AOAC 985.29 食物中总膳食纤维 酶-重量法
酶法测定膳食纤维的推荐方法(AOAC
酶法测定膳食纤维的推荐方法:试剂:1. 0.1M PBS, PH=0.6.2. 4M HCl ; 4M NaOH3. 95%乙醇,78%乙醇4. 丙酮酶:淀粉酶,蛋白酶,胰酶步骤:1. 湿样品需要均质并冻干,所有样品都需要粉碎至粒径0.3mm。
2. 当脂肪含量大于6-8%时或者需要适当粉碎时,需要在室温下用石油醚抽脂15min。
3. 称取1g样品,精确到0.1mg,转移至锥形瓶。
向其中加入25ml 0.1M的PBS,PH=6,充分悬浮样品。
4. 加入100ul 淀粉酶。
用膜盖住锥形瓶顶部,沸水浴保温15min,偶尔摇晃一下。
5. 室温下放凉,加入20ml蒸馏水,用HCL调至PH=1.5,用少量蒸馏水冲洗电极。
6. 加入100mg 胃蛋白酶,顶部盖膜,40℃保温并搅拌60min.7. 加入20ml蒸馏水,用NaoH调PH至6.8,少许蒸馏水冲洗电极。
8. 加入100ml 胰酶,顶部盖膜,40℃保温并搅拌60min.9. 用HCl调PH至4.5.10. 用干燥的称量过的G2坩埚(含0.5g硅藻土)作为辅助过滤设施。
用20m蒸馏水分两次冲洗。
A. 滤液残留(不溶性膳食纤维):11. 用20ml 95%乙醇和20ml 丙酮分两次冲洗。
12. 105℃干燥至恒重,干燥器内冷却后称重(D1)。
13. 550℃灰化5h,干燥器内冷却后称重(I1)B.滤液(可溶性膳食纤维)14. 将滤液可冲洗水合并定容至100ml.15. 加入微热(60℃)的95%乙醇400ml,沉淀1h(时间可以缩短).16. 用含有0.5g硅藻土的G2坩埚过滤。
17. 用20ml 78%乙醇、20ml 95%乙醇和20ml丙酮分别分两次冲洗。
18. 105℃烘至恒重,在干燥器内冷却后称重(D2)19. 550℃至少灰化5h,干燥器内冷却后称重(I2)空白:水溶性膳食纤维和不溶性膳食纤维空白值(B1和B2)的测定都是在没有添加样品的情况下进行。
【精品】食物中膳食纤维的测定
膳食纤维的测定方法酶-重量法1.原理:样品分别用α-淀粉酶、蛋白酶、葡萄糖苷酶进行酶解消化以去除蛋白质和可消化的淀粉。
总膳食纤维(TDF)是先酶解,然后用乙醇沉淀,再将沉淀物过滤,将TDF残渣用乙醇和丙酮冲洗,干燥称重。
不溶性和可溶性膳食纤维(IDF和SDF)是酶解后将IDF过滤,过滤后的残渣用热水冲洗,经干燥后称重。
SDF是将上述滤出液用4倍量的95%乙醇沉淀,然后再过滤,干燥,称重。
TDF、IDF 和SDF量通过蛋白质、灰分含量进行校正。
2.适用范围AOAC991.43本方法适用于各类植物性食物和保健食品。
3.仪器3.1烧杯:400或600ml高脚型。
3.2过滤用坩埚:玻料滤板,美国试验和材料学会(ASTM)40-60μm,Pyrex60ml(CorningNo.36060buchner,或同等的)。
如下处理:(1)在灰化炉525℃灰化过夜。
炉温降至130℃以下取出坩埚。
(2)用真空装置移出硅藻土和灰质。
(3)室温下用2%清洗溶液浸泡1小时。
(4)用水和去离子水冲洗坩埚;然后用15ml丙酮冲洗然后风干。
(5)在干燥的坩埚中加0.5g硅藻土,在130℃烘干恒重。
(6)在干燥器中冷却1小时,记录坩埚加硅藻土重量,精确至0.1mg。
3.3真空装置:(1)真空泵或抽气机作为控制装置。
(2)1L的厚壁抽滤瓶。
(3)与抽滤瓶相配套的橡皮圈。
3.4振荡水浴箱:(1)自动控温使温度能保持在98±2℃。
(2)恒温控制在60℃。
3.5天平:分析级,精确至±0.1mg。
3.6马福炉:温度控制在525±5℃。
3.7干燥箱:温度控制在105和130±3℃。
3.8干燥器:用二氧化硅或同等的干燥剂。
干燥剂两周一次在130℃烘干过夜。
3.9PH计:注意温控,用pH4.0、7.0和10.0缓冲液标化。
3.10移液管及套头:容量100μl和5ml。
3.11分配器或量筒:(1)15±0.5ml,供分配78%的乙醇,95%的乙醇以及丙酮。
酶重量法-液相色谱法测定食品中总膳食纤维
酶重量法-液相色谱法测定食品中总膳食纤维余枭然;余慧剑【期刊名称】《河南科技》【年(卷),期】2021(40)28【摘要】本研究利用酶重量法-液相色谱法,测定含水溶性膳食纤维食品的总膳食纤维含量。
采用酶重量法测定试样中不溶性膳食纤维(Insoluble Dietary Fiber,IDF)和高分子质量可溶性膳食纤维(Soluble Dietary Fiber,SDF)的含量,采用液相色谱法测定试样的低分子质量抗性麦芽糊精(Resistant Malto Dextrin,RMD)含量。
液相色谱法的方法检出限为0.142%,定量限为0.474%,线性方程为y=1.207x+0.030,相关系数R^(2)为0.999,加标回收率为96.6%~99.7%,相对标准偏差(Relative Standard Deviation,RSD)为1.53%~1.69%(次数n=6)。
精密度试验以酶重量法-液相色谱法测试样品6份,平均含量为65.78%,RSD为0.52%。
实验结果表明,该方法灵敏度、准确率高,适用于添加抗性淀粉、含低分子质量的抗性糊精等水溶性膳食纤维的食品中总膳食纤维的测定。
【总页数】4页(P127-130)【作者】余枭然;余慧剑【作者单位】上海工程技术大学;劲研(上海)生物科技有限公司【正文语种】中文【中图分类】R151.3【相关文献】1.应用酶重量法测定全麦粉的总膳食纤维2.酶——重量法测定食品中的膳食纤维3.应用酶-重量法测定食物中的总膳食纤维4.关于测定粮食中总纤维素的中性净化法和酶重量法的改良5.食品中总的、不溶性及可溶性膳食纤维的酶-重量测定法因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
营养标签规范(食品营养成分标示准则)范文
附件:1.食品营养成分标示准则2.中国食品标签营养素参考值3.食品营养声称和营养成分功能声称准则附件1食品营养成分标示准则依据《食品营养标签管理规范》中所涉及的内容要求,制定本准则。
本准则规定了能量和营养成分的定义、折算系数、营养成分分析和标示方法、数值表达、允许误差和推荐的营养标签格式等内容。
一、术语和定义1.预包装食品(prepackaged foods)经预先定量包装,或装入(灌入)容器中,向消费者直接提供的食品。
