培养时间对药敏试验结果的影响
如何正确理解培养和药敏结果
• 综上所述,药敏结果的解读对于指导临床合理用药、延缓耐药菌产生以 及监测病原菌耐药性变迁具有重要意义。因此,在临床实践中,我们应 该充分重视药敏试验的开展和结果的解读,为患者的治疗提供有力支持 。
耐药(R):病原菌在特定药物浓度下仍能正常生长,表示该药物对 病原菌无效。
通过药敏结果的判断与解读,可以为医生提供病原菌对各种抗菌药物 的敏感性信息,为临床合理用药提供重要依据。
药敏结果的临床意义
• 指导合理用药:根据药敏结果,医生可以选择敏感的药物进行治疗,提 高治疗效果。
• 延缓耐药菌产生:通过合理选择抗菌药物,减少耐药菌株的产生和传播 。
临床医生如何与实验室有效沟通与合作
提供详细病人信息
医生在送检标本时,应提供患者的详细病史、症状、体征 等信息,帮助实验室人员更好地理解和解读结果。
及时反馈治疗效果
医生在收到培养和药敏结果后,应结合患者治疗效果,向 实验室反馈,以便实验室持续优化和改进测试方法。
定期沟通与培训
医生和实验室人员应定期进行沟通和培训,共同提高对病 原体培养和药敏测试的理解和应用能力,为患者提供更准 确、高效的治疗方案。
方法
一般采用琼脂平板扩散法、肉汤 稀释法等,将病原菌与不同浓度 的抗菌药物接触,观察其生长情 况。
药敏结果的判断与解读
01 02 03 04
敏感(S):病原菌在特定药物浓度下生长被完全抑制,表示该药物 可用于治疗。
中介(I):病原菌在特定药物浓度下生长部分被抑制,表示该药物 疗效不确定,需结合临床情况判断。
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治疗,避免滥用抗生素。
细菌药敏试验实验报告
细菌药敏试验实验报告细菌药敏试验实验报告细菌药敏试验是一种常用的实验方法,用于评估细菌对不同抗生素的敏感性。
本次实验旨在探究不同抗生素对细菌的抑菌效果,并比较不同细菌株对抗生素的敏感性差异。
下面将对实验的背景、方法、结果和讨论进行详细描述。
一、背景细菌感染是常见的健康问题,而抗生素是治疗细菌感染的主要手段之一。
然而,随着时间的推移,细菌对抗生素的耐药性不断增强,这给临床治疗带来了很大的挑战。
因此,了解细菌对抗生素的敏感性情况,对于合理选择抗生素和制定治疗方案具有重要意义。
二、方法1. 实验材料:- 不同种类的细菌培养物- 不同种类的抗生素药片- 灭菌培养基- 培养皿和培养瓶- 恒温培养箱- 显微镜和显微镜玻片2. 实验步骤:a) 准备工作:将培养皿和培养瓶经过高温高压灭菌处理,保证无菌环境。
b) 细菌培养:将不同种类的细菌接种于灭菌培养基中,置于恒温培养箱中,保持适宜的温度和湿度,培养细菌至适宜的菌落数量。
c) 制备抗生素试验板:将灭菌培养基均匀地倒入培养皿中,使其凝固成试验板。
d) 涂布法:用无菌的棉签,将不同细菌培养物均匀涂布在试验板上。
e) 抗生素药片放置:将不同种类的抗生素药片放置在试验板上,注意不同药片之间的距离,避免相互干扰。
f) 培养:将试验板置于恒温培养箱中,培养一定时间,使细菌在抗生素的作用下生长。
g) 观察结果:观察试验板上细菌生长情况,记录不同抗生素对细菌的抑制效果。
三、结果经过一段时间的培养,观察试验板上的细菌生长情况,得出以下结果:1. 不同细菌对不同抗生素的敏感性差异明显。
某些细菌株对某种抗生素表现出很高的敏感性,而对另一种抗生素则表现出耐药性。
2. 某些抗生素对多种细菌株均具有较好的抑菌效果,而另一些抗生素则只对特定的细菌株有效。
3. 部分细菌株对多种抗生素均表现出耐药性,这说明这些细菌株可能已经产生了抗药性基因。
四、讨论通过本次实验,我们发现不同细菌株对抗生素的敏感性差异很大。
药敏实验的原理实验报告
药敏实验的原理实验报告药敏实验的原理实验报告引言药物敏感性测试是一种常见的实验方法,用于确定细菌或真菌对不同药物的敏感性和抗性。
该实验报告旨在介绍药敏实验的原理、实验步骤和结果解读。
实验原理药敏实验的原理基于细菌或真菌对不同抗生素、抗真菌药物的敏感性差异。
在实验中,我们通常使用纸片扩散法或微量稀释法来评估药物的抗菌或抗真菌活性。
实验步骤1. 样品准备:收集需要测试的细菌或真菌样品,并进行纯化和培养。
2. 制备培养基:根据实验要求,制备适当的培养基,确保其含有必要的营养物质。
3. 纸片扩散法:将含有不同抗生素或抗真菌药物的纸片放置在含有细菌或真菌的培养基上,培养一段时间后观察生长情况。
4. 微量稀释法:将不同浓度的药物溶液加入含有细菌或真菌的培养基中,培养一段时间后观察生长情况。
5. 结果记录:记录不同药物对细菌或真菌的抑制效果,通常使用抑菌圈直径或最小抑菌浓度来评估药物的活性。
实验结果与讨论药敏实验的结果通常以抑菌圈直径或最小抑菌浓度来表示。
抑菌圈直径越大,说明药物对细菌或真菌的抑制作用越强。
最小抑菌浓度越低,说明药物对细菌或真菌的抑制作用越强。
根据实验结果,我们可以判断细菌或真菌对不同药物的敏感性和抗性。
如果细菌或真菌对某种药物表现出高度敏感性,那么该药物可能是治疗感染的有效选择。
