植物水通道蛋白生理功能的研究进展

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水通道蛋白在动物疾病发生过程中的作用研究进展

水通道蛋白在动物疾病发生过程中的作用研究进展

动物医学进展,021,42(3)=102-105Progress in Veterinary Medicine水通道蛋白在动物疾病发生过程中的作用研究进展张玉婷,张琪,郭抗抗,许信刚*,周宏超*(西北农林科技大学动物医学院,陕西杨凌712100)摘要:水通道蛋白(AQP)是细胞上存在的一种膜孔道蛋白。

动物、植物、微生物细胞上均有水通道蛋白的表达,其主要功能是参与机体的水与电解质代谢。

近年来,针对水通道蛋白在机体所发挥的功能方面研究较多,发现水通道蛋白不仅参与机体生理方面的调控,而且在一些疾病的发生发展过程中也发挥重要的作用。

综述概括了水通道蛋白在脑、肺、肾脏、肠道等组织器官的定位;重点阐述了水通道蛋白在动物脑部疾病、肺部疾病、肾脏疾病、肠道疾病发展过程中所发生的变化。

旨在为患病动物出现水与电解质代谢紊乱症状时,对水通道蛋白发生的变化研究提供参考。

关键词:水通道蛋白;脑水肿;肺动脉高压;肾损伤;腹泻中图分类号:S852.2文献标识码:A 文章编号=^^5038^1)3-0102-0.-1水通道蛋白(aquaporin,AQP)作为一种水转运蛋白在机体各个部位广泛分布,尤其在涉及水液输送的组织细胞内分布量较多,例如在大脑、胃、肠道,肾脏及膀胱等器官均有表达,水通道蛋白在保持机体内环境稳态方面发挥重要作用,增强了机体的代谢能力[]。

研究发现,哺乳动物体内所表达的水通道蛋白已经有13种亚型,分别为AQP0、AQP1、AQP2、AQP3、AQP4、AQP5、AQP6、AQP7、AQP8、AQP9、AQP10、AQP11、AQP12。

水通道蛋白家族根据各个亚型在机体发挥的功能不同,可分为3类:①单纯的水通道蛋白,如AQP1,AQP2,AQP4, AQP5;②水甘油通道蛋白,如AQP3,AQP9、AQP10;③超级水通道蛋白,如AQP6,AQP8, AQP11、AQP12[]。

近年来,某些疾病的发生与水通道蛋白异常表达现象,得到了广泛的关注。

水孔蛋白

水孔蛋白

植物水孔蛋白研究进展摘要: 孔蛋白(Aquaporins,AQP)是新近发现的一组与水通透有关的细胞膜转运蛋白, 广泛存在于动物、植物及微生物细胞膜上.植物水孔蛋白在植物体内形成水选择性运输通道,在植物种子萌发、细胞伸长、气孔运动、受精等过程中调节水分的快速跨膜运输。

有些水孔蛋白还在植物逆境应答中起着重要作用,因此研究水孔蛋白与植物抗旱性的关系引起了广泛关注。

关键词:植物水孔蛋白;水分运输;逆境应答;磷酸化植物的生存、生长发育有赖于水分的供给,但在植物水孔蛋白发现以前,人们并不十分了解植物水分跨膜运输的机制。

水孔蛋白( aquaporin,AQP) 是一种功能性的跨膜输水蛋白,属跨膜通道的膜内在蛋白( membrane intrinsic protein,MIP) 家族,实现水分的跨膜运输。

MIP 是一类同源性很高的家族蛋白,具有转运水、甘油、小分子溶质的功能。

当植物体处于干旱、盐碱等胁迫状态时,体内各组织间的水分平衡被打破,水孔蛋白在水分运输和胞内渗透压的调控等方面发挥着重要作用。

1 水孔蛋白的概述1988年,Agre研究小组从人的红细胞膜上分离得到CHIP28蛋白,随后他们用爪蟾卵母细胞表达系统证实CHIP28具有水通道功能,第1次从分子水平上证实蛋白质介导水分的跨膜转运(Denker等1988;Preston等1992)。

1997年基因组命名委员会正式将CHIP28命名为AQPI。

现在已经知道,水孔蛋白(aquaporin,AQP)是一类介导水分快速跨膜转运的膜内在蛋白,属于MIP(majorin-rinsicprotein)家族,分子量在26~34切a(Fr妙sse等2005)。

水孔蛋白几乎存在于所有的生物体内,包括人、动植物、酵母和细菌等,是一类古老的膜蛋白(Borstlap2002;Gustavsson等2005)。

AQP 在植物中分布广泛,具有丰富的多样性.到目前为止,在拟南芥、烟草、菠菜、马铃薯、胡萝卜、玉米、水稻等许多植物中都发现了AQP .AQP 是由多基因家族编码的.在拟南芥中已发现有35 个基因编码AQP,而玉米和水稻中也存在33 个AQP 基因.最近在非维管束植物球蒴藓(Physcomitrella patens)中发现有23 个AQP 基因.根据氨基酸序列的同源性及结构特征,通常将植物AQP 分为 5 类:质膜内在蛋白(plasmamembrane intrinsic proteins,PIPs) 位于质膜上,分为PIP1、2、3 三个亚类;液泡膜内在蛋白(tonoplast intrinsic proteins,TIPs) 处于液泡膜上,分为α、β、γ、δ和ε-TIP五个亚类;类Nod26 膜内在蛋白(nodulin 26-like intrinsic proteins,NIPs)存在于根瘤菌和豆科植物的共生膜上;小分子碱性膜内在蛋白(small and basic intrinsic proteins,SIPs),分为SIP1 和SIP2 二个亚类;以及类GlpF(glycerolfacilitator)膜内在蛋白(GlpF-like intrinsic proteins,GIPs)2水孔蛋白的结构水孔蛋白与膜内在蛋白(membrane intrinsicprotein, MIP)具有很高的序列同源性和结构相似性,于是将其归类为MIP 家族。

水通道蛋白3的研究进展

水通道蛋白3的研究进展

R T—P R和免 疫组 织化 学研 究 正 常 晚期 妊 娠 孕妇 胎 C
膜上 A P Q 3的表 达 , T—P R 发 现 A P R C Q 3在 人 类 胎 盘 、 毛膜 、 绒 羊膜 上 表达 , 疫组 化发 现 A P 免 Q 3在 胎 盘
在 肾脏 的基 膜细胞 、 端结 肠 、 远 空肠上 皮细 胞 、 管 和 气 支气 管上 皮 细胞 等 呈 高表 达 3 A P 8; Q 3在前 列 腺 基 膜
鼠妊 娠第 1 0—1 6天 时 胎 盘 上 A P Q 3表 达 增 加 , 妊 在 娠 1 0~1 9天 时胎 盘 上 A P Q 3的 表 达没 有 变 化 , 着 随 妊娠 的进 展 A P Q 3在羊 膜上 的表达 没 有变 化 , 羊水 的
月妊 娠产 妇 的羊膜 上皮 细胞 中 A P mR A表 达 的关 Q3 N 系 , 现 fr o n( 苷 酸 环 化 酶 激 动 剂 ) S 发 os l 腺 ki 和 P—
加 细胞膜 水 的通 透性 , 与水 的分 泌 、 收 及 细 胞 内 参 吸
外平衡 的调节 。水 通道 蛋 白同时具 有促 进 细胞 迁移 、 细胞 增殖 、 胞 凋 亡 的作 用 。水 通 道 蛋 白 3 A P ) 细 ( Q 3 是水 通 道蛋 白家 族 成 员 之一 , 除对 水 有 通 透 性 以外 , 还 能够 通透甘 油 和 尿 素 的 水通 道 蛋 白。现 就 水 通 道
天时表 达增 加 1 6倍 。2 0 0 2年 M n a n等 在人 类 胎膜 上未 发 现 A P Q 3的 表 达 。2 0 0 4年 Lu等 用 R i T—
P R发 现 A P C Q 3在 羊 的胎 盘滋养 细胞 表 达 , 羊 妊娠 在 6 、0 、4 6 10 1 0天 时呈 高表 达 。2 0 0 5年 在人 类 的组 织 芯 片研 究 中发 现 , Q 3在 人 类 很 多组 织 中表 达 , 其 A P 尤

水通道蛋白在肾脏疾病的研究进展

水通道蛋白在肾脏疾病的研究进展

AQ 2表 达 在 连 接 小 管 和 集 合 管 的 主 细 胞 的顶 侧 膜 , 肾 P 在 中 大 量 分 布 , 调 节 肾脏 水 平 衡 中起 重 要 作 用 , 心 力 衰 竭 伴 在 在
低 钠 血 症 时 除 A 2蛋 白 增 加 外 , 脏 存 在 的 另 外 两 种 主 要 QP 肾 A s 族 成 员 一 QP 家 AQP 和 AQP 1 3蛋 白 并 没 有 明 显 的 增 加 ,
高 。 当激 活 停 止 时 含 AQ 2的 小 泡 回至 原 储 存 处 . 种 回 收 P 这 机 制 涉 及 细 胞 微 丝 的 骨 架 运 动 l 。 有 多 种 蛋 白“ 合 体 ” 与 7 ] 复 参
AQP 2的 整 个 运 动 。2 远 期 调 节 作 用 : 系 肾 脏 上 皮 细 胞 对 水 ) 此 通 透 性 改 变 所 致 , 不 受 AV 且 P急 性 调 节 。 在 水 潴 留 以及 脱 水 后 重 新 摄 水 的条 件 下 , 肾脏 AQ 2表 达 明 显 下 降 , 一 过 程 中 P 这 AQ 2mRN 水 平 的 改 变 非 常 迅 速 , AQ 2蛋 白水 平 的 改 P A 但 P 变 速 度 相 对 缓 慢 。 Hal se _ 对 这 一 现 象 作 出 了解 释 , 出 r等 g ] 提
析 , 多 以 A 1 为 模 型 。 A 1在 细胞 膜 上 以 四聚 体 的 形 大 QP 作 QP
两 种 机 制 :) 性 调 节 : 血 浆 A 1急 当 VP水 平 显 著 升 高 时 主 细 胞
管 腔 膜 A 2 通 道 蛋 白 数 量 急 剧 增 加 , 渗 透 性 也 显 著 升 QP 水 水
说 明 靶 蛋 白 。 P 是
AQP 受 抗 利 尿 激 素 ( 2 AVP 调 节 , 进 尿 液最 后浓 缩 。主 要 有 ) 促

