鸭瘟病毒单抗的制备及胶体金试纸条检测方法的建立
鸭肠炎病毒的提纯和间接ELISA诊断方法的建立及应用的开题报告
鸭肠炎病毒的提纯和间接ELISA诊断方法的建立及
应用的开题报告
介绍:
鸭肠炎是由鸭肠炎病毒感染引起的一种急性、高度传染性的疾病,
常发生于家禽养殖中,给养殖业造成了巨大的经济损失。
因此,建立快速、准确的诊断方法和有效的疫苗是十分必要的。
本文旨在研究鸭肠炎
病毒的提纯方法及间接ELISA诊断方法的建立和应用。
一、鸭肠炎病毒的提纯方法
使用鸭肠炎病毒株进行感染和复制,采用低速离心、高速离心、HOME、GE等多种方法逐步去除细胞碎片、蛋白质、核酸等杂质,最终
得到较为纯净的病毒颗粒。
采用SDS-PAGE等方法检测病毒纯度,为后
续的诊断方法提供基础。
二、间接ELISA诊断方法的建立
1.制备抗体:使用提纯的鸭肠炎病毒制备兔抗血清,检测抗体效价。
2.制备抗原:将提纯的鸭肠炎病毒加入固相板,通过化学交联将病
毒固定在板上,用PBS等缓冲液冲洗去其他杂质,得到抗原。
3.检测抗体:将样本加入含有抗原的固相板孔中,待抗体反应,加
入检测二抗,通过酶作用反应终止后测量OD值,根据OD值判断是否感染鸭肠炎病毒。
三、间接ELISA诊断方法的应用
1.检测感染率:采集禽类粪便或血清样本,通过间接ELISA方法检
测其是否感染了鸭肠炎病毒。
2.监测疫苗效果:采集接种过疫苗后的禽类粪便或血清样本,通过
间接ELISA方法检测其是否产生了抗体,评价疫苗的效果。
综上所述,鸭肠炎病毒的提纯和间接ELISA诊断方法的建立及应用是一项重要的研究工作,该方法的建立将为鸭肠炎的防治提供重要的技术支持。
鸭瘟病毒PCR快速检测方法的建立
以提 取 的 D P V D N A作 为模 板 , 进行 P C R反应 ,
扩增 U L 3 0基 因 。在 其它条 件 不变 的情 况下 , 对 反 应 的 退火 温 度 进 行 优 化 ,分 别 采 用 4 3 ℃, 4 5 ℃, 4 7 ℃, 4 9 ℃, 5 l ℃, 5 3 ℃ 等 6种 不 同 的退 火 温 度 进
1 材 料 和 方 法
1 . 1 病毒株 与病 料
行扩 增 ; 在 其它 条件 不变 的情 况下 , 对 反应 的 引物
浓度进行优化 , 分别采用 0 . 2 I J - m o l / L , 0 . 4 l a m o l / L ,
0 . 6 l a m o l / L , 0 . 8 m o l / L , 1 . 0 l a m o l / L , 1 . 2 l a m o l / L
合 成 。上 游 引物 : 5
一
C G A C T A C A T C C A T A C C C A C T
的 诊 断 检 测 并 展 示 其 良好 的应 用 前 景 。而 应 用
P C R技术 对 D P进 行 诊 断 , 能快 速地 检 测 出是 否有 D P V , 是常规 检测 方法无 法 比拟 的 。 因此 , 建 立一种 D P V的 P C R检测 方 法对 于 D P的早 期诊 断 , 防止 D P 的大 规模爆 发有 重要 的意 义 。 本研 究根据 G e n B a n k公 布 U L 3 0( E F 5 5 4 4 0 3 ) 基 因序列 ,设计 1 对特 异 性 引物 ,建立 了一种特 异、 敏感的 D P V检测方 法 。
鸭瘟病毒UL35基因PCR方法的建立与初步应用
出血等 n 。 目前 , 鸭瘟 的 主要 防 治方 法 是免 疫 鸭
瘟 弱 毒疫苗 , 由于 某些 厂家疫 苗质 量 不稳 定 、 但 免 疫 剂 量不足 等 问题造 成 免疫 失败 , 以及 隐 性带 毒
鸭瘟病 毒 (uk pau iu ,P ) D c lg ev r sD V 引起 的鸭 、 鹅 和 天 鹅等 水 禽 的 一种 急 性 、 性 、 触 传染 性 、 热 接 败 血 性传 染病 ,其 病变 的主 要特征 是 食道 有假 膜 性 坏 死 性 炎症 , 泄殖 腔 充 血 、 水肿 , 管损 伤 和 组 织 血
m eh df r er p d d tc in o DP wa e eo e yo t zn o a t n fc o s T er s l o dt a t o i ee t f o t a h o V s v lp db p i i g s mer ci t r . h u t s we t d mi e o a e sh h a 3 4 b e i cf g n o l ea l e o teDP DNA n es n i v t f C wa 7 gDP DNA. 5 p s cf r me t u db mp i df m V p i a c i f r h a d t e st i o P R s 0n V- h i y 4
