外周血白细胞RNA提取并RT-PCR实验技术
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外周血(静脉血)白细胞RNA提取
1ml外周血中加入3ml红细胞裂解液
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颠倒混匀,室温放置5min
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3000rpm离心5min
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弃上清。留下白细胞沉淀(或者1:1的比例裂解,重复三次)
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加入1ml Trizol裂解白细胞
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用枪将其移至EP管中反复吹打至完全分散
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用5ml注射器反复吹打(不少于10次)
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再用1ml注射器反复吹打
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加入1/5总体积的氯仿(200ul),颠倒混匀,室温放置5min
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4℃离心:12000rpm 15min
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转上层水相450ul于另一个EP管中,加入等体积的异丙醇(一师兄建议加异丙醇后-80过夜沉淀RNA,-20也可。RNA产出浓度为200-300ng/μl,100μl稀释),
混匀,静置15min
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4℃离心:12000rpm 10min
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弃上清,加入预冷的75%乙醇(800-1000ml)
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4℃离心:7500rpm 5min
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弃上清,将EP管倒置于吸收纸上,室温放置风干
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将RNA重新溶于30ul(或者20ul)水中
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-70℃冰箱保存,备用
1、取5ulRNA进行琼脂糖凝胶电泳(使用DEPC水配置)
2、取1~2ul总RNA进行浓度以及纯度测定
RT-PCR实验
A、RNA逆转录成cDNA(PrimeScriptII 1st Strand cDNA Synthesis Kit):
1、在灭菌0.1%DEPC浸泡过夜的1.5ml离心管中配制下列混合液
Oligo dT Primer (50uM) 1ul
dNTP mixture (10mM each) 1ul
RNA模板 0.5ug~5ug(根据说明书要求以及RNA浓度计算得到)
O 适量至总体积为10ul
RNase Free dH
2
2、65℃保温5min后,冰上迅速冷却1min以上
3、在上述离心管中继续配制下列反应液,总量为20ul
上述变性后反应液 10ul
5X PrimeScriptII Buffer 4ul
RNase Inhibitor (40U/ul) 0.5ul
PrimeScriptII RTase (200U/ul) 1ul
O 至20ul
RNase Free dH
2
4、缓慢混匀,轻轻用枪吹打或手指轻弹,稍离心
5、42℃, 30~60min
6、70℃,灭活15min后,冰上迅速冷却
B、PCR实验(25ul反应体系):
Taqmix 12.5ul
引物1(上游)(10~20nM) 0.5ul
引物2(下游)(10~20nM) 0.5ul
cDNA 2ul(可调整)
超纯水加至总体积25ul
PCR步骤:
1、Hold on 94℃ 5min
2、Cycle 94℃ 40s
3、退火温度: X℃ 40s
4、72℃ 40s repeat “2~4步骤”
5、72℃ 10min
6、4℃ 60min
琼脂糖凝胶电泳
1、1.5g(根据PCR产物片段大小)琼脂糖溶于100ml 1X TBE中,微波炉3min 后冷却至60~70℃左右加入5ul EB溶液。
2、待凝胶凝固后移至电泳槽中,负极为上样孔位置,约10ul/孔
3、电压100V 50min(根据分子大小)
4、紫外透射仪上初步观察条带,并使用凝胶成像分析仪拍照储存
氯仿是分子量比较大的有机溶剂,在提取RNA时,氯仿可以有效的使有机相和无机相迅速分离。DNA提取过程有机相中主要是酚和蛋白结合,从而使得蛋白和DNA脱离,DNA进入水相。但是在RNA的提取过程就要避免蛋白和DNA
脱离,否则DNA会释放到水相。不管有酚也好,没有酚也好,氯仿本身也对蛋白有变性作用,剧烈的震荡,很容易使得DNA的亲水基团,与水相接触。所以不要剧烈震荡。
异丙醇的作用是通过-OH的疏水作用使得RNA 或者DNA链中的亲水基团受到保护,等同于沉淀,但是这是个反应时发生在水相中,与前面的氯仿不矛盾。
氯仿的作用有多个方面,一是作为有机溶剂变性蛋白,使其沉淀并通过离心除去,同时也通过变性作用抑制RNase活性;二是RNA提取试剂中通常含有苯酚(Trizol主要成分就是苯酚,很多自己配试剂提的方法也用苯酚,抽提蛋白时也会用到苯酚),苯酚微溶于水,抽提完之后水相里有痕量的酚,如果不除去会损伤核酸,需要通过氯仿把水相里参与的苯酚抽提掉;三是作为溶剂抽提样品中的一些脂溶性杂质(比如油脂、脂溶性色素等),起到一定除杂作用
通常氯仿里面会加少量异戊醇(1/25),减少蛋白质在变性过程中由于震荡产生的泡沫,影响后续操作,不过个人经验感觉加不加没什么太大区别,也许是我的样品里蛋白不多吧
异丙醇是沉淀核酸用的,作用和乙醇一样。只不过用量少一点,0.6V~1V就够了,不像乙醇沉淀需要至少2V,一般需要2.5倍体积。在水相很多,离心管容积有限,加不下太多乙醇的时候一般会用异丙醇沉淀。不过感觉效果不如乙醇,偶尔会有沉淀不出来东西的时候