植物水通道蛋白生理作用的研究进展

植物水通道蛋白生理作用的研究进展
快速 流动 日 因 此植物 水 孔蛋 白在 植物 体 内形成 水 选择性 运 。
输通 道 , 导胞 内或胞 间 的水 分跨 膜运 输 。调节 植物 体 内的 介 水分 快速 平 衡 ,对 于提 高植 物抗 盐 及抗 旱 性可 能发 挥 着 重
要作 用 。本文 主要 对植 物水 通 道蛋 白的发 现 、 型 、 构 、 类 结 生 理作 用等方 面作 一 些简 单介 绍 。 1 植物水 通道 蛋 白的 发现 植 物 中 第 1个 水 孔 蛋 白 2 T P是 由 Ma rl 人 于 一 I ue 等
些 膜 蛋 白的单体 分子 量在 2 - 0 D 之 间 ,由 6个跨 膜 结构 33k 域 ( 过 五个亲 水环 相连 ) 通 和两 端短 的 NH2、 端组 成 ( 1 C 图
[ 4 1

基端 的 B环 和 E环 各有 由 3个氨 基 酸 ( 冬 酰氨 一 氨 酸 一 天 脯 丙氨 酸 ) 成 的基 元 , 是 该 蛋 白家 族 成 员共 有 的高 度 同源 组 这
种 子 及 向 日葵 下 胚 轴 薄 壁 细 胞 等 多 种 植 物 中都 发 现 了
AQP 。 r  ̄
2 植物 水通道 蛋 白的 结构 特点
植 物 AQP的结 构与 动物 AQP一样 ,同属 于一 个 古 老
的跨膜 通道 蛋 白 MI ( mba e t ni rti) P me rn r s poe 超家 族 。 n i i c n 这 图 2 植 物 AQP 1单体 结构 的 沙漏模 式嘲
的特 征 性 结 构 。 B环 和 E环 上 的 19位 点和 7 8 3位 点均 为
图 2]。 些氨 基酸 残基 在 不 同的 AQP中很 保 守 , t 一 s ) 例如 位

离子泵及水通道蛋白研究进展总结

离子泵及水通道蛋白研究进展总结

(一)离子泵离子泵是存在于细胞膜上的运输蛋白之一,是一类特殊的载体蛋白,其本质是受外能驱动的可逆性ATP酶。

在有能量供应时可使离子在细胞膜上逆电化学势梯度能、光能等主动地吸收,致使细胞内离子浓度与外界环境中相差很大。

被活化的离子泵水解ATP,与水解产物PO43-结合后自身发生变构,从而将离子由低浓度转运到高浓度处,这样ATP的化学能转变成离子的电化学梯度能。

目前已知的离子泵有多种,每种离子泵只转运专一的离子。

细胞内离子泵主要有钠钾泵、钙泵和质子泵。

(1)Na+-K+泵:存在于细胞质膜上,有大小两个亚基,大亚基α催化ATP 水解,小亚基β是一个糖蛋白。

大亚基以亲Na+态结合Na+后,触发水解ATP。

每水解一个ATP释放的能量输送3个Na+到胞外,同时摄取2个K+入胞,造成跨膜梯度和电位差,这对神经冲动传导尤其重要,Na+-K+泵造成的膜电位差约占整个神经膜电压的80%。

若人为地增大膜两边的Na+、K+梯度到一定程度,当梯度所持有的能量大于ATP水解的化学能时,Na+、K+会反向顺浓度差流过Na+-K+泵,同时合成ATP。

这种可逆现象是离子泵的普遍性质。

(2)Ca2+泵:是分布在动、植物细胞质膜、线粒体内膜、内质网样囊膜、肌肉细胞肌质网膜上,由1000个氨基酸的多肽链形成的跨膜蛋白,它是Ca2+激活的ATP酶,每水解一个ATP转运两个Ca2+到细胞外,形成钙离子梯度。

通常细胞质游离Ca2+浓度很低,细胞间液Ca2+浓度较高,胞外的Ca2+即使很少量涌入胞内都会引起胞质游离Ca2+浓度显著变化,导致一系列生理反应。

钙流能迅速地将细胞外信号传入细胞内,因此Ca2+是一种十分重要的信号物质。

线粒体内腔、肌质网、内质网样囊腔中含高浓度Ca2+,名为“钙库”。

在一定信号作用下Ca2+从钙库释放到细胞质,调节细胞运动、肌肉收缩、生长、分化等诸多生理功能。

(3)质子泵:即H+泵,包括H+-ATP泵和H+-焦磷酸泵,根据现有了解,一切有液泡的细胞中都存在这两类质子泵。

植物水通道蛋白及其生理功能

植物水通道蛋白及其生理功能

残 基松 散 链 条 , 别 回绕 走 向各 自的膜 面 在 N A模 体外 分 。 P
侧 08n . m处存 在一 个 收缩 的芳 香族 化 合物/ 氨酸 ( r 模 精 a/ R)
蛋 白 的 同 源基 因 , 其 统 称 为 水 通 道 蛋 白 ( Q s 。 ar 将 A P )M u l e 等人 于 1 9 从 拟南 芥 中分 离到 水 通道 蛋 白 3TP,它 位 9 3年 'I - 于液 泡 膜上 , c N 其 R A在 爪 蟾 卵母 细 胞 中异 源 表 达 时 证 明 其具有 水通 道蛋 白活性[ 这 是植 物 中首 次 发现 的水 通 道蛋 5 1 。
王芳, 乐, 董 林娈, 郭煜娟, 胤榕, 陈 杨世慧 泉 师 学 化 与 命 学 院福 泉 60 (州 范 院 学 生 科 学 ,建 州30) 20
摘 要 对水通 道蛋 白的发 现 、 结构 、 分类及 其 生理 功 能进 行 了综述 。 关 键词 植物 水通 道蛋 白; 水分 运输 ; 生理 功能 中图分 类号 Q 4 文 献标 识 码 A 95 文 章编 号 0 1 — 6 2 0 )5 0 7 3 0 57 6 1(0 80— 16— 4 1
Pl n q p i sa d a tA ua orn n TherPhy i l ia nci ns i soogc lFu to
W A G F n ( eat e t f i oy S ho o C e i r a dLf S i c , u n h u om l n esy Q a zo , ui 6 0 0 N a g t l D p r n o Bo g , c ol f h m s y n i c n e Q a zo r a U i r t u nh u Fj n 3 2 0 ) ea m l t e e N v i, a

水孔蛋白

水孔蛋白

植物水孔蛋白研究进展摘要: 孔蛋白(Aquaporins,AQP)是新近发现的一组与水通透有关的细胞膜转运蛋白, 广泛存在于动物、植物及微生物细胞膜上.植物水孔蛋白在植物体内形成水选择性运输通道,在植物种子萌发、细胞伸长、气孔运动、受精等过程中调节水分的快速跨膜运输。

有些水孔蛋白还在植物逆境应答中起着重要作用,因此研究水孔蛋白与植物抗旱性的关系引起了广泛关注。

关键词:植物水孔蛋白;水分运输;逆境应答;磷酸化植物的生存、生长发育有赖于水分的供给,但在植物水孔蛋白发现以前,人们并不十分了解植物水分跨膜运输的机制。

水孔蛋白( aquaporin,AQP) 是一种功能性的跨膜输水蛋白,属跨膜通道的膜内在蛋白( membrane intrinsic protein,MIP) 家族,实现水分的跨膜运输。

MIP 是一类同源性很高的家族蛋白,具有转运水、甘油、小分子溶质的功能。

当植物体处于干旱、盐碱等胁迫状态时,体内各组织间的水分平衡被打破,水孔蛋白在水分运输和胞内渗透压的调控等方面发挥着重要作用。

1 水孔蛋白的概述1988年,Agre研究小组从人的红细胞膜上分离得到CHIP28蛋白,随后他们用爪蟾卵母细胞表达系统证实CHIP28具有水通道功能,第1次从分子水平上证实蛋白质介导水分的跨膜转运(Denker等1988;Preston等1992)。

1997年基因组命名委员会正式将CHIP28命名为AQPI。

现在已经知道,水孔蛋白(aquaporin,AQP)是一类介导水分快速跨膜转运的膜内在蛋白,属于MIP(majorin-rinsicprotein)家族,分子量在26~34切a(Fr妙sse等2005)。

水孔蛋白几乎存在于所有的生物体内,包括人、动植物、酵母和细菌等,是一类古老的膜蛋白(Borstlap2002;Gustavsson等2005)。

AQP 在植物中分布广泛,具有丰富的多样性.到目前为止,在拟南芥、烟草、菠菜、马铃薯、胡萝卜、玉米、水稻等许多植物中都发现了AQP .AQP 是由多基因家族编码的.在拟南芥中已发现有35 个基因编码AQP,而玉米和水稻中也存在33 个AQP 基因.最近在非维管束植物球蒴藓(Physcomitrella patens)中发现有23 个AQP 基因.根据氨基酸序列的同源性及结构特征,通常将植物AQP 分为 5 类:质膜内在蛋白(plasmamembrane intrinsic proteins,PIPs) 位于质膜上,分为PIP1、2、3 三个亚类;液泡膜内在蛋白(tonoplast intrinsic proteins,TIPs) 处于液泡膜上,分为α、β、γ、δ和ε-TIP五个亚类;类Nod26 膜内在蛋白(nodulin 26-like intrinsic proteins,NIPs)存在于根瘤菌和豆科植物的共生膜上;小分子碱性膜内在蛋白(small and basic intrinsic proteins,SIPs),分为SIP1 和SIP2 二个亚类;以及类GlpF(glycerolfacilitator)膜内在蛋白(GlpF-like intrinsic proteins,GIPs)2水孔蛋白的结构水孔蛋白与膜内在蛋白(membrane intrinsicprotein, MIP)具有很高的序列同源性和结构相似性,于是将其归类为MIP 家族。