De eo m e t n p l a i n o V 3 e eP v lp n da p i t f a c o DP UL g n CR s a 5 asy
D n a n S nMi u , vD a h n , uQin o gJ we , u n a L i o g H l i h n i (n tueo VeeiayMe iie Gu n d n a e f r utr ce c sGu n d n e a oaoyo Vee n r Isi t f tr r dcn , a g o gAc d myo Agi l eS in e, a g o gOp nL b rtr f tr a t n c u i y P bi H at, u n z o 1 6 0C ia u l e l G a g h u5 4 , hn ) c h 0
一种新冠胶体金抗体检测试纸条及其制备方法
一种新冠胶体金抗体检测试纸条及其制备
方法
以下是一种新冠胶体金抗体检测试纸条及其制备方法的简要介绍:
该测试纸条主要包括纸基、检测线和负对照线,检测线和负对照线上分别固定有新冠病毒抗原和兔抗IgG抗体。
制备方法包括以下步骤:
1.准备纸基,将其涂上样品吸附剂。
2.在纸基上涂布含有新冠病毒抗原的检测线和含有兔抗IgG抗体
的负对照线。
3.干燥并切割纸条,制成测试纸条。
4.将制成的测试纸条包装好,存放于密封袋中。
使用时,将待检测样品滴到样品吸附剂处,样品会被纸基吸附并沿着纸条流动,如果样品中存在新冠病毒抗体,则会与检测线上的新冠病毒抗原结合,形成红色线条,从而显示检测结果为阳性;如果样品中不存在新冠病毒抗体,则只会显示负对照线,检测结果为阴性。
需要注意的是,该测试纸条仅供参考,具体操作时需要根据实际情况进行调整和验证。
禽流感免疫胶体金快速检测技术研究
利用抗AIV单抗及羊抗禽流感多抗初步建立了用 于检测AIV的免疫胶体金层析检测法,该方法具 有一定的灵敏度,操作简便,反应快速、特异性 强等特点。
编号为Ⅲ的液体处理的样品垫加样后,样品垫上的 流速快慢适中,符合要求,约10min内样品从测试条加 样端流到吸水纸端,且可在一定程度上控制非特异性反 应。
金标抗体、羊抗AIV IgG 、羊抗鼠IgG喷涂量的确定
试验组
1 2 3 4 5 6 7 8 9
金标抗体喷涂量 (OD520=0.62) 1.5 1.5 1.5 2.5 2.0 2.0 2.0 2.5 2.5
样品垫处理液的选择
试剂
Ⅰ Ⅱ Ⅲ Ⅳ ⅤⅥ
Na2B4O710H2O(g) 1.42 1.42 1.42 2.0 2.0 2.0
PVP-10 (g)
1.0 2.0 2.0 2.0 2.0 1.0
Triton-100(ml) 3 3 2 3 2 2
BSA (g)
0.5 0.5 0.6 0.6 0.6 0.5
测试方法与评判
样品层析方向 反 应 区
加样区
吸附区
检测线
质控线
取待检样品50 ul,滴于测试条的加样区;
待测样品按如图所示的方向,通过层析作用,
从加样区经过检测线、质控线,最后到达吸
附区。反应经过10-15 min即可判定结果。
AIV检测的评判标准
阳性
阴性
试纸条上出现两条红色为AIV阳性,若只有
对照线为红色则判为阴性。两条线均无显色
为测试条失效
稳定性试验
1d
3d
5d 7d 8d
37℃放置 1d、3d、5d、7d后的检测结果无明显差别,37℃放置8d 天后检测线不清晰;4℃放置1、2、3、4、5、6个月后的检测结果 无明显差别,4℃放置7个月检测线不清晰。
单抗制备的详细步骤
单抗制备的详细步骤单抗(monoclonal antibody)是由单一细胞母克隆细胞系产生的抗体,具有高度特异性和一致性。
单抗制备的过程通常包括免疫原的选择、动物免疫、细胞融合、克隆筛选和克隆扩增等步骤。
下面将详细介绍这些步骤。
第一步,免疫原的选择。
免疫原是制备单抗必不可少的关键组成部分。
免疫原的选择应基于目标抗体的特异性和重要性。
常用的免疫原包括蛋白质、多肽、多糖、细胞表面分子等。
为了提高免疫原的免疫原性,可以将免疫原与佐剂混合,以增强其免疫原性。
第二步,动物免疫。
将选择的免疫原注射到合适的动物体内。
常用的免疫动物包括小鼠、大鼠、兔子等。