2.营养成分(nutritional components)指食品中具有的营养素和有益成分。
包括营养素、水分、膳食纤维等。
3. 营养素 (nutrients) 指食品中具有特定生理作用,能维持机体生长、发育、活动、繁殖以及正常代谢所需的物质,缺少这些物质,将导致机体发生相应的生化或生理学的不良变化。
包括蛋白质、脂肪、碳水化合物、矿物质、维生素五大类。
4. 能量(energy)指食品中的蛋白质、脂肪和碳水化合物等营养素在人体代谢中产生的能量。
推荐以千焦(kJ)或焦耳(J)标示,当以千卡(kcal)标示能量值时,应同时标示千焦(kJ)。
食品中产能营养素的能量折算系数如表1所示:表 1 食物中产能营养素的能量折算系数* 1千卡(kcal)的能量相当于4.184千焦(kJ)。
5. 蛋白质 (protein) 蛋白质是含氮的有机化合物,以氨基酸为基本单位组成。
食品中蛋白质含量可通过“总氮量”乘以“氮折算系数”,或食品中各氨基酸含量的总和来确定。
在测定出“总氮量”后,食品中蛋白质含量的计算公式如下:蛋白质(g/100g)=总氮量(g/100g)×氮折算系数不同食品的氮折算系数如表2所示,对于原料复杂的加工或配方食品,统一使用折算系数6.25。
表2 不同食品氮折算系数*来源:*《中国食物成分表2002》6. 脂肪和脂肪酸 (fat and fatty acid)由于检测方法的不同,脂肪有粗脂肪(crude fat)或总脂肪(total fat)之分,在营养标签上均可标示为“脂肪”。
酶法测定膳食纤维的推荐方法(AOAC
酶法测定膳食纤维的推荐方法:试剂:1. 0.1M PBS, PH=0.6.2. 4M HCl ; 4M NaOH3. 95%乙醇,78%乙醇4. 丙酮酶:淀粉酶,蛋白酶,胰酶步骤:1. 湿样品需要均质并冻干,所有样品都需要粉碎至粒径0.3mm。
2. 当脂肪含量大于6-8%时或者需要适当粉碎时,需要在室温下用石油醚抽脂15min。
3. 称取1g样品,精确到0.1mg,转移至锥形瓶。
向其中加入25ml 0.1M的PBS,PH=6,充分悬浮样品。
4. 加入100ul 淀粉酶。
用膜盖住锥形瓶顶部,沸水浴保温15min,偶尔摇晃一下。
5. 室温下放凉,加入20ml蒸馏水,用HCL调至PH=1.5,用少量蒸馏水冲洗电极。
6. 加入100mg 胃蛋白酶,顶部盖膜,40℃保温并搅拌60min.7. 加入20ml蒸馏水,用NaoH调PH至6.8,少许蒸馏水冲洗电极。
8. 加入100ml 胰酶,顶部盖膜,40℃保温并搅拌60min.9. 用HCl调PH至4.5.10. 用干燥的称量过的G2坩埚(含0.5g硅藻土)作为辅助过滤设施。
用20m蒸馏水分两次冲洗。
A. 滤液残留(不溶性膳食纤维):11. 用20ml 95%乙醇和20ml 丙酮分两次冲洗。
12. 105℃干燥至恒重,干燥器内冷却后称重(D1)。
13. 550℃灰化5h,干燥器内冷却后称重(I1)B.滤液(可溶性膳食纤维)14. 将滤液可冲洗水合并定容至100ml.15. 加入微热(60℃)的95%乙醇400ml,沉淀1h(时间可以缩短).16. 用含有0.5g硅藻土的G2坩埚过滤。
17. 用20ml 78%乙醇、20ml 95%乙醇和20ml丙酮分别分两次冲洗。
18. 105℃烘至恒重,在干燥器内冷却后称重(D2)19. 550℃至少灰化5h,干燥器内冷却后称重(I2)空白:水溶性膳食纤维和不溶性膳食纤维空白值(B1和B2)的测定都是在没有添加样品的情况下进行。
食品营养成分标示准则
附件 1食品营养成分标示准则依据《食品营养标签管理规范》中所涉及的内容要求,制定本准则。
本准则规定了能量和营养成分的定义、折算系数、营养成分分析和标示方法、数值表达、允许误差和推荐的营养标签格式等内容。
一、术语和定义1.预包装食品(prepackaged foods)经预先定量包装,或装入(灌入)容器中,向消费者直接提供的食品。
2.营养成分(nutritional components)指食品中具有的营养素和有益成分。
包括营养素、水分、膳食纤维等。
3. 营养素(nutrients) 指食品中具有特定生理作用,能维持机体生长、发育、活动、繁殖以及正常代谢所需的物质,缺少这些物质,将导致机体发生相应的生化或生理学的不良变化。
包括蛋白质、脂肪、碳水化合物、矿物质、维生素五大类。
4. 能量(energy)指食品中的蛋白质、脂肪和碳水化合物等营养素在人体代谢中产生的能量。
推荐以千焦(kJ)或焦耳(J)标示,当以千卡(kcal)标示能量值时,应同时标示千焦(kJ)。
食品中产能营养素的能量折算系数如表1所示:表1 食物中产能营养素的能量折算系数成分kJ / g(*kcal/g)成分kJ / g(kcal/g)蛋白质17(4) 乙醇(酒精)29 (7)脂肪37(9) 有机酸13(3)碳水化合物17(4) 膳食纤维8 (2)* 1千卡(kcal)的能量相当于4.184千焦(kJ)。
5. 蛋白质(protein) 蛋白质是含氮的有机化合物,以氨基酸为基本单位组成。
食品中蛋白质含量可通过“总氮量”乘以“氮折算系数”,或食品中各氨基酸含量的总和来确定。
在测定出“总氮量”后,食品中蛋白质含量的计算公式如下:蛋白质(g/100g)=总氮量(g/100g)×氮折算系数不同食品的氮折算系数如表2所示,对于原料复杂的加工或配方食品,统一使用折算系数6.25。
表2 不同食品氮折算系数*食物折算系数食物折算系数小麦鸡蛋全小麦粉5.83 鸡蛋(整)6.25麦糠麸皮6.31 蛋黄 6.12麦胚芽 5.80 蛋白 6.32 麦胚粉 5.70 肉类和鱼类6.25 燕麦 5.83 动物明胶 5.55大麦、黑麦粉5.83 乳及乳制品6.38小米 6.31 酪蛋白 6.40 玉米 6.25 人乳 6.37 大米及米粉 5.95 豆类坚果、种子类大豆(黄)5.71巴西果 5.46 其它豆类6.25花生 5.46杏仁 5.18其他如核桃、榛子等5.30 其它食品6.25来源:*《中国食物成分表2002》6. 脂肪和脂肪酸(fat and fatty acid)由于检测方法的不同,脂肪有粗脂肪(crude fat)或总脂肪(total fat)之分,在营养标签上均可标示为“脂肪”。
AOAC 985.29 食物中总膳食纤维 酶-重量法