水通道蛋白的发现和研究过程

水通道蛋白的发现和研究过程

水通道蛋白的发现和研究过程教学反思:有时让学生熟悉相关的科技发展热点,可以帮助学生理解有关的情境材料,更能解决相关的问题。

由于教材的关系,很多学生无法解决2012年北京高考题,因为不熟悉水通道蛋白相关的知识。

(2012年北京高考试题)科学家为了研究蛋白A的功能,选用细胞膜中缺乏此蛋白的非洲爪蟾卵母细胞进行实验,处理及结果见下表。

实验组号在等渗溶液中进行的处理在低渗溶液中测定卵细胞的水通透速率(cm/s×10-4)Ⅱ向卵母细胞注入蛋白A的mRNA 210.0Ⅲ将部分Ⅱ细胞放入含HgCl2的等渗溶液中80.7Ⅳ将部分Ⅲ细胞放入含试剂M的等渗溶液中188.0(1)将I组卵母细胞放入低渗溶液后,水分子经自由扩散(渗透)穿过膜的____________进入卵母细胞。

(2)将蛋白A的mRNA注入卵母细胞一定时间后,该mRNA____________的蛋白质进入细胞膜,使细胞在低渗溶液中体积____________。

(3)与II组细胞相比,III组细胞对水的通透性____________,说明HgC12对蛋白A的功能有________作用。

比较III、IV组的结果,表明试剂M能够使蛋白A的功能____________。

推测HgC12没有改变蛋白A的氨基酸序列,而是破坏了蛋白A的____________。

(4)已知抗利尿激素通过与细胞膜上的____________结合,可促进蛋白A插入肾小管上皮细胞膜中,从而加快肾小管上皮细胞对原尿中水分子的____________。

(5)综合上述结果,可以得出____________的推论。

【答案】(1)磷脂双分子层(2)翻译迅速增大(3)明显降低抑制部分恢复空间结构(4)受体重吸收(5)蛋白A是水通道蛋白一、水通道蛋白的发现过程1988年Agre(阿格雷)等在分离纯化红细胞膜上的Rh多肽时,发现了一个28 kD的疏水性跨膜蛋白,称为形成通道的整合膜蛋白28(CHIP28),他们很快分离得到了这种蛋白质,并没出了氨基酸序列,1991年完成了其cDNA克隆,并发现这种蛋白质在吸水能力很强的肾脏和红细胞中含量特别高。

植物质膜内在水通道蛋白PIPs的分子生物学研究进展

植物质膜内在水通道蛋白PIPs的分子生物学研究进展

植物质膜内在水通道蛋白PIPs的分子生物学研究进展何勇清;方佳;余敏芬;方仲相;江波;潘寅辉;郑炳松【摘要】Water is an important component in plant cells with plant aquaporin being the major protein for water transport in and between plant cells. As a subfamily of plant aquaporins, the plasma membrane intrinsic proteins (PIPs) located in the plasma membrane are classic, high water, selective channel proteins. This paper focuses on recent advances in the molecular biology of PIPs concerning structural characteristics, biological function, and a regulation mechanism. PIPs possess two highly conserved domains; GGGANXXXXGY andTGI/TNPARSL/FGAAI/VI/VFWF/YN. PIPs can also be divided into two phylogenetic subgroups named PIP1 and PIP2. PIP1 possesses longer N terminal sequences and shorter C terminal sequences than PIP2 with con served amino acid sequences respectively. Studies of transgenic plants and expression in Xenopus oocytes cells indicate that PIPs not only may facilitate transport of water and small neutral solutes like CO2 and glycerin, but they also possess many physiological functions. The functions of plant aquaporins are regulated by many factors including post-translational modification, heteromerization, pH value, and divalent cations. These results indicated that PIPs act as a pivotal role in water and small neutral solutes transport in plants. [Ch, 1 tab. 51 ref.]%水是植物细胞的重要组成成分,植物水通道蛋白是细胞间和细胞内水分快速运输的主要通道,作为植物水通道蛋白的一个亚类,质膜内在蛋白PIPs定位于原生质膜,为典型的高水分选择性通道蛋白.主要介绍了PIPs的结构特征、生物学功能及其调控机制.高等植物PIPs存在2个高度保守的区域:GGGANXXXXGY和TGI/TNPARSL/FGAAI/VI/VFWF/YN.PIPs 分为PIP1和PIP2亚类,PIP1比PIP2具较长的N-端和较短的C-端,并且具有各自的保守氨基酸.通过转基因和非洲爪蟾卵Xenopus oocytes母细胞异源表达研究表明PIPs不仅是水和二氧化碳、甘油等中性小分子选择性通道蛋白,同时还具有许多生理功能,是一类多功能蛋白.蛋白翻译后修饰、异聚化、pH值、二价阳离子等都能调控PIPs的运输功能.【期刊名称】《浙江农林大学学报》【年(卷),期】2012(029)003【总页数】7页(P446-452)【关键词】植物学;质膜内在蛋白;功能;调控机制;综述【作者】何勇清;方佳;余敏芬;方仲相;江波;潘寅辉;郑炳松【作者单位】浙江农林大学亚热带森林培育国家重点实验室培育基地,浙江临安311300;浙江农林大学亚热带森林培育国家重点实验室培育基地,浙江临安311300;浙江农林大学亚热带森林培育国家重点实验室培育基地,浙江临安311300;浙江农林大学亚热带森林培育国家重点实验室培育基地,浙江临安311300;浙江农林大学亚热带森林培育国家重点实验室培育基地,浙江临安311300;浙江省龙游县林业局,浙江龙游324400;浙江农林大学亚热带森林培育国家重点实验室培育基地,浙江临安311300【正文语种】中文【中图分类】Q74;S718.3水分对于植物的生长、发育和繁殖是非常重要的。

浅析植物水通道蛋白的研究进展-植物学论文-生物学论文

浅析植物水通道蛋白的研究进展-植物学论文-生物学论文

浅析植物水通道蛋白的研究进展-植物学论文-生物学论文——文章均为WORD文档,下载后可直接编辑使用亦可打印——水通道蛋白(也称水孔蛋白,AQPs)促使着水分的双向跨膜运动,它所介导的自由水快速被动地跨生物膜转运,是水进出细胞的主要途径。

第1 次从分子水平上证实细胞膜上存在水转运通道蛋白是Pe-ter Agre 研究小组[1]于1988 年从血红细胞和肾小管中分离纯化出的CHIP28 蛋白,并由实验证明了CHIP28 蛋白具有允许水分子进入的功能。

CHIP28 蛋白也因此被重新命名为l 号水通道蛋白(AQPl)。

第1 个植物水通道蛋白---2-TIP 是Maurel 等[2]于1993 年从拟南芥Arabidopsis thaliana 中分离出来的。

目前,已经从细菌、酵母、植物、动物中分离出多种水通道蛋白的同源基因,并且证明水通道蛋白除了担负细胞间或细胞内外水分子输导的功能,还参与细胞伸长与分化、气孔运动等生理过程。

本文主要从水通道蛋白家族成员组成、结构、生理功能及表达等方面对植物水通道蛋白的研究进展进行系统介绍。

1 水通道蛋白家族成员植物水通道蛋白的结构与动物水通道蛋白同属于一个古老的跨膜通道蛋白MIP 超家族。

已经测序的植物基因组揭示植物水通道蛋白是一个超家族:拟南芥中有38 个水通道蛋白基因编码的35 种水通道蛋白同源蛋白,其中10 个属于液泡膜水通道及其类似蛋白,13 个为质膜水通道及其类似蛋白,12 个属于NLM 类。

此外,玉米Zea mays 和水稻Oryza sativa 中分别有35 个和33 个水通道蛋白基因[3]. Johan-son 等[4]根据氨基酸序列同源性和亚细胞定位将水通道蛋白划分为5 个家族:质膜内在蛋白(PIPs),液泡膜内在蛋白(TIPs),类Nodulin26(NOD26)膜内在蛋白(NIPs),小的碱性膜内在蛋白(SIPs)和类GlpF 膜内在蛋白(GIPs)。

水通道蛋白的研究

水通道蛋白的研究

水通道蛋白的研究【关键词】水通道蛋白,法医病理学【中图分类号】q503;d919.1【文献标识码】b【文章编号】1007 9297(20XX)01—0053—03一、水通道蛋白的发现水是生物机体细胞的主要成分,每时每刻有大量的水分子通过细胞膜进出细胞。

在90年代以前,对于水分子的转运机制,主要有两种理论解释,一种是水分子的简单扩散学说,认为细胞内外渗透压差是其动力源,需要较高的阿里纽斯活动能(arrhenius activation energy,以下简称ea),一般ea> 10 keal/mol,达到平衡时渗透率(coefficient of osmotic permeability,简称pf)与扩散率(coefficient of diffusional permeability,简称pd)趋于相等,不能被汞等通道蛋白阻断剂所抑制。

但水分子简单扩散理论不能解释一些生理现象,如尿的浓缩、pf/pd> 1时水的转·法医学理论与实践·运及有些细胞水转运可被通道蛋白阻断剂抑制等,所以就产生了另一种理论,认为细胞膜上存在水分子转运的特殊通道,即水通道学说。

水分子通过该通道进出细胞,水通过水通道时需要的ea较低,一般eaaqp3和aqp7对甘油和尿素等有机小分子有一定的通过性,并且它们的核苷酸序列也很相似,[14, ]可据此将aqps家族分为两个亚家族,即aqp3和aqp7为一个亚家族,其余aqps为另一个亚家族。

对aqps的调节存在长期和短时调节之分。

长期调节作用在核酸转录水平上,主要表现为aqps的mrna合成增加,蛋白表达量增强,如皮质醇类激素可以从该水平上增加aqp1的表达等。

[ ]短时调节主要表现为细胞浆内的囊泡等膜单位短时与细胞膜融合,它们膜上的aqps转移到细胞膜上,导致细胞膜单位面积上aqps的量短时增加,如当受到加压素的作用时,肾组织细胞浆中的囊泡与肾脏细胞顶端膜融合,使囊泡中的aqp2转移到胞膜中发挥作用,一旦刺激消失,又通过形成囊泡载体,aqp2返回到胞浆中,从而减少细胞膜上的aqp2,水通透性降低,所以这种短时调节机制又称为“穿梭机制”。