相反,如果细菌或真菌对某种药物表现出抗性,那么该药物可能无法有效治疗感染。
实验注意事项1. 实验过程中要注意无菌操作,以避免外源性污染对结果产生干扰。
2. 实验中使用的药物应符合相关法规和规定,确保其安全性和有效性。
3. 实验室人员应遵守相关实验室安全规范,保护自身和他人的安全。
结论药敏实验是一种常见且重要的实验方法,用于评估细菌或真菌对不同药物的敏感性和抗性。
通过实验结果,我们可以选择合适的药物来治疗感染,并避免使用对细菌或真菌无效的药物。
药敏实验在临床医学和药物研发中具有重要的应用价值,可以指导临床用药和药物研发的方向。
细菌鉴定药敏分析临床意义
细菌鉴定药敏分析临床意义细菌感染是临床上常见的疾病,而药敏分析在细菌鉴定和治疗方案选择中起着至关重要的作用。
本文将探讨细菌鉴定药敏分析的临床意义以及其在临床实践中的应用。
一、细菌鉴定药敏分析简介细菌鉴定药敏分析是通过培养细菌样本,确定致病菌的种类,并测试其对不同抗生素的敏感性。
这使得医生能够针对特定细菌感染选择最有效的治疗方法,以提高治疗效果。
二、细菌鉴定的临床意义1. 精确诊断:通过细菌鉴定,可以准确确定患者感染的细菌种类,有助于医生对病情进行准确评估和诊断。
2. 治疗方案选择:针对不同的细菌感染,药敏分析可以指导医生选择最合适的抗生素,避免使用无效或过度使用药物。
3. 防止抗生素滥用:药敏分析结果可以准确指导医生在治疗中避免滥用抗生素,减少细菌耐药性的产生和传播。
4. 治疗效果评估:通过监测细菌的敏感性变化,可以及时评估治疗效果,及早修改治疗方案。
三、细菌鉴定药敏分析的应用1. 细菌鉴定药敏分析在临床感染科中广泛应用,包括尿路感染、呼吸道感染、血液感染等多种细菌感染。
2. 在手术预防性用药中,细菌鉴定药敏分析能够准确指导术前用药,降低手术相关感染的发生率。
3. 对于产生持续感染的患者,细菌鉴定药敏分析还可以用于指导长期抗生素治疗的调整,以提高治疗效果并避免耐药性的产生。
四、细菌鉴定药敏分析的局限性1. 培养时间:细菌鉴定和药敏分析需要一定的培养时间,可能延误治疗时机。
2. 染色和培养条件:某些细菌对染色和特殊培养条件比较敏感,可能导致鉴定结果不准确。
3. 复杂性:细菌存在多种鉴定方法和药敏试验,需要专业技术人员进行操作和解读结果。
五、细菌鉴定药敏分析的未来发展1. 快速检测技术的发展,如基因检测、质谱技术等,将缩短细菌鉴定和药敏分析的时间,提高结果准确性。
2. 多重药敏分析的应用,可以评估细菌对多种抗生素的敏感性,为治疗方案提供更加全面的依据。
3. 数据分析的应用,通过大数据的分析和比较,可以更好地了解不同地区和不同类型细菌的药物抗性情况,指导抗生素使用策略。
抗菌药物敏感性试验执行标准
抗菌药物敏感性试验执行标准抗菌药物敏感性试验是临床微生物学中非常重要的一项实验,它可以帮助医生选择最有效的抗菌药物来治疗感染性疾病。
执行标准的严格性和准确性对于试验结果的可靠性至关重要。
下面将介绍抗菌药物敏感性试验执行标准的相关内容。
首先,进行抗菌药物敏感性试验前,需要准备好所需的培养基、试验材料和各种试剂。
同时,要做好实验室的消毒和无菌操作,以确保试验的准确性和可靠性。
在进行试验时,需要按照严格的操作规程进行。
首先,要准备好待测菌株的悬浮液,然后按照一定比例将其接种到含有不同浓度抗菌药物的琼脂平板上。
接种后,要在恒温培养箱中进行培养,培养时间一般为16-18小时。
培养结束后,需要观察菌落的生长情况,并进行相关的数据记录和分析。
根据菌落的生长情况和抗菌药物的浓度,可以判断出菌株对抗菌药物的敏感性。
在记录和分析数据时,要注意细致入微,确保数据的准确性和可靠性。
在执行标准中,对试验结果的解释和判定也非常重要。
根据试验结果,可以判断出菌株对抗菌药物的敏感性、耐药性或者中间敏感性。
这些判定对于临床治疗具有指导意义,可以帮助医生选择最合适的抗菌药物来治疗感染性疾病。
此外,在执行标准中,还需要对试验过程中可能出现的干扰因素进行控制和排除。
比如,培养条件、试剂质量、操作技术等都可能对试验结果产生影响,需要在试验过程中进行严格的控制和调节。
总的来说,抗菌药物敏感性试验执行标准的严格性和准确性对于试验结果的可靠性至关重要。
在实验过程中,需要严格按照操作规程进行,确保试验过程的准确性和可靠性。
同时,对试验结果的解释和判定也非常重要,可以帮助医生选择最合适的抗菌药物来治疗感染性疾病。
在执行标准中,还需要对试验过程中可能出现的干扰因素进行控制和排除,以确保试验结果的准确性和可靠性。
微生物培养及药敏结果解读内容
微生物培养、药敏试验的流程及意义一、微生物培养及药敏试验的总述微生物培养就是使用体外试验的方法检测可能导致感染的病原菌,并给以药敏结果,为临床医生针对某一特定的临床感染提供依据。
而药敏试验则是承接微生物培养的一项工作,即对于培养得到的病原菌进行体外试验检测细菌对于抗菌药物的耐药性,来预测抗菌药物的临床治疗效果,从而为临床医生提供选用抗菌药物的依据来治疗感染。
对于检测到的可能的致病菌进行药敏试验时选择的药物是参照美国的CLSI推荐的标准制定的。
尤其,使用全自动微生物分析仪进行药敏试验时有固定的药敏组合,不是人为可以随意添加或减少的。