45.4.07AOAC Of f i c ial Method 985.29To t al Di e tary Fi b er in FoodsEnzymatic–Gravimetric MethodFirst Ac t ion 1985Fi nal Ac tion1986AOAC–AACC MethodCo d ex-Adopted–AOAC Method*A.Prin ci pleDu p li c ate test por t ions of dried foods, fat-extracted if con t ain i ng >10% fat, are gelatinized with Termamyl (heat-stable α-am y l ase), and then en z y m at i c ally di g ested with pro t e a se and amyloglucosidase to re m ove pro t ein and starch. (When an a l yz i ng mixed di e ts, al w ays ex t ract fat prior to de t er m in i ng to t al di e tary fi b er.) Four vol u mes of ethyl al c o h ol are added to pre c ip i t ate sol u b le di e tary fi b er. To t al res i d ue is fil t ered, washed with 78% ethyl al c o h ol, 95% ethyl al c o h ol, and ac e t one. Af t er dry i ng, res i d ue is weighed. One du p li c ate is an a l yzed for pro t ein, and other is in c in e r a ted at 525°C and ash is de t er m ined. To t al di e tary fi b er = weight res i d ue – weight (pro t ein + ash).B. Ap p a r a t us(a)Fritted cru c i b le.—Po r os i ty No. 2 (Py r ex No. 32940, coarse, ASTM 40-60 µm; or Corning No. 36060 Büchner, fritted disk, Py r ex, 60 mL, ASTM 40-60 µm). Clean thor o ughly, heat 1 h at 525°C, and soak and then rinse in H2O. Add ca 0.5 g Celite to air-dried cru c i b les and dry at 130°C to con s tant weight (≥ 1 h). Cool and store in des i c c a t or un t il used.(b) V ac u um source.—V ac u um pump or as p i r a t or equipped with in-line dou b le vac u um flask to pre v ent con t am i n a t ion in case of H2O backup.(c) Vac u um oven.—70°C.Al ter na tively,105°C air oven can be used.(d) Des ic ca tor.(e)Muf fle fur nace.(f)Wa t e r b a t h s.—(1)B o i l i n g.(2)C o n s t a n t tem p er a t ure.—Ad j ust a ble to 60°C, with ei t her multistation shaker or multistation mag n etic stir r er to pro v ide con s tant ag i t a t ion of di g es t ion flasks dur i ng en z y m atic hy d ro l y s is.(g) Beakers.—Tall-form, 400 or 600 mL.(h) Bal a nce.—An a lyt i cal,readability to0.1mg.(i)pH me t er.—Stan d ard i zed with pH 7 and pH 4 buff e rs.C. Re a gents(a) 95% Eth a n ol.—v/v. Technical grade.(b) 78% Eth a n ol.—Place 207 mL H2O into 1 L vol u m et r ic flask. Di l ute to vol u me with 95% ethyl al c o h ol. Mix and di l ute to vol u me again with 95% ethyl al c o h ol if nec e s s ary. Mix. One vol u me H2O mixed with 4 vol u mes 95% ethyl al c o h ol will also give 78% ethyl al c o h ol fi n al con c en t ra t ion.(c)Ac e tone.(d)Phos p hate buffer.—0.08M, pH 6.0. Dis s olve 1.400 g so d ium phos p hate dibasic, an h y d rous (Na2HPO4) (or 1.753 g dihydrate) and 9.68 g so d ium phos p hate monobasic monohydrate (NaH2PO4⋅H2O) (or 10.94 g dihydrate) in ca 700 mL H2O. Di l ute to 1 L with H2O. Check pH with pH me t er.