在免疫过程中,通常需要多次免疫,在每次免疫之间有一定的间隔时间,以增强免疫效果。
在免疫的过程中,可以通过采血检测免疫反应的进展,并决定最佳的免疫时间点。
第三步,细胞融合。
在免疫过程中,免疫细胞会产生针对免疫原的抗体。
为了制备单抗,需要将这些抗体产生的免疫细胞与癌细胞进行融合,形成杂交瘤细胞。
常用的癌细胞包括骨髓瘤细胞、葡萄膜炎细胞等。
第四步,克隆筛选。
将细胞融合密度适宜的细胞悬浮液均匀分配到培养皿中,使单个杂交瘤细胞分布在不同的培养皿中。
培养皿中含有特定选择性培养基,使只有杂交瘤细胞能够存活和生长。
在适当的条件下,杂交瘤细胞会形成一个细胞克隆。
然后,可以通过ELISA、细胞培养和动物注射等方法对克隆的细胞上清液进行筛选,以检测是否含有特定的抗体。
第五步,克隆扩增。
通过继续培养和传代,可以扩增含有特定抗体的细胞克隆。
克隆扩增的时间可能需要数周或数月,具体取决于细胞系的生长速度和特性。
最后,可以将克隆扩增的细胞培养液进行纯化和浓缩,以获得高纯度的单抗。
通常使用亲和层析、离心、电泳等技术进行单抗的纯化。
单抗制备的最终产品可以用于医学研究、诊断和治疗等领域。
尽管以上步骤可以概括标准的单抗制备过程,但实际制备中可能因为不同的实验目的和具体需求而存在一些变化。
制备单抗是一个复杂而耗时的过程,需要专业的实验技术和丰富的经验。
鸭瘟病毒gB蛋白单克隆抗体的制备
鸭瘟病毒gB蛋白单克隆抗体的制备赵丹丹;刁有祥;杨国平;陈浩;提金凤;张璐【摘要】[目的]制备鸭瘟病毒(DPV)gB蛋白单克隆抗体,为建立DPV快速诊断方法及进一步鉴定DPV的抗原表位奠定基础.[方法]克隆DPV gB基因,构建其表达载体并进行原核表达,纯化DPV gB蛋白,以其作为抗原免疫8周龄BALB/c小鼠,取其脾细胞与SP2/0骨髓瘤细胞进行融合,进行间接ELISA及亚克隆筛选,并对单抗亚类及抗原性进行鉴定.[结果]PCR扩增出915 bp的目的基因,成功连接于pET-28a载体,并转化大肠杆菌Rosetta进行诱导表达,获得4株稳定分泌抗DPV gB蛋白的杂交瘤细胞株,分别命名为A8D7、E6C3、H11F8、H6F6,间接ELISA检测其腹水效价分别为1∶103、1∶103、1∶105、1∶103,亚类鉴定结果分别为IgG2b、IgG2a、IgG2b、IgG1,轻链均为kappa链.Western blot结果显示4株单抗均能与DPV gB蛋白特异性结合,IFA结果表明4株单抗是针对DPV产生的.[结论]成功获得了特异性针对DPV gB蛋白的单克隆抗体.【期刊名称】《西北农林科技大学学报(自然科学版)》【年(卷),期】2016(044)010【总页数】5页(P7-11)【关键词】鸭瘟病毒;gB蛋白;单克隆抗体【作者】赵丹丹;刁有祥;杨国平;陈浩;提金凤;张璐【作者单位】山东农业大学动物科技学院,山东泰安271018;山东农业大学动物科技学院,山东泰安271018;山东农业大学动物科技学院,山东泰安271018;山东农业大学动物科技学院,山东泰安271018;山东农业大学动物科技学院,山东泰安271018;山东农业大学动物科技学院,山东泰安271018【正文语种】中文【中图分类】S852.65+7鸭瘟由Baudet于 1923 年首次在荷兰发现,随后陆续在许多养鸭国家暴发和流行,给养鸭业带来严重的经济损失[1]。
鸭坦布苏病毒E蛋白Domain Ⅲ单克隆抗体胶体金试纸条的创制及应用
鸭坦布苏病毒E蛋白Domain Ⅲ单克隆抗体胶体金试纸条的创制及应用阚莹;张淼;卢奇;吕炫;于胜祖;王习强;姜雅倩;王蓓;朱英奇;王晴;王桂军【期刊名称】《中国动物检疫》【年(卷),期】2023(40)2【摘要】为建立一种快速诊断鸭坦布苏病毒(DTMUV)的方法,以2株(B9D7B8G10和B9D10C7株)抗DTMUV的单克隆抗体制备DTMUV胶体金免疫层析试纸条。
采用经典的柠檬酸钠还原法制备胶体金溶液,利用rProtein G琼脂糖凝胶亲和层析法对两株单克隆抗体腹水进行纯化并鉴定;以纯化的B9D7B8G10株单克隆抗体作为标记抗体,通过调节单克隆抗体浓度与pH确定胶体金探针最佳结合条件;同时,在硝酸纤维素膜(NC膜)检测带包被纯化的B9D10C7株单克隆抗体,质控带包被山羊抗小鼠IgG抗体,建立检测DTMUV胶体金免疫层析试纸条;成功建立试纸条后,对试纸条敏感性、特异性、重复性和稳定性进行检测,并与RT-PCR检测方法进行比较,对200份临床疑似感染样品进行检测。
