对新生乳鼠ICV注射携带人源的SNCA-EGFP基因或EGFP的rAAV2/ 9,快速高效地构建脑中广泛表达α-突触核蛋白的转基因模型,并初步探究α-突触核蛋白过表达对小鼠脑的影响㊂1㊀材料和方法1.1㊀实验动物SPF级C57BL/6小鼠30只,8周龄,体重20~ 22g,雌雄2ʒ1,由中国医学科学院医学生物学研究所小动物部提供[SCXK(滇)K2019-0002]㊂动物饲养在中国医学科学院医学生物学研究所药物安全性评价研究中心20ħ~24ħ的屏障环境中[SYXK(滇)K2018-0006],自由进水和进食,采用昼夜12h间断照明㊂在实验前以雌雄2ʒ1的比例合笼,见栓后把母鼠分离单独饲养㊂给予充足的食物和水源,在母鼠妊娠后第1天(postnatal day,P0)进行病毒注射并标记后继续给予充足的食物和水源饲养㊂实验经本单位伦理委员会审核批准(DWSP202012008),实验过程按实验动物使用的3R原则给予动物人道关怀㊂1.2㊀主要试剂与仪器无内毒素质粒小提取试剂盒(货号: CW2106S)㊁BCA蛋白定量试剂盒(货号:CW0014S)购自康为科技有限公司;只与人源α-突触核蛋白反应的兔多克隆抗体α-synuclein(MJFR1)(货号: ab138501)㊁NeuN鼠单克隆抗体(货号:ab104224)㊁DAPI(货号:ab104139)购自英国abcam;GFAP鼠单克隆抗体(货号:Cat#G3893)及固绿(货号:F7252)购自美国Sigma;Iba1兔多克隆抗体(货号:016-20001)购自日本wako;抗聚集性α-synuclein(5G4)单克隆抗体(货号:MABN389)购自美国Merck;鼠α-synuclein单克隆抗体(货号:610786)购自美国BD;兔来源TH多克隆抗体(货号:PA5-85167)购自美国Invitrogen;GAPDH单克隆抗体(货号:60004 -1)购自美国Proteintech;594波长免疫荧光兔二抗(货号:A11012)及488波长鼠二抗(货号:A11001)购自美国Invitrogen;Western blot兔源荧光二抗(货号:926-32211)及鼠源荧光二抗(货号:926-32210)购自美国Li-cor;免疫组化试剂盒(货号: GK5000705)购自上海基因科技;微量注射器购自瑞士Hamilton㊂1.3㊀实验方法1.3.1㊀质粒构建及病毒包装pAAV-hSyn-EGFP㊁pAAV-hSyn-SNCA-PGK-EGFP 质粒由本实验室构建和保存㊂两种质粒在大肠杆菌中扩增后用质粒小提试剂盒提取质粒DNA并鉴定㊂携带人源SNCA-EGFP及EGFP的重组腺相关病毒rAAV2/9由泰尔图公司包装并纯化,其病毒滴度约为1.5ˑ1013GC/mL,冻存在-80ħ冰箱中待用㊂1.3.2㊀新生乳鼠侧脑室注射在注射前把注射针头㊁镊子和剪刀高压灭菌㊂取1.5μL病毒与0.5μL的固绿混合,充分混匀并置于冰上,固绿用于标记注射位点㊂出生后第1天(P0)的乳鼠与母鼠分离,置于冰上2~3min充分麻醉,用5μL Hamilton微量注射器注射小鼠侧脑室,进针深度为3mm,注射速度约为1μL/min,每侧注射1μL,注射后留针1min㊂注射结束时擦拭75%乙醇并标记后放入笼中继续饲养2周或3个月进行解剖检测㊂1.3.3㊀Western blot处死小鼠取脑并分离各个脑区置于冰冷的EP 管中,加入适量的RIPA裂解后,取上清用BCA试剂盒进行蛋白定量,之后加5ˑ上样缓冲液进行煮沸5min待用㊂配置SDS-PAGE胶,上样,85V电压跑胶120min后,用半干转仪进行转膜,5%脱脂牛奶室温封闭45min后,抗体孵育4ħ过夜,TBS洗膜5 minˑ3次后,用羊抗鼠或抗兔的Western blot荧光二抗室温孵育1h,TBST洗膜3次后,Odyssey红外激光扫描系统进行显影拍照㊂1.3.4㊀免疫荧光用多聚甲醛对2周或3个月的rAAV2/9ICV注射小鼠进行灌注,取脑后用多聚甲醛固定24~36h,脱水机脱水处理,包埋后切片厚度为4μm㊂切好的片子65ħ孵箱烤片,常规脱蜡水化,蒸馏水冲洗,PBS浸泡5min,Tris-EDTA缓冲液微波炉煮沸进行抗原修复15min,蒸馏水浸泡5min,正常山羊血清室温封闭1h后,滴加相应稀释好的一抗4ħ过夜, PBS洗5minˑ3次,后滴加鼠或者兔来源的荧光二抗,DAPI封片后用Panoramic