水通道蛋白的功能及水通道蛋白4与脑水肿关系的研究进展

水通道蛋白的功能及水通道蛋白4与脑水肿关系的研究进展
2.11
AQP5
AQP5分布在各种腺体细胞中,如位于肺的I
型肺泡上皮细胞、上呼吸道的分泌上皮细胞和颌下腺、腮腺 上皮细胞等。杨美等n53的实验研究结果表明,AQP5分布于 大脑皮质的软脑膜、脉络丛、血管周围、海马锥体细胞层、齿 状回颗粒细胞层、视上核、视交叉上核内和大脑纵裂两侧皮 质深部,与AQP4分布范围相似。AQP5与唾液的分泌有 关,AQP5基因敲除小鼠唾液分泌明显减少[1”。AQP5还可 能参与肺内炎症时液体转运异常。另外,AQP5定位在耳旁 腺体的分泌颗粒膜的表面,参与了分泌颗粒膜的渗透调
rinsic
protein)有20%~40%的氨基酸序列同源性。目前所发现的 AQP均属MIP家族,后经证明内源性蛋白亦有弱的水通道 活性,被命名为AQP0。迄今为止,AQP家族已经被认为是 一个拥有13个成员的蛋白质群体,分别为AQPO~AQPl2。
1.2
AQP的研究方法
1.2.1免疫组化该方法比较成熟,简单易行,研究用组织 块条件比较宽松,可用于常规固定的新鲜组织,也可以用于
2.10
气管、鼻咽等上皮细胞[1“,在消化系统的结肠、肝脏、胰腺和 小肠组织中也有表达。
2.5
AQP4
AQP4又称汞不敏感型水通道[1“,于1994年
被Hasegawa等从大鼠的肺中克隆出来,接着AQP4延长的 氨基端的同源体在大鼠的脑中被发现,同时AQP4水通道蛋 白的eDNA也从大鼠脑中被分离出来。AQP4含有301个 氨基酸,在所有哺乳动物的AQPs中,AQP4的水通透性是 最强的。AQP4分布广泛,在脑中含量丰富,可能参与脑脊 液的重吸收、渗透调节、脑水肿调节【1”。AQP4在脑中的这 种分布为脑脊液代谢、脑水肿形成、水跨膜转运和其他与水 代谢有关疾病的形成机制提供了理论依据,且为寻求治疗脑 水肿及其他水代谢性疾病的新方法提供了线索。AQP4也 表达在肾集合管主细胞、气管和支气管上皮细胞的基底膜、 肌肉以及睫状体、虹膜、视网膜等结构。AQP4在细胞膜上 形成特殊的直交正方形结构[】“。

水通道蛋白3与皮肤的研究进展

水通道蛋白3与皮肤的研究进展

水通道蛋白3与皮肤的研究进展水通道蛋白3(aquaporin 3 ,AQP3)是皮肤组织中表达的一种主要的水通道蛋白,属于水甘油通道亚家族,具有跨膜转运水、甘油以及尿素等小分子物质的功能。

本文从AQP3与皮肤功能、AQP3与皮肤病、AQP3与氧化应激和衰老及应用研究等几个方面对国内外已公开发表的相关文献资料做如下综述。

1 AQP3与皮肤功能1.1皮肤保湿角质层的保湿对皮肤的外观和生理机能起重要作用,依赖多种因素发挥作用,比如:外环境湿度,角质层结构,脂质或者蛋白质组成,屏障功能以及保水渗透调节物质的浓度,或天然保湿因子如游离氨基酸、离子、其他小分子溶质等[1]。

衰老的皮肤以及湿疹、异位性皮炎、银屑病、鱼鳞病、老年性干燥症等常见皮肤病的皮肤角质层保湿能力下降,其机制可能与AQP3的表达相关[2]。

在皮肤,AQP3是主要表达于角质形成细胞和皮肤成纤维细胞,是对皮肤保湿起重要作用的一种关键蛋白分子。

一方面,AQP3的表达量有一定的空间层次:主要表达于表皮基底层,棘层、颗粒层、到角质层逐渐消失。

这种空间分布与皮肤的含水量分布一致:基底层和基底层上部的水含量约75%,而角质层仅约10~15%;同时,AQP3本身就是一种PH敏感的水通道蛋白,表皮的PH值与AQP3的这种空间分布也存在一定的关联。

研究者们认为:AQP3在基底膜带的高表达,可以促使水、甘油及尿素的转运,使得基底层的细胞间液更接近于中性的平衡状态;而越接近角质层,AQP3的表达也越减少,水分丢失的也越严重,皮肤酸碱度越容易受到外在环境的干扰,比如酸性的皮脂代谢产物等。

因此,皮肤表面的PH值接近5,而基底层则增加到7。

另一方面,由于角质层中的甘油含量直接或间接影响着皮肤保湿功能,其来源的供应显得极其重要。

AQP3即担负着这一重任:它不仅能将循环中的内源性甘油、皮脂腺中的甘油三脂带入表皮,还进一步参与表皮细胞的甘油代谢。

2 AQP3与皮肤病多种皮肤病的AQP3表达异常,有免疫组化显示:新生儿毒性红斑中朗格汉斯细胞、树突状细胞、巨噬细胞、中性粒细胞、嗜酸性粒细胞等免疫细胞均有AQP3表达,这说明了人在出生时皮肤免疫系统既有AQP3参与。

水通道蛋白的发现及对人体的作用

水通道蛋白的发现及对人体的作用

水通道蛋白的发现及对人体的作用刘彦成(渭南师范学院环境与生命科学系陕西渭南 714000)摘要:水通道蛋白(aquaporin,AQP) 是一种对水专一的通道蛋白。

具有介导水的跨膜转运和调节体内水代谢平衡的功能。

水通道蛋白调节失控与水平衡紊乱等一系列疾病密切相关。

关键词:细胞膜;水通道蛋白(AQP);跨膜转运;疾病;调节Abstract:The pass of water protein (aquaporin, AQP) is one kind of adding water single-minded channel protein.Has lies between leads the water the cross membrane transportation and the adjustment body domestic waters metabolism balance function.Pass of water protein adjustment out of control and level balance disorder and so on a series of disease close correlation.Key word:Cell membrane pass of water protein (AQP) cross membrane transportation disease adjusts1 水通道蛋白的发现1.1 细胞膜的运输方式细胞是构成生物的基本单位,细胞与细胞之间则是通过细胞膜来沟通和实现基本的生命活动。

细胞膜的主要成分为磷脂和蛋白质,其结构为磷脂双分子层,磷脂双分子层上有糖蛋白,糖蛋白所在一侧为细胞外侧。

物质跨膜运输可分为自图1 细胞膜的立体结构由扩散(不需能量、载体),协助扩散(不需要能量、需载体),主动运输(要能量、需载体)三种。

还有一些大分子物质是通过胞吞、胞吐方式通过细胞膜,它们需要能量、不要载体。

水通道蛋白2的研究进展

水通道蛋白2的研究进展

水通道蛋白2的研究进展水通道蛋白-2(AQP2)主要表达在肾脏组织,起着肾脏对水转运的重要功能。

AQP2参与了许多疾病的病理过程,如多囊肾、尿崩症。

AQP2可能为泌尿系统疾病提供更有效的治疗新途径。

标签:水通道蛋白-2;泌尿系统;水是生命存在的先决条件。

水分子是极性分子,这使得它们能够非常容易地彼此间形成氢键以及与其它分子形成氢键。

作为极好的溶剂,它们适合于各种极性物质存在于细胞中。

水提供围绕生物聚合物的带电基团的溶剂壳,这些溶剂壳是蛋白质生物活性所必需的[1]。

水占人类体重的70%,在新生足月婴儿,总水分占体重的75%,早产儿更高,可达80-85%[2]。

细胞外和细胞内水含量之间的比率在产后期变化显著。

出后后不久,体内水含量迅速减少,这种降低主要是细胞外水含量的减少。

水含量的变化引起了广泛的关注。

1988年Perter Agre及其同事在红细胞膜上及肾小管中偶然发现的,一种分子量为28000的完整跨膜蛋白,1991年这种蛋白被克隆并命名为CHIP28(channel-forming integral protein),也就是现在的AQP1。

随着AQP1的发现,其它AQPs也相继被被发现及克隆。

迄今为止,已经发现AQPs广泛存在于细菌、植物及动物中,在哺乳动物组织中已经发现有13种AQPs存在[3],其中,分布在肾组织的AQPs至少有8种[4]。

AQPs的发现不仅从分子水平上揭示水跨膜转运调节的机制,而且也揭示水平衡在遗传性及获得性疾病时的病理生理机制,证实其与人类许多疾病密切相关[5]。

尿液浓缩稀释功能主要由肾脏集合管(CD)主细胞的水通道蛋白2(AQP2)完成。

肾脏的集合管可重吸收水,排K+,H+和NH3,而AQP2是肾脏集合管表达的主要的水通道蛋白,对尿液浓缩和维持体液的酸碱平衡起着重要作用。

本文对AQP2的结构、分布、功能、表达及在泌尿系统疾病中作用的研究进展作一综述。

AQP2的分子结构AQP2由Fushimi在1993年克隆并确认的水通道蛋白家族中的一种[6]。

水通道蛋白研究进展

水通道蛋白研究进展

水通道蛋白研究进展水通道蛋白是一种专门负责水分子跨膜运输的蛋白,对于生物体的水分平衡和调节具有重要意义。

近年来,随着研究的深入,水通道蛋白的作用机制和应用领域逐渐引起人们的。

本文将概述水通道蛋白的基本概念、分类、功能,并重点介绍其研究进展。

水通道蛋白概述水通道蛋白是一种位于细胞膜上的运输蛋白,主要负责水分子在细胞膜上的跨膜运输。

水通道蛋白可根据其分布位置和功能不同分为不同类型,例如:AQP0、AQP1、AQP2等。

这些蛋白在细胞膜上形成水通道,帮助水分子快速、高效地通过细胞膜,从而维持细胞内外水平衡及细胞生长代谢。

水通道蛋白研究进展1、水通道蛋白的分子结构与功能关系水通道蛋白的分子结构由6个跨膜片段组成,形成一种特定的构象,从而有利于水分子通过。

不同的水通道蛋白具有不同的构象和功能,例如:AQP0主要分布于视网膜色素上皮细胞,参与调节眼部水分平衡;AQP1主要分布于肾脏、膀胱等器官,参与调节水平衡和尿生成;AQP2主要分布于肾小管和集合管,参与调节尿浓缩和稀释。