结果显示:制备的胶体金试纸条在15 min内即可完成检测,最低检测稀释度为1:50,且不与鸭瘟病毒、番鸭细小病毒、鹅星状病毒、禽白血病病毒发生交叉反应;应用试纸条和RT-PCR方法分别对200份临床疑似样品进行检测,两者符合率达98%。
结果表明,制备的胶体金试纸条敏感性高、特异性强、稳定性好、重复性好,为DTMUV的快速检测提供了一种实用检测技术。
【总页数】8页(P131-138)【作者】阚莹;张淼;卢奇;吕炫;于胜祖;王习强;姜雅倩;王蓓;朱英奇;王晴;王桂军【作者单位】安徽农业大学动物科技学院【正文语种】中文【中图分类】S851.3【相关文献】1.抗鸭坦布苏病毒NS5蛋白单克隆抗体的制备及鉴定2.胶体金免疫层析试纸条快速检测鸭坦布苏病毒方法的建立3.鸭坦布苏病毒、鸭肠炎病毒和番鸭细小病毒TaqMan三重实时荧光定量PCR检测方法的建立与临床应用4.重组鸭瘟病毒载体中筛选高效表达鸭坦布苏病毒E蛋白启动子5.鸭坦布苏病毒、新型鸭呼肠孤病毒及番鸭呼肠孤病毒多重TaqMan荧光定量RT-PCR检测方法的建立与临床应用因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
鸭瘟病毒SYBR Green Ⅰ荧光定量PCR检测方法的建立
鸭瘟病毒SYBR Green Ⅰ荧光定量PCR检测方法的建立于新友;李天芝;王金良;沈志强【期刊名称】《水禽世界》【年(卷),期】2014(0)6【摘要】为建立鸭瘟病毒(DPV)快速、敏感的检测方法,本研究利用PCR技术扩增出DPVUL30基因中510bp的保守序列,并克隆到pMD18-T载体中作为标准品制作标准曲线,建立了DPV的SYBR Green Ⅰ荧光定量PCR检测方法.该方法检测灵敏度可达5×101拷贝,与鸭细小病毒、鸭圆环病毒、小鹅瘟病毒、鸭肝炎病毒、鸭H9亚型流感病毒和鸭副粘病毒均不发生交叉反应,具有良好的特异性和重复性.结果表明,建立的实时荧光定量PCR具有特异、敏感、快速、定量、重复性好等优点,可用于临床DPV的检测.【总页数】4页(P31-34)【作者】于新友;李天芝;王金良;沈志强【作者单位】山东绿都生物科技有限公司,山东滨州 256600;山东绿都生物科技有限公司,山东滨州 256600;山东绿都生物科技有限公司,山东滨州 256600;山东省滨州畜牧兽医研究院;山东绿都生物科技有限公司,山东滨州 256600;山东省滨州畜牧兽医研究院【正文语种】中文【中图分类】S834.2【相关文献】1.多形拟杆菌SYBR Green荧光定量PCR检测方法的建立及应用 [J], 朱亚丽;张广智;赵圣国;梁琳;亓玉卓;王明艳;崔尚金2.F亚群禽白血病病毒SYBR Green Ⅰ荧光定量PCR检测方法的建立 [J], 严立福;曹伟胜;陈建;郑晓翠;李昱;余蕴;康杨帆;李海霞;张雪婷;程颂3.鸡Caspase-1基因SYBR Green Ⅰ荧光定量PCR检测方法的建立 [J], 郭慧芳;李宁;王白玉;乔麒龙;黄庆;李永涛;王增;赵军4.猪急性腹泻综合征冠状病毒SYBR Green荧光定量PCR检测方法的建立及应用[J], 张记宇;季朝阳;石达;冯力;韩郁茹;时洪艳;陈建飞;张鑫;刘建波;张燎原;冯书风;冯廷帅5.山羊地方性鼻内肿瘤病毒(ENTV-2)SYBR-GreenⅠ实时荧光定量PCR检测方法的建立与应用 [J], 张靖鹏;江锦秀;林裕胜;游伟;刘道泉;毛坤明;江斌;胡奇林因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
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Abstract: 【Objective】 Duck plague (DP) is an acute, septic contagion, caused by duck plague virus (DPV), with the characteristics of head and neck swelling, the mucosa of esophageal and cloacal bleeding and yellowish-white ulcer, head and neck skin has a yellowish-white gelatin sample. Once an outbreak of this disease manifested by with high morbidity and high mortality, it would cause serious harm to the duck industry. The aim of this assay is to establish a method of colloidal gold strip for the detection of duck plague virus (DPV) rapidly. 【Method】 The main antigenic domain of DPV was chosen and analyzed by using of the
