第五章 动物的麻醉
实验动物麻醉
实验动物麻醉所有可能引起实验动物疼痛或不适的实验方案都必须使用合适的麻醉剂、止痛剂和镇静剂。
如麻醉剂、止痛剂或镇静剂可能影响实验数据，该实验方案可不使用麻醉剂、止痛剂或镇静剂，但必须在实验方案中予以详细说明，并在实验动物管理委员会批准后方可开展相关实验。
包括动物品系、使用途径、体重、性别、动物健康状况、温度、其它同时使用的药物在内的多种因素影响麻醉剂、止痛剂或镇静剂的使用剂量和有效时间。
因此，在使用麻醉剂时必须时刻监测实验动物的麻醉深度，以防止过度麻醉导致动物死亡或麻醉不足无法缓解动物的疼痛。
足底反射、角膜反射、肌肉紧张和对皮肤夹捏的反应是检测动物麻醉深度的有用指标，在条件许可时，推荐测量动物心率、血压、呼吸频率及体温作为检测动物麻醉深度更为精确的指标。
使用麻醉剂时，一定要注意方法的可靠性，根据不同的动物选择合适的方法。
1．麻醉剂的用量，除参照一般标准外，还应考虑个体对药物的耐受性不同。
一般说，衰弱和过胖的动物，其单位体重所需剂量较小。
在使用麻醉剂过程中，特别是使用巴比妥类药物时，一般应首先使用较小剂量，随时检查动物的反应情况，并逐步提高剂量。
2．动物在麻醉期体温容易下降，要采取保温措施。
相比清醒的动物，麻醉后的动物反应相对迟钝。
因此，推荐使用循环水浴保温垫，不推荐使用照明灯、电加热器等不易控制温度的设备，以免灼伤实验动物。
3．静脉注射麻醉剂发挥作用速度快，静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应,当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
配制的药液浓度要适中，不可过高，以免麻醉过急；但也不能过低，以减少注入溶液的体积。
实验操作涉及腹腔注射时，不应使用腹腔注射麻醉剂。
4．气温较低时，麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平。
5．注射麻醉剂前12小时实验动物应禁食，以防止食物回流。
注射前3小时应限制饮水。
6．如需使用抗生素以防止术后感染，手术前1小时应肌肉注射抗生素，并于手术过程中静脉注射抗生素。
实验动物手术及麻醉
实验动物手术及麻醉一、概论实验操作过程为减轻动物的疼痛及紧迫，常需给予止痛或麻醉。
动物麻醉属医疗行为，因此不论是实验前对麻醉药物与方式的选择，或麻醉前中后对动物生理心理状态的评估，均需兽医师专业知识的建议。
动物的麻醉必须兼顾：（1）不影响实验结果；（2）临床实际可行；（3）避免动物承受非必要的痛苦。
适当的麻醉不但能减轻动物的痛苦，也能减少研究人员承受过多的精神压力。
1. 名词解释：♦Analgesia：止痛，对疼痛失去敏感性。
♦Tranquillization：精神安定，动物呈现一种行为改变状态，精神与动作迟缓，松懈，对周围环境的反应冷淡、对小疼痛常不在意。
♦Sedation：镇静，轻微程度的中枢神经抑制状态，保持醒觉，但安静。
♦Anesthesia：麻醉，以药物或其他方式抑制动物局部（周边性）或全体（中枢性）神经组织的活性，使动物部分或整个身体完全失去感觉作用。
♦Local anesthesia：局部麻醉。
♦General anesthesia：全身麻醉。
完全无知觉与感觉（中枢性）。
♦Surgical anesthesia：外科手术麻醉。
完全无知觉与感觉，并有充分的肌肉松弛和痛感消失。
2. 手术分类实验动物的手术可分为存活手术（Survival surgery）和不存活手术（Nonsurvival surgery）两类，前者指麻醉后或所有手术结束后动物还需生存着，后者指麻醉后或所有手术结束后动物即给与安乐死。
进行存活手术时，不论是剖腹、截肢或注射药物、处理伤口，皆需严格执行手术部位的剃毛消毒（beta-iodine scrub/alcohol），材料灭菌（autoclave）及无菌操作（surgical glove & aseptic operation）视实验需求动物可在术前注射抗生素以避免感染。
如进行不存活手术，虽不需存活手术般严格无菌操作，但至少要行操作部位的剃毛消毒和戴手套。
存活手术依对动物的影响程度区分为Major与Minor。
犬猫麻醉的基本流程
犬猫麻醉的基本流程
犬猫麻醉的基本流程如下：
麻醉对于犬猫手术和诊断过程中的疼痛管理是至关重要的。
正确的麻醉流程可以确保动物安全舒适地接受医疗处理。
首先，动物的麻醉过程始于评估和准备阶段。
兽医会对动物进行健康评估，包括检查心率、呼吸频率、体温和其他生理指标。
此外，兽医还会调查动物的病史，并根据需要进行血液检查、X光和其他影像学检查等。
这个阶段的目的是确保麻醉过程的安全性和有效性。
接下来是麻醉的诱导阶段。