2、水通道蛋白的研究方法与技术目前,水通道蛋白的研究方法主要包括以下几种:基因克隆、表达与纯化;蛋白质结晶与结构解析;功能及动力学研究等。

这些方法分别从基因、蛋白质和功能等方面对水通道蛋白进行研究。

同时,随着生物技术的发展,如荧光标记、基因敲除等技术也为水通道蛋白研究提供了有力支持。

3、水通道蛋白的应用领域与展望水通道蛋白在生物学、医学等领域具有广泛的应用价值。

首先,水通道蛋白参与维持生物体内环境稳态,对治疗与预防水肿、脱水等疾病具有重要意义。

例如,AQP1在急性肾损伤和慢性肾功能衰竭等疾病中表达异常,成为治疗上述疾病的潜在靶点。

此外,水通道蛋白还与某些肿瘤细胞的生长和转移密切相关,因此有望为肿瘤治疗提供新思路。

其次,水通道蛋白在物质跨膜转运、药物研发等方面也具有潜在应用价值。

例如,通过研究AQP4在脑内的分布和作用机制,有助于理解脑内物质跨膜转运的规律,为药物研发提供新靶点。

水通道蛋白生理学功能的研究进展

水通道蛋白生理学功能的研究进展

水通道蛋白生理学功能的研究进展
耿晓强;杨宝学
【期刊名称】《生理学研究》
【年(卷),期】2014(002)004
【摘要】水通道蛋白是介导水跨细胞膜转运的膜整合蛋白,可以高选择性地通透水并且对体内水的转运发挥调控作用。

对于水通道蛋白的研究经历了从发现到结构、功能的探索,研究结果表明水通道蛋白在机体多个组织器官都有表达,发挥重要的生理作用,包括肾脏的尿浓缩功能、外分泌腺的分泌功能、大脑水合功能、神经信号传导和新陈代谢等,水通道基因突变与某些疾病的发生发展有关。

因此,研究水通道蛋白的生理功能可为阐明相关疾病的发病机制和确定药物靶点提供新的思路。

本文就近年来水通道蛋白的生理学研究进展予以综述。

【总页数】14页(P19-32)
【作者】耿晓强;杨宝学
【作者单位】[1]北京大学基础医学院药理学系,北京;;[1]北京大学基础医学院药理学系,北京
【正文语种】中文
【中图分类】R73
【相关文献】
1.植物水通道蛋白调控及其基因功能研究进展 [J], 邓晓旭;陈黄曌;王琦
2.水通道蛋白的功能及水通道蛋白4与脑水肿关系的研究进展 [J], 顾永锋;刘文忠
3.水通道蛋白AQP4调节星形胶质细胞功能和在脑缺血损伤中的研究进展 [J], 程雪;罗玉敏;吉训明
4.水通道蛋白在植物抗逆中的功能及调控研究进展 [J], 曾黎明;曾坚
5.中枢神经系统水通道蛋白-4的功能研究进展 [J], 钟建军;孙晓川
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水通道蛋白研究动态