(一)微生物的培养和药敏试验的流程基本为:①将标本进行处理(不是所有的标本都需要处理);②将标本接种于不同的培养皿中在不同条件的培养箱中进行培养(不同的标本所含菌的种类不同,不同菌的生长条件不同,因此需要接种于不同的培养皿中);③24h后观察培养皿中细菌的生长情况:a.此时若无细菌培养,继续放回培养箱中培养24h,若仍然无细菌生长则判定为阴性结果,因此阴性结果出具的时间为48h以后。
b.若有细菌生长,要根据形态和气味等对细菌进行初步的判定,若能判定出细菌的种类,则进行相应的药敏试验。
贴有药敏片的培养皿在培养箱中培养24h后进行药敏结果的解读,然后报告结果,这种微生物培养及药敏结果报告出具的时间就是48h以后。
由于不同的细菌的生长的速度不同,有些细菌在培养24h后不能完全判定结果甚者24h 培养后无法观察到明显的细菌生长的则需要继续培养24h,即连续培养48h后同样根据菌落的形态、气味等来观察判定细菌的种类然后进行药敏试验。
这种微生物培养和药敏试验结果出具需要72h以后。
而血液、骨髓等标本则是利用不同于上述培养方式的方法进行培养。
它有专门的培养瓶和仪器。
这种仪器会自动监测培养瓶中的变化来判定有无细菌生长,若有细菌生长仪器会发出警报。
在培养5天内任何时间发出警报的培养瓶都要抽取瓶中的物质在培养皿中进行接种培养,同样在菌种鉴定后进行药敏试验;若在培养5天内不发出警报的培养瓶则视为阴性结果。
医院细菌培养及药敏试验中常见问题调研及改进对策探讨
医院细菌培养及药敏试验中常见问题调研及改进对策探讨在医疗领域中,病原体的分离培养和药物敏感性测试是非常关键的一步。
通过细菌培养和药敏试验对病原体进行鉴定和分析,有助于制定合理的治疗方案和避免抗生素滥用。
但在实际应用中,细菌培养和药敏试验中存在一些常见问题,本文将对这些问题进行调研,并提出改进对策。
细菌培养中的问题培养场所不合适在细菌培养过程中,需要将试管、平板等放入恒温箱中,温度和湿度等条件需要精准控制。
然而,在部分医院中,培养场所并未得到妥善的管理,导致封闭环境中的微生物污染。
同时,一些医院内科细菌培养室在制定设计方案时事先并未考虑到恒温箱的寿命等技术性要求,导致设备老化、运行寿命短等问题。
结果与真菌混杂细菌和真菌的分离培养需要不同的条件和介质。
有时,细菌和真菌可能同时存在并共存生长,而细菌培养过程中,可能存在真菌的污染,导致培养结果出现假阳性。
培养时间过长或过短培养时间的不同直接会影响细菌的生长情况。
培养时间过长,会导致菌落过于庞大、数量众多从而给后续药敏试验带来困难,甚至在读取结果时出现歧义或误读。
另外,由于医疗人员需要快速的获取病人的细菌结果,培养时间过短会缩短含意明确的药物诊断周期,从而带来副作用的风险。
药敏试验中的问题药敏纸片使用错误或不当药敏纸片上的药物种类丰富,并且不同药物对细菌敏感度不同。
药敏试验需要精准配制,并且在操作前精确估算、如何正确地将药敏试纸放置在津贴表面上,使用药物浓度和时间都应该得到平衡。
不同细菌菌株的敏感性差异不同的细菌菌株对药物的敏感性是不同的,而不同的药敏试验方法可能会对结果产生误差。
这是因为,药敏试验中的测量技术和条件还没有到达全自动化的水平,未能对药物浓度进行准确包气泡、一步加药以及精确监控反应时间等。
未能及时分离并鉴定菌株在药物治疗过程中,病情往往非常紧急。
国内一些医院未能及时地对病人的细菌分离和肿瘤组织分析进行检测,导致细菌种类的鉴定存在误差。
这样会导致药物治疗方案有偏差,病情得不到有效控制,严重时甚至会危及患者生命。
浅析纸片法药敏试验结果的影响因素
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尾蚴。在检查咽喉内侧淋巴结, 剖检淋巴结时, 有白色结节, 可初步诊断为结核; 如果见到下颌、眼眶有鸡蛋大的硬节, 可 初步诊断为放线菌, 此头销毁处理。
(2)内脏检验 胃肠脾检验: 在开膛后先不摘除胃肠而将 肠 露 于 腹 腔 外 , 先 检 视 胃 肠 的 外 形 , 浆 膜 有 无 出 血 、充 血 现 象, 先用刀划破肠系膜淋巴结进行肠炭疽检验。在检验胃肠 的 同 时 还 要 对 脾 脏 进 行 检 验 ( 败 血 型 炭 疽 , 脾 脏 肿 大 3~5 倍) , 再将胃肠脾割交另一人进行胃肠的常规检验, 必要时 切开胃肠检验, 视肠粘膜有无充血, 溃疡, 痈肿, 糜烂等病变。 心肝肺检验: 把心肝肺挂在检验架上对心肝肺进行常规检 查。肺的检验: 检查肺脏有无充血、出血、化脓、结节、肿瘤、坏 死等变化, 必要时切开肺的实质并剖检支气管淋巴结及纵膈