(e) Al p ha-amylase (heat sta b le).—Termamyl. (1) Store in re frig er a tor.Based on Nel s on/Somogyi re d uc i ng sugar with sol u b le starch as sub s trate.—10 000 + 1000 units/mL (1 unit is de f ined as the amount of en z yme re q uired to re l ease 1 µmole re d uc i ng sugar equiv a l ents/min at pH 6.5 and 40°C). (2) Based on Ceralpha method us i ng p-nitrophenyl-maltosaccharide as sub s trate in the pres e nce of a thermostable al p ha-glucosidase.—3000 + 300 Ceralpha units/mL (1 unit of en z yme is re q uired to re l ease 1 µmole p-nitrophenyl/min at pH 6.5 and 40°C).(f) Pro te ase.—Keep re frig er ated.(1)Ca sein as say.—300–400 Units/mL. (1 pro t e a se unit is de f ined as the amount of en z yme re q uired to hy d ro l yze (and solubilize in TCA) 1 µmole ty ro sine equiv a l ents/min from sol u b le ca s ein at pH 8.0 and 40°C); 7–15 units/mg (1 unit will hy d ro l yze ca s ein to pro d uce color equiv a l ent to 1.0 µmole ty r o s ine/min at pH 7.5 and 37°C). Color by Folin-Ciocalteau re a gent. (2) Azo-casein as s ay.—300–400 Units/mL [1 unit endo-peptidase ac t iv i ty is de f ined as the amount of en z yme re q uired to hy d ro l yze (and solubilize in TCA) 1 µmole ty r o s ine equiv a l ents/min from sol u b le ca s ein at pH 8.0 and 40°C].(g) Amyloglucosidase.—Keep re frig er ated.(1)Starch/glu c ose oxidase–peroxidase method.—2000–3300 Units/mL (1 unit en z yme ac t iv i ty is de f ined as the amount of en z yme re q uired to re lease1µmole glu c ose/min at pH 4.5 and 40°C). (2) PNPBM (p-nitrophenyl beta-maltosidase) method.—130–200 Units/mL (1 unit en z yme ac t iv i ty [PNP unit] is the amount of en z yme, which in the pres e nce of ex c ess lev e ls of beta-glucosidase, will re l ease 1 µmole p-nitrophenyl from p-nitrophenyl beta-maltosidase/min at 40°C).The only en z yme which has been found to be sig n if i c antly con tam i nated with in ter fer ing ac tiv i ties is amyloglucosidase. Thermostable al p ha-amylase and pro t e a se from com m er c ial sources have been found to be gen e r a lly free of in t er f er i ng en z ymes. Low lev e ls of beta-glucanase have been de t ected in pro t e a se prep a r a t ions, but at lev e ls well be l ow that which would in t er f ere with to tal di etary fi ber anal y sis.The ma jor con tam i nant in amyloglucosidase prep a r a t ion was shown to be an endo-cellulase and re s ulted in endo-depolymerization of mixed-linkage beta-glucan from bar l ey and oats, with re s ul t ant un d er e s t i m a t ion of this di etary fi ber com po nent.The con tam i na tion of amylogucosidase with endo-cellulase (beta-glucanase) can be eas ily de tected.Al t er n a t ively, there are kits con t ain i ng all 3 en z ymes (pre t ested) avail a ble from a num b er of com p a n ies.