关键词:鸭瘟病毒;gB 蛋白;原核表达;单克隆抗体;胶体金试纸条
Preparation of Monoclonal Antibodies Against DPV and Development of Colloidal Gold Strip for DPV Detection
ZHAO Dan-dan, YANG Guo-ping, DIAO You-xiang, CHEN Hao, TI Jin-feng, ZHANG Lu, ZHANG Ying, LI Chuan-chuan
收稿日期:2015-05-13;接受日期:2016-03-10 基金项目:国家现代农业产业技术体系项目(CARS-43-10) 联系方式:赵丹丹,Tel:17863963319;E-mail:zhaodandan_0925@。通信作者刁有祥,Tel:13605386443;E-mail:yxdiao@
14 期
赵丹丹等:鸭瘟病毒单抗的制备及胶体金试纸条检测方法的建立
2797
Protean Biology software to design a pair of primer to amplify the aim gene by PCR. Then the fragment was inserted into prokaryotic expression vector pET-28a to construct recombinant plasmid. Then it was transformed into Rosetta for expression. During the experiment, the authors have groped the concentration of the IPTG and the induction time. After purification, the concentration of the aim protein was tested and was also analyzed and identified by Western blotting. Hybridoma cell lines stably secreting monoclonal antibody against gB protein of DPV were generated by fusing SP2/0 myeloma cells with splenocytes from the immunized mice, which used the gB protein of DPV, expressed and purified with prokaryotic, as the antigen. The monoclonal antibody-based colloidal gold immunochromatography strip was developed for the detection of DPV. The purified DPV-gB monoclonal antibody, named H6F6, was labeled with colloidal gold, with the appropriate pH between 8.0 and 8.5 and the concentration was 15 times dilution. The purified A8D7 monoclonal antibody, with the concentration of twice dilution, and the goat anti-mouse immunoglobulin G (IgG) antibody, with the concentration of ten times dilution, were blotted on nitrocellulose membrane as test line and control line, respectively. 