MIDI获取图片㊂1.3.5㊀免疫组化多聚甲醛对2周或3个月的rAAV2/9ICV注射小鼠进行灌注,取脑后用甲醛固定24~36h,脱水机脱水处理,包埋后切片厚度为4μm㊂切好的片子65ħ孵箱烤片,常规脱蜡水化,蒸馏水冲洗,PBS浸泡5min,用Tris-EDTA缓冲液微波炉煮沸进行抗原修复15min,蒸馏水浸泡5min,3%过氧化氢孵育30 min去除内源性过氧化氢酶,正常山羊血清室温封闭1h后,滴加抗α-synuclein(MJFR1)兔多克隆抗体及Iba1兔多克隆抗体,4ħ过夜㊂PBS洗5minˑ3次,滴加辣根过氧化物酶标记的二抗,室温孵育1.5h,PBS洗5minˑ3次,新鲜配置的DAB显色液㊂苏木素复染3min,盐酸乙醇脱色,氨水返蓝,梯度乙醇及二甲苯脱水,树胶封片,用Panoramic MIDI获取图片㊂2㊀结果2.1㊀新生乳鼠侧脑室rAAV2/9注射构建h SNCA 转基因模型为了高效构建一种h SNCA转基因鼠模型,我们按照如图1A上所示方法对新生乳鼠侧脑室注射rAAV2/9㊂在注射后,病毒扩散到各个脑室中(图1 A下),表明注射位点是准确的㊂两周后,用只与人源α-突触核蛋白反应的Anti-α-synuclein(MJFR1)抗体进行免疫荧光染色检测α-突触核蛋白在整个脑区的表达水平㊂结果如图1B所示,在对照组AAV-EGFP中,未出现α-突触核蛋白阳性染色,表明抗体的特异性良好,不会与鼠源α-突触核蛋白发生交叉反应,而在实验组AAV-SNCA中,检测到α-突触核蛋白广泛表达在转基因鼠的各个脑区㊂为了验证这个结果,采用Western blot分别检测2周(图1C)及3个月(图1D)年龄的鼠嗅球(olfactory bulb,OB)㊁皮层(cerebral cortex,CTX)㊁海马(hippocampus,hip)㊁间脑(interbrain,IB),中脑(middle brain,Mid),小脑(cerebellum,CB),后脑(hindbrain,HB)中α-突触核蛋白的表达,结果显示α-突触核蛋白在各个脑区中均表达,其中在小脑中表达量稍低,与免疫荧光结果一致㊂这些结果表明转基因鼠构建成功,且α-突触核蛋白广泛持久地表达(2周~3个月),人源α-突触核蛋白并未发生强烈的免疫排斥反应而被清除㊂注:A:新生乳鼠注射方式模式图;B:2周龄鼠α-突触核蛋白的免疫荧光染色;C:Western blot 检测2周龄鼠脑中人源及总的α-突触核蛋白(人+鼠)在对照及转基因小鼠各个脑区的表达;D:Western blot 检测3月龄鼠脑中人源及总的α-突触核蛋白(人+鼠)在对照及转基因小鼠各个脑区的表达㊂GAPDH 作为内参㊂图1㊀SNCA 转基因鼠的构建Note.A,Cartoon describes the surgical approach for ICV injection in neonatal mouse brains.B,Immunofluorescence stain reveals the expression of α-synuclein in the whole brain at 2weeks.C,Level of human and total α-synuclein expression in the transgene was assessed by Western blot at 2weeks.D,Level of human and total α-synuclein expression in the transgene were assessed by Western blot at 3months.GAPDH was used as an internalcontrol.Figure 1㊀Construction of SNCA transgenic mice2.2㊀ICV 注射rAAV2/9后α-突触核蛋白在全脑广泛表达为了进一步探究转基因鼠中α-突触核蛋白的表达模式,用α-突触核蛋白特异性抗体的免疫组织化学染色检测2周龄鼠嗅球(olfactory bulb,OB)㊁皮层(cerebral cortex,CTX)㊁海马(hippocampus,Hip)㊁间脑(interbrain,IB)㊁中脑(middle brain,Mid)和小脑(cerebellum,CB)中α-突触核蛋白的表达㊂结果显示,α-突触核蛋白在嗅球中高表达(图2A),少部分分布在胞核中㊂在大脑皮层处(图2B),α-突触核蛋白高表达并主要分布在胞质中,而在海马的CA2/3区(图2C),α-突触核蛋白广泛分布在颗粒细胞层的胞质及胞核中㊂在间脑中(图2D),α-突触核蛋白广泛分布在丘脑及下丘脑中㊂在中脑(图2E)中,α-突触核蛋白亦高表达,并主要在胞质中㊂有趣的是,α-突触核蛋白特异性地表达在小脑的浦肯野细胞中(图2F)㊂2.3㊀ICV 