水通道蛋白研究动态

have been generated and it was found that lots of genes are necessary in the process of learning and memory.However,overlooking the role of background genes is a major problem in the pre2 sent studies,the phenotypical abnormalities attributed to the targeted gene may be simply result from the effects of background genes.In order to overcome this limitation,it is necessary to develope new ES cell lines and use inbred mouse strains from pure background,further2 more,methodolgical details must be improved and fine control over the timing,locale and degree of genetic disruption must be gained.K ey w ords gene knockout,gene targeting, learning,memory水通道蛋白研究动态3朱美君 王学臣 陈 珈 杜 敏(中国农业大学生物学院,北京100094)摘要 水通道蛋白是对水专一的通道蛋白,它普遍存在于动、植物及微生物中,不同水通道蛋白之间具有类似特征.哺乳动物中水通道蛋白主要分为六类,分布于水分代谢活跃的器官中;植物除了质膜上水通道蛋白外,液泡膜也存在着水通道蛋白,它们在植物生长,发育及胁迫适应中起着重要作用.目前有关水通道蛋白的详细的结构和功能信息主要来自对红细胞膜上水通道蛋白的研究,它由同源的四聚体组成,每个单体具有独立的水通道功能,四聚体在膜上分布具有不对称性,在膜内侧四聚体呈伸展状态,在膜外侧形成大的中心空腔.关键词 水通道蛋白,选择性,结构,功能学科分类号 Q556 水进出细胞虽说是生命的基本过程,但水如何跨膜运输却是长期以来没有解决的问题,红细胞膜高的水透性使人推测其存在着对水专一的AQPs(aquaporins,AQPs),利用爪蟾卵表达体系及重组脂质体技术进行的功能实验表明,红细胞膜确实存在着对汞敏感的水通道蛋白(AQP1)[1].AQP1的发现揭开了长期使膜生物物理学家困惑的谜———某些细胞中水跨膜的快速流动,进而鉴别了有关AQPs的家族.现已清楚AQPs普遍存在于动植物及微生物中,对AQPs的专一性、结构和功能的研究以及AQPs新成员的鉴别是许多研究者致力研究的课题,有关这方面的进展也是日新月异.1 AQPs的选择性 与其他通道蛋白类似,AQPs也具有高度的专一性,只允许水分子通过而不允许其他分子及离子通过,它介导细胞与介质之间快速的被动的水的运输[1,2].新近,Y ool等[3]利用爪蟾卵表达体系发现用cAMP的激动剂forskolin 或8Br2cAMP预处理爪蟾卵后,卵中表达的AQP1对阳离子具有一定的透性.许多研究小组[2]重复了Y ool等的实验,但结果表明AQP0、AQP1、AQP2只具水转运活性, forskolin或cAMP不能激活AQP1对阳离子的透性.以上分歧可能是由于不同的实验材料,不同测定方法及检测标准引起的,也可能是由于AQPs家族成员间的个体差异的结果,要解决这一分歧,今后必须进行更多更深入的 3国家自然科学基金资助项目(39600090). 收稿日期:1997208211,修回日期:1998201204研究. 目前有关AQP3转运活性仍有争论, Echevarra等[4]认为AQP3除了水转运活性外,对甘油和尿素也有一定的透性,且其分子内转运水和尿素或甘油分子的部位是不同的.最近,Yang和Verkman[5]比较了小鼠中AQP0~5对水及甘油的透性,结果表明除AQP3外其他成员对甘油都无透性.2 AQPs的结构与功能 AQPs属古老的通道蛋白M IP(major intrinsic protein)家族成员,序列分析显示M IP基因内部由两个重复单元组成(a22fold repeat),表明M IP可能由串联的重复基因进化而来[6],M IP家族不同成员之间的基因序列具有一定的同源性,其中NPA(Asn2Pro2 Ala)修饰子区段同源性最强.已有的证据还表明M IP成员之间的基因组织方式也具相似性,一个大的外显子(外显子1)编码N端半分子,三个小的外显子(外显子2~4)编码M IP分子的C端半分子[7].M IP分子的两部分结构在细胞中可能行使不同的功能,N端部分在不同成员之间同源性较高,因此推测它可能负责一般的或共同的功能,另一部分(M IP 分子的C端部分)得到了分化,使得不同的蛋白质具有特殊的功能[6]. 目前已进行序列分析或部分序列分析的M IP家族成员有84个,其中包括大豆根瘤菌共生膜上的NOD26蛋白,大肠杆菌及其他细菌中甘油转运体,动植物质膜上具有水转运功能的内在蛋白,植物液泡膜上多个内在蛋白等[8].大多数M IP成员的功能还有待于进一步深入了解,但其中一部分具有水通道功能,亦即AQPs成员. 所有已知的哺乳动物、植物、微生物AQPs同源物具有类似特征[6],它们约含250~290个氨基酸,不同AQPs之间主要差异位于N端和C端,每一个同源物内C端和N端的氨基酸序列有20%同源性.目前有关AQPs 详细的结构和功能信息主要来自对红细胞膜上AQP1的研究.211 初级结构 AQP1是红细胞膜上分子质量为28ku的内在蛋白,研究初期称CHIP28.该蛋白以两种形式存在:28ku(未糖苷化)及gly28ku (N端糖苷化);两者可以形成多亚基的复合体,生化分析表明纯化的具有功能的AQP1四聚体中只有一个亚基糖苷化.突变体实验表明AQP1糖苷化似乎不是其折叠、定位及功能所必需的. AQP1初级结构信息主要来自对AQP1 cDNA的分析,AQP1的cDNA开放阅读框架由807bp组成,此外还含有38bp的5′末端及2kb的3′Poly(A)+末端[1].AQP1含有四个Cys残基,其中Cys189是维持正常结构和功能所必需的,淬灭实验表明AQP1中四个Trp 基团位于非极性环境中,它们有可能位于蛋白质的疏水口袋中,也可能紧挨着膜脂环境.突变体实验表明虽然Trp210具有高度的保守性,但它不是水通道活性所必需的. 疏水性分析表明,与所有的M IP成员一样,AQP1含有六个跨膜区段并由五个环相连,其中B、D环位于细胞内,A、C、E环位于细胞外,A环上有一个糖苷化位点(其他AQPs成员的糖苷化位点位于C环上).AQPs 分子的C端和N端位于胞质侧.最近, Stamer等[9]用谷胱甘肽转移酶与AQP1特定部位的融合蛋白的抗体进一步研究了AQP1的跨膜特征,结果支持了上述结论,此外,他们发现E环对外界环境非常敏感,因此推测E环在完整的具功能的AQP1中起着活跃的作用. Haris等[10]利用傅利叶红外光谱(F TIR)分析了含水介质中重组到二维膜中AQP1的二级结构,结果表明AQP1含36%α螺旋,42%β折叠片(β2sheet).与以往的圆二色谱(CD)分析结果非常类似(40%α螺旋,42%β折叠片),但与干样品AQP1的F TIR图谱有一定的差异(β折叠片的含量为18%).F TIR光谱分析表明AQP1中β转角(β2turn)的含量为14%,然而CD谱测的β转角只含1%,这可能是由不同的定量分析方法引起的.因为以上测定都依据溶液蛋白的参照光谱,而溶液蛋白的校准设置不一定适合于膜蛋白,因此要准确估算膜蛋白的二级结构可能还需依据膜蛋白的参照光谱,进行更多更深入的研究.对AQP1氨基酸序列的疏水性分析暗示分子含六个跨膜的α螺旋,每个α螺旋形成基本的含水孔,但不排除存在跨膜β折叠片,甚至β螺旋和β折叠片混合结构的可能性[10],同年,Fischbarg 等借助计算机分析软件推测AQPs主要由β折叠桶组成.最近,Cabiaux等[11]比较了AQP1与细菌视紫红质F TIR光谱,结果暗示AQP1是一个完全的螺旋蛋白,β折叠片含量极少甚至没有,α螺旋含量(高达42%~48%)与其跨膜片段的长度(17~22残基)相吻合,二向色性测定表明所有螺旋具有一定跨膜方向,它们与正常脂双分子层平均成21°倾角.要正确了解AQP1分子详细的跨膜情况有待于进一步的生物物理实验.212 高级结构 目前有关AQPs高级结构的报道比较一致,流体力学研究表明AQP1由同源四聚体组成,每个AQP1单体具有独立的水通道活性[1].从重组到脂质体中AQP1的冰冻蚀刻照片及高度纯化的AQP1的负染照片已观察到了直径为7nm的四方结构,它由四个单体组成,中心是明显的凹穴,每个AQP1单体的直径为3nm.运用高分辨率的电镜(分辨率约为115nm)对重组有生物活性AQP1的二维膜晶体观察的结果进一步证实了AQP1的四聚体结构[12],Walz等[12]发现每个四聚体都含有四个向外伸长围饶中心凹穴排列的结构域,它们很可能代表四个水孔,但Walz等[12]认为该四聚体在膜上的组装是维持AQP1的稳定性及其正常功能所必需的.Walz等[13]运用原子力显微镜在纳米水平研究了AQP1分子的表面拓扑学图谱,结果进一步支持了以往实验得到的三维图谱,实验表明AQP1在膜中的分布是不对称的,在膜的一侧四聚体向外伸展,在另一侧形成大的中心空腔,用羧基肽酶Y处理AQP1晶体可以切除5ku的位于胞内的C端片段,并导致主要伸展区域的丢失,从而暗示四聚体中心腔面向细胞外侧.最近,Walz 等[14]运用低温电镜进一步研究了AQP1的三维结构,研究表明每个AQP1单体含六个跨膜α螺旋,它们围绕一复杂的中心密度X右手螺旋,而螺旋束中右手旋转现象是所有溶液蛋白共同特征,因此推测AQP1分子中参与水渗透的中心密度X可能是由含保守NPA序列的B 环和E环组成.要想确切了解AQP1对水专一性机理,必须对AQPs分子进行更精确的结构研究,高分辨率的电子晶体学技术及原子力显微镜也许能为AQP1的结构研究提供更多的信息.3 AQPs分类及功能311 哺乳动物中AQPs种类及功能 虽然从结构分析来看,AQPs是一个简单、具水转运活性的膜内在蛋白,但它们在组织中的分配及其表达模式非常复杂,目前关于AQPs的分布及功能仍有许多争论[7],其中某些分歧可能是由于不同的分析方法引起的. 哺乳动物AQPs主要分六类,分别称为AQP0、AQP1、AQP2、AQP3、AQP4、AQP5,除AQP4外,它们都对汞化合物敏感.AQP0又称M IP是眼晶体纤维中主要的内在蛋白,约占总蛋白的60%,其功能主要维持晶体的透明度,AQP0功能失调将引起晶体水肿并产生白内障[7].AQP1是目前分布最广,研究最为清楚的AQPs,主要存在于红细胞、脉络丛、肾近侧管、降支、毛细管、乳汁管、淋巴管等[7],AQP1在眼组织中含量高于其他AQPs成员[15].AQP1与脑脊髓液、体液、汗液的形成,角膜晶体中水的去除,胆汁的分泌及浓缩密切相关[7]. AQP2存在于肾髓和肾皮质收集管主细胞,其活性受后叶加压素的调节,无活性状态的AQP2存在于细胞质囊泡中,受后叶加压素刺激时存在于胞质囊泡中无活性的AQP2通过囊泡穿梭运动将运到肾的顶端膜并发挥作用,AQP2基因的失活将导致稀有的生肾尿崩症[16].AQP3主要存在于肾收集管主细胞基缘膜上,此外还存在于气管上皮基缘膜,脑表皮的脑膜细胞,眼的结膜上皮,结肠末端长柔毛细胞的基缘膜.有关AQP3的功能目前仍有分歧,有研究表明AQP3在转运水的同时也可以转运甘油,尿素等小分子溶质[4,5].AQP4主要存在于脑中,同时也存在于胃周壁细胞,肾收集管主细胞基缘膜,气管、支气管上皮的基缘膜;睫状体非着色细胞的基缘膜,视网膜内外核层,神经节细胞层等.已有的证据暗示AQP4参与许多生理、病理过程,脑中的AQP4可能调节脑脊髓液的外流及细胞外液的体积,若AQP4表达及调控失调将导致后叶加压素释放失调,从而引起自发性尿崩症等疾病[7].AQP5具有分泌功能,主要存在于涎腺,泪腺,角膜上皮及肺中.泪腺及次上额腺腺体上皮中AQP5表达及功能的失调可能引起这些腺体机能不全[7]. 从上可见同一细胞膜可以含有多种AQPs,例AQP2、AQP3、AQP4同时存在于收集管主细胞基缘膜,为什么会出现这种重复现象目前仍不清楚,也许不同AQPs在同一组织的不同部位单独起作用,也许它们的功能存在着潜在的差异.从AQPs分布看,许多代谢活跃的细胞及组织如睫状体着色细胞、汗腺、胰腺、腮腺等仍未发现有AQPs存在,此暗示这些部位可能存在着目前尚未被人鉴别的新的AQPs成员.312 高等植物中AQPs种类及功能 总体来讲,植物AQPs可分为质膜上AQPs和液泡膜上水通道蛋白(tonoplast intrinsic protein,TIP).TIP又可分种子液泡膜上水通道蛋白即α2TIP,营养体液泡膜水通道蛋白即γ2TIP,最近,Daniels等[17]在拟南芥营养体液泡膜又发现了一种新的成员即δ2 TIP.它们在细胞中表达模式及其在组织中的功能不同,α2TIP存在于种子贮藏液泡膜,其作用可能缓解种子吸胀时胞质渗透势变化并控制液泡体积[18].γ2TIP主要位于根中,可能与快速生长区细胞的扩展有关;δ2TIP主要是茎中的AQPs,它在幼嫩微管束细胞中产生水的流动,在成熟的微管束组织中保持水的透性[17]. 自1994年,拟南芥质膜上发现AQPs以来,植物质膜AQPs的队伍越来越庞大,近两年来已先后从冰草、大麦叶表皮、水藻的节间膜、波菜叶片、向日葵下胚轴的薄壁组织等细胞质膜上鉴别了对水专一的AQPs.从不同植物质膜上鉴别的AQPs虽然命名各异,但都具有相似的特性和功能,它们在植物的生长、发育及胁迫适应中调节跨细胞膜水的转运.它们对水高效转运功能大多已用爪蟾卵表达体系得以鉴定,此外测定植物膜渗透水透性的许多技术如跨细胞膜渗透势、细胞压探针、截流技术等也已用来研究天然膜中AQPs的功能[19],最近,Chaumont等[20]利用融合基因技术发现拟南芥质膜上水通道蛋白RD28可以在其他有机体(网状柱菌及前孢子)中发挥作用,并影响其正常的生长发育过程. 了解了AQPs的分布及分子结构后,我们不难看出AQPs在维持机体的体内平衡、器官的正常功能中起着重要作用.但目前对AQPs 结构与功能的关系、导致AQPs开关的信号及其活性调节知之甚少,因此要真正揭开水分子快速跨膜移动的分子机理所面临的任务还十分艰巨.参 考 文 献1 Preston G M,Agre P.Isolation of the cDNA for erythro2 cyte integral membrane protein of28kilodaltons:Member of an ancient channel family.Proc Natl Acad Sci USA,1991, 88(24):11110~111142 Agre P,Lee M D,Devidas S,et al.Aquaporins and ion conductance.Science,1997,275(5305):1490~14923 Y ool A J,Stamer W D,Regan J W.Forskolin stimulation of water and cation permeability in aquaporin1water channels.Science,1996,273(5279):1216~12184 Echevarra M,Windhager E E,Frindt G.Selectively of the renal collecting duct water channel aquaporin23.J Biol Chem,1996,271(41):25079~250825 Yang B X,Verkman A S.Water and glycerol permeabilities of aquqporins125and MIP determined quantitatively byexpression of epitope2tagged constructs in Xenopus oocytes.J Biol Chem,1997,272(26):16140~161466 Reizer J,Reizer A,Saier M H.The MIP family of integral membrane channel proteins:Sequence comparisons,evolu2 tionary relationships,reconstructed pathway of evolution and proposed functional differentiation of the two repeated halves of the proteins.Crit Rev Biochem Mol Biol,1993,28(1): 235~2577 K ing L S,Agre P.Pathophysiology of the aquaporin water channels.Annu Rev Physiol,1996,58:619~6488 Park J H,Saier M H J r.Phylogenetic characterization of the MIP family of transmembrane channel proteins.J Membr Biol,1996,153(3):171~1809 Stamer W D,Snyder R W,Regan J W.Characterization of the transmembrane orientation of aquaporin21using antibod2 ies to recombinant fusion protein.Biochemistry,1996,35(50):16313~1631810Haris P I,Chapman D,Benga G.A fourier2transform infrared spectroscopic investigation of the hydrogen2 deuterium exchange and secondary structure of the282kDa channel2forming integal membrane protein(CHIP28).Eur J Biochem,1995,233(2):659~66411Cabiaux V,Oberg K A,Pancoska P,et al.Secondary structures comparison of aquaporin21and bacteriorhodopsin:a fourier transform infrared spectroscopy study of two2di2mensional membrane crystals.Biophys J,1997,73(1): 406~41712Walz T,Smith B L,Zeidel M L,et al.Biologically active two2dimensional crytals of aquaporin CHIP.J Biol Chem, 1994,269(3):1583~158613Walz T,Tittmann P,Fuchs K H,et al.Surface topogra2 phies at subnanometer2resolution reveal asymmetry and sid2 edness of aquaporin21.J Mol Biol,1996,264(5):907~91814Walz T,Hirai T,Murata K,et al.The three2dimensional structure of aquaporin21.Nature,1997,387(6633):624~62715Patil R V,Saito I,Yang X,et al.Expression of aquaporins in the rat ocular tissue.Exp Eye Res,1997,64(2):203~20916Wintour E M.Water channels and urea transporters.Clin Exp Pharmacol Physiol,1997,24(1):1~917Daniels M J,Chaunont F,Mirkov T E,et al.Characteriza2 tion of a new vacuolar membrane aquaporin sensitive to mer2 cury at a unique site.Plant Cell,1996,8(4):587~59918Maurel C,Chrispeels M,Lurin C,et al.Function and reg2 ulation of seed aquaporins.J Exp Bot,1997,48(309): 421~43019Maurel C.Aquaporins and water permeability of plant mem2 branes.Annu Rev Plant Mol Biol,1997,48:399~42920Chaumont F,Loomis W F,Chrispeels M J.Expression of an A rabi dopsis plasma membrane aquaporin in Dic2 tyosteli um results in hypoosmotic sensitivity and develop2 mental abnormalities.Proc Natl Acad Sci USA,1997,94(12):6202~6209Advances in Aquaporin R esearch.ZHU Mei2 J un,WAN G Xue2Chen,CHEN Jia,DU Min (College of B iological Sciences,Chi na A gricul2 t ural U niversity,Beiji ng100094,China). Abstract Aquaporins,water specific conduct2 ing channels,ubiquitously exist among animals, plants and microbes.There are six kinds of aquaporins in mammalian plasma membrane, which locate on the organs that participate actively in water metabolism.Plant aquaporins exist both in plasma membrane and tonoplast, which have a general role in regulating trans2 membrane water transport during the growth, development,and stress responses of plants. Most information about the structure and func2 tion of aquaporins comes from those researches on AQP1that exists in erythrocyte membrane. Aquaporins assemble in the membrane as a homotetramer with each monomer having its individual water conducting function.The dis2 tribution of tetramer in membrane is unsymmet2 rical,which exhibits four protrusions in the inside surface of membrane and forms a large central cavity outside.K ey w ords aquaporin,selectivity,structure, function。

