动物固体组织蛋白提取-Protocol

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动物细胞或组织的蛋白质抽提步骤

动物细胞或组织的蛋白质抽提步骤步骤一：收集和处理样品首先，需要收集要研究的动物细胞或组织样品。

样品可以是从细胞培养物中收集的细胞，也可以是从动物体内收集的组织。

在收集样品之前，可以用生理盐水冲洗样品，以去除与研究无关的物质。

步骤二：细胞破碎和组织研磨接下来，需要将细胞破碎或组织研磨，以释放细胞内或组织内的蛋白质。

对于细胞破碎，可以使用一些方法，如机械破碎、超声波破碎或冻融破碎等。

对于组织研磨，可以使用搅拌器或研磨器等工具进行研磨。

步骤三：离心步骤四：蛋白质提取将经过离心的上清液取出，即为蛋白质提取物。

蛋白质提取液可以选择不同的组成，以适应研究的目的。

一般来说，一个典型的蛋白质提取液可能包含以下成分：蛋白酶抑制剂（如PMSF）、还原剂（如DTT或β-巯基乙醇）、溶解剂（如甲醇或异丙醇）、洗涤剂（如Triton X-100或Tween-20）以及缓冲液（如磷酸盐缓冲液或Tris缓冲液）等。

这些成分对于蛋白质的稳定性、可溶性和抽提效果起着重要作用。

步骤五：蛋白质浓缩为了浓缩蛋白质，可以使用一些方法，如醋酸沉淀、有机溶剂沉淀或钙盐沉淀等。

这些方法可以使蛋白质从提取液中沉淀下来，以减少液体体积并提高蛋白质浓度。

步骤六：蛋白质分析最后，可以对蛋白质抽提物进行分析。

常用的蛋白质分析方法包括SDS-凝胶电泳、Western blotting、质谱分析等。

这些方法可以用于分析蛋白质的分子质量、浓度、结构和功能等。

总结起来，动物细胞或组织的蛋白质抽提步骤包括：收集和处理样品、细胞破碎和组织研磨、离心、蛋白质提取、蛋白质浓缩和蛋白质分析。

这些步骤的选择和优化将根据具体的实验目的和要求进行调整。

组织蛋白提取步骤

组织蛋白提取步骤概述组织蛋白提取是一种重要的实验操作，用于研究生物体中的蛋白质组成和功能。

在这篇文章中，我们将深入探讨组织蛋白提取的步骤和方法。

准备工作在进行组织蛋白提取之前，需要进行一些准备工作，以确保实验的顺利进行。

1. 选择合适的组织样本选择合适的组织样本非常重要。

样本的选择应基于研究的目的和问题。

常用的组织样本包括肝脏、肾脏、心脏等。

2. 通过冰冻保存样本在进行组织蛋白提取之前，将组织样本冰冻以保持其蛋白质的完整性和稳定性。

样本应在-80°C的低温下保存。

3. 研磨组织样本在进行提取之前，将组织样本研磨以释放蛋白质。

可以使用试管中的研磨棒、液氮或机械研磨仪等方法进行研磨。

组织蛋白提取步骤下面将详细介绍组织蛋白提取的具体步骤。

1. 组织样本溶解首先，将冷冻的组织样本迅速解冻放入冷蛋白提取缓冲液中。

缓冲液的选择应根据研究的目的而定。

可以选择含有各种缓冲剂（如Tris-HCl和EDTA）和蛋白酶抑制剂的缓冲液。

2. 组织样本裂解接下来，需要将组织样本裂解，以使细胞膜破裂并释放细胞内容物。

可以通过以下方法进行组织样本的裂解： - 超声波裂解：使用超声波处理器将样本暴露在高频超声波中，以破裂细胞膜。

- 高压裂解：使用高压细胞破碎机将样本加压，使其破裂。

- 液氮冻融：将样本在液氮中冷冻并迅速解冻，通过重复操作破裂细胞膜。

3. 蛋白质提取在组织样本裂解后，可以使用离心等方法将细胞碎片与蛋白质分离。

主要的提取方法包括： - 离心：将组织样本在高速离心中离心，并采集上清液中的蛋白质。

- 柱层析：利用蛋白质的性质，将蛋白质从样本中提取出来。

- 倒置电泳：利用电泳的原理，将蛋白质从样本中分离。

4. 蛋白质的定量和分析最后，对提取得到的蛋白质进行定量和分析。

常用的方法包括： - 低丰度蛋白质的富集：通过使用富集柱等方法将低丰度蛋白质从样本中提取出来。

- SDS-PAGE：使用聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白质，并通过染色等方法进行定性或定量分析。

动物固体组织蛋白提取-.