通常，兽医会在诱导之前向动物注射镇静剂，以使其变得安静和放松。
然后，在兽医的监护下，动物会被移至安静、干净的麻醉室。
在麻醉室中，兽医会使用静脉穿刺技术将麻醉药物通过静脉注射进入动物体内。
这些药物会让动物迅速进入意识丧失的状态。
一旦动物进入麻醉状态，接下来是麻醉的维持和监测阶段。
兽医会继续监测动物的生命体征，如心率、呼吸频率、体温和血氧饱和度。
此外，麻醉期间还会监测动物的麻醉深度和其他重要的指标，以确保麻醉的稳定性和安全性。
最后，在手术或诊断程序完成后，麻醉过程会进入恢复阶段。
在这个阶段，兽医会停止给动物注射麻醉药物，并将其从麻醉状态中唤醒。
恢复阶段通常需要一定的时间，动物会逐渐恢复清醒并恢复到正常的生理状态。
麻醉恢复期间，兽医会继续监测动物的生命体征，以确保其顺利恢复。
总体而言，犬猫麻醉的基本流程包括评估和准备、诱导、维持和监测、以及恢复阶段。
这些步骤的目的是确保动物在手术和诊断过程中得到适当的疼痛管理和安全护理。
请记住，正确的麻醉流程应该由专业的兽医进行，并根据动物的特定情况进行个性化的处理。
动物的麻醉
3.5 动物的麻醉在急、慢性动物实验中，手术前均应将动物麻醉，以减轻或消除动物的痛苦，保持安静状态,从而保证实验顺利进行。
由于麻醉药品的作用特点不同，动物的药物耐受性有种属或个体间差异及实验内容及要求不同，因此正确选择麻醉药品的种类、用药剂量及给药途径十分重要。
理想的麻醉药品应当是对动物麻醉完善，其毒性和对生理功能干扰最小，使用方便。
3.5.1 麻醉前的准备工作(1)熟悉麻醉药品的特点根据实验内容合理选用麻醉药。
例如，乌拉坦对兔和猫的麻醉效果好，较稳定，不影响动物的循环及呼吸功能。
氯醛糖很少抑制神经系统的活动，适用于保留生理反射的实验。
乙醚对心肌功能有直接抑制作用，但兴奋交感肾上腺系统，全身浅麻醉时，可增加心输出量20％。
硫喷妥钠对交感神经抑制作用明显，因副交感神经功能相对增强而诱发喉痉挛。
(2)麻醉前应核对药物名称；检查药品有无变质或过期失效。
(3)狗、猫等手术前应禁食12小时，以减轻呕吐反应。
(4)需在全麻下进行手术的慢性实验动物，可适当给予麻醉辅助药。
例如，皮下注射吗啡镇静止痛，注射阿托品减少呼吸道分泌物的产生等。
3.5.2 全身麻醉(1)吸入麻醉挥发性麻醉药经面罩或气管插管进行开放式吸人麻醉。
常用的吸入麻醉剂是乙醚。
乙醚为无色易挥发的液体，有特殊的刺激性气味，易燃易爆，应用时应远离火源。
乙醚可用于多种动物的麻醉，麻醉时对动物的呼吸、血压无明显影响，麻醉速度快，维持时间短，更适合于时间短的手术和实验，如去大脑僵直、小脑损毁实验等，也可用于凶猛动物的诱导麻醉。
给狗吸入乙醚麻醉时可用特制的铁丝狗嘴套套住狗嘴，由助手将狗固定于手术台，术者用2~3层纱布覆盖狗嘴套，然后将乙醚不断滴于纱布上，使狗吸入乙醚。
狗吸入乙醚后，往往由于中枢抑制解除而首先有一个兴奋期，动物挣扎，呼吸快而不规则，甚至出现呼吸暂停，如呼吸暂停应将纱布取下，等动物呼吸恢复后再继续吸入乙醚，继后动物逐渐进入外科麻醉期，呼吸逐渐平稳均匀，角膜反射消失或极其迟钝，对疼痛反应消失，即可进行手术。
实验动物的麻醉方法
实验动物的麻醉方法
1．吸入法
麻醉药以蒸气或气体状态经呼吸道吸入而产生麻醉者，称吸入麻醉，常用乙醚作麻醉药。
吸入法对多数动物有良好的麻醉效果，其优点是易于调节麻醉的深度和较快的终止麻醉，缺点是中、小型动物较适用，对大型动物如犬的吸入麻醉操作复杂，通常不用。
具体方法是：使用乙醚麻醉兔及大小鼠时，可将动物放入玻璃麻醉箱内，把装有浸润乙醚棉球的小烧杯放入麻醉箱，然后观察动物。
动物开始自主活动，不久动物出现异常兴奋，不停地挣扎，随后排出大小便。
渐渐地动物由兴奋转为抑制，倒下不动，呼吸变慢。
如动物四肢紧张度明显减低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，则表示动物已进入麻醉状态，可行手术和操作。
在实验过程中应随时观察动物的变化，必要时把乙醚烧杯放在动物鼻部，以维持麻醉的时间与深度。
2．腹腔或静脉麻醉剂量及麻醉方法
大、小鼠和豚鼠常采用腹腔注射法进行全身麻醉。
犬、兔等动物既可腹腔注射给药，也可静脉注射给药。
在麻醉兴奋期出现时，动物挣扎不安，为防止注射针滑脱，常用吸入麻醉法进行诱导，待动物安静后再行腹腔或静脉穿刺给药麻醉。
在注射麻醉药物时，先用麻醉药总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，如已达到所需麻醉的程度，余下的麻醉药则不用，避免麻醉过深抑制延脑呼吸中枢导致动物死亡。
非挥发性和中药麻醉料均可用作腹腔或静脉注射麻醉，操作简便，是实验室常用的方法之一。
腹腔给药麻醉多用于大小鼠和豚鼠，较大的动物如兔、犬等则多用静脉给药进行麻醉。