性的药物在规定的培养时间内扩散到培养基中的程度是不 相同的, 有的能完全扩散到培养基中, 而有的却不能完全扩 散, 这必然导致该药物的抑菌效果低于真实值。所以, 药物 溶解性的高低可以影响药物敏感性试验的结果的真实性, 极微溶于水的药物的抑菌圈可能低于其真实抑菌效果。常 用 溶 解 度 较 高 的 药 物 有 : 氨 基 糖 苷 类 药 物 的 盐 类 、头 孢 霉 素 盐 类 、喹 诺 酮 类 等 ; 而 常 用 的 低 溶 解 度 的 药 物 有 : 氟 苯 尼 考 、 北里霉素等。 1.1.2 药 物 稳 定 性 的 影 响 临 床 中 常 用 的 药 敏 片 一 般 是 事 先加工好的, 所以药敏片中药物含量必然受到其稳定性的影 响。有些药物如: 青霉素类、红霉素等在自然条件下非常不稳 定 , 它 们 的 效 价 易 受 到 光 照 、溶 剂 、pH 值 以 及 温 度 等 诸 多 因 素 的 影 响 而 降 低 。如 青 霉 素 钠 或 钾 无 论 在 酸 性 还 是 在 碱 性 溶 液中都会迅速分解, 所以在加工药敏片过程中以及将药敏片 放置到培养基上时, 溶剂和培养基的 pH 值都会造成药物效 价 的 降 低 和 药 敏 结 果 的 降 低 。红 霉 素 也 是 一 种 很 不 稳 定 的 药 物 , 它在 弱 碱 情 况 下 较 为 稳 定 , 但 是 当 pH 小 于 6 时 , 红 霉 素 会很快分解, 导致药敏试验结果的降低。 1.2 药物 作 用 特 点 药 物 敏 感 试 验 结 果 还 受 到 药 物 本 身 作 用特点的影响, 如药物抗菌作用机理、药物作用适宜 pH 值以 及各种离子的影响等。 1.2.1 药 物 抗 菌 作 用 机 理 临 床 中 的 抗 菌 药 物 可 以 简 单 地 分 成 抑 菌 药 物 和 杀 菌 药 物 两 种 。杀 菌 药 物 是 指 药 物 可 以 直 接 作用于细菌静止期和繁殖期将细菌杀灭; 而抑菌药物是通过 竞争抑制或其它机理只杀灭处于繁殖期的细菌, 而对静止期 的 细 菌 没 有 杀 灭 作 用 。由 于 抑 菌 药 物 和 杀 菌 药 物 对 细 菌 的 作 用机理不同, 所以纸片法药敏试验时产生的抑菌圈的边沿是 不相同的。杀菌药物产生的抑菌圈边沿一般是非常清楚, 而
药敏试验原理
药敏试验原理
药敏试验是一种用于测试微生物对抗生素或药物的敏感性的实验方法。
它可以帮助医生确定最有效的治疗方法,避免使用对微生物无效的药物,从而减少药物滥用和耐药性的产生。
药敏试验的原理是通过将不同的抗生素或药物加入培养基中,观察微生物在不同药物浓度下的生长情况,从而判断微生物对药物的敏感性。
在进行药敏试验时,首先需要培养待测微生物,使其达到一定的数量和生长状态。
然后将不同浓度的药物加入含有微生物的培养基中,通常会采用双倍稀释法或梯度法来确定不同浓度的药物。
接着将含有药物的培养基与微生物接种于琼脂平板上,培养一定时间后观察微生物的生长情况。
通过比较不同药物浓度下微生物的生长情况,可以确定微生物对药物的敏感性。
药敏试验的结果通常会以最小抑菌浓度(MIC)来表示,MIC是指能完全抑制微生物生长的最低药物浓度。
根据MIC的结果,可以将药物分为对微生物具有杀菌作用和仅具有抑菌作用两种类型。
对于临床治疗来说,通常会选择对微生物具有杀菌作用的药物,以达到最好的治疗效果。
除了MIC外,药敏试验还可以通过观察药物对微生物的杀菌曲线来评估药物的抗菌活性。
杀菌曲线可以反映出药物对微生物的杀菌速度和效果,对于选择治疗方案和判断药物的疗效都具有重要意义。
总的来说,药敏试验是一种非常重要的实验方法,可以帮助医生选择最有效的治疗药物,减少药物滥用和耐药性的产生。
通过了解药敏试验的原理和结果解读,可以更好地理解临床上药物选择的依据,为临床治疗提供更科学的依据。
同时,药敏试验也为药物研发和抗菌药物的选择提供了重要的参考依据,对于推动医学和药学领域的发展具有重要意义。
淋病双球菌培养时间对结果的影响和耐药性变迁
(上接第28页) 出率位居医院感染的首位。各种侵人性诊疗措施的增加, 免疫抑制剂、放化疗的应用及抗菌药物滥用是引起真菌感 染的体外诱因,而抗菌药物的滥用更是造成此结果的主要 原因b1。我院抗生素使用存在的不合理现象,主要为滥用 广谱抗菌素,使应用时间过长,预防用药过多。革兰阴性 杆菌仅次于真菌为医院感染重要病原菌。医院感染不仅直 接影响医疗护理质量,也体现医院管理的一个整体水平。 医院感染是当前医院管理中的难题,为此,我们提出预防 或减少其发生的措施:(1)健全各种医院感染管理制度, 提高医务人员对医院感染的意识,控制医院感染发生的各 个环节。(2)加强医务人员业务能力培训,积极治疗患者 基础疾病,缩短住院时间。(3)重视侵入性机械操作中无 菌观念,遵守无菌操作规程,对反复接受放、化疗病人, 制定个体化最佳治疗方案,保护患者身免疫力。(4)强调 医务人员手部清洁和消毒,以阻断医院感染传播途径。(5) 保持病房内空气流通,定期用紫外线消毒。(6)加强医院 合理应用抗生素管理,提高临床医生对抗菌药物的抗菌谱
果显示有显著性差异,提示此类药物已不宜用作本地区淋 病双球菌感染的治疗药物。壮观霉素、头孢曲松、头孢噻 肟的耐药率较低,分别为7.3%、5.9%、10.3%,与2001 ~2002年度测试株相比,没有显著性差异。因此,均可作 为临床治疗淋病的药物。但耐药菌株的出现,应该引起重 视。
参考文献
[1]邱华红,钟海萍,陈琼.142株淋病奈瑟氏菌药物敏感性监测 分析[J].福建医药杂志,2001,23(4):114.