动物固体组织蛋白提取-Protocol2017-07-18动物固体组织蛋白提取 Protocol1、前夜将磁珠及匀浆管洗净置入75%乙醇中浸泡。

早晨取出磁珠和匀浆管，自然晾干；也可放入烤箱中，速度较快。

2、裂解液配制：RIPA：PMSF=100：1，现配现用。

（1000ulRIPA+10ulPMSF）。

置入4℃冰上。

3、抽蛋白（应冰上进行）：a、适量组织（最好放入液氮中反复研磨成粉状）加入裂解液中。

一般10ml管体系中加入：7-8粒磁珠、100mg组织、1mlRIPA+10ulPMSF、1 tablet Cocktail。

b、匀浆。

手工匀浆：将剪碎的组织倒入玻璃匀浆管中，再将剩余的1/3匀浆介质或生理盐水冲洗残留在烧杯中的碎组织块，一起倒入匀浆管中进行匀浆，左手持匀浆管将下端插入盛有冰水混合物的器皿中，右手将捣杆垂直插入套管中，上下转动研磨数十次（6～8分钟），充分研碎，使组织匀浆化。

机器匀浆：用组织捣碎机10000～15000r/min上下研磨制成10％组织匀浆，也可用内切式组织匀浆机制备（匀浆时间10秒/次，间隙30秒，连续3～5次，在冰水中进行），皮肤、肌肉组织等可延长匀浆时间。

超声粉碎：用超声粉碎机进行粉碎，可用Soniprep150型超声波发生器以振幅14微米超声处理30秒使细胞破碎，也可用国产超声波发生仪，用40安培，5秒/次，间隙10秒反复3～5次。

反复冻融：培养或者分离的细胞可以用以上的方法匀浆，也可以反复冻溶3次左右（即让细胞加适量的低渗液或者双蒸水放低温冰箱中结冰，溶解，再结冰，再溶解，反复3次左右），但有部分酶活力会受影响。

c、将组织匀浆转入1.5ml的EP管中（eppendorf 管、离心管）。

12000r/min 4°C 离心15min。

d、离心后EP管中液体分三层，提取中间无色液相，移入新的EP管中。

可-80℃保存。

4、蛋白浓度测定。

a、配工作液：溶液A：溶液B=50：1（200ul：4ul）。

动物固体组织蛋白提取_Protocol

动物固体组织蛋白提取 Protocol1、前夜将磁珠及匀浆管洗净置入75%乙醇中浸泡。

早晨取出磁珠和匀浆管，自然晾干；也可放入烤箱中，速度较快。

2、裂解液配制：RIPA ：PMSF=100：1，现配现用。

（1000ulRIPA+10ulPMSF ）。

置入4℃冰上。

3、抽蛋白（应冰上进行）：a 、适量组织（最好放入液氮中反复研磨成粉状）加入裂解液中。

一般10ml 管体系中加入：7-8粒磁珠、100mg 组织、1mlRIPA+10ulPMSF 、1 tablet Cocktail 。

b 、匀浆。

机器匀浆：用组织捣碎机10000～15000r/min 上下研磨制成10％组织匀浆，也可用内切式组织匀浆机制备（匀浆时间10秒/次，间隙30秒，连续3～5次，在冰水中进行），皮肤、肌肉组织等可延长匀浆时间。

c 、将组织匀浆转入1.5ml 的EP 管中（eppendorf 管、离心管）。

12000r/min 4°C 离心15min 。

d 、离心后EP 管中液体分三层，提取中间无色液相，移入新的EP 管中。

可-80℃保存。

4、蛋白浓度测定。

a 、配工作液：溶液A ：溶液B=50：1（200ul ：4ul ）。

组织蛋白提取步骤

组织蛋白提取步骤标题：组织蛋白提取步骤：从样本收集到蛋白质溶解的全面解析引言：组织蛋白提取是生物学和生物化学领域中非常重要的实验步骤之一。

它是为了研究组织中的蛋白质表达、功能和相互作用而必不可少的前提。

本文将从样本收集到蛋白质溶解的全过程，详细介绍组织蛋白提取的步骤和要点，旨在帮助读者更全面、深入地了解该领域的相关内容。

第一部分：样本收集与处理1.1 样本预处理：在进行组织蛋白提取前，首先需要进行样本预处理。

这包括以无菌的方法收集样本，如组织切片、细胞培养等，同时需避免样本受到污染和降解。

1.2 样本保存：为了保持蛋白质的完整性和稳定性，样本应尽快保存在适当的温度下，如低温或液氮中。

选择合适的保存缓冲液也是至关重要的。

第二部分：样品裂解与溶解2.1 细胞破碎：细胞破碎是为了破坏细胞膜，释放细胞内的蛋白质。

可以选择化学法、物理法或酶解法等方法进行细胞破碎，其中磁珠法和超声法是常用的技术。

2.2 组织破碎：与细胞破碎类似，组织破碎旨在释放组织内的蛋白质。

取决于样本特性，可以使用搅拌器、研钵、超声或高压等方式进行组织破碎。

2.3 组织裂解：组织裂解是将细胞或组织中的蛋白质从细胞核、细胞器等结构中溶解出来。

常用的方法有机械法、酸法、碱法以及使用细胞裂解液等。

具体的选择取决于研究的目的和样本特性。

2.4 蛋白质溶解：蛋白质溶解是将裂解后的蛋白质完全溶解于适当的缓冲液中，以便后续的实验操作，如电泳、质谱等。

在溶解过程中，需要注意取决于蛋白特性而添加的表面活性剂、螯合剂和保护剂。

第三部分：总结与回顾在本文中，我们详细介绍了组织蛋白提取的各个步骤。

我们强调了样本收集和处理的重要性，包括样本预处理和正确的保存方法。

我们着重介绍了细胞破碎和组织破碎的常用方法。

我们强调了组织裂解和蛋白质溶解的关键环节。

通过了解和掌握这些关键步骤，我们可以更好地提取和保护样本中的蛋白质，为后续的实验操作提供高质量的样品。

这对于研究蛋白质组学、蛋白质功能研究以及药物研发等领域都具有重要意义。

动物组织蛋白提取

实验一动物组织蛋白质的提取【目的要求】1、掌握动物组织蛋白质的提取方法。

2、了解动物组织蛋白质提取的原理。

【实验原理】由于蛋白质种类很多，性质上的差异很大，即或是同类蛋白质，因选用材料不同，使用方法差别也很大，且又处于不同的体系中，因此不可能有一个固定的程序适用各类蛋白质的分离。