(h)So dium hy drox ide so lu tion.—0.275M. Dis s olve 11.00 g NaOH ACS in ca 700 mL H2O in 1 L vol u m et r ic flask. Di l ute to vol u me with H2O.(i) Hy d ro c hlo r ic acid so l u t ion.—0.325M. Di l ute stock so l u t ion of known ti t er, e.g., 325 mL 1M HCl, to 1 L with H2O.(j) Celite.—Acid-washed.© 2005 AOAC IN T ER N A T IONAL Ta b le 985.29. Test sam p les for en z yme pu r ityTest sam p leAc tiv itytestedTest por t ionweight, gEx pectedre cov ery,% Cit rus pec tin Pectinase0.195–100 Stractan (larch gum)Hemicellulase0.195–100 Wheat starch Am y lase 1.00–1Corn starch Am y lase 1.00–2Ca sein Pro te ase0.30–2β-Glucan (bar l ey gum)aβ-Glucanase0.195–100aSigma Chem i c al Co. or Megazyme In t er n a t ional Ire l and, Ltd.D.En zyme Pu rityTo en sure ab sence of un de sir able en zy matic ac tiv ity in en zymes used in this pro c e d ure, run ma t e r i a ls listed in Ta b le 985.29 through en t ire pro c e d ure each time lot of en z ymes is changed, or at max i m um in t er v al of 6 months to en s ure that en z ymes have not de g raded.E. Test Por t ion Prep a r a t ionDe t er m ine to t al di e tary fi b er on dried test sam p le. Ho m og e n ize test sam p le and dry over n ight in 70°C vac u um oven, cool in des i c c a t or, and dry-mill test sam p le to 0.3–0.5 mm mesh. If test sam p le can n ot be heated, freeze-dry be f ore mill i ng. If high fat con t ent (>10%) pre v ents proper mill i ng, defat with pe t ro l eum ether (3 times with 25 mL por t ions/g test sam p le) be f ore mill i ng. Re c ord loss of weight due to fat re m oval and make ap p ro p ri a te cor r ec t ion to fi n al % di e tary fi b er found in de t er m i n a t ion. Store dry-milled test sam p le in capped jar in des i c c a t or un t il anal y s is is car r ied out.F.De ter mi na tionRun blank through en t ire pro c e d ure along with test por t ions to mea s ure any con t ri b u t ion from re a gents to res i d ue.Weigh du p li c ate 1 g test por t ions, ac c u r ate to 0.1 mg, into 400 mL tall-form beak e rs. Test por t ion weights should not dif f er >20 mg. Add 50 mL pH 6.0 phos p hate buffer to each beaker. Check pH and ad j ust to pH 6.0 ± 0.2 if nec e s s ary. Add 0.1 mL Termamyl so l u t ion. Cover beaker with Al foil and place in boil i ng water bath 15 min. Shake gently at 5 min in t er v als. In c rease in c u b a t ion time when num b er of beak e rs in boil i ng water bath makes it dif f i c ult for beaker con tents to reach in ter nal tem per a ture of95°–100°C. Use ther mom e ter to in di cate that 15 min at 95°–100°C is at t ained. To t al of 30 min in water bath should be suf f i c ient.Cool so l u t ions to room tem p er a t ure. Ad j ust to pH 7.5 ± 0.2 by add