抗菌药物
P
耐药数耐药率(%)耐药数耐药率(%)
讨论
目前不少临床实验室在培养淋病双球菌时往往根据文 献推荐或报道【21的培养要求,于5%c0:环境中,35℃培养 24.48h,有些甚至为培养18—24h。而作者在实际工作中 发现,有部分淋病双球菌,尤其是原有淋病病史的病人, 在使用抗菌药物或者不规范治疗后,其所携带的淋病双球 菌的生长非常缓慢,菌落形态也比常规的相更加细小或者 更难生长,培养24h甚至48h,往往不能发(下转第30页)
药敏试验及药敏试验结果分析
一、药敏试验
• MIC:在与微生物生长速率有关的特定时间间隔内,通常是18- 24小时,能够抑制被测菌生长的最低药物浓度。
• 对倍稀释的优点:
– 操作容易 – 敏感株的MIC呈正态分布 – 区分异常(R)与敏感(S)的菌群
药敏试验折点的建立
1. MIC的分布 2. 药代动力学和药效学 定 MIC的折点 3. 临床疗效和细菌清除率 4. 抑菌圈直径的分布 …定抑菌圈折点
肠球菌 青霉素,氨苄 万古霉素
庆大
常规测试并报告的药物分组(3)
一级 二级 三级
流感嗜血杆菌 氨苄,青霉素 TMP/SMZ 头孢肤肟,噻肟 他啶,氯霉素 阿奇,头孢克罗 环丙,亚胺培南
TMP/SMZ 万古霉素
肺炎链球菌 青霉素,红霉素
氧氟,四环素
氯霉素,利福平 利福平,四环素
预报用药(一)
测试药 菌名 性 • 苯唑西林 葡萄球菌 • 四环素 所有(除葡
• 每年修订更改
– 包括质控 – 新药的判定标准 – 特殊耐药性的检测
NCCLS的法规
• 规定纸片含量、接种浓度、培养基、平皿厚度、判定标准、质控 • 规定常规测试报告的抗生素 • 不同的药判定标准不同 • 不同的菌判定标准也不同
常规测试并报告的药物分组(1)
肠杆菌科 绿脓和非肠杆菌科
一级
氨苄
唑林,庆大
– 统计学的线性回归 – 计算错误率:尽可能减少极重要误差 (假敏感率)
MIC的分布
20 15 10 5 0
0.008 0.032 0.125
0.5
2
8
32 128 512
药代动力学和药效学
• 药代动力学:药物吸收,分布,代谢,排泄 • 药效学:药物对机体的作用
药敏试验发展历程
药敏试验发展历程药敏试验是一种用于测试细菌对抗生素的敏感性的实验方法。
它可以帮助医生选择最合适的抗生素治疗细菌感染,从而提高治疗效果。
下面将介绍药敏试验的发展历程。
药敏试验的历史可以追溯到20世纪初,当时发现抗生素的疗效很大程度上取决于细菌的敏感性。
早期的药敏试验主要依赖观察细菌在含有抗生素的培养基上的生长情况,来评估细菌对抗生素的敏感性。
这种方法虽然简单易行,但结果不够准确,容易受到其他因素的干扰。
随着科技的进步,20世纪50年代出现了第一个自动化的药敏试验系统。
这个系统使用离心分离技术来评估细菌对抗生素的敏感性。
然而,这种方法仍然需要长时间的培养过程,并且在测试大量细菌时效率低下。
在70年代,出现了巨大的突破,即药敏试验的微量化。
传统的药敏试验需要大量的培养基和试剂,而微量化试验只需要少量的试剂和培养基,大大降低了试验的成本。
此外,微量化试验还可以快速高效地测试多种抗生素的敏感性,提高了药敏试验的准确性和可行性。
随着分子生物学和生物技术的发展,近年来,药敏试验也迎来了新的发展机遇。
分子生物学技术为药敏试验提供了更精确的检测方法。
例如,聚合酶链反应(PCR)可以快速检测细菌对抗生素的耐药基因,从而判断细菌对抗生素的敏感性。
此外,细菌基因组测序技术的发展,也使得可以更全面地了解细菌的敏感性和耐药性。
在未来,随着人工智能和大数据技术的发展,药敏试验还将迎来更多的创新。
人工智能可以通过学习大量的药物和细菌数据,提供更准确的药敏试验结果和个体化的治疗方案。
此外,大数据技术可以分析大量的患者数据,并与药敏试验结果相结合,为临床医生提供更准确的治疗建议。
总的来说,药敏试验是细菌感染治疗中至关重要的一环。
它的发展经历了从观察细菌生长到自动化测试再到微量化和分子生物学检测的演变过程。
未来,随着人工智能和大数据技术的应用,药敏试验将迎来更多的创新,以提供更准确、个体化的治疗建议,帮助医生更好地治疗细菌感染。
支原体培养及药敏报告
支原体培养及药敏报告支原体是一种革兰氏阴性细菌,它可以引起多种感染,包括肺炎、结膜炎、尿道炎等。
支原体感染的治疗通常需要根据药敏报告来选择合适的抗生素。
本文将介绍支原体的培养及药敏报告的相关内容。
1. 支原体的培养支原体的培养是诊断支原体感染的重要方法之一。
通常情况下,支原体的培养需要采集患者的相应样本,如痰液、尿液、眼部分泌物等,然后将样本接种到适当的培养基上进行培养。
支原体的培养需要在适当的温度和湿度下进行,通常需要一定的时间才能得到结果。
培养结果阳性可以帮助医生确定患者是否感染了支原体。
2. 药敏报告药敏报告是根据培养结果进行的药物敏感性测试。
一般情况下,培养出的支原体菌株会被送往药敏实验室进行药敏测试。
药敏测试可以帮助医生确定哪种抗生素对支原体菌株具有杀菌或抑菌作用,从而选择最合适的治疗方案。
药敏报告通常会列出多种抗生素的敏感性结果,包括敏感、中等敏感和耐药等。
3. 抗生素的选择根据药敏报告的结果,医生可以选择合适的抗生素进行治疗。
对于敏感的支原体菌株,通常可以选择敏感的抗生素进行治疗。
而对于耐药的支原体菌株,需要选择其他具有抗菌作用的抗生素进行治疗。
在选择抗生素时,医生还需要考虑患者的个体差异、药物剂量和疗程等因素。
4. 注意事项在进行支原体培养及药敏报告时,需要注意以下几点:- 样本的采集和保存要符合规范,避免污染和失活;- 培养条件要符合要求,包括温度、湿度和培养时间等;- 药敏实验室的操作要严格按照标准操作程序进行,确保结果的准确性;- 医生在选择抗生素时要综合考虑患者的病情和药敏报告的结果,制定个性化的治疗方案。
总之,支原体培养及药敏报告对于支原体感染的诊断和治疗具有重要意义。