植物水孔蛋白研究进展

植物水孔蛋白研究进展
3 主要功能 3.1 在水分运输中的作用 水通过生物膜的方式有 3 种: 通过简单扩散穿过类脂双层; 大多数运输其他物质的膜蛋 白也有少量水透性; 通过 AQP 直接运输水[3], 这 在 快速 与 大 量调节膜水运输能力方面比其他途径更有效, 可使水运输 效率提高 10~20 倍。AQP 运输水的机制是顺着膜内外的渗 透压梯度被动运输的。自植物根部吸收的水分运输到叶通 常经由 3 个途径来完成: 共质体途径, 质外体途径和跨细胞 途径。质膜上的水孔蛋白在控制植物水分的跨膜运输中起 主要作用, 根的内皮层细胞壁上的凯氏带对水分辐射运输 形成障碍, 因此根的皮层或内皮层, 质外体的水分流动必须 进入共质体。在拟南芥中, PIP1 水孔蛋白在 根 内 皮 层 中的 表达高于在根皮层中的表达, 这与后一种可能性非常符合。 木质部薄壁细胞也是水孔蛋白高度表达的地方, 在控制水 分的渗透和水压运动过程中起着重要的作用。 3.2 对 细 胞 的 渗 透 调 节 作 用 烟 草 悬 浮 培 养 细 胞 和 洋 葱 表皮细胞中, 液泡膜的渗透性为原生质膜渗透性的 100 倍, 这表明水孔蛋白在液泡膜上的水分运输方面具有另外一种 作用。液泡膜上无限制的水分运输可以使植物细胞有效地 利用巨大的液泡空间来缓冲细胞质内的渗透波动, 这样就
131 的磷酸化可直接控制 MpPIP2; 1 的活性[12]。这些均表明 水孔蛋白的磷酸化和去磷酸化作用在植物生理代谢中扮演
重要的角色。植物细胞中植物 AQP 的磷酸化主要发生于 N 端或 C 端的丝氨酸 。另有试验证明, 植物 AQP 中紧邻第 1 NPA 的丝氨酸也可以发生磷酸化, 这个丝氨酸在所有植物 PIPs 小核和几个 TIPs 中都是保守的, 丝氨酸的这种高度保 守性说明它的作用是非常重要的, 其磷酸化作用位点 Arg/ Xaa"Lys"Xaa"Ser"Xaa"Xaa"Arg 由 CDPK( Ca2+蛋 白 激 酶) 等 蛋 白激酶 识 别 。用 丙 氨 酸 替 代 SoPIP2; 1 或 PvTIP3; 1 中 的 丝 氨酸, 水通道蛋白的活性也会降低[13] 。 4.2 Ca2+调节 AQP 的磷酸 化 与 Ca2+有 着 密 切的 关 系 。当 植物处于 Ca2+饥饿状态时, 水 孔 蛋 白 没 有 活性 , 逐 渐 增 加 Ca2+浓度, 水孔蛋白活性随之增加, 加入 Ca2+通道阻 塞 剂 后 , 水 孔 蛋 白 不 再 起 作 用 。 分 别 用 50 mmol/L NaCl、10 mmol/L CaCl2 和 10 mmol/L CaCl2 + 50 mmol/L NaCl 处 理 辣 椒 后 发 现, 非原生质体中 Ca2+浓度降低可 以 使 细 胞 在 盐胁 迫 条 件 下正常生长 。这说 明 Ca2+可 以 调 节 水 孔 蛋 白 的活 性, CDPK 活性需要 Ca2+参与[14]。Ca2+对 AQP 的活性调节作用主要是通 过影响 CDPK 来实现的。 其主要原理是 Ca2+与 C 端的 CaM 结构域相互作用, 形成复合物, 以解除催化区的抑制作用, 从而激活 CDPK 的活性[15]。AQP 的磷 酸 化 还 依 赖 于 cAMP。 腺苷酸环化酶被激活后, 细胞内 cAMP 的增加活化 PKA 或 PKC, 进而引发 AQP 丝氨酸的磷酸化, 增加膜对水的通透性 [13]。 如 菜 豆 种 子 α"TIP 磷 酸 化 依 赖 于 CDPK, 菠 菜 叶 质 膜 PM28A 在体外的磷酸化需要亚微摩尔级 Ca2+参与。 4.3 酸碱度调节 观察悬浮培养的拟南芥根细胞发现, pH 值可以调节植物 AQP 的活性[16]。当胞液 pH 值从 7 降到 6 时, 悬浮 培 养 的 拟 南 芥 根 细 胞 AtPIP2; 1、AtPIP2; 2 和 AtPIP2; 3 都 会 引 起 通 道 关 闭 , PIPs 中 的 His197 和 His264 的 高 度 保 守性与胞液 pH 值 对 AQP 活 性 的 调 节 密 切 相关 ; His197 在 正 常 生 理 状 态 下 是 主 要 的 pH 值 敏 感 部 位 , His197 可 与 Arg194、Asp195 一起与 AtPIP2; 2 的 N 端作用稳定水通道的 关 闭 状 态 。 pH 值 影 响 AtPIP2; 2 是 通 过 影 响 D 环 中 的 His197 来实现的, 利用丙氨酸取代 His197 后, 胞液 pH 值对 水孔蛋白的影响降低。但 His197 并不是唯一的 pH 值感受 位点。单突变体 R194A 和 D195A 对 pH 值的敏感性显著降 低, 双突变体 R194A/H197A 和 D195A/H197A 的 pH 值的敏 感 性 全 部 消 失 , 这 说 明 His197 在 正 常 生 理 状 态 下 可 与 Arg194、Asp195 一起与 AtPIP2; 2 的 N 端相互作用稳定水通 道的关闭状态。 4.4 异聚化作用 AQP 单体常发生异聚化, 以四聚体的形 式存在。单体的异聚化可以增加 AQP 活性[17]。将萝卜 6 个 RsPIPs 和 2 个 RsTIPs 在 缺 少 AQP 活 性 的 酵 母 中 表 达 时 , AQP 活 性 增 加 5~10 倍 , RsPIP1s 单 独 表 达 时 不 具 AQP 活 性。在异聚化作用中, E 环起着非常重要的作用。定点突变 RsPIP1s 和 RsPIP2s, 其活性会改变, 用 Val 替代 RsPIP1- 3 E 环的 Ile244, 活性比野生型提高 250 %; 用 Ile 替代 RsPIP2 E 环 中 的 Val235, 活 性 会 降 低 45 %。 玉 米 中 ZmPIP1; 1 和 ZmPIP1; 2 单 独 表 达 时 , 不 会 增 加 水 渗 透 性 系 数( Pf) , 而 ZmPIP2; 1, ZmPIP2; 4, 和 ZmPIP2; 5 可以。当 ZmPIP1; 1 分别 和 ZmPIP1; 2, ZmPIP2; 1, ZmPIP2; 4 或 ZmPIP2; 5 共 同 表 达
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doi:10.3969“.issn.1008—9632.2009.05.063植物水通道蛋白生理功能的研究进展刘迪秋,王继磊,葛锋,李文娴(昆明理工大学生命科学与技术学院,昆明650224)摘要:自1992年第一个水通道蛋白AQPl被人们认识以来,从植物中分离得到了大量AQPs基因。

AQPs在植物体内形成选择性运输水及一些小分子溶质和气体的膜通道,参与介导多个植物生长发育的生理活动,如细胞伸长、气孔运动、种子发育、开花繁殖和逆境胁迫等。

就植物水通道蛋白的生理功能进行概述。

关键词:水通道蛋白;跨膜运输;生理功能;植物;水分中图分类号:Q945.17+1文献标识码:A文章编号:1008—9632(2009)05—0063—04水是生物体的主要组成部分,对生命至关重要,活细胞都含有80%以上的水分。

水在细胞和组织问的进出是生命代谢的基本过程。

尽管多细胞生物经过长期的进化,特化了一些对水流障碍很微弱的专门组织,但是水分子跨膜转运仍然是水分运输的一个主要步骤。

植物种子萌发以及花粉管伸长时,细胞体积增大与水分快速吸收相伴发生;动物的红细胞和肾上皮细胞运输水分的速度非常快。

细胞膜上存在特异转运水的通道,美国约翰・霍普金斯大学医学院化学家Agre从血红细胞中克隆了第一个水通道蛋白cHIP28(channel—foming—integralmembranepmtein),并用实验证明了cHIP28蛋白具有允许水分子进入的功能。