i ng 10 mL 0.275M NaOH so l u t ion.Add 5 mg pro t e a se. (Pro t e a se sticks to spat u la, so it may be pref e r a b le to pre p are en z yme so l u t ion (50 mg in 1 mL phosphate buffer) and pipet 0.1 mL to each sam p le just be f ore use.Cover beaker with Al foil. In c u b ate 30 min at 60°C with con t in u o us ag i t a t ion. Cool. Add 10 mL 0.325M HCl so l u t ion. Mea s ure pH and dropwise add acid if nec e s s ary. Fi n al pH should be 4.0–4.6. Add 0.3 mL amyloglucosidase, cover with Al foil, and in c u b ate 30 min at 60°C with con tin u ous ag i ta tion.Add280mL 95% ethyl al c o h ol pre h eated to 60°C (mea s ure vol u me be f ore heat i ng). Let pre c ip i t ate form at room tem p er a t ure for 60 min. Weigh cru c i b le con t ain i ng Celite to near e st 0.1 mg, then wet and re d is t rib u te bed of Celite in cru c i b le by us i ng stream of 78% ethyl al c o h ol from wash bot t le. Ap p ly suc t ion to draw Celite onto fritted glass as even mat. Main t ain suc t ion and quan t i t a t ively trans f er pre cip i tate from en zyme di gest to cru ci ble.Wash res i d ue suc c es s ively with three 20 mL por t ions of 78% ethyl al c o h ol, two 10 mL por t ions of 95% ethyl al c o h ol, and two 10 mL por t ions of ac e t one. Gum may form with some prod u cts, trap p ing liq u id. If so, break sur f ace film with spat u la to im p rove fil t ra t ion. Time for fil t ra t ion and wash i ng will vary from 0.1 to 6 h, av e r a g i ng 0.5 h per sam p le. Long fil t ra t ion times can be avoided by care ful in ter mit tent suc tion through out fil tra tion.Dry cru c i b le con t ain i ng res i d ue over n ight in 70°C vac u um oven or 105°C air oven. Cool in des i c c a t or and weigh to near e st 0.1 mg. Sub t ract cru c i b le and Celite weight to de t er m ine weight of res i d ue. An a l yze res i d ue from 1 test por t ion of set of du p li c ates for pro t ein by 960.52 (see 12.1.07), us i ng N × 6.25 as con v er s ion fac t or, ex c ept in cases where N con t ent in pro t ein is known.In c in e r a te sec o nd test por t ion of du p li c ate 5 h at 525°C. Cool in des i c c a t or and weigh to near e st 0.1 mg. Sub t ract cru c i b le and Celite weight to de t er m ine ash.G.Cal cu la tionsDe t er m i n a t ion of blank:B = blank, mg = weight res i d ue − P B−A Bwhere weight res i d ue = av e r a ge of res i d ue weights (mg) for du p li c ate blank de t er m i n a t ions; and P B and A B = weights (mg) of pro t ein and ash, re s pec t ively, de t er m ined in first and sec o nd blank res i d ues.Cal c u l ate TDF as fol l ows:TDF, % =[(weight res i d ue −P−A−B) / weight test por t ion] × 100 where weight res i d ue = av e r a ge of weights (mg) for du p li c ate blank de