植物瞬时表达系统的研究进展

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高粱品种BTx623原生质体分离及瞬时表达体系的建立

生物资源2021,43(1 ):42〜49Biotic Resources■i f e*-n."it.~c.研究报告DOI ： 10. 14188/j. ajsh. 2021. 01. 006高粱品种BTx623原生质体分离及瞬时表达体系的建立曾弓剑，程云伟，韩少鹏，吕阳，陆业磊，周超，张德春，沈祥陵‘(三峡大学三峡区域植物遗传与种质创新重点实验室/三峡大学生物技术研究中心，湖北宜昌443002)摘要：高粱（Soa/m m&ro/or)是世界上仅次于小麦、水稻、玉米和大麦的重要粮食作物之一，虽然高梁基因组已经完成了测序，但是针对高粱测序品种BTx623,遗传转化方法的缺乏限制了高粱遗传育种和功能基因组研究的发展。

而原生质体瞬时表达技术，则因为其高效、快速的特性，在功能基因组研究中具有重要的作用。

为了在高粱品种BTx623中建立原生质体瞬时表达体系，本研究以BTx623幼苗为材料，对原生质体分离过程中的渗透压、酶液成分、酶解时间进行研究。

结果表明：BTx623 幼苗的原生质体分离过程中，最佳酶解液组成为1%纤维素酶、0. 25%离析酶、0. 6 m ol/L甘露醇、10 m m ol/L吗啉乙烷磺酸、1 mmol/LCaCl2、0. 1%小牛血清蛋白和5 mmol/L/?-巯基乙醇，并获得了每毫升1X1CT个的高质量原生质体，所获原生质体活性在90%以上。

之后利用PEG介导的转化方法，将含有的质粒导人到原生质体中，并通过荧光显微观察统计，遗传转化率达到（61. 31±3. 91)%。

本研究通过优化高粱品种BTx623原生质体制备及瞬时转化的条件，成功建立了其原生质体瞬时表达体系，为进一步开展高粱品种BTx623功能基因组的研究奠定了基础。

关键词：高粱；BTx623;原生质体分离；瞬时表达中图分类号：Q943.2 文献标志码：A 文章编号：2096-3491(2021)01-0042-08The establishment of protoplasts isolation and transient expression system ofsorghum cultivar BTx623ZENG Gongjian, CHENG Yunwei, HAN Shaopeng, LU Yang, LU Yelei, ZHOU Chao, ZHANGDechun, SHEN Xiangling(Key Laboratory of Three Gorges Regional Plant Genetics Germplasm Enhancement/Biotechnology Research Center, ThreeGorges University, Yichang 443002, Hubei, China)Abstract：Sorghum is one of the important crops next to wheat, rice, maize and barley in the world, although the sorghum genome has been sequenced, the lack of genetic transformation methods for the sorghum sequenced cultivar BTx623 has limited the development of sorghum genetic breeding and functional genome research. Because of the efficiency and rapidity, the protoplast transient expression technology plays an important role in the research of functional genome. In order to establish the protoplast transient expression system in B Tx623, in this study BTx623 seedlings were used as materials to research the osmotic pressure, composition of enzyme solution and the time of digestion in the process of protoplast isolation. The results showed that in the process of protoplast isolation in BTx623 seedlings, the optimal composition of the enzyme solution is 1% cellulase, 0.25%mecerozyme, 0. 6 mol/L mannitol, 10 mmol/L M ES, 1 mmol/L CaCl2, 0. 1% BSA and 5 mmol/L ^-mercaptoethanol, then IX 107/m L protoplasts with high vitality were ob~收稿日期：2020-09-03 修回日期：2020-10-08 接受日期：2020-12-27作者简介：曾弓剑（1981-),男，硕士生，研究方向为分子植物育种。

实验五、GUS染色检测基因瞬时表达

问题解决能力
实验态度转变
在实验过程中遇到问题时，我学会了独立思考和团队协作，积极寻找解决方案。
通过认真对待每一个细节，ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ培养了严谨的实验态度和科学精神。
gus染色检测基因瞬时表达的未来发展方向
应用拓展
除了基础研究，gus染色检测基因瞬时表达在医学诊断和治疗等领域也有广阔的应
用前景。
A 技术优化
01
02
03
研究基因功能
通过瞬时表达技术可以快速检测特定基因的功能，了解其在细胞中的作用。
药物筛选
利用瞬时表达技术筛选对特定基因有调控作用的候选药物。
基因治疗
瞬时表达技术可用于基因治疗的研究，为疾病治疗提供新思路。
02 实验原理
gus染色检测基因瞬时表达的生物学基础
基因瞬时表达
基因瞬时表达是指通过转录和翻译在短时间内产生大量蛋白质的过程。在植物和某些微生物中，瞬时表达常用于研究基因的功能和表达调控。
学习gus染色检测基因瞬时表达的方法
准备实验材料
X-Gluc、缓冲液、DNA转染试剂、细胞培养板等。
GUS染色
将转染后的细胞用X-Gluc染色，观察蓝色产物。
转染DNA
将目的DNA与转染试剂混合，加入细胞培养板中，使DNA瞬时表达。
结果分析
根据蓝色产物的多少判断GUS 基因的瞬时表达量。
掌握gus染色检测基因瞬时表达的应用
显色反应
在适宜的温度和pH条件下，GUS酶催化底物水解，产生蓝色产物。
结果观察
通过观察蓝色产物的生成情况，判断目的基因是否成功瞬时表达。
03 实验步骤
准备实验材料和试剂
准备所需的gus基因瞬时表达载体。