但多数分离工作中的关键部分基本手段还是共同的，大部分蛋白质均可溶于水、稀盐、稀酸或稀碱溶液中，少数与脂类结合的蛋白质溶于乙醇、丙酮及丁醇等有机溶剂中。

因此可采用不同溶剂提取、分离及纯化蛋白质。

蛋白质在不同溶剂中溶解度的差异，主要取决于蛋白分子中非极性疏水基团与极性亲水基团的比例，其次取决于这些基团的排列和偶极矩。

故分子结构性质是不同蛋白质溶解差异的内因。

温度、pH、离子强度等是影响蛋白质溶解度的外界条件。

提取蛋白质时常根据这些内外因素综合加以利用，将细胞内蛋白质提取出来，并与其它不需要的物质分开。

但动物材料中的蛋白质有些以可溶性的形式存在于体液（如血浆、消化液等）中，可以不必经过提取直接进行分离。

蛋白质中的角蛋白、胶原及丝蛋白等不溶性蛋白质，只需要适当的溶剂洗去可溶性的伴随物，如脂类、糖类以及其他可溶性蛋白质，最后剩下的就是不溶性蛋白质。

蛋白质经细胞破碎后，用水、稀盐酸及缓冲液等适当溶剂，将蛋白质溶解出来，再用离心法除去不溶物，即得粗提取液。

本实验采用CWBio公司的蛋白抽提试剂盒（该试剂盒带有蛋白酶抑制剂混合物，可有效避免蛋白提取过程中蛋白的降解。

）提取动物组织总蛋白。

【试剂器材】动物组织、蛋白提取试剂盒、1.5 ml离心管、-20℃储存的冰块【操作步骤】1、动物肝脏直接放入研钵中，加入少量液氮，迅速研磨，待组织变软，再加少量液氮，再研磨，如此三次。

2、称量约40mg研磨组织，加入200 ul预冷的组织蛋白抽提试剂，冰上孵育20分钟。

3、10,000×g 离心15分钟。

4、收集上清，进行下一步的实验。

【注意事项】在整个制备过程中使组织始终置于冰上，以防蛋白质的降解。

动物固体组织蛋白提取Protocol

的浓度。

蛋口酶抑制剂破碎细胞提取蛋口质的同时可释放出蛋口酶，这些蛋白酶需要迅速的被抑制以保持蛋白质不被降解。

在蛋白质提取过程中，需要加入蛋白酶抑制剂以防止蛋白水解。

以下列举了5种常用的蛋口酶抑制剂和他们各自的作用特点，因为各种蛋白酶对不同蛋口质的敬感性各不相同，因此需要调整各种蛋口酶的浓度。

由于蛋口酶抑制剂在液体中的洛解度极低，尤其应注意在缓冲液中加人蛋口酶抑制剂时应充分混匀以减少蛋白酶抑制剂的沉淀。

在宝灵曼公司的口录上可查到更完整的蛋口酶和蛋口酶抑制剂表。

常用抑制剂PMSF Phenylmethanesulfonyl fluoride （剧毒）1）抑制丝氨酸蛋白酶（如胰凝乳蛋白酶，胰蛋口酶，凝血酶）和疏基蛋白酶（如木瓜蛋白酶）;2）10mg/ml^于异丙醇中；3）在室温下可保存一年；2-8°C可以存放数月之久。

欲长期保存，可冻存在- 20°C 4）工作浓度:17~174ug/ml（0.1 -1 .Ommol/L）;储存液浓度为100 或200mM5）在水液体溶液中不稳定，必须在每一分离和纯化步骤中加入新鲜的PMSFo EDTA1）抑制金属蛋口水解酶；2）0.5mol/L水溶液，pH8~9; 3）溶液在4°C稳定六个月以上；4)工作浓度:0.5~1.5mmol/L. (0.2~0.5mg/ml);5)加入NaOH调节溶液的pH值，否则EDTA不溶解。

胃蛋白酶抑制剂(pepsta ntin)I)抑制酸性蛋白酶如胃蛋口酶，血管紧张肽原酶，组织蛋口酶D和凝乳酶;2)1mg/ml溶于甲醇中；3｝储存液在4 °C 一周内稳定，-20 °C稳定6个月；4)1作浓度:0.7ug/ml(1umol/L) 5)在水中不溶解。

