坐骨神经-腓肠肌标本制备(医学相关)
简述制备坐骨神经腓肠肌标本的步骤
简述制备坐骨神经腓肠肌标本的步骤
1、取材:从新鲜的成年能鼠死亡的腹部或颈部部分取出支配双腿的坐骨神经及其腓肠肌。
2、清理材料:洗去血清、脂肪、臀神经和肌纤维,只保留神经路径及肌肉纤维。
3、固定:将取出的神经和肌肉泡入4%氯化钠溶液中,浸泡数小时以固定神经肌肉。
4、浸泡:将固定的标本浸泡在硝酸甘油溶液中,以去除表面的脂肪和蛋白质。
5、染色:将固定好的材料放入硝酸胆红素油溶液中,以对不同组织标记其区分度。
6、切片:将显色的材料放入冷冻机中,以切成薄片状,并加以处理,使染色物能牢固地粘结在薄片上。
7、培养:将处理过的固定薄片置于玻片上,再加入培养基以促进细胞生长。
8、包埋:将培养的材料包埋于涂有胶或塑料的玻片上,以便对样本进行后续处理。
9、切片:将包埋的材料切成薄片,以便观察样本的形状和细胞特征。
10、观察:将薄片浸入染色剂中,并进行实时光学显微镜下的观察,观察样品的细胞结构及形态特征。
11、分析:利用扫描电镜或透射电镜观察样本的内部细微结构,以深入研究坐骨神经腓肠肌标本。
12、保存:将完成制备的腓肠肌标本用脱脂性液体物质覆盖起来,以便保存并达到常温下稳定性。
坐骨神经腓肠肌标本制备实验结论
坐骨神经腓肠肌标本制备实验结论一、实验目的二、实验原理三、实验步骤四、实验结果五、实验结论一、实验目的本次实验的主要目的是通过坐骨神经腓肠肌标本制备,了解人体肌肉组织的结构和特点。
同时,通过对标本制备过程中各个步骤的操作,掌握标本制备技能和方法。
二、实验原理1. 坐骨神经腓肠肌标本制备原理坐骨神经腓肠肌标本制备是指将动物或人体组织切割成薄片并进行染色处理,使其能够在显微镜下观察。
在这个过程中,需要进行以下几个步骤:(1)取样:从动物或人体中取出需要观察的组织样品。
(2)固定:将组织样品放入固定液中进行固定处理。
(3)包埋:将固定后的组织样品放入包埋剂中进行包埋处理。
(4)切片:将包埋后的组织样品切成薄片。
(5)染色:将切片进行染色处理,使其能够在显微镜下观察。
2. 坐骨神经腓肠肌结构原理坐骨神经腓肠肌是人体下肢的一部分,由坐骨神经支配。
它主要由三个部分组成:大腿后侧的半膜状肌、半腱状肌和小腿后侧的胫长伸肌。
这三个部分都是由肌纤维束组成的,每个束内又包含有许多个单独的肌纤维。
三、实验步骤1. 取样:从动物或人体中取出需要观察的组织样品。
2. 固定:将组织样品放入10%福尔马林液中进行固定处理,固定时间为24小时。
3. 包埋:将固定后的组织样品放入包埋剂中进行包埋处理,包埋时间为48小时。
4. 切片:将包埋后的组织样品切成厚度为5微米左右的薄片。
5. 染色:将切片进行染色处理,常用染色方法有HE染色法和Masson染色法等。
本次实验采用HE染色法进行染色处理。
6. 封片:将染好色的切片放入玻璃片上,加上封片胶,用玻璃片盖住,使其能够在显微镜下观察。
四、实验结果经过以上步骤的操作,制备出了坐骨神经腓肠肌标本。
在显微镜下观察到了肌纤维束组成的三个部分:半膜状肌、半腱状肌和胫长伸肌。
每个束内又包含有许多个单独的肌纤维。
五、实验结论通过本次实验,我们了解到了坐骨神经腓肠肌标本制备的基本步骤和操作方法,并且通过观察标本结构,掌握了人体肌肉组织的结构和特点。
生物实验报告-坐骨神经腓肠肌标本制备
生物实验报告-坐骨神经腓肠肌标本制备
本实验旨在通过制备坐骨神经腓肠肌标本的过程,掌握基础的组织学实验技能,同时加深对神经肌肉解剖结构的理解。
材料与方法:
材料:成年大鼠标本、无水乙醇、石蜡、光学显微镜、麻醉手套、组织取样器、组织取样盒、理化试管架等。
1.准备标本
用麻醉手套将成年大鼠净化神经集中于坐骨神经下1-2厘米范围内,然后将腓肠肌标本从骨骼中取出。
2.固定标本
将取出的腓肠肌标本置于10%的无水乙醇中固定24小时;
3.去水
从10%、20%、30%、40%、50%、60%、70%到80%的无水乙醇渐次去除,每步时间为1小时;
4.透明
将固定去水的腓肠肌标本分别置于50%敌敌畏-乙醇溶液、70% 敌敌畏-乙醇溶液和100% 敌敌畏透明液溶液中,每步时间为2小时,至标本彻底透明。
5.包埋
取出已透明的腓肠肌标本,置于石蜡组织取样盒中,根据实验需求,选择合适的包埋方向。
6.取薄片
将石蜡包埋的腓肠肌标本取出,用微型切片机切制厚度为5微米的切片,将切片拉直后在干净的水晶片上展开。
7.染色与制成玻片
用哈里斯血液染色将切片染色,脱色后洗净水片后,在水晶片上滴几滴覆盖剂,然后用平凡玻片将组织接口反过来盖住薄片,压紧即可。
实验成果:
经过制备和染色后,我们取得了成年大鼠坐骨神经腓肠肌的标本,通过光学显微镜的观察与检测,我们发现该标本包含完整的腓肠肌结构及肌纤维分离范围。
切片上清晰可见腓肠肌内有明显的核团和细胞质呈透明状,同时染色后肌纤维呈现出红色,血管呈现出蓝色,系统性地展示了腓肠肌肌纤维和血管位置的分布情况。
结论与意义:。
坐骨神经-腓肠肌标本制备
坐骨神经-腓肠肌标本制备骨骼肌单收缩及其总和以及Powerlab实验系统的使用二、实验目的:1. 学习蛙类动物单毁髓与双毁髓方法,并掌握坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。
2. 了解电刺激的极性法则和方法,学习肌肉收缩的记录方法。
3. 观察刺激强度与肌肉收缩反应的关系、骨骼肌的单收缩过程和肌肉收缩的总和以及强直收缩现象, 了解肌肉收缩过程的时相变化以及刺激频率对骨骼肌收缩形式的影响。