注射rAAV2/9后α-突触核蛋白的表达定位蛋白质的表达定位往往与其特定的功能相关,我们通过免疫荧光检测2周龄鼠中人源α-突触核蛋白的亚细胞定位㊂结果显示,在多巴胺能神经元(TH +神经元)中,α-突触核蛋白高表达,且其主要表达于神经元胞质中(图3A)㊂在其它脑区,如图3B 所示,嗅球及皮层中有少部分α-突触核蛋白表达在胞核中,而在海马的CA2/3区,少数颗粒细胞的胞核中出现α-突触核蛋白核定位的现象,在小脑处,α-突触核蛋白在浦肯野细胞核中高表达,其结果与图2F 一致㊂2.4㊀ICV 注射rAAV2/9后诱导胶质细胞增生大量的研究表明PD 的发生可能与神经炎症密切相关㊂于是,通过免疫荧光检测3月龄转基因鼠脑中星形胶质细胞的数量(GFAP +细胞),如图4A 所示,在黑质(Substantia nigra,SN)中,α-突触核蛋白广泛表达的区域出现星形胶质增生的现象,而在海马中(图4B)得到了同样的结果,GFAP +胶质细注:免疫组化分析2周龄鼠人源α-突触核蛋白在各个脑区中的表达㊂A:嗅球(OB);B:皮层(CTX);C:海马(Hip);D:间脑(IB);E:中脑(Mid);F:小脑(CB)㊂后图为局部放大图㊂图2㊀转基因鼠中α-突触核蛋白在各个脑区中广泛表达Note.Level and distribution of humanα-synuclein expression were evaluated histologically.A,Olfactory bulb(OB).B,Cerebral cortex(CTX).C, Hippocampus(Hip).D,Interbrain(IB).E,Middle brain(Mid).F,CB Cerebellum(CB).A partial enlarged view is attached after the figure.Figure2㊀Widespreadα-synuclein expression of the transgene throughout the mice brain胞也显著地增生㊂此外,免疫组化染色检测的小胶质细胞在海马(图4C)及皮层(图4D)也显著增生㊂2.5㊀ICV注射rAAV2/9后出现病理性α-突触核蛋白在PD中,第129位丝氨酸磷酸化(pS129)及聚集形式的α-突触核蛋白常被检测到,被认为是PD 的标志之一㊂在转基因鼠中,我们通过免疫组化检测表明,pS129在3月龄小鼠嗅球及皮层中(图5A)均出现,且在嗅球的神经元中强阳性染色㊂进一步用抗聚集形式的α-突触核蛋白单克隆抗体(α-synuclein5G4)检测其表达时(图5B),发现其在嗅球和皮层亦出现阳性染色,表达模式与pS129一致㊂3㊀讨论rAAV的研究及广泛应用,为我们高效地基因传递提供了非常快速有效的工具,先前多项研究通过靶向小鼠黑质㊁纹状体及嗅球构建α-突触核蛋白局部过表达小鼠模型,极大地促进人们对PD发病机理的认识,然而由于靶向定点脑区注射后蛋白质过表达的区域局限性,所以在该研究中,基于rAAV2/9在神经系统中的高效的传递效率[21-22],我们通过新生乳鼠侧脑室注射携带人源SNCA-EGFP或EGFP的rAAV2/9,构建了全脑人源α-突触核蛋白高表达的转基因鼠㊂在注射rAAV2/9后立即解剖乳鼠脑,发现固绿染色的病毒液在大脑各脑室之间扩散,表明注射位点的准确性㊂前期的研究表明注射的时间点影响注射效率[15],于是在本实验中严格控制注射时间在出生后12个小时之内㊂在小鼠成长到2周或3个月后,用免疫荧光和Western blot实验检测到了2周及3个月龄α-突触核蛋白在全脑中广泛的表达(图1所示),这表明通过乳鼠侧脑室注射的方式在注射后早期α-突触核蛋白便能高表达,提示可以用此模型探究α-突触核蛋白在小鼠出生后脑发育过程中的作用㊂此外, Western blot㊁免疫荧光及免疫组化实验表明,α-突触核蛋白趋向于在小鼠嗅球㊁皮层㊁海马㊁间脑及中脑中高表达,而在小脑中表达量稍低,这可能与病毒感染的细胞偏好性或者α-突触核蛋白表达的细胞偏好性有关,其具体的机理仍然需要进一步研究㊂此外,进一步通过免疫荧光探究α-突触核蛋白的亚细胞定位,发现在嗅球㊁皮层㊁海马及小脑中,α-突触核蛋白有胞核定位的现象,而之前的研究结果表注:A:α-突触核蛋白在中脑黑质(SN)中表达,TH:多巴胺能神经元标志物;B:α-突触核蛋白在各脑区的表达及定位㊂图3㊀α-突触核蛋白在转基因鼠中的表达及亚细胞定位Note.A,α-synuclein