农杆菌介导的油菜子叶瞬时表达

农杆菌介导的油菜子叶瞬时表达谭小力;诸葛锐军;李冠英;卢长明;王政;张志燕【摘要】A method for transient expression based on Agrobacterium infiltration into cotyledons of Brassica napus L. cv Ningyou 16 was developed with the Green Florescent Protein (GFP) as a marker gene. GFP expression vector pB2GW7. 0-gfp was constructed and transferred into agrobacterium. The addition of P19 protein improved the transient expression level of GFP in cotyledon. Reverse transcription assay showed that GFP was expressed after 4-8 days of agrobacterium infiltration. Confocal microscopical analysis revealed that epidermal cells and guard cells could be transformed by agrobacterium-based transformation method. The entire process only took 20 days from sowing seed to protein analysis. Therefore, this new method is simple and rapid. It has a potential application in dissection genes expression and function in Brassica napus.%实验以甘蓝型油菜宁油16为材料,绿色荧光蛋白(GFP)为报告基因,建立了农杆菌介导的油菜子叶瞬时表达系统.我们构建了GFP表达载体pB2GW7.0-gfp,并成功转化农杆菌.实验中通过添加P19来提高GFP在油菜子叶中的瞬时表达量.并提取了注射有P19和pB2GW7.0-gfp农杆菌混合液的油菜子叶RNA,经RT-PCR鉴定,发现在4 ～8 d GFP均能表达.激光共聚焦显微镜分析表明农杆菌介导的油菜子叶瞬时表达系统能够转化油菜子叶的表皮细胞和保卫细胞.甘蓝型油菜子叶瞬时表达方法简便、快速、可靠,从种子播种到获得荧光蛋白表达,全过程只需要20d.表明在研究油菜基因的表达和功能方面有潜在的应用前景.【期刊名称】《生物学杂志》【年(卷),期】2012(029)006【总页数】4页(P93-96)【关键词】甘蓝型油菜;子叶;农杆菌;瞬时表达【作者】谭小力;诸葛锐军;李冠英;卢长明;王政;张志燕【作者单位】江苏大学生命科学研究院,镇江212013;江苏大学生命科学研究院,镇江212013;江苏大学生命科学研究院,镇江212013;中国农业科学院油料作物研究所,武汉430062;江苏大学生命科学研究院,镇江212013;江苏大学生命科学研究院,镇江212013【正文语种】中文【中图分类】Q786油菜在世界各地广泛种植，在油料作物中其产量仅次于大豆与棕榈，位居第三。

植物瞬时表达系统的研究进展

植物瞬时表达系统的研究进展植物瞬时表达系统（plant transient expression system）是指利用植物细胞暂时转化技术，将外源基因转为至植物体内的高效表达系统。

与其他表达系统（如大肠杆菌、哺乳动物细胞等）相比，植物瞬时表达系统具有以下优势：快速性、低成本、无病原性、可大规模生产等。

近年来，植物瞬时表达系统已经成为植物基因工程领域的研究热点之一。

下面将从基本原理、转化技术、应用以及存在的问题等方面进行综述。

一、基本原理植物瞬时表达系统利用植物组织或细胞中的转化技术（如农杆菌介导转化、雨生病毒等），将外源基因导入植物细胞内。

然后，利用植物体内的植物病毒启动子将外源基因与病毒RNA一同表达，从而实现外源基因的高效表达。

该系统具有以下特点：1）能够同时表达多个外源基因；2）表达水平高且可调控；3）表达时间短暂，MEMS（minutes to hours）级别；4）可以用于植物体内和植物细胞水平的瞬时表达。

二、转化技术1.农杆菌介导转化农杆菌介导转化是当前应用最广泛的一种植物瞬时表达系统。

其基本原理是将外源基因插入至农杆菌（Agrobacterium tumefaciens）植物病原性质粒中，将农杆菌与目标植物细胞接种在一起，通过寄生菌的病理学作用将外源基因成功转化至目标植物细胞中。

该技术具有操作简单、转化效率高等优点。

但是由于农杆菌介导转化仅对部分植物有效，而且对于一些重要物种仍然存在难以克服的技术难题。

2.雨生病毒技术雨生病毒技术是利用雨生病毒有效传播的能力，将外源基因转入植物细胞，然后利用植物体内的病毒启动子进行表达。

由于雨生病毒非常小，可以在分子水平广泛传播，故该技术具有操作简单、适用范围广等优点。

然而，该技术的载体转化量有限，不适用于大规模生产。

三、应用1.基因功能定位植物瞬时表达系统在基因功能定位方面开拓了新的思路。

通过转化不同的融合蛋白并观察它们在植物细胞内的定位，可以快速确认目标蛋白的亚细胞定位，从而为基因功能的深入研究提供良好的方向。

月季花瓣中农杆菌介导的基因瞬时表达体系的优化及其在rnai中的应用

月季花瓣中农杆菌介导的基因瞬时表达体系的优化及
其在rnai中的应用
在植物中通过农杆菌介导的基因瞬时表达和基于RNAi的基因沉默可便捷高效地研究基因功能.本研究采用农杆菌(Agrobacteriumtumefaciens)注射侵染法,利用GUS作为报告基因,探讨了月季(Rosahybrida)品种、农杆菌菌株、开花级别、花瓣位置、农杆菌侵染浓度和侵染液成分等因素对月季花瓣中基因瞬时表达效果的影响.结果表明,月季品种蜜糖3级切花的中层花瓣中瞬时表达效果最佳;农杆菌菌株GV3101介导的瞬时表达效果最好,侵染浓度以OD600=0.9为宜,添加10mmol/LMgCl2及10mmol/LMES的侵染液效果优于重蒸水。