t er m i n a t ions; and P and A = weights (mg) of pro t ein and ash, re s pec t ively, in first and sec o nd test por t ion res i d ues; and weight test por t ion = av e r a ge of 2 test por t ion weights (mg) taken.Ref er ences:JAOAC 68, 677(1985); 69, 259(1986).Re v ised: June 2003* Adopted as a Co d ex De f ining Method for gravimetry/en z y m atic di g est of to t al di e tary fi b re in spe c ial foods.© 2005 AOAC IN T ER N A T IONAL。
食品营养成分标示准则
食品营养成分标示准则依据《食品营养标签管理规范》中所涉及的内容要求,制定本准则。
本准则规定了能量和营养成分的定义、折算系数、营养成分分析和标示方法、数值表达、允许误差和推荐的营养标签格式等内容。
一、术语和定义1.预包装食品(prepackaged foods)经预先定量包装,或装入(灌入)容器中,向消费者直接提供的食品。
2.营养成分(nutritional components)指食品中具有的营养素和有益成分。
包括营养素、水分、膳食纤维等。
3. 营养素(nutrients) 指食品中具有特定生理作用,能维持机体生长、发育、活动、繁殖以及正常代谢所需的物质,缺少这些物质,将导致机体发生相应的生化或生理学的不良变化。
包括蛋白质、脂肪、碳水化合物、矿物质、维生素五大类。
4. 能量(energy)指食品中的蛋白质、脂肪和碳水化合物等营养素在人体代谢中产生的能量。
推荐以千焦(kJ)或焦耳(J)标示,当以千卡(kcal)标示能量值时,应同时标示千焦(kJ)。
食品中产能营养素的能量折算系数如表1所示:表1 食物中产能营养素的能量折算系数成分kJ / g(*kcal/g)成分kJ / g(kcal/g)蛋白质17(4) 乙醇(酒精)29 (7) 脂肪37(9) 有机酸13(3) 碳水化合17(4) 膳食纤维8 (2)物* 1千卡(kcal)的能量相当于4.184千焦(kJ)。
5. 蛋白质(protein) 蛋白质是含氮的有机化合物,以氨基酸为基本单位组成。
食品中蛋白质含量可通过“总氮量”乘以“氮折算系数”,或食品中各氨基酸含量的总和来确定。
在测定出“总氮量”后,食品中蛋白质含量的计算公式如下:蛋白质(g/100g)=总氮量(g/100g)×氮折算系数不同食品的氮折算系数如表2所示,对于原料复杂的加工或配方食品,统一使用折算系数6.25。
表2 不同食品氮折算系数*食物折算系数食物折算系数小麦鸡蛋全小麦粉 5.83 鸡蛋(整) 6.25麦糠麸皮 6.31 蛋黄 6.12麦胚芽 5.80 蛋白 6.32麦胚粉 5.70 肉类和鱼类 6.25 燕麦 5.83 动物明胶 5.55大麦、黑麦粉 5.83 乳及乳制品 6.38小米 6.31 酪蛋白 6.40玉米 6.25 人乳 6.37大米及米粉 5.95 豆类坚果、种子类大豆(黄) 5.71巴西果 5.46 其它豆类 6.25花生 5.46杏仁 5.185.30 其它食品6.25其他如核桃、榛子等来源:*《中国食物成分表2002》6. 脂肪和脂肪酸(fat and fatty acid)由于检测方法的不同,脂肪有粗脂肪(crude fat)或总脂肪(total fat)之分,在营养标签上均可标示为“脂肪”。
膳食纤维 标准方法
膳食纤维标准方法
膳食纤维是指人体无法消化吸收的碳水化合物类物质。
膳食纤维对人体健康具有重要的作用,包括促进消化系统健康、调节血糖和胆固醇水平、预防便秘以及控制体重等。
为了准确测量食物中的膳食纤维含量,需要进行标准方法的测定。
目前,国际通用的膳食纤维含量测定方法有两种:AOAC (Association of Official Analytical Chemists)方法和ISO (International Organization for Standardization)方法。
1. AOAC方法:AOAC方法是美国官方方法,也是国际上最常用的方法。
根据AOAC 991.43或AOAC 985.29方法,首先将食物样品经过一系列处理,如酶解、水解等,获得可溶性和不可溶性纤维。
然后,借助酶解、滴定、重量等技术手段,可以得到总纤维、不可溶性纤维和可溶性纤维的含量。
2. ISO方法:ISO方法是由国际标准化组织制定的方法,与AOAC方法相似。
ISO 13904和ISO 15954方法是常用的ISO 方法。
这些方法主要利用酶解、水解、甲弹法等技术,将膳食纤维分为不可溶性纤维和可溶性纤维,并使用滴定、重量等手段进行测定。
无论使用AOAC方法还是ISO方法,都需要进行样品的预处理、酶解、滴定等步骤,以获得准确的膳食纤维含量。
这些方法在实验室条件下进行,需要仪器设备和专业操作人员进行操作。
需要注意的是,虽然AOAC和ISO方法都是国际通用的标准方法,但在具体的实验操作过程中,可能会存在一些差异,因此在测定过程中应当依据相应的方法详细操作,并遵循实验室的操作规程。
AOAC985.29食品中总膳食纤维测定中文翻译
45.4.07AOAC官方的方法985.29食品中总膳食纤维酶- 重量法1985年首次发布的准则1986年最终准则AOAC–AACC方法法典采用AOAC分析法*A.原理干燥食品的替换测验部分,脂肪提取,如果含>10 %的脂肪,是通过淀粉酶(热稳定a-淀粉酶),然后用朊酶和淀粉葡萄糖苷酶进行酶促化,以除去蛋白质和淀粉。
(在分析混合饮食时,随时提取之前确定总膳食纤维脂肪。
)添加四倍体积的乙醇以便沉淀可溶性膳食纤维。
过滤总残留量,用78 %乙醇,95%乙醇和丙酮冲洗。
干燥后,称量残留物。
对一份进行蛋白质分析,另一份在525°C灰化,测定灰分。
总膳食纤维=残留物的重量- 重量(蛋白质+灰分)。
B.设备(a) 多孔坩埚——孔隙度,第2号(耐热号,32940 ,粗,ASTM 40-60 μm;或者第36060号布赫呐,烧结盘,派热克斯玻璃,60 mL, ASTM 40-60 μm)。