三、实验原理:腓肠肌由许多肌纤维组成,刺激腓肠肌时,不同的刺激强度会引起肌肉的不同反应。
当刺激强度过小时,不引起肌肉发生收缩反应,此时的刺激为阈下刺激。
而能引起肌肉发生收缩反应的最小刺激强度,为阈刺激。
当全部肌纤维同时收缩时,则出现最大的收缩反应。
这时,即使再增大刺激强度,肌肉收缩的力量也不再随之加大,该刺激强度为最适刺激强度。
肌肉组织对于一个阈上强度的刺激,发生一次迅速的收缩反应,称为单收缩。
单收缩一般要经历潜伏期、收缩期和舒张期三个过程。
当同等强度的连续阈上刺激作用于标本时,则出现多个收缩反应的叠加,叫做强直收缩。
当后一收缩发生在前一收缩的舒张期,即发生不完全强直收缩;当后一收缩发生在前一收缩的收缩期,各自的收缩则完全融合,肌肉出现持续的收缩状态,即产生完全强直收缩。
四、实验材料:青蛙五、实验步骤:1. 制备坐骨神经-腓肠肌标本:1) 洗干净实验动物2) 双毁髓,剥制后肢,分离两后肢3) 分离坐骨神经4) 游离腓肠肌5) 分离股骨头6) 标本检验7) 电刺激极性法则的验证2. 连接实验装置:将换能器的输出线接至RM6240生理记录装置的2通道,电刺激信号接至肌槽的电极上。
然后把制备好的坐骨神经-腓肠肌标本股骨固定在肌槽上。
将固定肌肉的棉线另一端接在张力换能器上,保持适度松紧,将坐骨神经搭在肌槽的电极上。
3. 设置通道放大器和刺激器:1) 打开PowerLab电源,检查USB线连接2) 打开Chart5中文版3) 设置通道数为24) 设置通道2-桥式放大器:量程5mV,低通10Hz,调零5) 设置刺激器:刺激方式选脉冲,脉冲数1,手动方式,量程10V,振幅100mV,标记通道1,频率1Hz,持续时间1mS,4. 开始测试:1) 打开刺激器面板和点右下角”开始“按钮2) 点右上角调节采样速度(“走纸速度”)3) 菜单打开设置刺激器的脉冲数2个或5个,重新打开刺激器面板4) 调节走纸速度为400六、实验结果:图1. 蛙坐骨神经—腓肠肌标本图(二)坐骨神经-腓肠肌标本在Powerlab实验系统中所记录下的数据1.通过不断调整刺激强度,使肌肉收缩的幅度适中,记录单收缩的曲线(图2-1 )。
坐骨神经-腓肠肌标本的制备
8、检验标本
01.
用经任氏液蘸湿的锌铜弓的两极,接触 神经,观察腓肠肌是否收缩!
02.
此标本用于神经干兴奋传导、神经-肌肉 接点的传递以及骨骼肌收缩等实验研究
பைடு நூலகம்意:
1. 保护标本——神经和肌肉:不用赃的皮肤碰标 本,不用自来水冲洗标本,不用金属接触神经以 及损伤肌肉。
2. 注意标本的完整,尤其注意保存股骨头一定的长 度
202X
坐骨神经——腓 肠肌标本的制备
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• • 方法
目的要求: 学习蛙类动物毁髓的方法 学习掌握蛙类腓肠肌及坐骨神经——腓肠肌标本的制备
步骤:
双毁髓
剥离后肢标本
分离两后肢
分离坐骨神经
分离股骨头
游离腓肠肌
检验标本
完整的神经肌肉标本应包括以下几个部分
1、首先准备手术所需的用品
动物瘫软如泥。
3、剥离后肢标本
动物腹面向上放置于蜡盘,手术镊轻轻提 起耻骨联合上方,剪开皮肤,再剪开体壁 肌肉,然后轻轻提起内脏,自耻骨部剪断 (勿伤脊神经),把内脏拨向头端,剪断 脊柱。然后一手捏住脊柱后端,另一手向 后撕剥皮肤,并除去头端肢体和内脏
4、分离两后肢
把去皮的后肢腹面向上置于玻璃板上, 于耻骨联合处按压刀刃,切开耻骨联合。 然后用金冠剪剪开两后肢相连的肌肉, 并纵向剪开脊柱。
5、分离坐骨神经
将一侧后肢的脊柱端腹面向上,趾端向外 侧翻转,使其足底向上,用固定针将标本 固定在玻璃板下面的蛙板上。用玻璃分针 分离坐骨神经。股部的坐骨神经在股二头 肌与半膜肌之间。
6、分离股骨头或胫腓骨头
动物小,留股骨头 1cm
动物大,留胫腓骨 头1cm
7、游离腓肠肌
坐骨神经-腓肠肌标本制备
使用轮转式切片机将组织切成薄片,调整切片厚度以满足实验要求。
染色
染色液选择
根据实验需要选择适当的染色液,如苏木素-伊红染色液 (H&E)、Masson三色染色液等。
染色过程
将切片放入染色液中,按照染色液的要求进行染色处理,以 便更好地观察组织结构和细胞形态。
03 结果观察
显微镜观察
观察神经纤维的排列和结构
结果对比
结果解释
02
03
Байду номын сангаас
结果应用
将实验结果与预期结果进行了对 比,分析了实验误差产生的原因。
对实验结果进行了详细的解释, 阐明了实验现象背后的原理和机 制。
探讨了实验结果在现实生活和生 产中的应用前景,为后续研究和 应用提供了参考。
实验改进与优化
实验方法优化
针对实验过程中存在的问题和不足,提出了 改进措施和方法,以提高实验效率和准确性 。
实验设备升级
针对实验设备的局限性和不足,提出了设备升级和 改进的建议,以提高设备的性能和稳定性。
实验流程完善
针对实验流程的缺陷和不足,提出了完善和 优化的建议,以使实验流程更加合理和高效 。
THANKS FOR WATCHING
感谢您的观看
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02 实验步骤
取材
取材前准备
01
确保实验环境清洁,准备好所需器材和试剂,如手术刀、镊子、
固定液、脱水剂、包埋剂等。
选取适宜的坐骨神经-腓肠肌标本
02
选择健康、新鲜的动物,如小白鼠或大白鼠,并确保所选标本
无病变或损伤。
剥离组织
03
使用手术刀和镊子仔细剥离坐骨神经和腓肠肌周围的脂肪和结
生理学实验 坐骨神神经腓肠肌标本制备