is expression in the Substantia Nigra(SN).TH,The marker of dopaminergic neuron.B,Expression and subcellular localization ofα-synuclein in different brain regions.Figure3㊀Expression and subcellular localization ofα-synuclein throughout the whole mice brain明,α-突触核蛋白核易位与细胞毒性相关[25-26],提示这几个脑区的α-突触核蛋白可能产生细胞毒性㊂有趣的是,α-突触核蛋白在小脑浦肯野细胞中高表达,这提示α-突触核蛋白可能在小鼠的浦肯野细胞中发挥特定未知的功能㊂免疫荧光结果表明,α-突触核蛋白在多巴胺能神经元中高表达,这为之后研究α-突触核蛋白参与PD发生的机理奠定基础㊂之前的研究认为,星形胶质细胞及小胶质细胞参与的神经炎症与PD的发生发展密切相关[27-28],于是我们检测转基因小鼠中星形胶质细胞及小胶质细胞的变化,有趣的是,在转基因小鼠中星形胶质细胞及小胶质细胞严重增生,这进一步提示α-突触核蛋白诱导的神经炎症可能参与到PD的发生发展中㊂最重要的是,在PD患者的尸脑组织中,常检测到α-突触核蛋白pS129及聚集的现象[29-31],而在通过rAAV2/9构建的转基因鼠的嗅球及皮层中均检测到pS129及聚集的现象,且在嗅球处高表达,这提示嗅球及皮层与PD的发生发展密切相关㊂总之,我们成功用携带人源SNCA的rAAV2/9构建了α-突触核蛋白的全脑转基因鼠,α-突触核蛋白在整个脑中广泛表达,并出现了胶质增生及病理性α-突触核蛋白表达的现象㊂该转基因模型的成功建立,将为探究α-突触核蛋白的生理作用及其在PD中的作用提供一定的基础㊂注:A:过表达α-突触核蛋白引起黑质(SN)的星形胶质细胞增生;B:过表达α-突触核蛋白引起海马(Hip)的星形胶质细胞增生; C:过表达α-突触核蛋白引起海马(Hip)的小胶质细胞增生;D:过表达α-突触核蛋白引起皮层(CTX)的小胶质细胞增生㊂GFAP:星形胶质细胞标志物;Iba1:小胶质细胞标志物㊂图4㊀α-突触核蛋白过表达引起胶质细胞增生Note.A,Overexpression ofα-synuclein incraese astrogliosis in Substantia nigra.B,Overexpression ofα-synuclein incraese astrogliosis in Hippocampus.C,Overexpression ofα-synuclein incraese microgliosis in Hippocampus.D,Overexpression ofα-synuclein incraese microgliosis in Cerebral cortex.GFAP,The marker of astrocyte.Iba1,The marker of microglia.Figure4㊀Overexpression ofα-synuclein associated with astrogliosis and microgliosis注:A:免疫组化检测嗅球(OB)和皮层(CTX)中α-突触核蛋白pS129的表达分布;B:免疫组化染色检测嗅球(OB)和皮层(CTX)中聚集形式的α-突触核蛋白的表达分布㊂图5㊀病理性的α-突触核蛋白的检测Note.A,pS129was detected within the neuronal soma in the olfactory bulb(OB)and cerebral cortex(CTX).B,Aggregatedα-synuclein was detected within the neuronal soma in the olfactory bulb(OB)and cerebral cortex(CTX).Figure5㊀Detection ofα-synuclein-associated pathology参考文献:[1]㊀Du XY,Xie XX,Liu RT.The role ofα-synuclein oligomers inParkinsonᶄs disease[J].Int J Mol Sci,2020,21(22):8645.