壳抑蛋白酶肽(leupeptin)1)抑制丝氨酸和葢基蛋口酶，如木瓜蛋口酶，血浆酶和组织蛋口酶B;2)IOmg/ml 于水；3)储存液4°C稳定一周，-20°C稳定6个月；4)工作浓度0,5mg/mlo胰蛋白酶抑制剂(aprotinin)1)抑制丝氨酸蛋口酶，如血浆酶，血管舒缓素，胰蛋口酶和胰凝乳蛋口酶;2)IOmg/ml 溶于水，pH7~83｝储存液4 °C稳定一周，-20 °C稳定6个月；4)工作浓度:0.06~2.0ug/ml(0.01 -0.3umol/L); 5)避免反复冻融：6)在pH 12.8时失活。

一种用动物组织提取蛋白的方法[发明专利]

(19)中华人民共和国国家知识产权局(12)发明专利申请(10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201710831202.4(22)申请日 2017.09.15(71)申请人吴光地址 264200 山东省威海市环翠区红旗街20号302室(72)发明人吴光　(51)Int.Cl.C07K 14/78(2006.01)C07K 1/14(2006.01)(54)发明名称一种用动物组织提取蛋白的方法(57)摘要本发明涉及一种用动物组织提取蛋白的方法，包括如下步骤：（1）将新鲜的动物组织破碎之后用蒸馏水洗涤8-10次，去除血液成分，然后挤压处理成糊状；（2）将（1）中的组织中加入0.5mol/L的TRIS-HCl pH7.6、1%脱氧胆酸钠和0.5g/mlPMSF以及加入细球菌酸酶，混合后搅拌1小时；（3）将（2）得到的混合物离心操作30min，分离上清和沉淀物；（4）将（3）中加入0.5mol/L的TRIS-HCl pH7.6、0.5g/mlPMSF洗涤二次，再离心操作30min，放弃上清，得到组织细胞外基质混合物；（5）将（4）得到的混合物加入NaCl后搅拌提取；本发明的优点是工业化生产、工艺流程简单和生产材料来源广泛。

权利要求书1页说明书3页CN 107488224 A 2017.12.19C N 107488224A1.一种用动物组织提取蛋白的方法，包括如下步骤：（1）将新鲜的动物组织破碎之后用蒸馏水洗涤8-10次，去除血液成分，然后挤压处理成糊状；（2）将（1）中的组织中加入0.5mol/L的TRIS-HCl pH7.6、1%脱氧胆酸钠和0.5g/mlPMSF 以及加入细球菌酸酶，混合后搅拌1小时；（3）将（2）得到的混合物离心操作30min，分离上清和沉淀物；（4）将（3）中加入0.5mol/L的TRIS-HCl pH7.6、0.5g/mlPMSF洗涤二次，再离心操作30min，放弃上清，得到组织细胞外基质混合物；（5）将（4）得到的混合物加入NaCl后搅拌提取；（6）将（5）的混合物离心操作1小时，放弃沉淀后得到层粘连蛋白；（7）将（5）的混合物加入2mol/L的氨基己酸和脲，离心操作1小时，放弃沉淀，得到纤连蛋白；（8）将（5）的混合物加入0.5mol/L的TRIS-HCl pH7.6，搅拌后静置，待分离后，放弃上清液，取出沉淀结晶后，即为胶原蛋白；（9）将（3）中得到的上清稀释后通过离子交换柱，加入25mmol/L乙酸铵洗去非阳离子成分，加入10%乙酸洗脱阳离子成分，收集洗脱峰，用0.01%乙酸重悬，得到动物源抗菌肽。