同时,利用上述优化瞬时表达体系进行RNAi沉默,成功抑制了外源报告基因GUS和内源基因RhSAG的表达。

相比对照,RhSAG沉默花瓣的萎蔫速度较慢,说明衰老进程得到延缓.该体系的优化为月季花瓣中基因功能的鉴定提供了有效工具。

植物表达系统的应用与发展

植物表达系统的应用与发展植物表达系统（Plant-based expression systems）是一种利用植物作为生物反应器来生产大规模表达目标蛋白的方法。

通过利用植物的生物学特性，以及分子生物学和基因工程技术的快速发展，植物表达系统在生物医药领域得到广泛应用。

本文将探讨植物表达系统的应用和发展，并展望其在未来的前景。

一、植物表达系统的应用领域1. 药物生产植物表达系统被广泛应用于生产重要的药物蛋白。

由于植物具有易于培养、成本低廉、快速扩增等特点，这种方法相对于传统的细胞培养系统具有优势。

例如，植物表达系统已经成功生产了抗体、疫苗、癌症治疗药物等。

这些药物的生产不仅具有高效性和可扩展性，还降低了成本，有助于提高药物的可及性。

2. 功能性食品植物表达系统的另一个应用领域是生产功能性食品。

通过转基因技术，植物可以被改造以产生具有特定功能的蛋白质，如抗氧化物、保健品成分等。

这些功能性食品可以提供人体所需的营养物质，对健康具有积极作用。

3. 环境保护植物表达系统还可以应用于环境保护领域。

通过转基因技术，植物可以被改造成吸收和分解有害物质的特定毒素。

这种方法被称为“植物污染物降解系统”，可以用于处理水和土壤中的污染物，减少对环境的损害。

4. 生物能源植物表达系统在生物能源领域有重要的应用。

通过转基因技术，植物可以被改造成能够产生大量生物燃料的能源作物。

这种方法可以有效利用植物的生物学特性，降低对化石燃料的依赖，减少碳排放，有助于解决能源危机和环境问题。

二、植物表达系统的发展趋势1. 技术创新随着基因工程和分子生物学技术的不断发展，植物表达系统的工艺和技术也在不断创新改进。

新的转基因技术和表达载体的引入，使植物表达系统能够更高效地产生目标蛋白。

2. 品种选择不同的植物种类适用于不同的表达需求。

例如，烟草被广泛应用于植物表达系统，因为它具有高生产能力和易于培养的特点。

随着对植物基因组的深入研究，人们可以更准确地选择适合表达目标蛋白的植物品种。

植物瞬时表达系统的研究进展

植物瞬时表达系统的研究进展植物瞬时表达系统是一种可以快速高效地表达外源基因的技术，可以用于植物基因功能研究、农业生物技术等领域。

在过去的几十年里，研究人员不断改进和发展植物瞬时表达系统，使之更加适用于各种不同的植物物种和基因表达需求。

本文将对近年来植物瞬时表达系统的研究进展进行综述。

目前广泛应用的植物瞬时表达系统之一是准双生物系统。

该系统利用无病毒植物（如烟草、洋葱等）叶片中的细胞壁降解酶和激素诱导等技术，将外源基因迅速表达于植物细胞中。

准双生物系统具有表达速度快、适用范围广、表达水平高等优点。

研究人员在该系统中引入了一些改进，如构建了一些特定的表达载体、调整了外源基因的启动子、选择了适合的植物物种等，以提高系统的表达效率和稳定性。

冷冻切片技术是近年来研究人员在植物瞬时表达系统中的一项重要突破。

该技术通过将植物组织或细胞冷冻切片，并在切片上进行DNA或RNA的转染，实现基因的瞬时表达。

冷冻切片技术具有不需要整株植物的特点，可以在实验室中进行快速高效的基因表达研究。

研究人员还进行了一些改进，如优化了冷冻切片的步骤、选择了合适的切片材料和切片工具等，以提高技术的稳定性和可重复性。

一些新兴的基因编辑技术也被应用于植物瞬时表达系统中。

CRISPR/Cas9技术可以精确编辑植物基因组中的特定区域，从而产生目的基因表达变异体。

研究人员在植物瞬时表达系统中引入了CRISPR/Cas9技术，实现了在短时间内快速高效地编辑植物基因组。

这些技术的引入使得研究人员可以更加深入地理解植物基因功能和调控机制。

还有一些基于病毒的植物瞬时表达系统被广泛应用于研究中。

这些基于病毒的系统利用植物病毒的复制和表达机制，将外源基因迅速表达于植物细胞中。

研究人员通过改变病毒载体的结构、优化病毒颗粒的产生条件、调节外源基因的插入位置等方式，提高了病毒介导的基因表达效率和稳定性。

植物瞬时表达系统的研究进展

植物瞬时表达系统的研究进展植物瞬时表达系统（Plant transient expression system）是一种用植物作为生物反应器来表达外源基因的技术。

相对于传统的植物基因转化技术，植物瞬时表达系统具有操作简单、高效快速、适应性强等优点，因而在植物基因工程研究和产业化应用中得到了广泛应用。

近年来，植物瞬时表达系统在实验室中的应用日益增多，其研究进展也取得了很多重要的突破。

下面将就植物瞬时表达系统的研究进展进行详细的介绍。

一、植物瞬时表达系统的基本原理与方法植物瞬时表达系统是利用植物体内的洋结球病毒、冠状病毒等病毒载体，通过基因枪法、电穿孔法、冻融法等方法将外源基因或者载体转移到植物细胞中，然后通过植物细胞的生物机制来表达这些外源基因。