由于各种麻醉剂的作用长短以及毒性的差别，所以在腹腔和静脉麻醉时，一定要控制药物的浓度和注射量。
表1-5 常用麻醉剂的用法及剂量。
动物麻醉剂及麻醉剂量
动物麻醉方法及给药剂量一、动物麻醉的目的1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态，但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制，使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。
甚至引起动物死亡或休克。
2.防止动物伤害实验操作者。
3.基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。
二、麻醉的类型和方法1.1制，（挣扎），23犬嘴上。
空气。
非吸入麻醉：该方法是一种简单方便能够让动物很快进入麻醉期，而且没有明显的兴奋期麻醉方法。
一般采用注射的方法，有静脉注射、肌肉注射、腹腔注射等。
静脉注射、肌肉注射主要用于较大的动物的麻醉，如兔、猫、猪、犬等；腹腔注射多用于较小动物的麻醉，如小鼠、大鼠、沙鼠、豚鼠等。
静脉注射的部位是：兔、猫、猪由耳缘静脉注射，犬由后肢静脉注射，小鼠、大鼠由尾静脉注射。
肌肉注射多选择臀部。
腹腔注射部位约在腹部后1/3处略靠外侧（避开肝脏、膀胱）。
麻醉注意药物的浓度和使用量，后面的内容中介绍。
动物经注射麻醉药物后约几分钟到下，全身无力，反映消失，表明已经达到适宜的麻醉效果，是手术最佳的时间。
接近苏醒时，动物的四肢开始抖动，此时如果手术没有结束可采用乙醚麻醉。
在手术过程中如果发现动物抽搐、排尿，说明动物麻醉过深，是死亡的前兆，应立即进行急救。
动物做完手术后应注意保温，促使其苏醒。
注意事项1）麻醉前注意：动物应禁食，大动物禁食10~12小时；不能使用泻剂，因为泻剂可降低血液的碱储，增加血液和组织的酸度，在麻醉和失血时容易发生酸中毒，容易降低损伤组织的抗感染能力；用犬做长时间的实验（1小时以上）时应灌肠，排除粪便；应检查麻醉剂质量、数量是否满足要求，麻醉固定器是否破损，深度麻醉应准备23以阻各? 论。
动物麻醉技术
动物麻醉技术4.麻醉技术实验动物的麻醉就是用物理的或化学的方法，使动物全身或局部暂时痛觉消失或痛觉迟钝，以利于进行实验。
在进行各类动物实验时，各种强刺激（疼痛）持续地传入大脑皮质，会引起大脑皮质的抑制，使其对皮质下中枢的调节作用减弱或消失，致使机体生理机能发生障碍，甚至发生休克及死亡。
另一方面，许多实验动物性情凶暴，容易伤及操作者。
因此，动物实验时，动物的麻醉是必不可少的。
动物的麻醉与人类的麻醉有不同之处，特别是麻醉毒性、副作用、使用剂量等方面是与人类有差别的，不能完全通用。
麻醉剂主要作用是抑制中枢神经系统，减除或减轻动物的疼感，但仍保持延髓（呼吸、心血管运动中枢）和平滑肌组织的功能。
应用麻醉药物使动物入睡，反射活动降低或部分消失，肌肉微松弛者称浅（不完全）麻醉，而使动物呈深睡状态，反射消失及肌肉松驰，则称为深（完全）麻醉。
后者多用于身体状况良好，手术实验复杂的情况。
动物麻醉的方法有全身麻醉、局部麻醉、针刺麻醉、复合麻醉、低温麻醉等。
一般实验室所采用的大部分是全身麻醉。
这里重点介绍一下动物全身麻醉的有关技术。
（一）全身麻醉前的准备在实施全身麻醉时，以下几个问题不容忽视：①动物禁食10～12小时。
不能少于8小时。
②麻醉前不能使用泻剂。
因为泻剂可导致降低血液的碱储，从而增加血流和组织的酸度，在麻醉和失血情况下，易发生酸中毒并能降低损伤组织的抗感染能力。
③麻醉后的动物必须保持气道的通畅和组织（眼球、舌、肠等器官）的营养。
④犬做长时间实验前1小时应灌肠排除积粪。
⑤应检查麻醉剂质量、数量是否满足要求，麻醉保定器具是否有破损（漏气或堵塞），有关麻醉中毒急救品和器材是否准备齐妥，以应急需。
（二）全身麻醉的方法全身麻醉的常用方法主要有吸入麻醉和非吸入麻醉。
1.吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体麻醉剂经呼吸道吸入动物体内，从而产生麻醉效果的方法。
吸入麻醉剂常用的有乙醚、氟脘、甲氧氟脘、氯仿等。
气体麻醉剂常用氧化亚氮、环丙烷等。
畜牧麻醉药品管理制度范本
第一章总则第一条为了加强畜牧麻醉药品的管理，确保动物用药安全，预防兽药滥用，根据《中华人民共和国兽药管理条例》及有关法律法规，制定本制度。
第二条本制度适用于从事畜牧生产、养殖、兽医诊疗活动的单位和个人。
第三条本制度所称畜牧麻醉药品，是指用于动物麻醉、镇痛、镇静、催眠、抗惊厥等目的的药品。
第二章药品采购与验收第四条购买畜牧麻醉药品，必须从具有兽药生产、经营许可证的企业购买，并索取相关证明文件。