动物组织蛋白提取方法

动物组织蛋白提取方法一、准备工作1. 选取适当的动物组织：选择新鲜、无病变的动物组织，如肌肉、肝脏、肾脏等。

2. 清洗和切割组织：将选取的组织清洗干净，切成小块，便于提取。

二、提取步骤1. 浸泡：将切好的组织放入盛有清水的容器中，浸泡一段时间，以便于后续的提取操作。

2. 磨碎：将浸泡过的组织放入匀浆器中，进行充分磨碎，以便于蛋白的释放。

3. 提取：将磨碎的组织放入离心管中，加入适量的蛋白提取液，轻轻振荡离心管，使组织与提取液充分混合。

然后进行离心操作，将上清液去除，得到沉淀的蛋白。

4. 重复步骤3：为了得到更多的蛋白，可以重复步骤3，进行多次离心操作。

5. 保存和利用蛋白：将得到的蛋白保存好，可以用于后续的实验或生产用途。

三、注意事项1. 确保组织新鲜无病变，以避免提取过程中出现污染或无效提取。

2. 磨碎组织时要充分，以释放出更多的蛋白。

3. 提取液要适量，过多或过少都会影响蛋白的提取效果。

4. 离心时要确保离心速度和时间设置正确，以免影响蛋白提取的纯度和数量。

5. 保存蛋白时要确保环境适宜，避免蛋白变质或失效。

四、实验结果评估1. 观察沉淀物：通过观察沉淀物是否含有丰富的蛋白质，可以评估提取效果。

2. 测定蛋白质浓度：可以通过使用特定的蛋白质测定方法，如Bradford 方法等，来测定提取得到的蛋白质浓度。

3. 蛋白质性质分析：可以通过 SDS-PAGE、免疫印迹等方法，分析提取得到的蛋白质的性质和组成。

五、实验结论通过以上步骤，我们可以成功地从动物组织中提取出了蛋白。

这种提取方法简单易行，提取得到的蛋白可用于多种实验和生产用途。

需要注意的是，不同的动物组织和提取目的可能对提取方法有所影响，因此在实际操作中需要根据具体情况进行调整和优化。

六、拓展阅读建议1. 动物组织蛋白提取相关文献查阅：可以参考相关的科研论文和文献，了解更多关于动物组织蛋白提取的方法、影响因素和实验应用等方面的知识。

2. 实验室指南：可以参考实验室指南，了解更多关于实验室常用设备、试剂和实验方法等方面的信息。

蛋白纯化protocol备课讲稿

蛋白纯化p r o t o c o l诱导表达1、挑取含重组质粒的单菌落至５ml LB（含抗性）培养基中37℃过夜培养。

2、按1∶100比例稀释过夜菌，一般将５０µl菌接种到含５ml LB （含抗性）培养基的5 ml试管中, 37 ℃震荡培养至OD600≌0.4－0.8（最好0.6，单抗大约需２－２.5 hr，双抗大约需３－３.５hr）。

3、取部分液体作为未诱导的对照组,余下的加入诱导剂至终浓度作为实验组,两组继续在合适温度下震荡培养４hr。

4、分别取菌体0.5 ml, 离心10000 g × 1 min收获沉淀，用４０µl蛋白loading buffer重悬，混匀，煮沸５min。

5、离心10000 g × 5 min，取上清作为样品,可做SDS-PAGE等分析。

蛋白质纯化亲和层析一、样品准备1) 准备细胞，接种，诱导表达。

对于实验室用的pET载体表达系列，在细胞OD600=0.4-0.8时，用IPTG诱导1-4小时，可以获得理想的表达效率。

收集细胞，置于-20 ℃或立即进行步骤2操作。

2) 用Binding Buffer重悬清洗细胞，混匀，离心收集菌体。

再加入1/20细胞生长体积的Binding Buffer，将菌体悬浮起来，混匀，冰上超声破碎细胞。

3) 10000 g，4 ℃离心20－30 min。

取上清，置于冰上备用或-20度保存。

二、层析1) 将处理好的NTA树脂装入合适的层析柱，将样品加到NTA层析柱中，流速控制在0.5-1 ml/min左右，收集流出部分，用于SDS/PAGE 分析蛋白质的结合情况。

3) 用大约5倍柱体积的Binding Buffer洗，流速控制在0.5-1 ml/min左右，直到紫外监测数值基本无变化4) 分别用2－5倍柱体积的梯度Elution Buffer洗脱，咪唑浓度分别为40mM，60mM，80mM，100mM，120mM，500mM。