[2]㊀Taguchi T,Ikuno M,Hondo M,et al.α-synuclein BACtransgenic mice exhibit RBD-like behaviour and hyposmia:aprodromal Parkinsonᶄs disease model[J].Brain,2020,143(1):249-265.[3]㊀Rajsombath MM,Nam AY,Ericsson 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大鼠清醒无麻醉状态下的侧脑室给药方法的研究
[ 关键词 ] 大鼠 ; 清醒 ; 侧脑室注射 [ 中图分类号 ] R 7 4 2 ; R 3 3 8 [ 文献标 识码 ] A [ 文章 编号] 1 0 0 9— 0 9 5 9 ( 2 0 1 7 ) 0 8— 0 7 9 7— 0 3
St u dy o n I n t r a c e r e br o v e nt r i c ul a r Adm i n i s t r a t i o n o f Ra t s wi t ho ut Ane s t h e s i a
a t i o n , 1 0 p L L p h y s i o l o g i c a l s li a n e W s a i n j e c t e d i n t o t h e l a t e r a l v e n t r i c l e e v e y r d a y it w h o u t a n e s t h e s i a .O n t h e 1 l t h d a y r a t s w e r e ne a s t h e t i z e d a f t e r 1 0 I x L i n t r a c e r e b r o v e n t i r c u l a r i n j e c t i o n o f m e t h y l e n e b l u e , o p e n l a l c h e s t nd a t h e r a t s w e r e s a c r i f i c e d b y f o r ma l d e h y d e p e r f u s i o n t h o u g h
侧脑室注射
侧脑室注射一、大鼠侧脑室注射(需定位器)SD大鼠,侧脑室的坐标是以前囟点为中心定好坐标,旁开1.5mm,向后囟方向1.1mm ,深4.5mm。
一、实验器具和药品(一)器具小号的注射用针头(外径为0.7mm,内径为0.5mm,要磨平,磨光滑,长度大概为1cm,中间套有一小的塑料垫片,以便固定),不锈钢的细铁丝(长度大概为1.2-1.5cm,要求与小号针头的内径相一致,用作导管外的塞子,外面套有与小号的注射用针头粗细一致的塑料,用作塞帽,便于打开),小号螺钉(固定用)和螺丝刀,剪毛剪,镊子,眼科剪(镊),手术刀片(柄),小号注射器,注射针头,烧杯,铝饭盒,手术灯,墨水(作标记),棉签,酒精棉球(二)药品生理盐水,青霉素,戊巴比妥钠,H2O2,502胶水,义齿基托树脂,义齿基托树脂液II型二、实验动物健康的成年大鼠,体重在170-200g,动物手术前在实验室条件下适应性饲养1周,并于手术前称重,以确定麻醉剂用量。
三、实验步骤(一)、麻醉麻醉剂为戊巴比妥钠溶液,浓度为20mg/ml,腹腔注射。
体重在170-200g的成年大鼠,注射剂量为0.65ml/只,即可保证整个实验过程动物一直安静。
(二)、固定1、在一水平桌面上,水平调整好立体定向器(江弯I型C),包括水平上的左右2根钢针、前面的牙齿固定针以及上方的钢针部分。
要求左右2根钢针在一水平线上,左右距离一致,牙齿固定针部位水平,与左右2根钢针在一水平面上,并且与左右2根钢针的尖端连接处形成一个等边三角形。
上方钢针保持垂直,其尖端处与牙齿固定处以及2耳蜗连线的中点在同一个竖直平面上。
立体定向器的中空部分用一个空的形状适宜柔软的纸盒垫平,位置与底座左右2根坐杆齐平。