通过准确的培养和药敏测试,可以帮助医生选择最合适的抗生素进行治疗,提高治疗效果,减少药物滥用和耐药菌株的产生。
因此,在临床实践中,应该重视支原体培养及药敏报告的操作和结果解读,以提高支原体感染的治疗水平和质量。
细菌培养与抗生素敏感性测试细菌耐药性测试结果的解读与抗生素选择
细菌培养与抗生素敏感性测试细菌耐药性测试结果的解读与抗生素选择在临床医学领域,细菌感染是常见的疾病之一。
为了正确治疗细菌感染,医生通常会进行细菌培养和抗生素敏感性测试。
这些测试可以帮助医生判断细菌的耐药性,并选择合适的抗生素进行治疗。
细菌培养是一种将细菌从患者的样本中分离出来,并在适当的培养基上进行生长的过程。
通过细菌培养,医生可以判断感染的具体细菌种类,并观察其数量和形态。
常见的样本来源包括血液、尿液、痰液等。
细菌培养通常需要一定的时间,医生会在培养完成后,进行抗生素敏感性测试。
抗生素敏感性测试是一种通过将已分离培养的细菌与不同种类的抗生素接触,观察细菌对抗生素的反应,从而判断细菌是否对该抗生素产生耐药性的测试。
解读细菌耐药性测试结果时,医生通常会注意以下几个关键点:1. 抗生素敏感性结果报告:测试结果通常分为敏感、中度敏感和耐药三种类型。
- "敏感"表示细菌对抗生素具有高度敏感性,细菌会被该抗生素有效杀灭;- "中度敏感"表示细菌对抗生素的敏感性降低,需要更高的抗生素浓度才能达到有效抑制细菌生长;- "耐药"表示细菌对抗生素产生耐药性,即使使用高浓度的抗生素也无法抑制细菌生长。
2. 选择合适的抗生素:根据细菌的敏感性测试结果,医生选择最有效的抗生素进行治疗是非常重要的。
通常情况下,敏感或中度敏感的细菌可以使用相应的抗生素进行治疗,而对于耐药的细菌,则需要选择其他抗生素或采取其他治疗策略。
3. 个体化治疗:在选择抗生素时,医生需要考虑患者的具体情况,如年龄、妊娠状态、孕妇是否哺乳等,并结合细菌培养和敏感性测试结果进行个体化治疗。
有些抗生素在儿童、孕妇或哺乳期妇女中可能不安全或具有其他副作用,医生需要慎重选择。
4. 多重耐药菌感染:随着时间的推移,细菌的耐药性正在成为严重的全球性问题。
有些细菌可能对多种抗生素产生耐药性,导致治疗变得困难。
临床检验中培养基对药敏试验的影响
临床检验中培养基对药敏试验的影响随着抗菌药物的逐年增加和细菌耐药性、敏感谱的变化,临床医生越来越重视以药敏试验结果来选择用药,以避免用药不当产生耐药菌株[1]。
细菌对抗生素的敏感性可分3种类型,他的各型定义是:敏感:表示被测细菌引起的感染,除禁忌证外,可用该抗生素常用剂量而达到治疗目的。
中介:表示被测细菌可通过提高剂量受到抑制,或在药物被生理性浓集的部位受抑制。
由于微小的技术因素失控可以对结果解释错误,所以这一范围只是抑菌环直径介于敏感和耐药之间的“缓冲域”。
抑菌环落入中介范围,其意义不明确,如果没有其他可以替代的药物,应重复或再以稀释法测定最低抑菌浓度。
耐药:被测细菌不能被该抗生素的常用剂量在组织内或血液中的浓度达到抑制作用,且不论其剂量大小或细菌所在部位。
细菌药敏试验的准确性受到诸多方面的影响,根据多年来的工作经验,培养基对细菌药敏试验的影响是其中一个重要因素,现将影响药敏试验的因素总结如下。
1 试验操作过程中的影响因素1.1 细菌的纯度由于各种菌对药物的敏感性不同,产生的抑菌环大小不同,如果菌种不纯,试验中所产生的抑菌环大小与该菌种在纯培养状态下产生的抑菌环大小存在较大的差异,影响判断结果的准确性。
所以必须提纯各种致病菌,分别对其进行不同的药敏试验。
临床医生才能综合药敏试验结果选择用药[2]。
1.2 菌液浓度进行药敏试验时,必须将提纯的菌种配制成一定浓度的菌液。
根据WHO组织制定的标准,要求菌液浓度在1.5亿/ml左右。
如果菌液浓度过高,该菌将对所有药物产生耐药;相反,菌液浓度过低,将出现该菌对所有药物均敏感。
1.3 菌液在培养基上的分布药敏试验中,必须将菌液均匀地涂在培养基上,使细菌分布均匀,否则可能使试验结果产生较大的偏差。
涂菌后一般要求15min才能贴药敏纸片。
因为在涂菌后,细菌要有一定的适应过程,但时间不能太长,否则会使细菌产生耐药。
贴完后10~20min放入孵育箱。
1.4 贴药敏纸片时,每取一种药敏纸片必须烧一下镊子口,避免药敏纸片之间相互混淆,以提高药敏的准确性。
药敏试验结果与实际效果不符的原因分析
药敏试验结果与实际效果不符的原因分析000网上经常有不少朋友对药敏试验的结果提出异议,不少人对药敏实验持否定性态度。
这些问题的出现主要是因为药敏试验的结果不尽人意,使用了通过药敏试验选择出的敏感药物仍然不能治好当前的相关疾病。
然而,药敏试验果真不科学吗?药敏试验真的不能指导实际临床用药吗?当然不是!首先我们来对药敏试验的科学性作一分析。
纸片法药敏试验是临床上我们最常使用药敏试验方法。
将吸收有抗菌药物的特制纸片置于已经接种了待测细菌的固体培养基上,利用抗菌药物向培养基中的扩散作用,抑制敏感细菌的生长,从而在纸片的周围出现了抑菌圈。
药物扩散的距离越远,药物浓度越低,所以,我们可以根据抑菌圈的大小,判断细菌对药物的敏感程度。
通过药物敏感试验,我们可以找出针对于某些致病菌的敏感药物,从而对临床中的细菌性疾病的治疗提供指导,避免滥用药所引起的经济损失。
纸片法药敏试验具有操作简便、容易掌握等特点。
随着我国养殖业的发展以及整个养殖业管理水平的提高,药敏试验逐渐被广大兽医同行所认可,许多养殖厂、户、兽医师都掌握了纸片法药敏试验技术,并在治疗过程中,用以指导临床用药,在养殖的用药中起到了巨大的作用。
所以,纸片法药敏试验目前在临床中已经被广泛认为是一种最具权威的用药指导依据。
但是,药敏试验只能是一种用药指导的参考,因为在实验中由于其结果受到诸多因素的影响,试验结果的评判也没有量性规定的标准,通过抑菌圈的大小很难准确判断细菌对药物的敏感程度,其中还受到抗菌药物、培养基、细菌、试纸片以及培养条件等因素的影响。