第五条购进畜牧麻醉药品时，应仔细核对药品名称、规格、批号、有效期、生产厂家等信息，确保药品质量。
第六条药品验收人员应认真检查药品包装、标签、说明书等，确认无误后方可入库。
第三章药品储存与保管第七条畜牧麻醉药品应储存在专用仓库，仓库应通风、干燥、避光，保持清洁卫生。
第八条仓库内应配备防火、防盗、防潮、防鼠、防虫等设施，确保药品安全。
第九条畜牧麻醉药品应分类存放，不得与其他药品混放。
第十条药品储存应实行双人管理，出入库应做好记录。
第四章药品使用与调配第十一条动物诊疗人员使用畜牧麻醉药品，必须遵守兽药处方制度，开具处方并经兽医处方审核合格后方可使用。
第十二条动物诊疗人员应严格按照药品说明书规定的用法、用量、疗程使用畜牧麻醉药品。
第十三条动物诊疗人员应掌握畜牧麻醉药品的适应症、禁忌症、不良反应等信息，确保用药安全。
第十四条动物诊疗人员应定期对畜牧麻醉药品的使用情况进行检查，确保合理用药。
第五章药品废弃与销毁第十五条动物诊疗过程中，废弃的畜牧麻醉药品应按照国家规定进行处理。
第十六条废弃的畜牧麻醉药品应集中存放，不得随意丢弃。
第十七条废弃的畜牧麻醉药品应在兽医监督下进行销毁，并做好记录。
第六章监督检查与责任追究第十八条有关单位和个人应自觉遵守本制度，接受兽医行政管理部门的监督检查。
第十九条违反本制度，有下列情形之一的，由兽医行政管理部门依法予以处罚：（一）未按规定采购、验收畜牧麻醉药品的；（二）擅自改变畜牧麻醉药品储存条件的；（三）擅自使用、调配、销售畜牧麻醉药品的；（四）未按规定处理废弃畜牧麻醉药品的。
动物麻醉
注意补液
维持体液平衡，防止酸中毒及肺水肿的发 生。
麻 醉 剂
动
物
给药方法
剂 量 （mg/kg） mg/kg）
常 用 浓 度% 3 3 2 2 1 1 30 20
维 持 时 间
戊巴比妥 钠
狗、兔 大、小鼠、豚 小鼠、 鼠
静脉 腹腔 腹腔 静脉 腹腔 腹腔 静脉
30 4040-50 4040-50 1515-20 40 1515-20 750750-1000
注意体重与麻醉剂量的关系
麻醉前一定要先称动物体重，然后严格按 照参考剂量给药。
注意给药速度
静脉给药时，注射速度应缓慢；或者药量的 静脉给药时，注射速度应缓慢；或者药量的 前一半快速注入，使其迅速度过兴奋期，后一 半药缓慢注入。如果没有把握，最好不要给全 量，麻醉稍浅可追加药量，否则注射过速，用 药过量，易导致动物死亡。注射同时观察肌肉 药过量，易导致动物死亡。注射同时观察肌肉 紧张性、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这 紧张性、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这 些活动明显减弱或消失时，立即停止注射。配 制的药液浓度要适中，不可过高，以免麻醉过 急；但也不能过低，以减少注入溶液的体积。
注意保温
麻醉期间，动物的体温调节机能往往受到 抑制,体温下降，影响实验的准确性。此时常需 采取保温措施（电褥，台灯照射等）。
常用实验动物正常体温: 常用实验动物正常体温: 犬为39.0℃± 犬为39.0℃±5.0℃ 兔为38.4℃± 兔为38.4℃±1.0℃ 大鼠为39.3℃±0.5℃。 大鼠为39.3℃±0.5℃。
乌拉坦 兔 静脉 1g/Kg 20%（5ml/Kg） 25%（4ml/Kg） 30%（3.3ml/Kg） 戊巴比妥钠 犬兔 静脉 30mg/Kg 3%（1ml/Kg） 腹腔 40-50mg/Kg 3%（1.33-1.67ml/kg） 硫喷妥钠 犬兔 静脉 15-20mg/Kg 2% （0.75-1ml/Kg） 2.5%（0.6-0.8ml/Kg） 现用现配，由于对腹膜刺激大，不宜腹腔注射。
动物麻醉协议书
动物麻醉协议书动物麻醉协议为了保障动物麻醉过程的安全与合规性，确保动物在手术、治疗或其他麻醉操作中不受痛苦和伤害，特制定本《动物麻醉协议》。
第一章：目的和适用范围本协议的目的是确保动物麻醉操作的科学性、安全性和合规性，规范相关麻醉操作，保护动物权益。
本协议适用于实验室动物、养殖动物和宠物等动物的麻醉操作。
第二章：麻醉团队1. 麻醉团队应由具备专业知识和资质的麻醉医生、兽医和相关技术人员组成。
2. 麻醉医生应具备相关医学院校的学历背景和合法执业证书，并具备动物麻醉处理的经验。
第三章：麻醉前操作1. 在动物麻醉前，麻醉医生应全面评估动物的健康状况、年龄、体重和麻醉所需的剂量。
2. 麻醉医生应依据动物的特定需求选择适当的麻醉药物，并对麻醉药物的安全性和使用方法进行充分了解。
第四章：麻醉操作1. 麻醉医生应在安全、洁净的麻醉环境下进行麻醉操作，确保操作台和工具的卫生和消毒。
2. 麻醉医生应使用安全、可靠的麻醉设备和监测仪器，密切监测动物麻醉过程中的心率、血压、呼吸和体温等生命体征指标。