2、将已麻醉的动物(大鼠)水平并以俯卧的姿势置于盒子的上方,并使水平上的左右2根钢针的尖端刚好对准耳蜗,先将牙齿卡好,然后慢慢的旋紧水平钢针,使之尖端缓缓的伸进耳蜗(一边一边进行),直至松紧适宜,整个头颅水平固定,不能摇动为止(可从定向器前方察看)。
小鼠灌注取脑
成年小鼠心脏灌流及取脑组织步骤实验步骤:1、小鼠麻醉后立即将其用针头固定在泡沫板上(用针头插住四肢)。
用镊子扯起胸部皮肤,另一只手用剪刀剪开胸腔的皮肤和肋骨,暴露出心脏和肝脏。
2、将注射针头插入小鼠左心室,同时将小鼠肝脏减掉,以使血液流出。
灌注生理盐水,时间维持在1min (10~20ml )灌注液左右,血液排除后四肢、肝脏和舌头会变白。
3、待小鼠四肢、肝脏和舌头变白之后,用4%PFA灌流固定,当PFA 流至大脑处可能会使小鼠尾巴略有反射现象(有时可能没有),此时可将灌流速度下调,以使固定更加充分。
整个PFA灌流时间约为5min。
(固定原理:多聚甲醛可以使蛋白质交联)4、将导管始端从PFA中拿出,待管中液体流尽后,将心脏上的针头拔下,如果固定的较好,可发现小鼠眼球呈现白色。
将托盘中的血液倒至废液桶内,并准备下一步的取脑操作。
取脑及脱水:1、剪开头部皮肤,露出白色头盖骨。
将延髓上包被的软骨剪开,除去多余的结缔组织。
需要注意的时,眼睛要由剪刀剪下,不能够直接扯下来,因为眼睛后部连着视神经,如果扯的话有可能会损坏视交叉上核等其他脑部组织。
2、将头盖骨小心剥开,露出白色的脑部,在剥嗅球部位时要格外小心,必要的话可以先将嗅球前部的碎骨留着待进一步固定之后再去除。
3、将头盖骨剥开后,将脑下部连接的神经逐条剪短(可看到视神经交叉),待全部剪断后将脑整个剥离出来。
4、将剥离出来的脑浸泡在4%PFA中,过夜固定。
5、将PFA液换为30%蔗糖进行脱水(防止冷冻切片时形成冰晶和孔洞),初始脱水时脑会浮在蔗糖上面,待完全脱水后脑会沉底。
此时可将脑取出进行冷冻切片。
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侧脑室注射烟碱对异氟烷、七氟烷小鼠遗忘作用的影响的开题报告
侧脑室注射烟碱对异氟烷、七氟烷小鼠遗忘作用的影响的
开题报告
研究背景:
异氟烷、七氟烷是一种常用的全身麻醉剂,具有快速作用、恢复迅速等优点,但同时也存在着诸如记忆遗忘、毒性副作用等不容忽视的问题。
因此,寻求一种有效的方法减轻它们的副作用是非常必要的。
烟碱是一种甲基化嘌呤类碱性毒物质,它在神经系统中的作用已得到了广泛的研究。
研究表明,烟碱具有改善认知功能、促进记忆力、减少遗忘等作用,对于减轻异氟烷、七氟烷的遗忘作用有可能起到积极的作用。
研究目的:
通过对小鼠进行侧脑室注射烟碱的实验来探究烟碱对于异氟烷、七氟烷所引起的遗忘作用的影响,明确烟碱在减轻异氟烷、七氟烷的遗忘作用方面的作用机制。
研究方法:
选取30只SD大鼠,随机分为3组,每组10只。
第一组注射生理盐水,第二组注射异氟烷,第三组注射七氟烷。
每组小鼠每天注射一次,连续注射7天。
其中,第二、三组小鼠再在注射异氟烷、七氟烷的基础上,同时进行侧脑室注射烟碱。
每组小鼠在实验前、实验中和实验后的特定时间节点进行行为学实验,观察小鼠的空间学习和空间记忆能力。
研究预期:
通过本实验的实施,我们预期能够发现烟碱对于异氟烷、七氟烷所引起的遗忘作用有一定的减轻作用,从而为临床应用提供一定的参考。
同时,我们也能够预期通过本实验的结果探究烟碱在神经系统中的作用机制,为进一步的研究提供基础和方向。
侧脑室注射Conantokin-G类似物拮抗吗啡诱导小鼠奖赏效应的研究
侧脑室注射Conantokin-G类似物拮抗吗啡诱导小鼠奖赏效应的研究李江敏;李鹏飞;朱永平【期刊名称】《中国药物依赖性杂志》【年(卷),期】2013(22)3【摘要】目的:探究Glu-Con-G、Glu-Con-G[1-11]和Glu-Con-G[S16Y]抗吗啡精神依赖的药效,为进一步设计、筛选抗吗啡依赖的芋螺毒素类似物提供理论和实验依据。
方法:采用清洁级♂昆明种小鼠,用条件性位置偏爱(conditioned place preference,CPP)模型检测侧脑室给予3种芋螺毒素类似物对小鼠吗啡精神依赖效应及行为学的影响。
结果:120、240、480、960 pmol Glu-Con-G,120、240、480 pmol Glu-Con-G[1-11]和480、960 pmol Glu-Con-G[S16Y]对吗啡诱导小鼠CPP的表达和复燃有抑制作用,且在最高受试剂量时均不影响小鼠的运动活性及探索行为。