其后,科学家陆续从哺乳动物、植物、微生物中鉴定出各种水通道蛋白,统称为“Aqu印orins(AQPs)”,从此水跨细胞膜转运的生物学研究进入了一个崭新阶段。

近年来在拟南芥、烟草、玉米、豌豆、水稻、向日葵、油菜等多种植物中都发现了AQPs的存在。

AQPs属于古老的通道蛋白MIP(majorintrinsicproteins)成员,与动物和微生物相比,植物AQPs的类型显得更为丰富,并具有更大的多样性。

1。

高等植物AQPs大致分为4种类型:质膜内在蛋白(plasmaintrinsicprotein,PIPs),液泡膜内在蛋白(tonoplastintrinsicpmteins,TIPs),NOD26一like内在蛋白(NOD26一likeintrinsicpmteins,NIPs)和小的碱性内在蛋白(smallbasicintrinsicpro—teins,sIPs)。

基因组和转录组分析显示拟南芥约有35个MIP类似蛋白,玉米有33个;然而脊椎动物仅有11~13类不同的AQPs基因存在。

由此可见,AQPs在植物生命活动中肩负着很多重要的生理功能。

1植物水通道蛋白可能参与的生理过程1.1水分的跨膜快速运输水分对于植物的生长发育和繁殖是非常重要的。

植物通过根部从土壤吸收水分以维持体内水分平衡,蒸腾作用又让植物失去大量的水分。

植物体内的水分运输有3种不同的途径:质外体途径、共质体途径和跨细胞途径。

(1)质外体途径,是指水分在木质部、韧皮部维管组织中的长距离运输;(2)共质体途径,是指水分的运输通过由胞间连丝相连的细胞质连续体进行;(3)跨细胞运输途径,是指水分跨过细胞膜的运输。

根据植物种类、生长状况、发育阶段的不同,不同的途径对整体各个部分的水分运输的贡献也不一样。

AQPs参与共质体和跨细胞途径运输,负责水分的快速跨膜转运。

越来越多的研究表明,AQPs扮演着“细胞的水管工”,介导多个生理过程,快速改变植物膜的通透性以应对外界环境的变化。

水分的跨膜运输以两种方式进行,通过脂质双层的自由扩散运输以及通过水通道蛋白的被动运输。

许多生理过程都需要大量水分的跨膜快速运输,水分通过脂质双层的自由扩散运输满足不了需求,而AQPs可以实现水分的跨膜快速运输。

Javot和Maurel。

21研究发现AQPs在根部大量表达,调控植株从土壤吸收水分。

1.2水分的长距离运输水分在植物体内通过维管系统进行长距离运输,根吸收的水分经过凯氏带进入导管,茎叶又从导管中获取水分。

大量研究人员观察到PIPs、TIPs在维管组织及其周围的细胞中表达积累,表明AQPs参与质外体途径,调节细胞间长距离的水分流动。

拟南芥8一TIP收稿日期:2008一09—01;修回日期:2008—10—08作者简介:刘迪秋(1979一),女,博士,讲师,研究方向,植物分子生物学,E_mail:diqiuliu@hotmail.com。

基金项目:昆明理工大学引进人才科研启动费项目(14118095)63万方数据主要在发育中的维管组织表达,它的作用可能是在幼嫩的维管细胞中形成水流,在成熟的维管束组织中维持细胞的水渗透性。

在叶片中TIPs可能控制木质部液流在叶肉中的卸载,并部分参与决定木质部液流和蒸腾流的通路。

schuurmans等。

3。

分离了两个在菜豆子叶表达的PIPs基因,R尸伊J—J以及RⅣP2一J,在菜豆种子发育以及萌发过程中,n纠P2一J在RP,PJ—J的协助下,可能参与韧皮部水分在种皮共质体的卸载。

1.3水分的渗透调节作用AQPs在液泡与胞质问、胞质与质外体间的渗透调节中起重要作用。

多数成熟的植物细胞中都有一个中央大液泡,液泡占据了几乎整个胞内空间。

位于质膜与液泡膜之间的细胞质则被挤压成一薄层,因而使得细胞质常常处于急剧的渗透变化之中。

PIPs和TIPs的存在,有利于水分大量快速运输,所以对调节细胞质渗透压具有关键的作用,为细胞的各种代谢活动提供最佳条件。

研究也证明TIPs介导细胞质和液胞腔室之间的水分交换,缓解细胞质渗透波动。

1.4细胞的伸长和分化很多研究都发现AQPs参与细胞的伸长与分化。

玉米的zrnTIPl在细胞旺盛分裂和急剧伸长的部位(初级根和次级根的根尖、叶原基、雌雄花序的分生组织)优势表达,通过免疫细胞化学定位显示zrnTIPl在分生组织的小泡中大量积累。

zmTIPl可能参与液泡再生,在细胞膨胀过程中支持水流快速进入液泡。

拟南芥质膜蓝光诱导基因尸俨J6主要存在于分化的细胞及幼嫩的组织或器官中,如根的伸长区、雄蕊、幼嫩的果实等。

拟南芥叫一TIP在细胞伸长、分化的部位高度表达。

菠菜so一8TIP与拟南芥叫一TIP的表达非常相似,在根、叶以及叶柄已经液泡化的细胞中较高水平地积累。

Gao等报道油菜种子萌发时液胞膜内在蛋白基因B凡y一刀P2在胚根的突出阶段高度表达,推测其与根尖细胞增殖和膨大有关。

Liu等。

41从陆地棉中克隆了两个纤维伸长期特异表达基因锄P,PJ-2和铂yz伊J,两者可能以介导大量水分快速进入液泡的方式在纤维伸长过程中起重要作用。

1.5气孔和叶片运动拟南芥P,PJ6在子叶及幼嫩叶中的保卫细胞及其附近的表皮细胞中有很强的表达活性;向日葵SunTIP7和sunTIP20在气孔细胞表达。

51。

这些研究都暗示AQPs可能参与气孔的运动。

植物叶片运动通过两种方式实现,即特化马达器官叶枕的感性运动和生长性运动(偏上性),两种方式都与膜水分运输速率的增加有关。

AQPs是膜上的水通道,毫无疑问与植物叶片运动密切相关。

雨树ssAQP2介导马达细胞以昼夜节律改变体积大小,参与小叶的感夜运动。

6。

烟草叶片的64偏上性运动也与AQP(NtAQPl)介导的水分运输有关一。

1.6果实成熟以及种子的成熟与萌发果实成熟、种子成熟和种子萌发都需要经历多个生理过程,其问细胞质渗透系统也会不断变化,果实和种子则需要进行迅速的渗透平衡以提供最适的发育环境。

AQPs在果实成熟、种子成熟与萌发中起着重要的作用。

草莓果实成熟相关基因此P,PJ;J在草莓果实发育过程中优势表达,并且表达受生长素处理的抑制。

8。

F0尸伊J;J与果实发育密切相关,其功能可能是增加果实细胞质膜的水通透性。

Maurel等研究发现,在种子成熟晚期大量积累液泡膜内在蛋白仅一TIP,但在种子萌发及幼苗发育的初期,仪一TIP表达逐渐减弱,取而代之的是它的同源物^y—TIP。

仅一TIP与^y—TIP在种子的萌发过程中协同作用,精细调控细胞的渗透势。

仅一TIP可能调控种子萌发吸胀初期蛋白贮藏囊泡的再水化,但萌发晚期囊泡膜的流动性以及脂膜的组成变化则可能是^y—TIP调控的。

PIPs也与种子发育和萌发有关,油菜曰nP,PJ在种子吸胀过程中大量表达,可能参与油菜种子萌发初期营养物质的酶代谢所需水分的转运。

人参激素自养型愈伤组织特异表达基因Pg卿J在拟南芥中过量表达,能显著增加种子的大小和重量一。

此外,转赡z印J拟南芥种子的发育速度也大大加快,种子的脂肪酸含量显著提高,为野生型种子的1.85倍。

1.7运输其他一些小分子溶质、气体和重金属AQPs除了作为水通道,还可能肩负其它一些功能,运输一些小的中性溶质分子和气体。

大豆与细菌共生体膜上的Nodulin_26可能有运输甘油和氨气的作用,推测Nodulin_26通过介导根细胞和内共生体之间的一些物质交换而调控类菌体的渗透平衡。

除了水分运输之外,烟草的NtAQPl和NtTIPa都能转运甘油和尿素,南瓜的cpNIPl、拟南芥的TIPs也有运输尿素的能力。

Dordas等在爪蟾卵母细胞中表达玉米zmPIPl;1,结果提高了对硼酸的吸收能力。

几个研究小组还观察到PIPs能促进叶组织c0,的跨膜运动。

1…。

烟草NtAQPl以及大麦HvPIP2;1的超量表达能提高植株对水和c0:的通透性,促进植物体内水分及c0:的交换,并增强光合作用。

反之,利用RNA干涉降低Nt—AQPl的表达水平致使烟草叶绿体内膜对c0:的通透性减少。

1“。

尽管对AQPs是否具有跨膜运输c0:的作用这一点还有待进一步研究,但是这些报道无疑都为AQPs在植物光合作用和生长方面的重要作用建立了极为关键的联系。

此外,植物AQPs还具有对亚锑酸盐、过氧化氢、醇类小分子、重金属、乳酸等的通透性。

植物NIPs转万方数据运重金属是一个保守而又古老的特征,多种植物的NIPs被发现是双向转运亚砷酸盐的分子通道,如拟南芥AtNIP5;1和AtNIP6;1、水稻0sNIP2;1和0sNIP3;2、百脉根LjNIP5;1和LjNIP6;1¨2’”1。

水稻0sNIP2;1具有转运硅和亚砷酸盐的双重功能,因此水稻能高效吸收重金属元素砷。

1…。

正常生长条件下拟南芥A州£P2;J在根部仅有低水平的表达;当根或叶组织淹水时,A≠MP2;珀勺转录水平快速急剧上升,淹水处理1h后根部的转录水平就增加了70倍。

1“。

实验表明AtNIP2;1是乳酸转运蛋白,受缺氧胁迫诱导表达,其功能可能是适应缺氧胁迫下的乳酸发酵。

1.8植物逆境胁迫反应大量研究表明,植物通过控制AQPs通道蛋白的活性来抵御各种逆境胁迫。

已经报道的逆境胁迫因子主要是一些非生物因子:干旱、冷害、高盐、机械损伤、渗透胁迫、重金属和淹水缺氧。

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