实验一 坐骨神经腓肠肌标本制备【实验目的】掌握坐骨神经腓肠肌标本的制备技术,为以后有关实验打下基础。
【实验原理】两栖类的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似, 而其离体组织所需的生活条件 比较简单,易于建立、控制和掌握。
因此在实验中常用蟾蜍或蛙的坐骨神经腓肠肌标本来观 察兴奋与兴奋性的一些规律以及骨骼肌的收缩特点等。
所以坐骨神经腓肠肌标本的制备是生 理实验的一项基本操作技术。
【实验对象】蟾蜍或蛙。
【实验材料】两栖类手术器械 1套(粗剪刀、组织剪、眼科剪、组织镊、眼科镊、金属探针、玻璃 分针、蛙板)、手术线、蛙尸缸、滴管、平皿、锌铜弓、任氏液。
【实验步骤】1. 破坏脑和脊髓取蟾蜍 1 只,用自来水冲洗干净。
左手握住蟾蜍,用拇指按压背部,食指按压头部 前端使其头部前俯,右手持金属探针在头前缘沿正中线向尾端触划,所触划到的头部后 端的凹陷处,即为枕骨大孔所在部位。
在此处将金属探针垂直刺入皮肤,有突破感后再 将金属探针折向前经枕骨大孔刺入颅腔,左右搅动捣毁脑组织;然后将金属探针回抽至 枕骨大孔处,转向后刺入脊椎管,反复提插捣毁脊髓。
此时如蟾蜍的四肢松软,呼吸运 动消失,表示脑和脊髓已完全破坏,否则应按上法再行捣毁。
2. 剪除躯干上部及内脏如图 1-1 所示,在骶髂关节位置用左手将蟾蜍提起,在骶髂关节水平以上 0.5~l 厘米处用粗剪刀剪断脊柱,然后将粗剪刀尖向下深入体腔沿躯干两侧剪开皮肤,使蟾蜍 头、上肢与内脏自然下垂,将其一并剪除弃去,仅留后肢、骶骨、脊柱及紧贴于脊柱两 侧的坐骨神经。
在整个剪除过程中注意勿损伤神经。
3. 剥皮左手用组织镊夹紧或用手直接捏住脊柱断端(注意:不要夹住或接触神经),右手捏,将标本放在盛有任氏液 住其上的皮肤边缘,用力向下剥掉全部后肢皮肤(见图 1-2)的平皿中。
将手及用过的粗剪刀、组织镊等全部手术器械洗净,再进行下述步骤。
4. 分离两腿用镊子从背位夹住脊柱将标本提起,剪去向上突出的骶骨(注意勿损伤坐骨神经),然后沿正中线用粗剪刀将脊柱分为两半,并从耻骨联合中央剪开两侧大腿,然后将分离的两条腿浸于盛有任氏液的平皿中备用。
实验一坐骨神经腓肠肌标本制备.
【思考题】
1、剥去皮肤的后肢能用自来水冲洗吗?为什么?
2、金属器械碰压或损伤神经与腓肠肌,可铜弓检验标本兴奋性时,在神经和肌肉内 部发生了哪些事件?
5、刺激有几种形式?如何解释对食盐的不同处理 对肌肉收缩的影响?
蛙类坐骨神经-腓肠肌标本是研究神经冲动和肌肉收缩机 能等生理实验最常用的实验材料,制备此标本是生理实验 的一项基本但又非常重要的操作技术。
【动物、器材与试剂】(以下是每组所需 的种类和数量)
蛙或蟾蜍1只、纱布1块、毁髓针1支、眼科 镊(或尖头无齿镊)1把、手术剪1把、普 通剪刀1把、手术刀1把、玻璃板1块、蛙板 1块、培养皿1套、蛙钉2只、玻璃分针2支、 锌铜弓1支、滴管1支、细棉线30cm、酒精 灯1只、玻棒1支、解剖盘1只、任氏液至少 100mL、食盐1g。
6、游离腓肠肌 一手捏住趾端,另一手用手术镊(尖头镊)在腓肠肌跟腱下面穿线,并
用结线扎紧。提起结线,游离腓肠肌。 7、分离股骨头或胫腓骨头 如果所用动物个体小,可分离股骨头。方法是一手捏住股骨,沿膝关
节剪去股骨周围的肌肉,再用金冠剪自膝关节向前刮于净股骨上的肌 肉,保留1cm股骨头并剪断股骨。提起腓肠肌上的扎线,剪去膝关节 下部的后肢,仅保留腓肠肌与股骨的联系。
底向上,用蛙钉将标本固定在玻璃板下方的蛙板(木板或 硬泡沫塑料板)上。用玻璃分针沿脊神经向后分离坐骨神 经。股部沿腓肠肌正前方的股二头肌和半膜肌之间的肌缝, 找出坐骨神经。坐骨神经基部(即与脊神经相接的部位), 背部有一梨状肌盖住神经,用玻璃分针轻轻挑起肌肉,便 可看清下面穿行的坐骨神经。剪断(或用玻璃分针扯断)梨 状肌,完全暴露坐骨神经与其相连的脊神经再用玻璃分针 轻轻挑起神经,自前向后剪去支配腓肠肌之外的神经分支, 将坐骨神经分离至腘窝处(图4)。取一下脊柱端的蛙钉, 保留伸经发出部位的一小块脊柱骨,用金冠剪剪去其余部 分脊柱骨及肌肉,再用手术镊轻轻提起连有神经的脊柱骨 片,将神经移开股骨。
实验三 坐骨神经腓肠肌标本制备
三、动物与器材
蟾蜍、常用手术器械、蜡盘、蛙板、玻 璃针、固定针、锌铜弓或电刺激器、培 养皿、滴管、纱布、粗棉线、任氏液
四、方法与步骤
[方法与步骤] 1、双毁髓的方法 2、剥制后肢标本 3、分离两后肢 4、分离坐骨神经 5、分离股骨头 6、游离腓肠肌 7、检验标本
毁髓1 坐骨神经——腓肠肌标本2 坐骨神经——腓肠肌标本3 坐骨神经——腓肠肌标本4 坐骨神经——腓肠肌标本5
实验三坐骨神经—腓肠机标本的制 备)
一、目的要求
1.学习破坏蟾蜍脑和脊髓的方法. 2.熟悉并掌握蟾坐骨神经-腓肠肌标 本的制备
二、基本原理
腓肠肌由许多肌纤维组成,当刺激支配腓肠肌 的坐骨神经时,不同的刺激强度会引起肌肉的 不同反应,当使用阈下刺激时,不引起肌肉发 生收缩反应,而阈刺激可引起少数肌纤维发生 反应,顶刺激引起所有肌纤维发生反应,一次 单收缩可分为潜伏期,缩短期和舒张期三个时 期。当同等强度的连续阈上刺激作用时,出现 多个收缩反应的融合,称为强直收缩。
五、注意事项
1.标本不能用自来水冲洗,也不能用金 属器械碰压 2.连续刺激时间不宜过长 3.标本固定不要过度牵拉
六、作业和思考
1.如何保持标本在实验中机能正常 2.何为标本的最适刺激强度 3.实验结果说明骨骼肌有哪些生理特性 4.分析讨论肌肉发生收缩总和的条件和 机制 5.分析讨论不完全强直收缩和完全强直 收缩的条件和机制