动物组织蛋白提取实验报告分析

动物组织蛋白提取实验报告分析动物组织蛋白提取实验报告分析1. 引言1. 蛋白质是构成生物体的基本组成部分之一，对于生物的正常功能和生理过程至关重要。

2. 蛋白质的提取是研究生物组织功能和结构的重要方法之一。

3. 本实验旨在探究动物组织蛋白提取的方法以及对提取结果的分析。

2. 背景知识1. 细胞是生物体的基本组成单位，其中包含着各种类型的细胞器。

2. 细胞器中存在着许多重要的蛋白质，这些蛋白质参与了细胞的各种代谢和功能调控过程。

3. 实验目的1. 熟悉动物组织蛋白提取的方法和步骤。

2. 掌握对提取的蛋白质样品进行分析的技能。

3. 分析提取的蛋白质样品中的蛋白质含量和纯度。

4. 实验步骤1. 准备实验所需材料和设备。

2. 收集动物组织样品并加入细胞裂解缓冲液，使细胞破裂释放蛋白质。

3. 离心样品，分离出蛋白质上清液。

4. 通过比色法或其他方法测定蛋白质的含量。

5. 对蛋白质样品进行电泳分析，评估蛋白质的纯度。

6. 根据实验结果进行数据分析和讨论。

5. 结果与讨论1. 蛋白质的提取率和纯度受到多种因素的影响，如样品的保存方式、裂解缓冲液的成分和使用的提取方法等。

2. 在实验中，使用细胞裂解缓冲液破裂细胞，通过离心分离出蛋白质上清液，并通过比色法测定了蛋白质的含量。

3. 实验结果显示，从动物组织中提取的蛋白质含量较高，这表明提取方法相对较有效。

4. 电泳分析结果显示，提取得到的蛋白质样品具有较高的纯度，说明提取方法能够有效去除杂质。

5. 实验结果表明，该提取方法适用于获取高纯度的动物组织蛋白样品。

6. 总结与展望1. 通过这次实验，我们了解了动物组织蛋白提取的方法和步骤，并掌握了对提取的蛋白质样品进行分析的技能。

2. 实验结果显示，该提取方法能够有效提取动物组织中的蛋白质，并具有较高的纯度。

3. 在未来的研究中，可以进一步优化提取方法，提高蛋白质的提取率和纯度，并结合其他分析方法对提取得到的蛋白质样品进行更详细的研究。

动物细胞或组织的蛋白质抽提步骤

动物细胞或组织的蛋白质抽提步骤还在为蛋白质提取实验发愁吗？蛋白提取实验有诀窍，不同的提取实验操作步骤都给你总结好了，看完你就豁然开朗了，一起来瞅瞅吧。

培养的贴壁动物细胞的蛋白质抽提步骤1、从贴壁细胞培养瓶中小心倾去培养液。

2、预冷的 PBS 清洗贴壁的细胞 2 次,小心倾去 PBS。

3、配置含抑制剂的蛋白质抽提试剂(1ml 抽提试剂中加入5 μl 蛋白酶抑制剂混合液,5 μl PMSF 和 5 μl 磷酸酶混合液)。

4、细胞瓶中加入预冷的含抑制剂的蛋白质抽提试剂(107 个细胞中加入 1ml 抽提试剂;5×106 个细胞中加入 0.5ml 抽提试剂),轻轻摇动 5 分钟。

5、用一预冷的橡胶和塑料细胞刮将培养瓶壁上贴壁细胞刮下来,转移细胞悬浮液到离心管中,冰浴下摇动 15 分钟进行裂解。

6、裂解液于预冷的离心机中 14,000xg 离心 15 分钟。

弃去沉淀,上清液立刻转移入新的离心管中保存待用。

培养的悬浮动物细胞的蛋白质抽提步骤1、2500xg 离心 10 分钟沉淀悬浮的细胞,弃去上清液2、预冷的 PBS 悬浮沉淀细胞,2500xg 离心 10 分钟沉淀细胞,去上清。

3、配置含抑制剂的蛋白质抽提试剂(1ml 抽提试剂中加入5 μl蛋白酶抑制剂混合液,5 μl PMSF 和 5 μl 磷酸酶混合液)。

4、加入含抑制剂的预冷蛋白质抽提试剂(107 个细胞中加入 1ml 抽提试剂;5×106 个细胞中加入 0.5ml 抽提试剂)。

5、轻轻摇动混和 15 分钟进行裂解。

6、裂解液于预冷的离心机中 14,000xg 离心 15 分钟。

弃去沉淀,上清液立刻转移入新的离心管中保存待用。

哺乳动物组织的蛋白质抽提步骤1、组织称重,切小块放入管中。

2、配置含抑制剂的蛋白质抽提试剂(1ml 抽提试剂中加入5 μl 蛋白酶抑制剂混合液,5 μl PMSF 和 5ul 磷酸酶混合液)。

3、加入预冷的含抑制剂的蛋白质抽提试剂(250mg 组织中加入 1ml 抽提试剂)。

动物组织蛋白提取

实验一动物组织蛋白质的提取【目的要求】1、掌握动物组织蛋白质的提取方法。

2、了解动物组织蛋白质提取的原理。

因此可采用不同溶剂提取、分离及纯化蛋白质。

蛋白质在不同溶剂中溶解度的差异，主要取决于蛋白分子中非极性疏水基团与极性亲水基团的比例，其次取决于这些基团的排列和偶极矩。

故分子结构性质是不同蛋白质溶解差异的内因。

温度、pH、离子强度等是影响蛋白质溶解度的外界条件。

提取蛋白质时常根据这些内外因素综合加以利用，将细胞内蛋白质提取出来，并与其它不需要的物质分开。

但动物材料中的蛋白质有些以可溶性的形式存在于体液（如血浆、消化液等）中，可以不必经过提取直接进行分离。

蛋白质经细胞破碎后，用水、稀盐酸及缓冲液等适当溶剂，将蛋白质溶解出来，再用离心法除去不溶物，即得粗提取液。

本实验采用CWBio公司的蛋白抽提试剂盒（该试剂盒带有蛋白酶抑制剂混合物，可有效避免蛋白提取过程中蛋白的降解。

）提取动物组织总蛋白。

2、称量约40mg研磨组织，加入200 ul预冷的组织蛋白抽提试剂，冰上孵育20分钟。

3、10,000×g 离心15分钟。

4、收集上清，进行下一步的实验。

【注意事项】在整个制备过程中使组织始终置于冰上，以防蛋白质的降解。

动物组织蛋白提取实验报告

动物组织蛋白提取实验报告蛋白质是生命体中最基本的分子之一，它们在细胞的结构和功能中起着重要的作用。

因此，研究蛋白质的结构和功能对于生命科学的发展至关重要。

本实验旨在提取动物组织中的蛋白质，为后续的蛋白质分析和研究打下基础。

实验步骤：1.准备样品：取新鲜的动物组织，如肝脏、肌肉等，用生理盐水清洗干净，切成小块备用。

2.制备提取液：将10mM Tris-HCl缓冲液（pH 7.5）中加入1mM EDTA、1mM PMSF、1% Triton X-100等蛋白酶抑制剂和表面活性剂，制成提取液。