【Result】 Hybridoma cell lines designated as A8D9, E6C3, H11F8, H6A10, stably secreting monoclonal antibody against gB protein of DPV. The titres of ascitic fluid was1:103, 1:103, 1:105, 1:103, respectively by indirect ELISA and the immunoglobulin subtype of the monoclonal antibodies was IgG2b, IgG2a, IgG2b, IgG1,with the light chain of kappa. The result of western blot showed that the four monoclonal antibodies were able to specifically recognize gB protein of DPV. The result of IFA showed that the four monoclonal antibodies were specific to DPV. The detection results indicated that the strip was specific to DPV and had no cross reaction with DRV, EDS-76V, AIV-H9N2, and TMUV. The detection limit of DPV were 50 times dilution. 38 clinical suspected samples were simultaneously detected by immunochromatography strip and PCR while the results showed 91.6 % accuracy between them. The monoclonal antibodies-based colloidal gold strip was highly specific and sensitive and more convenient for the clinical diagnosis of DPV. 【Conclusion】 The colloidal gold strip was highly specific and sensitive and more convenient for the clinical diagnosis of DPV.
Key words: duck plague virus; glycoprotein B; Prokaryotic expression; monoclonal antibody; colloidal gold strip
0 引言
【研究意义】鸭瘟(duck plague,DP)是由鸭瘟 病毒(duck plague virus,DPV)引起的一种急性、败 血性传染病[1],以头颈肿胀、食道黏膜和泄殖腔黏膜 出血、头颈部皮下有淡黄色胶冻样渗出为特征。该病 一旦发生,发病急、死亡快、死亡率高,对养鸭业危 害严重。快速诊断是控制鸭瘟的重要措施之一,可以 及时确定病原,以便采取有效防制手段。【前人研究 进展】目前已建立了 PCR、ELISA、间接免疫荧光技 术、微量中和试验等检测鸭瘟的方法[2],但上述检测 方法均需特殊的仪器设备,且耗时长,不适于在基层 推广应用。胶体金免疫层析技术是近年来发展起来的 集胶体金标记技术、蛋白层析技术于一体的新型快速 免疫检测技术[3-4]。该技术操作简便、耗时短,不需要 特殊的仪器设备[5-6],特别适合在基层推广应用[7-8]。 【本研究切入点】鸭瘟对养鸭业危害严重,目前已建 立了 PCR、ELISA、间接免疫荧光技术、微量中和试 验等检测鸭瘟的方法,但上述检测方法均需特殊的仪 器设备,且耗时长,不适于在基层推广应用。胶体金 免疫层析技术是近年来发展起来的集胶体金标记技 术、蛋白层析技术于一体的新型快速免疫检测技术。 该技术操作简便、耗时短,不需要特殊的仪器设备,
中国农业科学 2016,49(14):2796-2804 Scientia Agricultura Sinica