实验1坐骨神经腓肠肌标本制备【实验目的】掌握蛙类的捉拿和破坏脑
实验1 坐骨神经腓肠肌标本制备【实验目的】掌握蛙类的捉拿和破坏脑脊髓的方法,掌握坐骨神经腓肠肌标本的制备技术、获得兴奋性良好的标本。
【实验原理】蟾蜍及蛙类的一些基本生命活动与哺乳动物相似,又因其离体组织在短时间内所需的生活条件简单,易于控制和掌握,因此在实验中常用蟾蜍或蛙的坐骨神经腓肠肌标本来观察兴奋和兴奋性、刺激与反应及肌肉收缩等基本生理现象。
因而制备坐骨神经腓肠肌标本是生理学实验中必须掌握的一项基本技能。
【实验对象】蟾蜍或青蛙。
【实验用品】蛙类手术器械一套,(普通剪刀、手术剪刀、眼科剪、组织镊子、眼科镊子、探针、锌铜弓、玻璃分针、蛙板、玻璃板、蛙钉)任氏液、方瓷盘、培养皿、棉线、纱布、滴管等。
【实验步骤】1.破坏脑和脊髓取蟾蜍一只,用左手握住蟾蜍,食指按压头部前端,拇指按压背部,使头部前俯;右手持金属探针由头端沿中线向尾方划触、触及凹陷处即枕骨大孔的所在。
将探针由凹陷处垂直刺入2~3mm,刺破皮肤即入枕骨大孔,这时将探针尖端水平转向头方,向前探入颅腔内,然后向各方搅动探针,以捣毁脑组织。
脑组织捣毁后,将探针退出;再由枕骨大孔刺入,并水平转向尾方,与脊髓平行刺入椎管,来回抽动探针以彻底破坏脊髓。
当动物四肢肌肉的紧张性完全消失时,提示脑和脊髓完全破坏(见图2-1)。
2.剪除躯干上部及内脏在骶髂关节水平以上1~1.5cm处剪断脊柱。
左手握止蟾蜍后肢、用拇指压止骶骨,使蟾蜍头与内脏自然下垂,右手持普通剪刀(严禁用手术剪剪骨骼),沿脊柱两侧剪除一切内脏及头胸部,留下后肢、骶骨、脊柱以及紧贴于脊柱两侧的坐骨神经。
剪除过程中注意勿损伤坐骨神经。
3.剥皮左手握紧脊柱断端(注意不要握住或压迫神经),右手捏住其上的皮肤边缘、用力向下剥掉全部后肢的皮肤(图2-2 )4.清洗把剥皮后的标本放在盛有任氏液的培养皿中。
将手及用过的剪刀、镊子等全部手术器械洗净,再继续下面步骤。
注意剥皮后的标本不能用自来水冲洗。
5.分离两腿用镊子夹住脊柱标本背面朝上,剪去向上突起的尾骨(注意勿损伤坐骨神经)。
实验一 坐骨神经腓肠肌标本的制备 骨骼肌收缩(特选材料)
伤 ▪ 实验中保持换能器与标本连线的张力不变 ▪ 标本未给刺激即出现挛缩,是由于漏电引起,请检查连接 ▪ 每两次剌激之间要让标本休息30秒,连续刺激不可超过5s。 ▪ 并用任氏液湿润标本,以保持良好兴奋性。
优选内容
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六、结果分析(作业)
1、 随着刺激强度的增加,肌肉的收缩曲线出现什么 变化,绘出该变化的曲线,并在相应部位标出对 应的刺激强度的大小,其中必须标出阈刺激强度、 最适刺激强度的大小,最后再分析肌肉收缩曲线 出现这些变化的原因。
优选内容
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四、实验内容 (步骤)
3、调节刺激器,改变刺激强度(从弱到强),观察刺激强 度变化对肌肉收缩的影响
优选内容
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四、实验内容 (步骤)
4、单收缩的分析 ▪ 电极直接刺激腓肠肌,测量单收缩的3个
时程:潜伏期、收缩期和舒张期 ▪ 刺激参数不变,刺激坐骨神经,再测量单
收缩的三个时程
优选内容
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优选内容
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优选内容
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• 6、完成坐骨神经腓肠肌标本:将已
游离的坐骨神经搭在腓肠肌上。用粗剪 刀自膝关节周围向上剪除并刮净所有大 腿肌肉,在距膝关节约1cm处剪断股骨。 弃去上段股骨,保留部分即为坐骨神经 腓肠肌标本
优选内容
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优选内容
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优选内容
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第二部分 骨骼肌的单收缩与强直收缩
坐骨神经-腓肠肌标本制备
第九章实验内容实验1 坐骨神经-腓肠肌标本的制备【实验目的】掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的操作技术,为此后有关的神经肌肉实验打下基础。
【实验原理】蛙或两栖类动物的一些基本生命活动及生理功能与温血动物近似,而且其离体组织需要的生活条件非常简单,易于控制和掌握。
因此在生理学实验中,坐骨神经-腓肠肌标本是研究神经肌肉生理最常用的对象,经常用来研究神经肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律、肌肉收缩的特点、兴奋性的周期性变化等。
【实验器材和药品】蛙类手术器械一套(金属探针1根,粗剪刀、眼科剪刀各1把,圆头镊子、眼科镊子各1把,玻璃分针2根),蛙板和玻璃板各1块,培养皿,滴管,废物缸、锌铜弓,丝线,棉花;任氏液。
【实验对象】蟾蜍或蛙。
【实验方法和步骤】1.破坏脑和脊髓(常用的有三种方法)(1) 俯式捣毁法:是最常用的方法。