结论:Glu-Con-G、Glu-Con-G[1-11]、Glu-Con-G[S16Y]可拮抗吗啡诱导小鼠CPP的表达和复燃,具有抗吗啡依赖作用,且不影响其运动活性和探索行为,有望成为抗吗啡依赖的潜在药物。
【总页数】6页(P182-187)【关键词】芋螺毒素类似物;吗啡;条件性位置偏爱【作者】李江敏;李鹏飞;朱永平【作者单位】浙江大学医学院毒理研究室【正文语种】中文【中图分类】R-332【相关文献】1.多巴胺拮抗物PIM增强丘脑下部促黄体素释放激素类似物诱导大鳞副泥鳅排卵效应的研究 [J], 林浩然;彭纯;林鸿平2.侧脑室微量注射大麻素受体拮抗剂对orexin-A诱导大鼠能量代谢改变的影响及潜在机制研究 [J], 刘金政; 王茜; 冷慧; 高胜利; 郭菲菲; 孙向荣; 徐珞3.侧脑室注射隐丹参酮单体对吗啡诱导的小鼠条件性位置偏爱效应形成和一氧化氮含量的影响 [J], 蔡萍;陈少雅;陈崇宏4.杭白菊总黄酮对铅诱导小鼠氧化损伤的拮抗效应研究 [J], 夏道宗;吕圭源;于新芬;王慧铭;杨晴5.黄芪注射液拮抗阿霉素诱导小鼠心肌细胞凋亡的实验研究 [J], 梁丽英;陈晶;黄小琪因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
评价小鼠脑片缺血性损伤及药物保护作用定量方法的改进
评价小鼠脑片缺血性损伤及药物保护作用定量方法的改进葛求富;魏尔清;彭国平;于丽芬【期刊名称】《浙江大学学报(医学版)》【年(卷),期】2003(032)006【摘要】目的:通过改进和完善脑片孵育装置、脑片缺血性损伤的定量指标,建立一种简单、准确评价小鼠脑片缺血性损伤及药物神经保护作用的新方法.方法:设计和制作脑片孵育装置,并验证其适用性.以TTC为底物在小鼠脑片生物合成formazan 标准品,并作分离、纯化和鉴定.以缺氧缺糖(OGD)方法诱导小鼠脑片损伤,用分光光度法在490 nm处测量皮质和纹状体formazan量,并观察依达拉奉和ONO-1078的保护作用.结果:脑片孵育装置具有良好的平行性和可操作性.获得了纯度为99.3%的formazan对照品,在0.05~1 mg/ml间与490 nm的吸收度有良好的线性关系(r=0.9997).随OGD时间延长,脑片皮质和纹状体formazan量逐渐减少;依达拉奉对此有显著保护作用,而ONO-1078无效.结论:脑片孵育新装置及formazan定量方法效率高、定量准确、简单易行,可用于缺血性脑损伤保护药物的筛选.【总页数】6页(P486-491)【作者】葛求富;魏尔清;彭国平;于丽芬【作者单位】浙江大学医学院药理学教研室,浙江,杭州,310031;浙江大学医学院药理学教研室,浙江,杭州,310031;浙江大学医学院药理学教研室,浙江,杭州,310031;杭州民生药业股份有限公司,浙江,杭州,310011【正文语种】中文【中图分类】R743.31【相关文献】1.大鼠脑片损伤模型和新型定量评价方法的建立 [J], 薛庆生;夏梦;于布为;王泽剑;陈红专2.小鼠脑片Formazan定量测量方法评价缺血性损伤及神经保护作用 [J], 葛求富;魏尔清;彭国平;于丽芬;余国良;刘建仁3.Formazan定量法评价小鼠脑片脑血性损伤及药物的保护作用 [J], 葛求富;彭国平;等4.小鼠脑片损伤和保护药物的定量评价方法 [J], 余国良;魏尔清;何巍5.一种定量评价离体海马脑片缺糖/缺氧损伤的新方法 [J], 严乐勤;魏尔清;胡海涛;张纬萍;王梦令;沈建中因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
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实验动物 与比较 医学 Laboratory Animal and Comparative Me ̄cine
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颅骨 表 面标 志 (如前 囟、人 字 点 、矢状 缝 等)来 确 定 脑 内神 经 结 构位 置 ,对 其 进 行 定 向刺 激 、毁 损 、 注 射 药 物 、 引导 电位 等 的实 验 技 术 ,广 泛 应 用 于 神 经 解 剖 [5]、 生 理 [6】、 药 理 【 ,7】和 外 科 等 领 域 。
【中图分 类号】Q95-33 [文 献标 识码 ]B [文 章编号 】1674.5817(2014)02.0153—03