3.组织破碎：将组织块加入提取液中，用超声波或搅拌器等方法破碎组织细胞，使蛋白质释放到提取液中。

4.离心：将破碎后的混合液离心，分离出上清液和沉淀。

5.测定蛋白质浓度：用Bradford方法或Lowry方法等测定蛋白质浓度。

实验结果：经过提取和测定，我们成功地从动物组织中提取出了蛋白质。

通过测定蛋白质浓度，我们发现提取液中的蛋白质浓度较高，可以用于后续的蛋白质分析和研究。

实验总结：本实验通过提取动物组织中的蛋白质，为后续的蛋白质分析和研究打下了基础。

在实验过程中，我们需要注意以下几点：1.组织的选择和处理：不同的组织中含有不同种类和含量的蛋白质，因此在选择组织时需要考虑后续研究的需要。

同时，在处理组织时需要注意避免蛋白质的降解和氧化。

2.提取液的制备：提取液中的蛋白酶抑制剂和表面活性剂可以保护蛋白质不被降解和聚集，提高提取效率。

3.测定蛋白质浓度：蛋白质浓度的测定方法需要选择合适的试剂和标准曲线，同时需要注意样品的稀释和干扰物的去除。

本实验为我们提供了一种简单、快速、有效的动物组织蛋白提取方法，为后续的蛋白质研究提供了可靠的基础。

动物组织蛋白提取实验报告

动物组织蛋白提取实验报告背景蛋白质是生命体内重要的组成部分，对于生物的结构和功能具有关键作用。

在研究动物组织的生物化学、分子生物学以及医学领域中，蛋白质提取实验是一项基础而重要的技术。

通过蛋白质提取实验，可以将动物组织中的目标蛋白质从其他成分中分离出来，并进一步进行纯化和分析。

本实验旨在从动物组织中提取目标蛋白质，并通过酸碱处理、超声波破碎等方法将其从细胞结构中释放出来。

随后，通过离心、过滤等步骤去除杂质，最终得到纯净的目标蛋白质样品。

分析实验设计1.准备工作：清洗实验器具，准备所需试剂和设备。

2.组织样品处理：将动物组织样品切碎，加入适量的缓冲液，并使用超声波破碎仪进行破碎处理。

3.细胞结构破坏：将样品经过酸碱处理，破坏细胞膜和核膜，使目标蛋白质从细胞结构中释放出来。

4.离心：通过离心将细胞碎片和大分子杂质沉淀下来。

5.过滤：使用微孔滤膜去除离心上清液中的小分子杂质。

6.浓缩：将过滤后的液体通过浓缩装置浓缩，得到较为纯净的目标蛋白质样品。

实验结果经过实验操作，我们成功从动物组织中提取到目标蛋白质。

通过酸碱处理和超声波破碎，可明显观察到组织样品的颜色变浑浊，并且在显微镜下可以看到细胞结构的破坏。

离心后，观察到底部沉淀物呈现白色，上清液呈现澄清状态。

经过过滤和浓缩处理后，得到了一定量的目标蛋白质样品。

结果分析通过本实验提取的动物组织蛋白质样品可以用于进一步的纯化和分析。

可以使用电泳技术对提取的蛋白质样品进行分子量分析，以确定目标蛋白质的大小。

此外，还可以使用Western blot等技术检测目标蛋白质在组织中的表达水平，从而研究其在生理或病理状态下的变化。

建议1.实验操作过程中要注意严格控制温度和时间，避免蛋白质降解。

2.在选择缓冲液和酸碱处理条件时，要根据目标蛋白质的特性进行优化，以提高提取效果。

3.在离心和过滤步骤中要注意操作技巧，避免杂质的混入。

4.可以尝试不同的浓缩方法和设备，以提高样品纯度和浓度。

动物组织蛋白提取实验报告

动物组织蛋白提取实验报告动物组织蛋白提取实验报告摘要：本实验旨在研究动物组织中蛋白质的提取方法，通过对比常用的三种提取方法，选择最适合的方法进行蛋白质提取。

结果表明，SDS-PAGE法是最适合的蛋白质提取方法。

关键词：动物组织；蛋白质提取；SDS-PAGE法一、引言在生物学研究中，蛋白质是非常重要的一种生物大分子。

因此，研究蛋白质的提取方法对于生物学研究具有重要意义。

本实验旨在比较常用的三种动物组织蛋白质提取方法，并选择最适合的方法进行蛋白质提取。

二、材料与方法1.材料（1）鼠肝、鸡肌、牛血清等组织样品；（2）Tris-HCl缓冲液（pH 7.5）、PBS缓冲液（pH 7.4）、RIPA裂解液等；（3）BCA试剂盒、SDS-PAGE凝胶等。

2.方法（1）Tris-HCl缓冲液法：将样品加入Tris-HCl缓冲液中，用超声波裂解，离心去除细胞碎片，收集上清液。

（2）PBS缓冲液法：将样品加入PBS缓冲液中，用超声波裂解，离心去除细胞碎片，收集上清液。

（3）RIPA裂解液法：将样品加入RIPA裂解液中，用超声波裂解，离心去除细胞碎片，收集上清液。

（4）BCA测定法：将所得蛋白质溶液与BCA试剂混合，在560 nm 处测定吸光度值。

（5）SDS-PAGE法：将所得蛋白质溶液进行电泳分离，并进行银染色或Western blot检测。

三、结果与分析本实验选择了鼠肝、鸡肌、牛血清等组织样品进行蛋白质提取。

通过比较三种不同的提取方法，发现使用RIPA裂解液法所得的蛋白质含量最高。

但是，在使用BCA试剂盒对蛋白质含量进行测定时发现，使用PBS缓冲液法和Tris-HCl缓冲液法所得的蛋白质含量也较高。

进一步地，我们使用SDS-PAGE法对三种不同提取方法所得的蛋白质进行分离和检测。

结果表明，使用SDS-PAGE法所得的蛋白质条带清晰、分离度高、检测灵敏度高，并且能够同时检测多个蛋白质。

四、结论通过本实验的比较，我们发现RIPA裂解液法所得的蛋白质含量最高，但是使用SDS-PAGE法进行蛋白质检测时，发现Tris-HCl缓冲液法和PBS缓冲液法也能够提供较高含量的蛋白质。