以左手持蟾蜍,将其腹面朝向手心,前肢夹在食指和中指之间固定,后肢夹在无名指和小指之间固定,并用拇指按压蟾蜍头部使之下俯30~40度角;然后右手持金属探针沿蟾蜍头部的中线下划,可触及一凹陷处即为枕骨大孔(图9-lA)。
将探针从枕骨大孔垂直刺入1~1.5mm,再向前刺入颅腔,左右搅动(可感觉到探针与颅骨壁的碰击),破坏脑组织;再将探针退回至进针处,但不拔出而是转向后方刺入椎管,破坏脊髓。
(2) 仰式捣毁法:将蟾蜍仰卧于蛙板上,拉开下颌,右手持探针在颅底两眼之间向前下刺入颅腔,用探针在颅腔内向四周捣毁脑组织,然后将探针退至粘膜下,针尖向后平行刺入椎管内以破坏脊髓。
(3) 横断脊柱后捣毁法:左手持蟾蜍,右手持粗剪刀,在两腋窝稍下横断脊柱,然后在脊柱呈白色的脊髓断面处,向上插入探针破坏脑,再向下插入探针破坏脊髓。
以上方法破坏脑和脊髓成功后,蟾蜍出现四肢(尤其是后肢)瘫软,并常有尿失禁现象。
2.剪去躯干上部及内脏用粗剪刀在两侧腋部稍下(或在骶髂关节以上1.5 ~ 2cm处)剪断脊柱(图9- 1B),用左手握住蟾蜍后肢,拇指按压骶骨,使蟾蜍头部及内脏自然下垂;避开腰骶神经丛后,右手用粗剪刀沿脊柱两侧剪开腹壁,在耻骨联合处将躯干上部及内脏剪掉,弃入废物缸内。
坐骨神经腓肠肌标本制备
分离腓肠肌(图3) :先分离腓肠肌的跟腱, 用线结扎,自跟腱的附着点剪断。此时, 提起结扎线便可将腓肠肌剥离出来。剪断 小腿骨,保留小段股骨。
标本的检查:用锌铜弓轻轻地与坐骨神经 接触,如果标本制作完好,肌肉立即收缩, 表明标本的兴奋性良好。
去皮(图2) :首先去除前肢和内脏,沿颈椎 一直将坐骨神经分离至膝关节为止。
5、兴奋性检测
剥离神经(图3) :用玻璃分针将坐骨神经丛分离清楚,再从大腿背面股二头肌和半膜肌的夹缝中分离出坐骨神经。
的断口至耻骨处,将两侧腹壁的皮肤及肌 注意勿伤及神经 ,剪刀不要碰到神经。
此时,提起结扎线便可将腓肠肌剥离出来。 注意:做好的肌肉神经标本要浸在任氏液中以保持其活性,剪刀等金属不可接触标本。
注意勿伤及神经 ,剪刀不要碰到神经。 标本的检查:用锌铜弓轻轻地与坐骨神经接触,如果标本制作完好,肌肉立即收缩,表明标本的兴奋性良好。 断颈:断颈处死的蟾蜍进行双毁髓,破坏神经系统 。 去皮(图2) :首先去除前肢和内脏,沿颈椎的断口至耻骨处,将两侧腹壁的皮肤及肌肉剪开,剔除前肢及内脏。
分离左右后肢:用粗剪沿标本的脊柱中线 将标本分为左右两半。注意勿伤及神经 , 剪刀不要碰到神经。
断颈:断颈处死的蟾蜍进行双毁髓,破坏 注意勿伤两侧下行的坐骨神经丛。
实验动物:蟾蜍( 1 只/组)
标本的检查:用锌铜弓轻轻地与坐骨神经接触,如果标本制作完好,肌肉立即收缩,表明标本的兴奋性良好。
神经系统 。 1、断颈处死蟾蜍
注意勿伤两侧下行的坐骨神经丛。 4、坐骨神经-腓肠肌标本的制备 一直将坐骨神经分离至膝关节为止。 剥离神经(图3) :用玻璃分针将坐骨神经丛分离清楚,再从大腿背面股二头肌和半膜肌的夹缝中分离出坐骨神经。 1、断颈处死蟾蜍
坐骨神经-腓肠肌标本的制备
2.不要挤 压蟾蜍耳 后腺。
3.避免强力
4.标本先放
牵拉神经或 在任氏液中 用金属器械 浸泡一段时 夹捏神经。 间。
彻底。
探索性实验
The exploring experiment 温度对坐骨神经—腓 肠肌收缩的影响
坐骨神经—腓肠肌标 本制作方法的改进
给细胞外Ca2+浓度 对坐骨神经—腓肠肌 收缩的影响
Experimental methods and steps
8.制作坐骨神经-腓肠肌标本
跟腱处穿线、结扎、剪断
分离腓肠肌
膝关节下剪断胫腓骨
实验方法与步骤
Experimental methods and steps
9.任氏液湿润标本
10.锌铜弓检查兴奋性
实验方法与步骤
Experimental methods and steps
茶对离体坐的捉拿 枕骨大孔的位置 破坏的标志
(1)枕骨大孔的位置
位置:两线交汇的凹陷处
实验方法与步骤
Experimental methods and steps
(2)破坏的标志:
呼吸消失 四肢松软
(3)方法二
粗剪将蟾蜍上颌从两耳连线 平面离断
暴露椎管
直接破坏脊髓
实验方法与步骤
Experimental methods and steps
2.剪除躯干上部和内脏
骶髂关节上1-2cm 剪去的部分 留下的部分
实验方法与步骤
Experimental methods and steps
2.剪除躯干上部和内脏
手持蟾蜍下肢,腹部向下
仅保留后肢和下段脊柱 脊柱两旁即坐骨神经
实验方法与步骤
Experimental methods and steps
生物实验报告坐骨神经腓肠肌标本制备
坐骨神经腓肠肌标本得制备与神经干动作电位得观察与传导速度得测定一、实验目得:1.学习蛙类动物双毁髓得实验方法、2。
学习并掌握坐骨神经—腓肠肌标本得制备方法。
3.观察蛙坐骨神经干复合动作电位得基本波形,并了解其产生得原理。
4.学习蛙与蟾蜍离体神经干上神经冲动传导速度得方法与原理、二、实验材料:1.实验对象:蟾蜍2、实验器材:常规手术器械(粗剪刀、手术剪、眼科剪、手术镊、眼科镊)蛙板、蛙钉、探针、锌铜弓、玻璃分针、培养皿、任氏液、滴管、手术线、PC机、信号采集处理系统、神经屏蔽盒等。
三、实验原理:神经干在受到有效刺激以后可以产生复合动作电位,标志着神经发生兴奋。
如果在离体神经干得一段施加刺激,从另一端引导传来得神兴奋冲动,可以记录出双相电位,加入在引导得两个电极之间将神经干麻醉或损伤,阻断其兴奋传导能力,这时候记录出得动作电位就成为单相电位、神经细胞得动作电位就是以全或无得方式产生得。