3. 麻醉医生应遵循合适的麻醉操作流程，准确掌握麻醉的用药剂量和时间，并避免超量使用或过长时间的麻醉。
第五章：麻醉后护理1. 麻醉医生应在动物清醒后提供适当的护理，如保暖、监测和观察，并注明观察期限和特殊护理要求。
2. 麻醉医生应对可能出现的麻醉并发症进行判断和预防，及时采取必要的救治措施。
第六章：文件记录和报告1. 麻醉医生应详细记录麻醉操作的每个环节，包括麻醉前准备、用药剂量、监测情况和麻醉后护理等，并及时填写麻醉单。
2. 麻醉医生应及时向研究人员、养殖场主或宠物主人提供麻醉操作的相关报告和统计数据。
第七章：风险评估和管理1. 麻醉医生应在麻醉操作前对可能存在的麻醉风险进行评估，并制定相应的风险管理计划。
2. 麻醉医生应在发现麻醉操作存在风险或不安全因素时立即采取措施，防止麻醉意外发生，并及时上报和处理相关风险事件。
第八章：法律与伦理责任1. 麻醉医生应严格遵守国家法律法规和伦理规范，在进行麻醉操作时保护动物权益。
实验动物的麻醉方法知识
实验动物的麻醉方法知识 This model paper was revised by the Standardization Office on December 10, 2020实验动物的麻醉方法麻醉（anesthesia）的基本任务是消除实验过程中所致的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药（一）常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用％～％溶液作局部浸润麻醉。
（二）常用全身麻醉剂：1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法，各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大，所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大，可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用。
因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品（基础麻醉），通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡（每公斤体重1～2mg）及阿托品（每公斤体重）。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用，麻醉后可以先进行气管切开术，通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小（如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。
并施行必要的人工呼吸。
动物医学麻醉实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本实验旨在了解和掌握动物医学麻醉的基本原理、常用麻醉药物及其作用特点，熟悉动物麻醉前的准备工作、麻醉方法的操作步骤以及麻醉后的观察与护理。
通过本实验，提高动物医学专业学生的实践操作技能和临床思维能力。
二、实验材料与器材1. 实验动物：家兔2只2. 器材：麻醉机、气管插管、注射器、针头、开口器、喉镜、心电图仪、血压计、温度计、呼吸机、生理盐水、普鲁卡因、氯胺酮、硫酸阿托品、硫酸镁等。
三、实验方法1. 麻醉前准备（1）观察动物的精神状态、呼吸、心跳、体温等生命体征。
（2）对动物进行编号、称重，记录基本信息。
（3）对动物进行禁食禁水，防止麻醉过程中发生呕吐。
（4）准备实验药品和器材。
2. 麻醉方法（1）静脉注射氯胺酮（剂量：5mg/kg），观察动物的反应。
（2）静脉注射硫酸阿托品（剂量：0.01mg/kg），观察动物的反应。
（3）静脉注射硫酸镁（剂量：0.1mg/kg），观察动物的反应。
（4）静脉注射普鲁卡因（剂量：5mg/kg），观察动物的反应。
（5）将动物放入麻醉机，调节氧流量，连接呼吸机，观察动物的生命体征。
3. 麻醉观察与护理（1）观察动物的呼吸、心跳、血压、体温等生命体征，确保麻醉深度适宜。
（2）观察动物的反应，如是否有躁动、呕吐、抽搐等，及时调整麻醉深度。
（3）保持动物呼吸道通畅，防止窒息。
（4）注意动物体温变化，必要时给予保暖措施。
（5）观察麻醉恢复情况，及时处理可能出现的并发症。
四、实验结果与分析1. 麻醉前，动物的精神状态良好，呼吸、心跳、血压、体温等生命体征正常。
2. 静脉注射氯胺酮后，动物表现为兴奋、肌肉松弛，随后进入睡眠状态。