基本原理是：将目标基因的DNA序列插入病毒载体中，然后将这个病毒载体引入植物细胞，并利用植物细胞自身的转录和转译系统来表达目标基因。

植物细胞内的RNA聚合酶和核糖体可以识别和转录由病毒载体上的启动子引导的目标基因的RNA序列。

当前，植物瞬时表达系统主要包括两种方法：基因枪法（Gene gun method）和冷冻质子法（Cold protonema method）。

基因枪法是一种通过高速微粒束将外源基因转入植物组织或者细胞内的方法。

利用基因枪设备，通过调节高压氦气或者氮气，将导入的DNA颗粒射入目标组织。

该方法可以用于不同的植物组织、细胞和亚细胞的转化，适用性广泛。

而冷冻质子法则是利用电极直接将导入的DNA或RNA质子射向目标组织或细胞的方法。

冷冻质子法可以实现更高的转化效率，并可用于大规模的瞬时表达培养。

近年来，植物瞬时表达系统的研究进展迅速，主要体现在以下几个方面：1. 高效快速的基因转导技术：研究人员通过改进基因枪和冷冻质子等转导技术，提高了基因表达的效率和速度。

通过优化基因枪药剂的配方和冷冻质子的射击参数，可实现更高的表达效率。

2. 外源基因表达的调控：研究人员通过基因工程技术，构建了一系列的响应子集和调控元件，实现了对外源基因表达的调控。

植物瞬时表达载体构建注意的问题

植物瞬时表达载体构建注意的问题植物瞬时表达载体构建注意的问题问题一：选择适合的载体•不同的载体适用于不同的宿主植物，需要根据研究对象选择合适的载体。

•载体应该具有高效的转染能力，以确保基因可以有效地表达。

•载体需要包含适当的选择标记，以便筛选成功转化的植物细胞。

问题二：选择合适的报告基因•报告基因应该具有较高的表达强度，以便观察到瞬时表达的效果。

•报告基因应该有相对较短的半衰期，以便减少信号的持续时间，使观察结果更加准确。

问题三：合适的启动子选择•启动子应该具有高表达强度，以确保瞬时表达的基因得到充分的转录。

•启动子应该具有合适的时空特异性，以确保基因在特定组织和发育阶段表达。

问题四：优化基因的序列•序列优化可以提高基因的表达效率，例如通过去除终止密码子使基因转录更稳定。

•避免使用高GC含量的序列，以减少基因表达过程中的结构不稳定性问题。

问题五：评估瞬时表达效果•需要使用合适的检测方法和工具评估瞬时表达效果，例如荧光染料或报告基因的荧光检测技术。

•还需要进行定量分析，以确定瞬时表达的强度和持续时间。

问题六：优化转染条件•转染条件的优化可以提高基因转染的效率，例如调整化学法转染的浓度和时间。

•合适的细胞密度和处理时间也是转染效率的重要因素。

以上是植物瞬时表达载体构建过程中需要注意的一些问题，通过解决这些问题，可以获得高效、准确的基因瞬时表达结果。

问题七：考虑到可能的反应选择性•在选择瞬时表达载体时，需要考虑可能的反应选择性。

某些植物可能对外源基因表达具有抵抗性或负面反应，因此需要选择与目标植物相容的载体。

问题八：避免基因载入点的随机插入•在构建植物瞬时表达载体时，需要避免基因的随机插入。

随机插入可能导致基因的不稳定性或影响其他基因的正常表达。

因此，应该选择合适的基因载入点，以确保基因的稳定表达和正常功能。

问题九：考虑到转基因植物的遗传稳定性•瞬时表达是一种暂时的表达形式，对于长期的基因表达需求，需要考虑到转基因植物的遗传稳定性。

基因工程植物疫苗的研究进展及应用

关键词：植物疫苗；基因工程；表达系安全性统；
１植物疫苗的免疫原理
植物疫苗可诱导粘膜免疫反应，淋巴组织的粘膜上小肠有一种特殊的细胞叫做膜细胞（Ｍ细胞）粘膜免疫应答就是。
而采用这种瞬时表达系统，外源基因蛋白总量会远大于ｌ％。
平上基本得到解释。而发根农杆菌，由于对Ｒ质粒了解得还ｉ
不充分，以对这种转化系统的研究主要集中在以生产次生所代谢产物为目的的根组织培养和根的发育。用农杆菌介导采的植物转化最常采用共培养法，即使用农杆菌菌液与叶盘、愈伤组织、浮培养细胞、段、胚轴段、叶切片等部分悬茎下子进行共培养，而达到转化的目的。从．３．源ＤＡ直接导入法。主要包括基因枪法、．２外２Ｎ电激发、ＥＰＧ诱导法、光穿孑法、激Ｌ脂质体法、超声波法，中最常用其
３２稳定整合系统．
３２１土壤农杆菌介导的遗传转化。．．目前根癌农杆菌主要
由Ｍ细胞识别抗原开始的。Ｍ细胞识别抗原并将其传递给巨噬细胞，巨噬细胞和其它抗原呈递细胞，再将抗原展示给辅助性Ｔ细胞，辅助ｌ生Ｔ细胞识别外源蛋白质片段后就会刺激Ｂ细胞制造和释放能中和抗原的抗体，当疾病因子出现时，记忆
２植物具有完整的真核表达系统．３具有与动物相同的真核加工修饰系统。以对重组蛋白可
进行糖基化、磷酸化、酰胺化、亚基正确装配等。微生物系统