但就是,复合动作电位得幅值在一定刺激强度下就是随刺激强度得增加而增大得。
如果在远离刺激点得不同距离处分别引导离体神经干动作电位,两引导点之间得距离为m,在两引导点分别引导出得动作电位得时相差为s。
即可按照公式v=m/s来计算出兴奋得传导速度、蛙类得坐骨神经干属于混合性神经,其中包含有粗细不等得各种纤维,其直径一般为3-29um,其中直径最粗得有髓纤维为A类纤维,传导速度在正常室温下为35-40 m/s。
神经每兴奋一次极其在兴奋以后得回复过程中,其兴奋性都要经历一次周期性得变化,其全过程依次包括绝对不应期、相对不应期、超常期与低常期4个时期。
为了测定坐骨神经在发生一次兴奋以后兴奋性所发生得周期性变化,首先要给神经施加一个条件性刺激引起神经兴奋,然后在前一兴奋及其恢复过程不同时相再施加一个测试性刺激,用于检查神经得兴奋阈值与所引起得动作电位得幅度,以判定神经兴奋性得变化。
四、实验方法及步骤:1、坐骨神经干标本制备(1) 破坏脑与脊髓:取蛙一只,用自来水冲洗干净,左手持蛙,用食指下压其吻部,拇指按压在其骶髂关节下方,使其头尽量前俯,右手持探针沿两眼之间中线向后方轻划,至触及头颈部正中得凹陷处,即为枕骨大孔得位置。
坐骨神经腓肠肌标本制备顺序
坐骨神经腓肠肌标本制备顺序坐骨神经腓肠肌标本制备顺序是进行解剖学研究和医学诊断的重要步骤。
它涉及到将坐骨神经和腓肠肌样本准备成适合观察和分析的形式。
以下是标本制备的一般顺序:1. 选择适当的动物模型或人体样本:坐骨神经和腓肠肌标本可以从动物模型或人体中获取。
在选择样本时,需要考虑到研究的目的和特定的实验要求。
2. 获取标本:在动物模型中,可以通过解剖手术或动物牺牲来获得坐骨神经和腓肠肌标本。
在人体样本中,可以通过手术获取标本,或者在尸检过程中收集。
3. 固定标本:为了保持样本的形态结构和细胞组织的完整性,需要将标本进行固定。
常用的固定剂包括福尔马林、乙醛和缓冲盐水。
固定时间的长短会因样本的大小和类型而有所不同。
4. 切割标本:在固定完成后,需要将标本进行切割。
这可以使用显微切片机或手动刀具来完成。
切割的厚度和方向应根据研究的需要进行调整。
5. 石蜡包埋:切割完成后,需要将标本进行石蜡包埋。
这个过程包括将标本浸泡在不同浓度的石蜡溶液中,使其逐渐渗透和固化。
6. 制作组织切片:石蜡包埋完成后,可以使用组织切片机将标本切割成所需的厚度。
切片的厚度通常为5-10微米。
7. 制作染色切片:为了更好地观察组织的细胞结构和组织学特征,可以对切片进行染色,如常见的血液和组织染色方法。
8. 镜检和分析:制作好的染色切片可以用显微镜观察,并进行相关的分析和测量。
这些分析可以涉及到细胞数量、组织结构和病理变化等方面。
总而言之,坐骨神经腓肠肌标本制备的顺序包括获得标本、固定、切割、石蜡包埋、制作组织切片、染色以及镜检和分析。
这些步骤的正确执行有助于获得高质量的标本,进而促进相关研究和诊断的进展。
操作流程-坐骨神经-腓肠肌标本制备.
ห้องสมุดไป่ตู้操作流程
刺激与肌肉收缩的关系
制备坐骨神经—腓肠肌标本。
↓ 将仪器与标本连结 将腓肠肌上连线连于张力换能器上,将神经与电
极接触,使肌肉处于自然拉长状态
↓ 使用单脉冲刺激方式刺激,强度从零开始逐渐增大,首先找到能引起 肌肉收缩的最小强度,该强度即是阈强度。继续增大刺激强度,当肌 肉收缩曲线的幅度不再随刺激增高,此时即为最大收缩,刺激强度即
为最适刺激强度。
↓ 将刺激强度固定在最适刺激强度,用单刺激作用于坐骨神经,记录肌肉
的单收缩曲线。
↓ 其余参数固定不变,用不同频率的连续刺激作用于坐骨神经,可记录到
单收缩、不完全强直收缩和完全强直收缩曲线
实验一坐骨神经腓肠肌标本的制备
【实验器材】
• 蛙类解剖手术器械、蛙板、任氏 液、铁支架、微调固定器、张力 换能器、计算机、生物信号采集 处理系统。
2020/12/25
【方法和步骤】
• 1.制备在体坐骨神经腓肠肌标本 • 2.实验装置(如图) • 3.仪器设置
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2020/12/25
(1)不同刺激强度对腓肠肌收缩的影响
• 选用最大刺激强度刺激,使刺激频率按1Hz、 2Hz、4Hz、6Hz、8Hz、12Hz、16Hz逐渐增加 ,分别记录不同频率时的肌肉收缩曲线,观察不 同频率刺激时的肌肉收缩(曲线)变化,从而引 导出单收缩、不完全强直收缩和完全强直收缩。
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实验结果记录
1.记录下不同的刺激强度值对肌肉收缩的 幅度值,绘制不同刺激强度与腓肠肌收缩张 力的关系曲线。 2.分别记录下引起肌肉单收缩,不完全强 直收缩和完全强直收缩时的刺激频率和收缩 幅度(张力)。
实验一 坐骨神经腓肠肌标本的制备
2020/12/25
步骤
• 1.毁脑脊髓 取牛蛙一只,用左手握住,以示指压其头
部前端使其尽量前俯,右手持探针自枕骨大孔 处垂直刺入,到达椎管,即将探针改变方向刺 入颅腔,向各侧不断搅动,彻底捣毁脑组织; 再将探针原路退出,刺向尾侧,捻动探针使逐 渐刺入整个椎管内,捣毁脊髓。此时牛蛙下颌 呼吸运动应消失,四肢松软,即成为一毁脑脊 髓的牛蛙)。否则须按上法再行捣毁。
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思考题
• 1.为什么在一定范围内增加刺激强度 ,骨骼肌收缩力增加?