采用 脑立 体定 向仪对 实验动物 进行侧 脑室 给药 是 一等 的研 究 s】。直 接进 行 侧 脑 室给 药 优 点 显 著 。首先 ,能够 直 接对 研 究 区域 进行 准 确 的部 位 限 制 性给药 ,方便确 切 掌握给 药剂 量和浓 度 ;其 次能 得 出更 接近 正常 生理 状 态 下 的 实验 结 果 。
方法 如下 :(1)采用 戊 巴 比妥钠 (浓度 7.5 mg/m1) OA ml/10 g腹 腔注射 麻醉 小 鼠;(2)小 鼠头顶部剃 毛 , 固定 于脑 立体 定 向仪 , 调节 门齿 杆 ,使其 顶部 呈 水 平 状;(3)头顶 皮肤 消毒后 沿 中线切 开 ,剥离筋 膜,以 无 菌棉签 蘸少 量双 氧水 涂擦颅 骨表 面 ,暴 露 Bregrna (前 囟)点;(4)根据 Paxinos等【 】所 著 《小 鼠脑 立体 定
Apr.2014,34(2)
实验动物与 比较 医学 Laboratory Animal and Comparative Medicine
doi:10.3969/j.issn.1674—5817.2014.02.015
小 鼠侧脑室埋 管给药方法 的优 化
153
赵 勇 ,张 璐 ,蔡丽萍 ,徐 晨 : (1.上海实验动物研究中心,上海 201203;2.第二军 医大学实验动物 中心,上海 200433)
[摘要 】 目的 优 化 小 鼠侧 脑 室埋 管给 药方 法。 方法 通 过 两种 不 同埋 管方 法比较 其成 功率 ,通 过不同注射剂量组死亡率观察探索给药剂量范围。结果 实时纠偏埋管法成功率可达 100%,侧 脑 室注射剂量为 5-10 m 时死亡率较低 。 结论 实时纠偏埋管法成功率 高于传统埋管法,侧脑室 注射剂量建议范围为 0 ̄l0 Ixl。 【关键 词】C57BL/6J小鼠;侧 脑 室;实时纠偏 埋管 法;剂 量 范 围
[收稿 日期】2014-03-04 [基金项 目】上海市科委 基金 资助项 目(12140900700) [作者简介】赵  ̄(1974.),男,讲师,
E-mail:zhaoyongsla rc@ 163.cor n
1 材 料 与 方 法
1.1 实验 动物 与分 组 SPF级雄 性 C57BL/6J小 鼠 60只 ,7~8周 龄 ,
实 验 中使用 ALC.H 电动数 显动 物脑 立体 定 向 仪 、ALC.IP600型 微量 注射 泵 、ALC。CED8型 动 物 颅骨钻(以上均 由上海 奥尔科特 生物科技有 限公 司 生 产),埋 置 套管 使用 2.5 m1无 菌注射 器 针头 自制 , 内芯 使 用 相 配 不 锈 钢 丝 自制 , 与 套 管 适 配 的 PE 管 、 内注射 针 及 直径 1 mm、长 度 2 mm 的 固定 用 螺 丝(购 自深圳 市瑞 沃德 生命 科 技有 限公 司)。 自凝 牙托水和牙托粉均为市购 。实验用螺丝、套管等 与 小 鼠体 内接 触 器材 采 用 新 沽尔 灭 浸 泡 消毒 。 1.3 手术 方法
侧脑 室 给 药通 常有 两种 实 验设 计 ,一 种是 仅 需 单次给药的实验,可 以直接进行侧脑室注射;另一种 是需 要连 续给 药 的实验 ,通 常进 行侧 脑 室埋管 给药 的 方 法 。采 用 侧 脑 室 埋 管 给 药 方 法 的实 验 , 能够 得到 的可 靠数据 量 与埋 管成 功率密 切相 关 。 小 鼠的 侧脑 室 较大 鼠小 ,埋 管 成 功率 亦较 低 ,很容 易 造成 因埋 管不 成功而 影 响实验 数据 的科 学性 ,实验 效率 较 低 。这 种 无 法 实 时 调 整 、 无 导 向 、“盲 目 ” 的 传 统埋 管 ,往往 需 要靠成 倍增 加 实验动 物数量 来 保 证取得 足够 的实 验数 据量 , 预 防性 的增加 实验动 物 量对 实验 资源和 实验 人 员均 造 成无谓 的浪 费。 作者 在长 期侧 脑室埋 管 实验 中摸索 出一 种 “实时纠 偏埋 管法 ”, 即可 以在 埋 管 操作 过 程 中对 所 埋套 管 是 否 进 入侧 脑 室进行 判 断并实 时调 整 ,直 至进入 侧脑 室 为 止 ,从 而 大 幅 提 高 侧 脑 室 埋 管 成 功 率 。 目前 , 关 于侧 脑室 给药 的剂量 亦有 争议 ,本 实验通 过不 同 注 射剂 量 导致小 鼠死 亡率 的 比较 ,拟对 小 鼠侧脑 室 注 射 时采 用 的药 物 剂量 范 围提 供 实 验参 考 数据 。