抗真菌药物敏感试验指导

琼脂扩散法
培养基制备
基本培养基为MH琼脂，其中加入2%葡萄糖和亚甲基兰 （0.5μg/mL）。调整pH值至7.2～7.4（室温下）。高压灭菌后分装入 平皿，室温下冷却凝固后，37℃温箱中干燥10～30min，以去除平皿 表面水蒸气。 培养基平皿可在2～8 ℃冰箱保存一周。如采用塑料袋包裹可适 当延长。 使用前，应抽取同一批次平皿置于30～35℃孵箱中24小时，以确

4％琼脂：
40g 琼脂，溶于1000mL蒸馏水中，高压灭菌15min，备用。
琼脂稀释法
菌液的制备
受试菌在SDA中35℃ 培养24小时（念珠菌属）或48小时 （新生隐球菌）
取直径约5mm菌落，混悬于5mL灭菌的生理盐水中，涡
旋混匀15秒，采用分光光度计在530nm处，调整菌悬液至0.5 个麦氏单位浊度，相当于1×106～5×106/mL，作为菌液的 工作液。
试管液基稀释法
实验步骤：

(NCCLS-M27A)
取无菌的15mm×100mm试管进行实验 在试管中依次加入0.1mL倍比稀释的不同浓度药物工作液。 依次在试管中加入0.9mL菌工作液，混匀。注意整个过程需在 15min内完成。 实验过程中，设置空白对照和生长对照。同时进行质控菌株平行试 验，进行质量控制。 将试管置于35 ℃培养46～50h观察结果。对于新生隐球菌，培养时 间应延长至70～74h。
3. 将培养板置于35 ℃孵育48小时(新生隐球菌为72小时）后读取结果。
微量液体稀释法
结果判读
观察前，可轻轻震摇药敏板，使终点判读更容易。如果出现菌膜沉 淀，须进行吹打、涡旋或其他方法混匀后，在进行结果判读。
结果判读以生长对照孔作为标准，将生长情况进行评分：
0：完全透明清澈； 1：轻度浑浊 2：浊度较生长对照明显下降； 3：浊度较生长对照轻度下降； 4：浊度与生长对照一致。



如采用平板多点接种，可将培养基18mL，加入不同浓度药液2mL，混匀 倒入9cm直径平皿，制成药物平板备用。
琼脂稀释法
接种和培养

在药物平板中接种测试菌液，每点接种1～5μl，可进行多点接种。并设 置生长对照平皿，空白对照平皿和标准菌株对照。 37℃ 培养48h或72h（新生隐球菌） 终点判定：确定生长对照菌生长良好，空白对照无污染菌生长。逐一观 察从高浓度至低浓度平皿上的生长情况，以菌不生长平皿的药物浓度作 为对该菌的MIC值。
新三唑类药物（如伏力康唑等）0.0313~16μg/mL。
琼脂稀释法
培养基制备

RPMI 1640培养基: 2倍量:RPMI 1640 20.8g,葡萄糖40g, 以0.33M MOPS缓冲液溶解, 调整pH值至6.9~7.1,过滤除菌,置-20℃保存。

HR培养基：
2倍量：29.3g HR培养基，NaHCO3 2.0g，溶于1000mL双蒸水中， 调整pH值至7.5，过滤除菌，低温保存。
终点的判断。
试管液基稀释法
菌液的制备
（新生隐球菌）。
(NCCLS-M27A)
受试菌在SDA或PDA中35℃ 培养24小时（念珠菌属）或48小时 取直径约5mm菌落，混悬于5mL灭菌的生理盐水中，涡旋混匀15秒， 采用分光光度计在530nm处，调整菌悬液至0.5个麦氏单位浊度，相当于 1×106～5×106/mL，作为菌液的贮备液。 使用时，采用2倍量培养基将菌液调整至工作浓度为1.0×103～ 5.0×103/mL。再用无菌蒸馏水倍比稀释成0.5×103～2. 5×103/mL。
琼脂扩散法
操作步骤：

用棉签蘸取菌液涂于平板上，重复三次，每次将平板旋转60o再进 行涂布，最后涂布平板边缘。 将浸有药液的纸片贴于琼脂表面，可轻微加压保证纸片与琼脂贴 合紧密。纸片与纸片中心距离一般大于24mm。通常，150mm平 板纸片数量不超过12个；100mm平板不超过5个。由于药物扩散 在接触时即已进行，因此，当纸片接触平板后即不可再移动。 将贴有纸片的平皿翻转后置35℃培养20～24小时，观察结果。如 24小时菌生长不良，可将培养时间延长至48小时。
定无污染。
琼脂扩散法
药液纸片制备：
商品化药液纸片：应保存于－14℃以下冰箱中。 使用前，应提前取出置于室温中平衡1～2小时。
琼脂扩散法
菌液制备
同试管稀释法，受试菌在SDA或PDA中35 ℃培养24
小时（念珠菌属）。 取直径约5mm菌落，混悬于5mL灭菌的生理盐水中， 涡旋混匀15秒，采用分光光度计在530nm处，调整菌悬液 至0.5个浊度单位，相当于1×106～5×106/mL，作为菌液 的贮备液。
试管液基稀释法
注意事项