注射硫酸阿托品后，动物出现口干、心率加快等反应。
注射硫酸镁后，动物出现肌肉松弛、呼吸抑制等反应。
注射普鲁卡因后，动物表现为疼痛反应，随后进入睡眠状态。
3. 在麻醉过程中，动物的生命体征稳定，呼吸、心跳、血压、体温等指标在正常范围内。
动物无躁动、呕吐、抽搐等不良反应。
实验动物的麻醉
心血管系统影响
麻醉药物可能对心血管系统产生抑制作用， 导致血压下降和心律失常。
苏醒延迟
过量或不当使用麻醉药物可能导致动物苏醒 延迟，增加管理难度和风险。
麻醉操作的风险和并发症
注射疼痛和应激反应
注射麻醉药物可能导致实验动 物出现疼痛和应激反应，影响
实验结果。
意外插管和气道梗阻
在麻醉过程中，可能发生意外 插管、气道梗阻等并发症，导 致窒息或呼吸衰竭。
02
实验动物麻醉方法
吸入麻醉
吸入麻醉是将气体或挥发性液 体麻醉剂通过呼吸系统进入动 物体内，抑制中枢神经系统的 功能，产生全身麻醉的效果。
吸入麻醉的优点是操作简便、 麻醉效果好、对循环系统影响 较小，适用于各种实验动物。
常用的吸入麻醉剂有氟代烃类 、乙醚、氨等。
吸入麻醉的缺点是麻醉深度不 易控制，且需要专门的麻醉设 备。
常用的监测指标包括呼吸频率、 心率、血压、体温等。
麻醉监测有助于及时发现并处理 实验动物在麻醉过程中的异常情
况，保证实验的顺利进行。
03
实验动物麻醉的安全与风 险
麻醉药物的毒性和副作用
呼吸抑制
麻醉药物可能导致呼吸频率和通气量降低， 引发缺氧和二氧化碳潴留。
肝肾功能损伤
某些麻醉药物可能导致肝肾功能损伤，影响 药物的代谢和排泄。
目的
确保实验动物在实验过程中保持 安静、无痛、无恐惧，同时减少 动物的应激反应，以便更准确地 观察实验结果。
实验动物麻醉的重要性
01
02
03
保护动物福利
麻醉可以减少动物在实验 过程中的痛苦和恐惧，符 合动物伦理和福利的要求 。
实验准确性
麻醉可以减少动物的应激 反应，使实验结果更加准 确可靠。
实验动物的麻醉方法知识
实验动物的麻醉方法知识Document serial number【KK89K-LLS98YT-SS8CB-SSUT-SST108】实验动物的麻醉方法麻醉（anesthesia）的基本任务是消除实验过程中所致的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药（一）常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。
（二）常用全身麻醉剂：1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法，各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大，所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大，可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用。
因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品（基础麻醉），通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡（每公斤体重1～2mg）及阿托品（每公斤体重0.1mg）。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用，麻醉后可以先进行气管切开术，通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小（如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。
并施行必要的人工呼吸。
待恢复自动呼吸后再进行操作。
动物麻醉注意事项
动物麻醉注意事项动物麻醉是在动物身上使用药物或其他方法，使其失去知觉、感觉和运动能力，以便进行疾病诊断、治疗或进行研究。
动物麻醉是一个复杂的过程，需要严格控制和监测，以确保安全和有效性。
以下是关于动物麻醉的注意事项：1. 麻醉前评估：在动物接受麻醉之前，必须进行一次全面的健康评估。
这包括检查动物的体重、年龄、性别、生理状态、已知的疾病或其他潜在的健康问题。
评估结果将有助于选择合适的麻醉药物和麻醉方法，并预测可能出现的并发症。
2. 麻醉药物的选择：选择合适的麻醉药物是非常重要的。
常见的麻醉药物包括各类特异性麻醉药（如异氟醚、地氟醚）、镇静药（如冈泰、异丙酚）、肌肉松弛剂和镇痛药物等。
对于特殊种类的动物（如老年动物、孕妇动物、幼崽等），需要格外小心地选择麻醉药物，并调整用药剂量。
3. 麻醉过程监测：在动物接受麻醉过程中，必须进行全程监测。
这包括监测心率、呼吸频率、血压、体温和动物的体位等。