再说,药敏试验只是在实验室状态下的一种细菌与药物的直接接触,而临床用药还需要经过身体的层层把关,才能够到达效应部位,起到抗菌效果。
所以药敏试验的结果不足以代表药物在实际临床中的真实效果。
下面,本人就药敏试验的各方面因素对试验结果的影响逐一进行说明,希望能给大家提供参考。
一、药敏试验本身的影响因素(一)、药物因素:纸片法药敏试验的结果主要受到药物理化性质以及作用特点等因素的直接影响。
会影响药敏实验的结果的因素
1培养基:
应根据试验菌的营养需要进⾏配制。
倾注平板时,厚度合适(约5-6mm),不可太薄,⼀般90mm直径的培养⽫,倾注培养基18-20ml为宜。
培养基内应尽量避免有抗菌药物的拮抗物质,如钙、镁离⼦能减低氨基糖苷类的抗菌活性,胸腺嘧啶核苷和对氨苯甲酸(PABA)能拮抗磺胺药和TMP的活性。
2细菌接种量:
细菌接种量应恒定,如太多,抑菌圈变⼩,能产酶的菌株更可破坏药物的抗菌活性医学教,育|搜集整理。
3药物浓度:
药物的浓度和总量直接影响抑菌试验的结果,需精确配制。
商品药应严格按照其推荐治疗量配制。
4培养时间:
⼀般培养温度和时间为37℃ 8-18⼩时,有些抗菌药扩散慢如多粘菌素,可将已放好抗菌药的平板培养基,先置4℃冰箱内2~4⼩时,使抗菌药预扩散,然后再放37℃温箱中培养,可以推迟细菌的⽣长,⽽得到较⼤的抑菌圈。
结核菌罗氏培养基药敏试验结果判读时间及准确率影响分析
结核菌罗氏培养基药敏试验结果判读时间及准确率影响分析摘要:目的:分析结核菌罗氏培养基药敏试验结果判读时间及准确率影响。
方法:选取市疾控中心保存的250株结核菌株,选择2018年1月~2019年6月期间我中心收治的82例肺结核患者为研究对象,在患者的痰标本中分理出结核菌,进行罗氏培养基药敏试验,培养4周、6周之后将检测结果与标准结果进行对比分析,分析准确率。
结果:所有菌组药敏实验的结果判读时间及准确率对比为:SM(链霉素)准确率第4周(92.67%)低于第6周(97.92%)、INH(异烟肼)准确率第4周(99.17%)高于第6周(96.67%)、EMB(乙胺丁醇)准确率第4周(92.67%)低于第6周(98.33%)、RFP(利福平)准确率第4周(90.83%)低于第6周(98.75%)(P<0.05)。
结论:建议于第4周进行异烟脐药敏结果判读,于第6周进行链霉素、乙胺丁醇、利福平的药敏结果判读,结果较为准确。
关键词:结核菌;罗氏培养基;药敏试验;判读时间;准确率Analysis on the time and accuracy of drug sensitivity test results in Roche culture medium for tuberculosis bacteriaAbstract: Objective: To analyze the effect of time and accuracy of drug sensitivity test for tuberculosis bacteria in Roche culture medium.Method: choose 250 strains of TB strains preserved, the centers for disease control and prevention, choose from January 2018 to June 2019 I center admitted during the period of 82 pulmonary tuberculosis patients as the research object, in the sputum specimens of patients with isolating n/med tuberculosis bacterium, drug sensitive test for roche medium, 4 weeks, 6 weeks after the compare test results with the standard analysis, analysis of accuracy.Results: all groups of bacteria medicine sensitive experiment results for interpretation oftime and accuracy: SM (streptomycin) accuracy 4 weeks (92.67%) less than 6 weeks (97.92%), INH (INH) accuracy (99.17%) than 4 weeks (96.67%), 6 weeks EMB (ethambutol) accuracy 4 weeks (92.67%) less than 6 weeks (98.33%), RFP (rifampicin) accuracy 4 weeks (90.83%) less than 6 weeks (98.75%) (P<0.05).Conclusion: It is suggested that the sensitivity of isomeric umbilicus should be interpreted at the 4th week, and that of streptomycin, ethambutanol and rifampicin at the 6th week.Key words: tuberculosis;Roche culture medium;Drug sensitivity test;Interpretation time;accuracy引言罗氏培养基是结核菌药敏试验最常用的基础培养基,世界卫生组织将罗氏培养法作为结核菌药敏试验的标准方法,但是在实际临床检验中,结核菌罗氏培养基药敏试验结果影响因素较多,尤其是结果判读时间尚存在一定争议,需进一步深入探索。