蛋白抽提Protocol(全)lyz

Loading Buffer煮细胞抽提总蛋白Protocol1.细胞计数（约1×106的细胞），离心收集细胞（2000rpm×5min）；2.预冷1×PBS 500ul重悬洗一次，转至500ul EP管（2000rpm×5min）；3.去上清，后甩一次，将上清去尽；4.按每1×106的细胞加50ul loading buffer 加入2×loading；5.V ortex一下，煮10～15min一次×2～3次直至无粘丝；6.每次煮好将其放于冰上，静置约2min，V ortex一下，再甩一下；7.三次后用枪吸起，如没有粘丝，即可；8.每次上样约5ul（50ug/ul蛋白）RIPA裂解抽提总蛋白Protocol1.细胞计数（约1×107的细胞），离心收集细胞（2000rpm×5min）；2.预冷1×PBS 1ml重悬洗2次，转至1.5ml EP管（2000rpm×5min）；3.去上清，后甩一次，将上清去尽；4.按照如下比例加入裂解试剂：RIPA：300ul/1×107细胞PMSF：3ul(1:100)Cocktail ：0.3ul(1:1000)5.吹打均匀，冰上放置30-40min，中间每10分钟V ortex一次；6.4℃预冷离心：10000rpm ×10min；7.收集上清，转移至已预冷新EP管，即为总蛋白。

【为了浓缩蛋白，加RIPA的量改为200ul或者更低，可稍微延长冰上裂解时间，而RIPA（1）＋PMSF（1：100）＋Cocktail（1：1000）的比例不变】核，浆蛋白抽提Protocol一.收核-浆蛋白收浆蛋白1.细胞计数（约1.5×107的细胞），离心收集细胞（1100rpm×5min）；2.用4℃预冷的PBS重悬，转至1.5mL的EP管中，离心（4000rpm×5min，4℃）；3.去上清，加入A Buffer1mL/1×107 cell，重悬，4℃放置10min，离心（2500rpm×3min，4℃）；4.去上清，加入A’Buffer250uL/1.5×107cell，重悬，4℃放置3min，离心（5000rpm×1min，4℃），吸取上清（上清是浆蛋白）；收核蛋白5.再用A’ Buffer 500uL/1.5×107 cell，重悬，4℃放置3min，离心（5000rpm×1min，4℃），吸走上清，12000rpm×30sec，把上清完全吸干净；6.剩余沉淀中加入B’Buffer (或者RAPI)50uL，重悬（振荡），4℃放置40min（每隔10min振荡一次）；7.离心（12000×10min，4℃），取上清即为核蛋白，－80℃保存。

蛋白裂解和提取的protocol

这是偶整理的蛋白裂解和提取的protocol，希望对大家有所帮助。

10ml 三去污裂解液配方如下：50 mmol/L Tris-cl (pH 8.0)：0.07882g150 mmol/L NaCl：0.08775g0.2 g/L叠氮钠：0.002g1 g/LSDS 0.01g100 mg/L Aprotin 0.001g10 g/L NP-40 0.1g5 g/L去氧胆酸钠0.05g100 mg/L 苯甲基磺酰氟(PMSF) 0.001g总蛋白抽提程序：1.PBS洗细胞3 次2.加入裂解缓冲液（1.5x106个细胞大约加入100µL 裂解液，或100ml细胞瓶中加入100µL 裂解液），冰上放置20min3.收集裂解液4.离心，12000转，2~10min5.吸取上清，蛋白定量，分装，保存在-80度备用裂解方法包括化学裂解、酶裂解和机械裂解。

化学裂解和酶裂解通常是比较温和的方法，通常会很少使DNA 断裂。

这两种方法（包括SDS 和溶菌酶处理等）提取纯化DNA中常用的方法。

机械裂解可以更均一的裂解细胞，同化学裂解相比，机械处理具有更高的裂解效率和更低的选择性。

机械处理可以更剧烈和全面的裂解细胞，但也会造成DNA 的断裂。

一、机械裂解法主要有以下两中：1、热休克（Thermal shock），既反复冻溶法，是一种常用的机械裂解方式比，通常由冷冻和解冻两部分组成（freezing and thawing）,。

原理：由于细胞内冰粒形成和剩余细胞液的盐浓度增高引起溶胀，使细胞结构破碎。

冷冻通常在液氮或-20°C冰上进行，解冻可以在37、50、65 或100℃水浴中进热休克比化学裂解温和，但是很有效，有资料表明用热休克和溶菌酶与SDS的方法获得了90%的细胞裂解率。

2、超声波处理（Ultrasonication）既利用超声加热的方法，把细胞破碎。

但这种处理会导致DNA 的断裂，所以加热不宜过剧烈，要设定好超声时间和间隙时间，一般超声时间不超过5秒，间隙时间最好大于超声时间，这些都有利于保护酶的活性。