现代的麻醉监测技术包括心电图、无创性血压测量、呼气末二氧化碳测量等。
监测数据反映动物的生命体征，可以及时发现并处理麻醉中的问题。
4. 气道管理：在动物麻醉中，维护通畅的气道是十分重要的。
使用管道插入气管（气管插管）可以确保动物正常呼吸。
气管插管需要专业人员进行，以免对动物造成不必要的伤害。
对于一些麻醉时间较短的小型动物，可以使用面罩进行气管暂时管理。
5. 麻醉深度调整：在麻醉过程中，需要根据动物的反应和生理指标来调整麻醉深度。
麻醉太深或太浅都可能对动物造成危害。
过度麻醉可能导致心律失常、心跳骤停，而麻醉过浅则会让动物感到疼痛和恐惧。
6. 术后护理：动物在麻醉后需要进行妥善的术后护理。
这包括提供舒适的休息环境，观察动物的醒来过程，并进行疼痛管理。
合理的术后管理有助于动物尽快恢复健康并减少并发症的概率。
7. 安全措施：在进行动物麻醉时，必须采取安全措施以确保人员和动物的安全。
这包括佩戴合适的防护装备（如手套、口罩、护目镜等）、正确使用麻醉设备和药品、正确处置废弃物等。
动物的给药、麻醉、处死术
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实验方法
一、经口给药
（一）口服给药 将药物添加到饲料或饮水中，让动物自由
采食的方法。
（二）灌胃给药
是指借助器械将药物直接灌入动物胃内的方法。注意操作时 不要损伤动物。一次给药量小鼠（20-24）0.5ml，大鼠 (100-199)3ml，豚鼠（250-300)4-6ml，兔(2000-3000)100150ml。
此法适用于犬的静脉给药。
（12）蟾蜍淋巴囊内注射
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三、呼吸道给药
呼吸道给药主要指大鼠、 小鼠而言的。粉尘、气体 或烟雾等状态的受试物需 通过呼吸道给药。
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四、涂布给药
大鼠、小鼠常采用浸尾方式经尾皮给药， 从而定性地判定药物或毒物经皮肤的吸收 作用。豚鼠、家兔涂布给药的部位通常为 脊柱两侧的背部皮肤，给药部位需脱毛后 24h方可给药。
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（2）皮内注射给药
接种、过敏实验等一般作皮内注射。先将 注射部位的被毛剪掉，局部常规消毒，左手拇 指和食指按住皮肤使之绷紧，将针头与皮肤呈 30°角，紧贴皮肤皮层刺入皮内，针头的横断 面朝上，针头进入皮肤浅层，再向上挑起并稍 刺入，将药液注入皮内。注射后皮肤出现一白 色小皮丘，而皮肤上的毛孔极为明显。注射量 为0.1ml/次。
五、直肠给药和阴道给药
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不同种类实验动物不同给药方法一次给药能耐受的最大容量（ml）
动物名称 灌胃给药 皮内注射 皮下注射 肌肉注射 腹腔注射 静脉注射
小鼠 0.9
0.1
1.5
0.2
1
0.8
大鼠 5.0
0.1
小动物麻醉管理PPT课件
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预后 极好 好 较好
差 谨慎
表 2 预后判断标准
标
准
1. 潜在的术后并发症极小
2. 术后动物恢复正常的可能性极高
1. 存在一些潜在的并发症
2. 动物恢复的可能性高
1. 可能有严重的并发症但不常见
2. 恢复的时间可能延长
3. 动物可能回复不到术前的功能
1. 有许多或有严重的并发症
2. 恢复时间将延长
3 天以下，10 岁以上
ASAⅤ
濒死的，无论手术与否生命难以维持 24 小时
病例 去势，绝育等 髌骨脱位，皮肤肿瘤轻度低 血糖等 肺炎，中度发热，中度脱水， 贫血，心脏杂音，轻度肾病 等 心力衰竭，肾脏衰竭，肝脏 衰竭，大出血，血容量过低， 严重脱水等 内 毒 素 性休 克 ，多 器 官 衰 竭，严重外伤等
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既往病史
目前疾病的病因：严重程度，发病时间，持续时间，以及相关 的临床表现，都应该查清楚。尤其是有在来诊所最近发生外科损伤 和呕吐的情况。
以往用药的情况：详细的询问以前是否对麻醉有什么副作用 全身状况：被毛，皮肤弹性，营养状况（肥胖动物 – 按照瘦体 重来估算麻醉剂的用量；偏瘦的动物：含有肌肉较少，因此吸收麻 醉药物的能力较低：多数药物仍在血液中（& 脑部：- 苏醒时间延 长） 神经系统，心血管系统：（安静的动物：肌肉内血流较少，脑 部血流多 – 低剂量药物即可快速的开始麻醉；应激的动物： 肌肉 内血流较多，脑部血流较少，麻醉开始较慢 & 需要较高剂量药物） 胃肠道系统：胃口怎么样 喝水的情况有否变化 有没有下痢，呕 吐