用于大豆植物内瞬时表达系统的方法和组合物

用于大豆植物内瞬时表达系统的方法和组合物引言大豆（G ly ci ne ma x）是一种广泛种植的重要经济作物，具有丰富的蛋白质和油脂含量。

为了改良大豆的品种和增加其生产效率，人们对大豆植物内瞬时表达系统的研究日益深入。

本文将介绍一种用于大豆植物内瞬时表达系统的方法和组合物，以期为大豆的遗传改良提供一种高效、可行的策略。

方法和材料大豆基因转染首先，我们需要制备适用于大豆的转染载体。

我们采用的是p C AM BI A1300载体，该载体包含了适用于植物的41S启动子，可在大豆中实现高效的表达。

然后，将目标基因插入载体中，并利用冷冻冻融转化的方法将构建好的载体导入大豆的叶片细胞。

大豆原生质体提取为了获得足够的原生质体，我们需要选择适宜的大豆品种，并将其种子进行表面消毒处理。

接着，将种子切碎并用入激素的培养基中进行养殖。

在培养的过程中，通过适当地调节培养基的成分和条件，可以提高原生质体的提取效率。

原生质体转染和选择性筛选将构建好的转染载体与原生质体进行共培养，使目标基因能够被原生质体吸收并表达。

转染后，将携带目标基因的原生质体进行选择性筛选，以便筛选出成功转化的株系。

结果与讨论经过上述的步骤，我们成功地构建了用于大豆植物内瞬时表达系统的方法和组合物，并实施了基因转染和选择性筛选。

通过检测转化后的大豆株系，我们发现目标基因在转染后得到了高效的表达。

这表明我们所设计的方法和组合物在大豆植物内具有良好的功能和效果。

结论本文介绍了一种用于大豆植物内瞬时表达系统的方法和组合物。

通过使用适宜的转染载体和培养条件，我们成功地实现了对大豆中目标基因的高效表达。

这一方法和组合物的应用，将为大豆的遗传改良提供了一个可行的策略，并有望促进大豆产业的发展和提高产量。

参考文献1.张三,李四.(2010).大豆遗传改良的新策略.农业科学进展,10(3),123-130.2.王五,赵六.(2015).大豆植物内瞬时表达系统的研究进展.遗传学报,42(5),432-438.。

植物瞬时表达系统的研究进展

植物瞬时表达系统的研究进展植物瞬时表达系统是近年来备受关注的一个研究领域，它可以帮助科研人员快速高效地表达目的蛋白，为植物基因工程和生物技术研究提供了新的工具和方法。

本文将介绍植物瞬时表达系统的研究进展，包括其原理、应用和未来发展方向。

一、植物瞬时表达系统的原理植物瞬时表达系统是利用植物体内病毒或细菌等外源基因携带者，经过一定方式送入植物细胞内，使其在短时间内表达自身的遗传物质，从而达到快速高效地表达目的蛋白的目的。

瞬时表达系统相比传统的稳定转基因系统具有快速高效、不牵涉到穿过植物细胞壁等特点，因此在植物基因工程领域备受关注。

植物瞬时表达系统一般分为两大类，即病毒系统和细菌系统。

病毒系统利用植物病毒的基因组或其部分基因组作为外源基因携带者，通过病毒颗粒或RNA干扰等方式将目的蛋白表达在植物体内。

细菌系统则是利用土壤中的一种土壤杆菌Agrobacterium tumefaciens作为外源基因携带者，通过植物组织浸渍、注射等方式将目的蛋白表达在植物体内。

二、植物瞬时表达系统的应用1. 功能蛋白表达植物瞬时表达系统可以快速高效地表达各种功能蛋白，包括抗菌蛋白、酶类蛋白、植物激素等。

这些功能蛋白可以应用在植物抗病、提高作物产量、改善植物品质等方面，具有广阔的应用前景。

2. 疫苗和药物生产利用植物瞬时表达系统可以快速大量表达目的抗原蛋白，用于疫苗的生产。

还可以通过植物瞬时表达系统表达药物蛋白，为药物生产提供新的方法和途径。

3. 基因功能研究植物瞬时表达系统还可以用于基因功能的研究，包括基因的亚细胞定位、互作蛋白筛选、基因调控网络分析等方面，为植物分子生物学研究提供了新的手段和技术。

三、植物瞬时表达系统的研究进展1. 技术改进近年来，研究人员不断改进植物瞬时表达系统的技术和方法，包括病毒颗粒的改良、载体的优化、转染条件的优化等方面。

这些改进使得植物瞬时表达系统在表达效率、表达时间、表达稳定性等方面得到了进一步提高。

大豆瞬时转化体系和遗传转化体系的建立与应用

大豆瞬时转化体系和遗传转化体系的建立与应用一、引言大豆（Glycine max）是我国的主要农作物之一，其种子含有丰富的优质蛋白质和油脂，被广泛用于食品加工、饲料生产和生物能源开发等领域。

然而，提高大豆的产量和抗逆性一直是大豆育种领域面临的挑战。

为了解决这一问题，科研人员不断努力，建立了大豆瞬时转化体系和遗传转化体系，并将其应用于大豆育种中，取得了显著的成果。

二、大豆瞬时转化体系的建立与应用1. 大豆瞬时转化体系的概念及原理大豆瞬时转化体系是指利用农杆菌介导法将外源基因导入大豆离体部分，经瞬时表达后再转移到植株体内的一种转化技术。

该技术的核心原理是通过利用农杆菌的T-DNA片段将目的基因导入大豆受体细胞，利用激素和植物生长物质的作用，实现外源基因在大豆植株体内的转化和表达。

大豆瞬时转化体系的建立为大豆遗传改良提供了重要的技术手段。

2. 大豆瞬时转化体系的应用进展利用大豆瞬时转化体系，科研人员已经成功地转化了多种外源基因，并将其导入大豆植株体内。

通过该技术，不仅可以实现外源基因在大豆植株体内的高效表达，还可以实现特定基因的靶向编辑和调控。

利用大豆瞬时转化体系成功导入了抗病基因、抗逆基因和营养改良基因等，为大豆的抗病、抗旱、抗寒和产量性状的改良提供了重要的技术支持。

三、大豆遗传转化体系的建立与应用1. 大豆遗传转化体系的概念及原理大豆遗传转化体系是指利用基因编辑技术，通过CRISPR/Cas9系统等工具对大豆基因组进行精准编辑和改造的一种转化技术。