• 2.何谓标本的最适刺激强度?
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• 逐渐增大刺激强度,找出刚能引起肌肉出现 微小收缩的刺激强度(阈强度)。继续增强 刺激强度,观察肌肉收缩反应是否也相应增 大。继续增强刺激强度,直至肌肉收缩曲线 不能继续升高为止。找出刚能引起肌肉出现 最大收缩的最小的刺激强度,即最适刺激强 度。
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坐骨神经-腓肠肌标本制备
一、实验目的要求
1、学习蛙类动物单毁髓与双毁髓的方法。
2、学习并掌握坐骨神经-腓肠肌标本及腓肠肌标本的制备方法。
3、了解电刺激的极性法则。
二、实验原理
1、蛙或蟾蜍等两栖类动物的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似,而其离体组织生活条件易于掌握,在任氏液的浸润下,神经肌肉标本可较长时间保持生理活性。
因此,在生理学实验中常用蛙或蟾蜍坐骨神经腓肠肌离体标本来观察神经肌肉的兴奋性、兴奋过程以及骨骼肌收缩特点等。
2、细胞的静息膜电位为外正内负,电刺激可改变可兴奋细胞的膜电位差。
膜电位减小时,细胞去极化,细胞兴奋;膜电位增大时,细胞超极化,细胞兴奋性被抑制。
蘸有任氏液的锌铜弓接触活组织时,可产生沿锌片—活组织—铜片流向的电流对细胞产生刺激效应。
三、实验材料和仪器
1、实验材料:牛蛙
2、实验器材:手术剪、手术镊、手术刀、眼科剪、眼科镊、毁髓针、蛙板、固定针、滴管、培养皿、玻璃分针锌铜弓、污物缸、粗棉线、任氏液
四、实验步骤
1、洗净实验动物→毁髓→剥制后肢→分离坐骨神经→游离腓肠肌→游离股骨头→标本检验→电刺激极性法则的验证
2、双毁髓
一只手握住牛蛙,使其背部向上。
用拇指压住牛蛙背部,食指按压其头部前端,另一只手持毁髓针,由两眼之间沿中线向下触划,触及凹陷处即为枕骨大孔。
将毁髓针垂直刺入枕骨大孔。
将针尖向前刺入颅腔内搅动,此时为单毁髓;将毁髓针退回枕骨大孔,针尖转向后方,与脊椎平行刺入椎管内捣毁脊髓,完成双毁髓。
3、坐骨神经-腓肠肌标本制备
(1)剥制后肢标本:轻提双毁髓蛙,自背面耻骨联合上方约1公分处横向剪断脊柱。
轻轻托起后肢,看清坐骨神经位置,沿脊柱两侧横向切口剪断体壁,去除断口以上肢体和内脏放入污物缸。
剥去后肢皮肤后放入任氏液中备用。
(2)分离两后肢:用粗剪刀纵向剪开脊柱,并剪断两后肢相连的肌肉,一只用于剥制标本,一只放入任氏液中保存。
(3)分离坐骨神经:将后肢标本脊柱端腹面向上,趾端向外侧用蛙钉将标本固定在蛙板上。
先在腹腔面用玻璃分针沿脊柱游离坐骨神经,然后在标本的背侧于股二头肌与半膜肌的肌肉缝内将坐骨神经与周边的结缔组织分离直到腘窝,但不要伤及神经,其分支待以后用手术剪剪断肌肉。
(4)游离腓肠肌:同样用玻璃分针将腓肠肌与其下的结缔组织分离并在其跟腱处穿线、结扎;
(5)分离股骨头:捏住股骨,剪去并刮净周围肌肉,保留股骨的后2/3,剪断股骨;
(6)检验标本:用手术镊轻提标本的脊椎片,再用经任氏液蘸湿的锌铜弓接触坐骨神经,如腓肠肌发生收缩,则表示标本机能正常。
轻提腓肠肌上的结扎线,将标本放入任氏液中保存15-20分钟后进行实验。
(7)电刺激的极性法则验证:用棉线在神经干中间部位进行结扎,以阻断神经传导兴奋的能力。
用锌铜弓跨越结扎线刺激坐骨神经干。
使锌极在腓肠肌一端刺激,观察腓肠肌收缩发
生在通电(接触神经干)时还是断电(离开神经干)时;调转锌铜弓的极性,使铜极在腓肠肌一端刺激,观察腓肠肌收缩实在通电时还是断电时。
比较不同极性电极刺激时腓肠肌的收缩强度是否一样,那个收缩强度比较大?