高。
• 实施麻醉时，动物健康水平，对于麻醉的结果有很大的
影响。
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分类 ASAⅠ ASAⅡ
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配合麻醉法 在采用全身麻醉的 在采用全身麻醉的 同时配合应用局部麻醉。 同时配合应用局部麻醉。
二、根据麻醉强度 浅麻醉( 浅麻醉(1ight anesthesia) 给予较少量麻醉剂使家畜入睡、 给予较少量麻醉剂使家畜入睡 、 反射 活动降低或部分消失， 活动降低或部分消失，肌肉轻微松弛 深麻醉(deep 深麻醉(deep anesthesia) 给予麻醉剂后， 给予麻醉剂后 ， 使家畜出现反射消失 和肌肉松弛的深睡状态。 和肌肉松弛的深睡状态。
四、根据麻醉方法的发展
安定无痛 (neuroleptanalgesia) 把安定药和镇痛药配合应用达到 把安定药和镇痛药配合应用 达到 麻醉目的， 麻醉目的 ， 其特点是对大脑皮层抑制 较轻微， 毒性小而安全， 较轻微 ， 毒性小而安全 ， 对心血管系 统影响也较小， 统影响也较小 ， 临床上应用的如镇痛 药埃托啡(Atropine) 药埃托啡(Atropine)和安定药乙酰普马 嗪配合组成的保定灵(Immobilon)。 嗪配合组成的保定灵(Immobilon)。
2.全身麻醉 (general anesthesia) 2.全身麻醉
利用某些药物对中枢神经系统 产生广泛的抑制作用，从而暂时 产生广泛的抑制作用， 地使机体的意识、感觉、反射和 地使机体的意识、感觉、 肌肉张力部分的或全部丧失的一 种麻醉方法。 种麻醉方法。
单纯麻醉 单纯采用一种全身 麻醉剂施行麻， 扩大麻 减低其毒副作用， 醉药的应用范围而选用几种麻 醉药联合使用 醉药联合使用。 使用。
三、根据麻醉剂进入体内的方法
吸入麻醉( 吸入麻醉(inhalation anesthesia) anesthesia) 非吸入麻醉(non非吸入麻醉(non-inhalation anesthesia)
• • • • •
静脉内麻醉法( 静脉内麻醉法(intravenous anesthesia) anesthesia) 肌肉内麻醉法( 肌肉内麻醉法(intramuscular anesthesia) anesthesia) 内服麻醉法( 内服麻醉法(oral anesthesia) anesthesia) 直肠内麻醉法(rectal anesthesia) 肠内麻醉法( anesthesia) 腹腔内麻醉法( 腹腔内麻醉法(intraperitoneal anesthesia) anesthesia)
•临床上常用的氯胺
酮 (Ketamine) 即是典 (Ketamine)即是典 型的分离麻醉剂。 型的分离麻醉剂。
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分离麻醉 (dissociative anesthesia)
• 既不对整个神经系统发生明显抑制 ， 既不对整个神经系统发生明显抑制，
也不作用于网状结构。 也不作用于网状结构。
• 特点是阻断大脑联络径路和丘脑向
皮层的辐射， 皮层的辐射 ， 仅暂短和轻微的抑制 网状激活系统、 边缘系统， 网状激活系统 、 边缘系统 ， 所以一 些保护性反射依然存在， 些保护性反射依然存在 ， 麻醉的安 全度较高。 全度较高。
混合麻醉 在复合麻醉中，同时 在复合麻醉中， 注入两种或数种麻醉剂的混合物 以达到麻醉的方法 合并麻醉 在复合麻醉中，间隔 在复合麻醉中， 一定时间， 一定时间，先后应用两种或两种以 上麻醉剂的麻醉方法。 上麻醉剂的麻醉方法。 醉剂的麻醉方法
基础麻醉和维持麻醉
在合并麻醉中，于使用麻醉剂之前， 在合并麻醉中，于使用麻醉剂之前，先 用一种中枢神经抑制药达到浅麻醉 用一种中枢神经抑制药达到浅麻醉，再 神经抑制药达到浅麻醉， 用麻醉剂以维持麻醉深度， 用麻醉剂以维持麻醉深度，前者称基础 麻醉后者称维持麻醉或强化麻醉。 麻醉后者称维持麻醉或强化麻醉。
第五章 动物的麻醉
第一节 第二节 第三节
麻醉的分类 局部麻醉 全身麻醉
第一节 麻醉的分类 一、根据临床应用
1.局部麻醉(local anesthesia) 局部麻醉(local
利用某些药物, 利用某些药物 , 有选择性地暂时阻断神 经末梢、 经末梢 、 神经纤维以及神经干的冲动传 导 ， 从而使其分布或支配的相应局部组 织暂时丧失痛觉的一种麻醉方法。 织暂时丧失痛觉的一种麻醉方法。