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I a to n u a in Ti h s l fAn iit s ep iit s mp c fIc b t me on t e Re ut o t o i Su c t ly Te t o s b c bi
Z A i- n H O Jn eg, Y A i P N Y — a , S IY npn f U N L , A us n h H a -i g, T N egn O G F n —a ( e a gi h rl nvri ,Z e gh u4 0 0 ,C ia H nnA r u ua U iesy h n zo 5 0 2 hn ) c t
paea d c l rd a 7 ℃ a an tE. c l X1 t i ( u c piit t i sltd f m fr ) lt n ut e t3 u g is oi r n s se t l y s an i ae r am ,E. cl 2 sri sa bi r o o oi t n C a
a t i i sset it t t h ii u n ii r o cnrt n ( C ) o a oiii/ l ua i ai ( / ) ni o c ucpi ly e ,te m nm m ihbt y cne t i s MI s f m x ln ca l c c b t b i s o ao cl v n d 41 ,
关键 词 : 培养 时 间 ;药敏 试 验 ;鸡 源 大肠杆 菌 ;阿莫 西林/ 克拉 维酸 ( / ) 4 1 ;恩诺 沙 星 ;阿米卡 星 ;多西
环 素
中 图 分 类 号 : 5 S8 9
文 献 标 志 码 : A Nhomakorabea文 章 编 号 :0 6— 17 2 1 )7— 0 3— 4 10 7 6 ( 0 2 0 0 2 0
( 南农 业大学 , 南 郑州 4 0 0 ) 河 河 5 0 2
摘 要 : 比较 鸡 源大肠杆 菌培 养 时间对 药敏试 验 结果的影 响 , 用 1 为 采 2x 8型微孔反 应板 进行 2倍 稀释
法 测 定 鸡 源 大 肠 杆 菌 x1 临 床 分 离敏 感 菌 ) 鸡 源 大 肠 杆 菌 C ( ( 、 2 临床 分 离 的 产 B 内酰 胺 耐 药 菌 株 ) 大 一 和 肠 埃 希 氏 茵 A C 2 9 2菌株 对 恩 诺 沙 星 、 莫 西 林 / 拉 维 酸 ( / ) 多 西 环 素 和 阿 米 卡 星 的 敏 感 性 。 T C 52 阿 克 41 、
( rd cdb t- ca rgrs t t t i i lt o r , n .clA C 2 9 2s a , th u ue i eo po u e eal t du ・ i a r n s a df m f m) a dE oi T C 5 2 t i a tec l r t f a m e s n sa o e r a rn t m 2
在 4~1 4h时 , 同 药 物 的 MI 不 C值 增 大 幅 度 不 一 样 , 中 阿 莫 西 林 / 拉 维 酸 ( / ) 恩 诺 沙 星 的 MI 其 克 41和 C 值 变 化 不 明 显 , 阿 米 卡 星 、 西 环 素 的 MI 而 多 C值 变 化 较 大 ; 时 , 同 药 物 对 不 同 菌株 的 M C值 变 化 幅 同 相 I 度 也 不 一 样 , 中标 准 菌株 M C值 变 化 最 小 , 多 不 超 过 8倍 , 酶 菌 株 ( 2 结 果 变 化 较 大 , 大 达 到 其 I 最 产 C ) 最
Ab ta t s r c :To c m p r h n ue c f c lu a i f Esh rc i o sr i s d rv d f r c ik n o h e u t f o ae t e i f n e o u t r ltme o c e ih a c l tan e i e o m h c e n t e r s ls o l
10 4倍 , 2 最小 8倍 。综上所 述 , 临床 中进行 药敏 试验 过 程 中, 药物 的 MI C值 随 细 菌 的培 养 时 间延 长 而
增大, 当培养 时 间超 过 1 4h时 , M C值 随 细菌的 培养 时 间延 长 而不再 出现 明显 变化 , 其 I 即在 时间有 限的 情 况下 , 药敏试 验 至 少应 培养 1 4 h才 能得 出较 合 理的 、 能正确 指 导临床 用 药的 M C值 。 I
微 孔板置 于 3 7℃恒 温箱 中培 养 , 分 别在 培 养 2~ 2 h各记 录一 次 最 小抑 茵浓 度 ( I ) 。结果 显 并 2 MC 值 示: 阿莫 西林/ 克拉 维酸 、 恩诺 沙星 、 阿米卡 星和 多西 环素 的 MI C值在 1 2 4~ 2 h均无 变化 。 当培 养 时 间
第 3 1卷 第 7期
21 0 2年 7月
实
验
室
研
究
与
探
索
Vo . . 13l No 7
RES EARCH AND EXPL0RATI ON N I LABORATORY
J 1 01 u .2 2
培 养 时 间对 药敏 试 验 结 果 的影 响
赵 金 凤 , 苑 丽 , 潘 玉善 , 史艳 平 , 仝凤 娜
de x c ci e, e r fo a i n mi a i r e e td wi h o b i g d l t n m eh d i 1 × 8 mi r t r e ci n o y y ln n o x c n a d a k c n we e d tc e t te d u ln iui t o n l h o 2 c oi e r a to t