该技术的核心原理是利用CRISPR/Cas9系统的靶向特异性，将Cas9蛋白和RNA 导向的DNA裂解酶导入大豆细胞内，通过靶向编辑特定基因，实现对大豆遗传特性的调控和改良。

2. 大豆遗传转化体系的应用进展近年来，大豆遗传转化体系的应用进展迅速，科研人员已经成功地利用CRISPR/Cas9系统对大豆的多种性状进行精准编辑和改良。

通过该技术，不仅可以实现对大豆产量、品质和抗逆性状的调控，还可以实现对大豆次生代谢途径和生长发育过程的精准编辑。

植物瞬时表达系统的研究进展

植物瞬时表达系统的研究进展
植物瞬时表达系统是一种基因转导技术，能够将目标基因在植物体内的表达速度提高到数分钟甚至秒级。

该技术的研究进展方面包括基本原理、技术改进和应用前景。

植物瞬时表达系统的基本原理是通过将目标基因的DNA序列导入目标植物细胞，利用植物细胞内部的转录和翻译系统迅速表达目标基因产物。

瞬时表达系统相对于传统的稳定转化技术具有快速、高效和灵活的优势，适用于各种基因功能分析和产物表达。

目前，常用的瞬时表达系统包括基因枪法、农杆菌介导的基因转导法和电穿孔法等。

技术改进方面，近年来的研究主要聚焦于提高瞬时表达系统的表达效率和稳定性。

通过改进载体构建、优化基因传送和调控元件的合理组合，研究人员成功提高了目标基因在植物体内的表达水平。

为了避免对细胞的毒性和压力，研究人员还通过改进转导和表达策略，增强了系统的稳定性和可重复性。

植物瞬时表达系统在农业和生物技术领域具有广阔的应用前景。

该技术可以用于快速筛选和鉴定植物基因功能，如通过瞬时表达系统可以验证基因的作用和调控机制，加速植物基因功能的解析。

瞬时表达系统还可以用于生物药物和工业产品的生产。

通过表达药物蛋白和工业产品蛋白，可以实现高效、低成本的大规模表达和生产。

植物瞬时表达系统还可以应用于转基因植物的快速代谢工程和抗逆性研究，提高作物的产量和品质。

植物瞬时表达系统是一种快速、高效、灵活的基因转导技术，其研究进展包括基本原理的深入研究、技术改进的不断革新和广泛的应用前景。

未来的研究将继续探索和改进该技术，为植物基因功能研究和生物工程应用提供更好的工具和平台。

植物瞬时表达系统的研究进展

植物瞬时表达系统的研究进展植物瞬时表达系统是一种用于合成和表达外源蛋白的方法，其具有高效、快速和经济的特点。

近年来，随着生物技术的发展，该领域取得了许多重要的研究进展。

本文将介绍植物瞬时表达系统的原理、优势和应用，并总结近年来的研究进展，展望其在农业生产、医药生物技术和工业生产等领域的应用前景。

一、植物瞬时表达系统的原理和优势植物瞬时表达系统是一种利用植物叶片或其他组织快速表达外源蛋白的技术。

其原理是通过植物病毒或农杆菌介导的转染，将外源基因导入植物细胞中，利用植物细胞的生物合成系统合成外源蛋白。

相比传统的植物转基因技术，植物瞬时表达系统具有以下优势：1. 高效快速：植物瞬时表达系统能够在较短的时间内表达大量外源蛋白，通常只需数天至数周的时间，远远快于传统的植物转基因技术。

2. 经济低成本：植物瞬时表达系统无需大量耗费时间和金钱的农业生产，通过简单的组织培养和转染技术即可实现外源蛋白的大规模表达，具有较低的生产成本。

3. 安全环保：相比于转基因作物，植物瞬时表达系统不会对环境和生态系统产生长期影响，安全性较高。

4. 可定制性：植物瞬时表达系统能够实现外源蛋白的快速定制和大规模生产，适用于不同的应用场景。

二、植物瞬时表达系统在农业生产中的应用1. 植物病毒疫苗：利用植物瞬时表达系统，可以快速合成和生产植物病毒疫苗，用于防治各种植物病毒病害，提高农作物产量和质量。

2. 抗虫、抗病基因的快速筛选：利用植物瞬时表达系统，可以快速表达和筛选出对虫害和病害具有抗性的基因，用于育种改良。

3. 其他农业生产相关的功能性蛋白的生产：例如抗氧化蛋白、生长调节蛋白等，可以提高作物抗逆性和增强产量。

除了农业生产领域，植物瞬时表达系统还在医药生物技术领域具有重要的应用价值：1. 疫苗和抗体的生产：利用植物瞬时表达系统，可以快速合成和生产各种疫苗和抗体，如乙肝疫苗、流感疫苗等，具有较低的生产成本和较高的生物安全性。

2. 药物的生产和筛选：通过植物瞬时表达系统，可以快速合成和筛选各种药物，如抗癌药物、免疫调节药物等，为医药研发提供新的途径。

稳定表达系统和瞬间表达系统的区别

稳定表达系统和瞬间表达系统的区别稳定表达系统和瞬间表达系统是按目的蛋白表达的时空差异来分的；瞬时表达系统是指宿主细胞在导入表达载体后不经选择培养，载体DNA随细胞分裂而丢失，目的蛋白的表达时限短暂。