五、注意事项
1、避免血液污染标本,压挤、损伤和用力牵拉标本,不可用金属器械触碰神经干。
2、在操作过程中,应给神经和肌肉滴加任氏液,防止表面干燥,以免影响标本的兴奋性。
3、标本制成后须放在任氏液中浸泡数分钟,使标本兴奋性稳定,再开始实验效果会较好。
六、实验结果
通过任氏液浸泡,刺激后,看到肌肉有收缩的反应,调换电极进行刺激后也同样有收缩反应。
通过铜—锌与锌—铜的两种刺激比较后,铜—锌更强。
七、总结
通过本次试验更加深刻的认识了肌细胞收缩的机制,熟悉了单毁髓与双毁髓的方法和操作,掌握l坐骨神经-腓肠肌标本及腓肠肌标本的制备方法的基本操作。
由于实验过程中提取腓肠肌时候,肌肉过度兴奋,进行电极刺激时现象不是非常明显。
综上所述实验时需小心操作,尽量避免肌肉失活。
八、思考题
1、剥去皮肤的后肢,能用自来水冲洗吗?为什么?
答:不能。
因为自来水中还有例如氯离子、钙离子等许多离子,它们会影响细胞膜的点位分布,最终就会影响到刺激反应现象的观察;另外自来水里有许多微生物如果它们附着与誓言材料上,也会影响实验效果的。
2、金属器械碰压、触及或损伤神经及腓肠肌,可能引起哪些不良后果?
答:金属器械碰压、触及或损伤神经及腓肠肌会损伤腓肠肌细胞膜,使肌肉中的神经收到过度刺激,而过度兴奋最终失活,刺激时候就没有现象。
3、如何保持标本的机能正常?
答:首先在制备腓肠肌的过程时,金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌,以及实验者不要触碰到肌肉;其次,过程中要保持腓肠肌的湿润,常加任氏液,最好先泡一会;另外,在第一次电刺激后,需要让肌肉休息一段时间,在进行下一次刺激。
实验一蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本制备
一、实验目的
掌握制备具有正常兴奋收缩功能的蛙类坐骨神经腓肠肌标本基本操作技术,掌握蛙类手术器械的使用方法。
二、材料和方法
1、材料
蟾蜍;任氏液;探针、剪刀、培养皿、瓷盆、玻璃分针、蛙板、玻璃板、大头针、镊子、线、锌铜弓。
2、实验方法
2.1 毁脑脊髓取蟾蜍一只,用左手握住,以食指压其头部前端使其尽量前俯,右手持探针自枕骨大孔处垂直刺入,到达椎管,即将探针改变方向刺入颅腔,向各侧不断搅动,
彻底捣毁脑组织;再将探针原路退出,刺向尾侧,捻动探针使逐渐刺入整个椎管内,捣毁脊髓。
此时蟾蜍下颌呼吸运动应消失,四肢松软,即成为一毁脑脊髓的蟾蜍。
否则须按上法再行捣毁。
2.2剪除躯干上部及内脏用粗剪刀在颅骨后方剪断脊柱。
左手握住蟾蜍脊柱,右手将粗剪刀沿两侧(避开坐骨神经)剪开腹壁。
此时躯干上部及内脏即全部下垂。
剪除全部躯干上部及内脏组织,弃于瓷盆内。
2.3剥皮避开神经,用右手拇指和食指夹住脊柱,左手捏住皮肤边缘,逐步向下牵拉剥离皮肤。
拉至大腿时,如阻力较大,可先剥下一侧,再剥另一侧。
将全部皮肤剥除后,将标本置于盛有任氏液的培养皿中。
2.4洗净双手和用过的全部手术器械,再进行下列步骤。
2.5分离双腿避开坐骨神经,用粗剪刀从背侧剪去骶骨,然后沿中线将脊柱剪成左右两半,再从耻骨联合中央剪开(为保证两侧坐骨神经完整,应避免剪时偏向一侧)。
将已分离的标本浸入盛有任氏液的培养皿中。
2.6游离坐骨神经取腿一条,先用剥离分针沿脊柱侧游离坐骨神经腹腔部,然后用大头针将标本背位固定于干净蛙板上。
用玻璃分针循股二头肌和半膜肌之间的坐骨神经沟,纵向分离暴露坐骨神经之大腿部分,直至分离至腘窝颈神经分叉处。
然后剪断股二头肌腱、半膜肌和半膜肌肌腱,并绕至前方剪断股四头肌腱。
自上向下剪断所以坐骨神经分支。
将连着3-4节椎骨的坐骨神经分离出来。
2.7完成坐骨神经小腿标本将已游离的坐骨神经搭在腓肠肌上。
用粗剪刀自膝关节周围向上剪除并刮净所以大腿肌肉,在距膝关节约1cm处剪断股骨。
弃去上段股骨,保留部分即为坐骨神经小腿标本。
2.8完成坐骨神经腓肠肌标本用尖子镊子在上述坐骨神经腓肠肌标本的跟腱下方穿孔,穿线结扎之。
提起结扎线,在结扎线下方剪断跟腱,并逐步游离腓肠肌至膝关节处,左手握住标本的股骨部分,使已游离的坐骨神经和腓肠肌下垂,右手持粗剪刀水平方向伸进腓肠肌与小腿之间,在膝关节处剪断,与小腿其余部分分离。
左手保留部分即为附着于股骨之上的、具有坐骨神经支配的腓肠肌标本。
将标本浸入盛有新鲜任氏液的培养皿中待用。
2.9实验观察
2.9.1蟾蜍毁脑脊髓前后四肢肌张力的变化。
2.9.2用锌铜弓分别刺激坐骨神经和腓肠肌,观察肌肉的反应。
三、实验结果
用锌铜弓刺激坐骨神经时腓肠肌发生收缩。
四、分析
锌铜弓用金属锌和铜铆接而成,锌铜弓在极性溶液中形成回路时,锌与铜两极产生约0.5-0.7V的直流电压,电流的刺激作用于神经肌肉标本,由于产生生物电流,因而引起肌肉的收缩。
制备标本的过程中,要不断滴加任氏液,以防标本干燥,丧失正常生理活性;操作过程中应避免强力牵拉和手捏神经或夹伤神经肌肉;毁脑脊髓时防止蟾蜍皮肤分泌的蟾蜍毒液射入操作者眼内或污染实验标本。
五、结论
蛙类的某些基本生命活动和生理功能与哺乳类动物有相似之处,而且其离体组织的生活条件比较简单,易于控制和掌握,来源也较丰富,由此在生理学实验,尤其是细胞生理学的某些实验中,常用蛙或蟾蜍的坐骨神经腓肠肌标本来观察神经肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律及肌肉收缩的特点等。
制备具有正常兴奋收缩功能的蛙类坐骨神经腓肠肌标本是生理学
实验的基本操作技术之一。