(NCCLS-M27A)
测试药物的浓度范围应包括终点浓度和质控株的MIC范围。一般常见药
物的测试浓度范围： 两性霉素B 0.0313~16μg/mL； 氟胞嘧啶0.125~64 μg/mL ；
酮康唑0.0313~16 μg/mL；
氟康唑0.125~64 μg/mL，
伊曲康唑0.0313~16 μg/mL；
抗真菌药物敏感试验
沈 永 年
概
渐增高
述
真菌感染的发病率,尤其是深部真菌感染的发病率逐
大量新型抗真菌药物不断涌现
临床耐药菌株的出现
抗真菌药物敏感实验为临床耐药菌株的发现，
抗真菌药物的选择提供指导。
概

述
抗真菌药物敏感实验方法是建立在抗细菌药物敏感实验方法基础之上 由于真菌是一种高等的生物，其繁殖方式、生长周期、生长条件等均与 细菌不同，因此抗真菌药物敏感试验一直是国内外学者研究的难题。因 此，实验方法多样化，但尚无通用的标准方法。
度为该药的MIC值。
试管液基稀释法
结果的判定

(NCCLS-M27A)
新三唑类药物 酵母菌的MIC值为0.03~16 μg/mL，大多数酵母菌的MIC值小于1 μg/mL。目前尚无资料说明MIC值与临床疗效之间的关系。 氟胞嘧啶、氟康唑和伊曲康唑 判定标准如下表所示。氟康唑的判定标准不适用于克柔念珠菌。 采用不适当的溶媒溶解伊曲康唑可导致结果偏差。
提供临床应用
常见术语
最低抑菌浓度（minimal inhibitory concentration，MIC）
MIC50，MIC90，MIC50％～80％
最低杀菌浓度（minimal fungicidal concentration MFC）
MFC50，MFC90
最低有效浓度（minimal effective concentration，MEC ）
优点：可同时测定多个菌株，易于确定终点。比液体稀
释法重复性好。 缺点：方法繁琐，耗时长。
琼脂稀释法
药液的制备： 同试管液基稀释法，工作液浓度为10倍浓度的测试浓 度，各种常用药物的浓度测试范围为： 两性霉素B 0.0313~16μg/mL； 氟胞嘧啶0.125~64μg/mL 酮康唑0.0313~16μg/mL ； 氟康唑0.125~64μg/mL ； 伊曲康唑0.0313~16μg/mL
倍比稀释。
微量液体稀释法

试验步骤
1. 药敏板的制备：采用96孔U型板，每排1～10孔依次加入不同浓度待测 药物工作液100 μl，第1孔为最高浓度，第10孔为最低浓度。制备好的药敏板 可用塑料薄膜包裹后置－70℃保存6月以上。 2. 取制备好的药敏板，在1～10孔加入100μl菌工作液，第11孔中加入 100μl无菌蒸馏水和100μl菌工作液，作为生长对照；12孔仅加入无菌不含药物 培养基作阴性对照。
他药物敏感试验方法如琼脂稀释法，琼脂扩散法，E试验法
等时有应用。
试管液基稀释法
药液的制备
(NCCLS-M27A)
储存液：浓度至少为1280μg/mL或10倍于受试的最高浓度。储存
液浓度需根据药物本身溶解性决定。 氟康唑和5－氟胞嘧啶（5－FC）以灭菌蒸馏水溶解；酮康唑、伊
曲康唑、两性霉素B、伏力康唑等采用DMSO溶解。

美国国家临床试验标准委员会（NCCLS）从1992年起，制订了一系列针 对抗真菌药物敏感实验的指导性文件，但目前仍不能适用于所有医学真 菌的检测。
抗真菌药敏试验目的
指导抗真菌药物的选择 测定抗真菌药物对致病真菌的敏感性，提供临床用
药量及Байду номын сангаас后监测的参考
筛选耐药菌株及研制对致病真菌有效的抗真菌药物
度），以防止药物的析出。
试管液基稀释法
培养基的制备
(NCCLS-M27A)
2倍浓度RPMI 1640培养基（不含NaHCO3） 作为标准培养基，用0.33mol/L MOPS缓冲液溶解,调 节pH值至6.9~7.1（室温），过滤除菌，4℃可保存4 周。在培养基中加入4%葡萄糖可促进菌生长，帮助

琼脂扩散法
将待检菌掺入琼脂培养基内，将浸有固定浓度的抗真菌 药液纸片置于琼脂培养基表面，经孵育后，根据纸片周围真 菌生长被抑制的范围大小确定药物对真菌的抑制作用。如同
时应用系列浓度纸片，尚可测出MIC值。
优点：简单、易行、不需复杂设备 缺点：单一浓度纸片仅能定性，不能确定MIC值。 药物纸片的标准化问题。


试管液基稀释法
结果判读

(NCCLS-M27A)
两性霉素B
终点的判断比较容易，无肉眼可见生长的最低药物浓度为两性霉素B 的MIC值。

氟胞嘧啶及唑类
往往在最低浓度时也可出现轻度浑浊。此时，可取生长对照管中菌 悬液0.2mL，加入培养基0.8mL混匀作为判断终点的浊度（即80％菌的生
长受到抑制时的浊度)，与此浊度相近的试管即可判定为终点，其药物浓

培养基pH值可能影响测试结果，应严格控制pH值于6.9~7.1。
微量液体稀释法