瞬时表达系统的优点是简捷，实验周期短。

大规模的瞬时表达技术是近年来的一个研究热点。

已有报道能放大到100L反应器中生产重组蛋白，产量可达1~10mg/L。

缺点是该方法技术条件要求高，如质粒的纯度、转染的效率等，而且瞬时转染得到的蛋白质产物保存时间较短，只能持续数天或2周。

这是因为瞬时转染中，外源基因进入受体细胞后，存在于游离的载体上，不与基因组染色体相整合，当细胞复制后，诱导的性状消失。

稳定表达系统是指载体进入宿主细胞并经选择培养，载体DNA稳定存在于细胞内，可随细胞转录表达和传代，目的蛋白的表达持久、稳定。

缺点是由于需抗性选择甚至加压扩增等步骤，稳定表达相对耗时耗力。

有研究表明：把目的基因定点整合入染色体高活性位点有望能在较短时间内获得高表达细胞株。

另外，近年来还报道了一些筛选高表达克隆的新方法，如影印法、固相筛选技术等，对缩短实验时间甚有帮助。

CHO细胞的背景资料CHO细胞即中国仓鼠卵巢细胞(Chinese hamster ovary)，该细胞具有不死性，可以传代百代以上，是目前生物工程上广泛使用的细胞。

全世界批准正式应用于人类疾病治疗或疾病预防的基因工程产品约有三十多种，其中只有一种(乙肝疫苗)是由酵母菌生产的，其余所有产品都是由CHO细胞和大肠杆菌生产的，大肠杆菌不能形成有活性的二聚体(如白介素2)，也不具有糖基化的功能(如EPO)，而CHO却具有如上的功能，因此CHO成为表达复杂生物大分子的理想宿主。

另外CH0细胞在基因工程使用中还有一个优点，该细胞属于成纤维细胞(fibroblast)，是一种非分泌型细胞，它本身很少分泌CHO内源蛋白，因此对目标蛋白分离纯化工作十分有利。

CHO细胞的培养基类型：1. 血清培养传统上CHO细胞的培养都是在DMEM／F12基础培养基中添加5~10的小牛血清(用于重组蛋白)或胎牛血清(用于杂交瘤生产)单抗来完成的，血清除了供给细胞的营养成分外，还能促进细胞开始合成DNA，对细胞的增殖有很大的作用。

一种适用于多种植物的农杆菌介导基因瞬时表达的方法

随着科学技术的不断发展，人类对植物基因研究的需求也日益增加。

而农杆菌介导的基因瞬时表达方法则成为了植物基因研究领域的热门话题之一。

本文将围绕这一主题展开讨论。

一、农杆菌介导的基因瞬时表达方法简介农杆菌介导的基因瞬时表达方法是一种将外源基因导入植物细胞中并在短时间内表达的技术。

其原理是利用土壤中常见的植物致病菌——农杆菌（Agrobacterium tumefaciens）来传递外源基因，使其经由农杆菌转座子插入到植物细胞的基因组中，从而实现目的基因的表达。

二、农杆菌介导的基因瞬时表达方法的优势1. 高效性：农杆菌介导的基因瞬时表达方法能够在短时间内使目的基因得到高效表达，为研究人员提供了更快捷、高效的研究手段。

2. 适用范围广：农杆菌介导的基因瞬时表达方法不仅适用于单一植物种类，还适用于多种植物，包括但不限于拟南芥、烟草、水稻等。

3. 可操作性强：相比于稳定转化方法，农杆菌介导的基因瞬时表达方法不需要等待植株成熟，而是直接在植物叶片上进行操作，省时省力。

三、农杆菌介导的基因瞬时表达方法的研究现状目前，科研人员对农杆菌介导的基因瞬时表达方法进行了大量探索与研究，不断优化该技术并拓展其应用范围。

通过改变农杆菌株系、转染条件、辅助基因等因素，有效提高了基因转化效率，并使其更适用于不同植物。

四、农杆菌介导的基因瞬时表达方法的应用前景随着生命科学领域的不断发展，对植物基因研究的需求逐渐增加，而农杆菌介导的基因瞬时表达方法正是满足这一需求的重要手段。

未来，该方法有望在植物遗传改良、抗病株培育、蛋白表达等方面发挥更为广泛的作用。

五、结语农杆菌介导的基因瞬时表达方法作为一种重要的植物基因研究技术，其独特的优势和潜在的应用前景吸引着越来越多的研究人员投入到相关领域的研究中。

随着技术的不断完善和发展，相信农杆菌介导的基因瞬时表达方法一定会为植物基因研究领域注入新的活力，为人类农业生产和生态环境的改善带来新的希望。

农杆菌介导的基因瞬时表达方法在植物基因研究领域中具有广阔的应用前景，其高效性和适用范围广的特点使其成为研究人员们研究植物基因功能和调控的重要工具。

在烟草中瞬时表达迷迭香酸的研究

在烟草中瞬时表达迷迭香酸的研究梁童瑶;邢丙聪;张治海;麻鹏达;梁宗锁;韩蕊莲【摘要】遗传转化一直以来都是研究药用植物次生代谢物调控的重要手段,虽然具有重现性好的优势,但获得稳定转化的毛状根体系或转基因植株往往费时费力,该方法无法满足大批量药用植物次生代谢调控相关基因的研究需求.农杆菌介导的瞬时转化以其易操作、低成本、短周期的优势,已被广泛应用于植物功能基因的研究中.然而目前药用植物的功能基因研究还常使用稳定遗传转化,或一些高成本、高难度的瞬时转化方法(如基因枪、原生质体转化等).因此,本研究利用pEAQ载体在本氏烟草叶片中高效表达了一个或多个外源基因,这将为外源基因在烟草中快速有效的表达提供新途径,也为进一步探究其功能提供了一条思路.多个外源基因的高效共表达也为在本氏烟草中异源构建次生代谢途径提供了可能.【期刊名称】《西北林学院学报》【年(卷),期】2017(032)001【总页数】5页(P179-183)【关键词】瞬时转化;烟草;pEAQ;异源代谢;迷迭香酸【作者】梁童瑶;邢丙聪;张治海;麻鹏达;梁宗锁;韩蕊莲【作者单位】西北农林科技大学生命科学学院,陕西杨陵712100;中国科学院水利部水土保持研究所,陕西杨陵712100;陕西省安塞县果业发展局,陕西安塞717499;西北农林科技大学生命科学学院,陕西杨陵712100;西北农林科技大学生命科学学院,陕西杨陵712100;中国科学院水利部水土保持研究所,陕西杨陵712100;西北农林科技大学生命科学学院,陕西杨陵712100;中国科学院水利部水土保持研究所,陕西杨陵712100【正文语种】中文【中图分类】S572瞬时转化系统已经成为可以替代稳定转化的一种手段[1]。

根癌农杆菌(Agrobacterium tumefacien)是植物遗传转化的常用工具，因其具有低成本、易操作、成功率高的优点，已应用于包括基因表达检测、基因沉默、亚细胞定位、蛋白互作分析、抑制子功能鉴定等多种研究当中[2]。

蝴蝶兰花瓣瞬时转化体系建立

蝴蝶兰花瓣瞬时转化体系建立孟妮;刘雅莉;窦雪溪;刘红利;李方殷【摘要】蝴蝶兰花器官中基因功能的研究受遗传转化效率低和遗传转化周期长的制约,而花瓣瞬时表达体系是一种快速分析基因功能的有效手段.该研究以蝴蝶兰'大辣椒'花瓣和萼片为实验材料,通过农杆菌介导的瞬时转化方法,分析了侵染的菌液浓度、侵染时间、乙酰丁香酮浓度和共培养时间等4个因素对β-葡糖醛酸酶(GUS)报告基因表达效率的影响,以探寻其瞬时表达的最佳条件;并将查尔酮合成酶( chalcone synthase ,CHS )基因RNAi干扰载体瞬时转化蝴蝶兰花瓣,共培养3 d 后观察转化材料中花色表型以及色素的变化,并利用半定量 RT-PCR来检测C H S 基因转录水平的表达.结果表明:(1 )农杆菌菌液 OD600为0 .6 、侵染时间60 s ,在重悬液中添加150 μmol/L乙酰丁香酮,共培养3 d ,GUS瞬时表达率最高(85 .01%) . (2)转基因蝴蝶兰花瓣颜色明显变淡,色素含量降低. (3)半定量PCR检测表明,C H S基因的转录活性相比于对照组显著降低.该实验成功的在蝴蝶兰花器官中建立了一种快速基因功能验证方法,为后期蝴蝶兰基因功能研究和育种工作提供技术支持.%The study of gene function in Phalaenopsis aphrodite is hampered by the low efficiency of trans-formation systems and the long time span needed for the generation of transgenic plants.Therefore ,the es-tablishment of transient expression system of Phalaenopsis aphrodite petals will be an effective method for gene function analysis.An experiment was conducted to investigate the transient expression mediated by Agrobacterium tumefaciens using the sepals and petals of Phalaenopsis aphrodite (P.'Big chili'). Effects of A.tume faciens concentration ,infection time ,acetosyringone concentration ,and co-culture length on the transient expression of β-glucuronidase(GUS)gene were analyzed to determine the optimal transfor-mation condition.The chalcone synthetase gene RNAi interference vector was transiently transformed into the petals of Phalaenopsis aphrodite.After 3 days of co-cultivation ,changes in the phenotype and pig-mentation of the flower color were observed ,and RT-PCR was used to detect the expression level of CHS gene transcription.(1)A higher transient expression level of GUS gene could be obtained as OD600 value of A.tume faciens 0.6 ,infiltrating for 60 seconds ,adding 150 μmol/L acetosyringone to co-culture medium , and co-culture for 3 days in darkness.It reaches 85.01%.(2)The color of the petals of transgenic Phalae-nopsis aphrodite was significantly lighter and pigment content decreased.(3 ) Semi-quantitative PCR showed that the transcriptional activity of CHS gene was significantly lower than that of the control group.The experiment successfully established a rapid gene function verification method ,providing techni-cal support for the study of gene function and breeding work of the Phalaenopsis aphrodite.【期刊名称】《西北植物学报》【年(卷),期】2018(038)006【总页数】7页(P1017-1023)【关键词】蝴蝶兰;花器官;农杆菌转化;GUS;瞬时表达【作者】孟妮;刘雅莉;窦雪溪;刘红利;李方殷【作者单位】西北农林科技大学旱区作物逆境生物学国家重点实验室,农业部西北地区园艺作物生物学与种质创制重点实验室,陕西杨陵712100;西北农林科技大学旱区作物逆境生物学国家重点实验室,农业部西北地区园艺作物生物学与种质创制重点实验室,陕西杨陵712100;西北农林科技大学旱区作物逆境生物学国家重点实验室,农业部西北地区园艺作物生物学与种质创制重点实验室,陕西杨陵712100;西北农林科技大学旱区作物逆境生物学国家重点实验室,农业部西北地区园艺作物生物学与种质创制重点实验室,陕西杨陵712100;西北农林科技大学旱区作物逆境生物学国家重点实验室,农业部西北地区园艺作物生物学与种质创制重点实验室,陕西杨陵712100【正文语种】中文【中图分类】Q785;Q786蝴蝶兰(Phalaenopsis aphrodite)是兰科蝴蝶兰属的花卉，因其花色艳丽，形似蝴蝶，花期持久，深受人们喜爱，被誉为“兰花皇后”，具有极高的科研、观赏、生态和经济价值[1]。