彻底清洗,525℃加热1小时,浸泡,然后水冲洗。
给风干坩埚加约0.5克硅藻土,在130℃干燥至恒重(≥1小时)1 h). 冷却,存储在干燥器中备用。
(b) 真空源——真空泵或吸气器,配备直列双真空瓶,以防止出现水阻塞时混合。
(c)真空炉——70°C. 可选用,105℃的空气烘箱。
(d)干燥器。
(e)高温烘炉。
(f) 水浴槽。
——(1)煮沸(2)恒温——可调至60℃,无论是多站振动筛还是多站磁力搅拌器,酶水解期间给消化瓶(煮解瓶)提供恒力搅拌。
(g)烧杯——高烧杯,400或600毫升。
(h)天平——分析天平,灵敏度到0.1毫克。
(i)氢离子计——pH7和pH4缓冲液定型。
C.试剂(a) 95% 乙醇.——v/v. 工业级。
(b) 78% 乙醇.——1升量瓶中放置207毫升H2O。
用95%乙醇稀释至刻度。
必要时用95%乙醇再次稀释至刻度。
混合。
一个容量的H2O用四倍容量的95%的乙醇混合,也会能给出78%乙醇的最终浓度。
食品中总的、不溶性及可溶性膳食纤维的酶-重量测定法
食品中总的、不溶性及可溶性膳食纤维的酶-重量测定法当前,膳食纤维在预防慢性病中有着广泛的作用,膳食纤维与人体健康关系的研究日益受到重视。
现已知道可溶性膳食纤维的作用主要为调节血脂、血糖及调节益生菌丛。
而不溶性膳食纤维主要的作用为肠道通便。
目前市场上富含膳食纤维的食物、食品添加剂和保健食品越来越多,原有膳食纤维的检测方法已不适应当前需要。
古老的方法只能测定粗纤维[1],该方法所测数值与总纤维含量有较大差异,两者之间也没有一定的换算系数。
现有的洗涤剂法只能测定不溶性膳食纤维[2],但不能测定可溶性膳食纤维,尤其是可溶性膳食纤维已明确具有保健功能,并成为保健功能食品中的功效成分,这就给膳食纤维成分更加细致的分类测定提出了要求。
目前膳食纤维的测定方法可分为两大类:重量法和化学法。
重量法较简单[3],主要测定总膳食纤维、可溶性膳食纤维和不可溶性膳食纤维。
化学法则可定量地测定其中每一种中性糖和总的酸性糖(糖醛酸),还可单独测定木质素[4],但化学法受仪器设备制约,因而不适用于常规的膳食纤维分析。
酶-重量法于20世纪80年代在国外首先发展起来,现已成为AOAC认可的分析方法,已被美国、日本、瑞典及北欧许多国家广泛采用。
1材料和方法1.1原理:分别用热稳定的α-淀粉酶、蛋白酶、葡萄糖苷酶进行酶解消化样品以去除蛋白质和淀粉。
总膳食纤维(TDF)的测定是先酶解,然后用乙醇沉淀,将过滤的TDF残渣用乙醇和丙酮冲洗,干燥后称重。
不溶性和可溶性膳食纤维(IDF和SDF)是在样品酶解后即刻将IDF过滤,过滤后的残渣用热水冲洗,经干燥后称重。
SDF是将上述滤出液用4倍量的95%乙醇沉淀,然后将滤渣干燥、称重。
TDF、IDF和SDF的量通过蛋白质和灰分含量进行校正。
1.2仪器:意大利VELP公司CSF6&GDE型膳食纤维测定仪;天平:精确至±01mg;马福炉:温度控制在(525±5)℃;干燥箱:温度控制在(105±3)℃和(130±3)℃。
总膳食纤维国标测定方法-符合AOAC等
总膳食纤维测定的介绍1、在α-淀粉酶的作用下,PH为6的磷酸盐缓冲溶液,95—100度下加热15分钟。
2、用蛋白酶在PH为7.5时60度培养30分钟。
3、用淀粉葡(萄)糖苷酶在PH为4.0---4.6下60度培养30分钟。
4、4体积的95%的乙醇沉淀。
5、过滤。
6、用78%和95%的乙醇和丙酮清洗沉淀物。
7、烘干称重。
8、干样可以拿去做凯氏定氮,也可以在525度的马弗炉里灰份5个小时,然后去称重。
不溶的膳食纤维的定义为进行烘干前用乙醇进行清洗并用温水洗涤后残留物。
总膳食纤维(TDF)—不溶膳食纤维= 可溶膳食纤维(SDF)标准酶法测定食品和饲料中的总膳食纤维量1、研磨分级样品2、在105度的烘箱烘干并恒重,在干燥箱中冷却到室温。
3、如果样品脂肪含量高于10%,需要用石油醚进行脱脂,在最终结果中再进行校正。
4、称出0.5—1克的样品,并转移到400毫升的烧杯中。
5、用α-淀粉酶在50毫升的PH为6的磷酸盐缓冲溶液中培养15分钟,培养温度为95—100度,温度可以用温度计控制。
6、冷却到室温,并用0.275 N 浓度的氢氧化钠溶液调节PH到7.5。
7、将烧杯和样品一起转移到磁力搅拌培养器中(GDE)。
8、在搅拌的情况下,加入蛋白酶在60度的情况下培养30分钟。
9、冷却到室温,用0.325的盐酸调节PH值为4.0—4.6。
10、在搅拌的情况下,加淀粉葡(萄)糖苷酶,在60度时培养30分钟。
11、通过加4体积的95%的乙醇沉淀可溶性膳食纤维,并且在室温下沉淀大约1个小时。
12、称量已经添加了0.5克的硅藻土(作为助滤剂)玻璃坩埚.13、将坩埚放在CSF6 (或者FIWE6)上,倒入上述操作的沉淀物,并用V ACUUM进行吸液排空,用78%的乙醇溶液进行洗涤转移沉淀物。
14、用20毫升的78%的乙醇溶液洗涤玻璃坩埚中的沉淀物两次,再用10毫升95%的乙醇溶液洗涤两次,10毫升的丙酮溶液洗涤两次并排除废液。
食品营养成分检测的研究现状
食品营养成分检测的研究现状通过对我国国家标准之间、国家标准与国际通用检测方法之间的比较研究,采用实验研究方法对三大类食品中6种基本营养成分的检测研究,得出以下结论:1)蛋白质:总体而言,国标中蛋白质(粗蛋白)的测定方法和FDA规定的用于营养标签的法定蛋白质分析方法基本相同,能完全满足营养标签标示的需要。
凯氏定氮法仍是目前食品中粗蛋白测定的最可靠方法。
2)脂肪:有关粗脂肪的主要测定方法是针对不同的样品采用不同的提取条件,相应的有不同的检测方法。
即索氏提取法、酸水解法、碱水解法。
研究结果表明国标中粗脂肪的测定方法和FDA规定的用于营养标签的法定脂肪分析方法基本相同,能完全满足营养标签标示的需要。
在饱和脂肪的测定中,AOAC推荐的方法主要是采用气相色谱法,方法内容和国标GB/T 17376-1998、GB/T17377-1998内容基本相同。
但采用国标测定的饱和脂肪测定结果与原标示存在着明显的差别,可能受到检测方法和计算方法不统一的影响。
3)总膳食纤维:研究表明,国标中目前使用的粗纤维和不溶性膳食纤维测定方法和美国营养标签采用的测定方法存在较大差距,不能够满足营养标签标示的需要。
需参照AOAC985.29及991.43方法建立适合我国营养标签分析要求的膳食纤维检测方法。
4)维生素A:国标中维生素A的测定方法和FDA规定的用于营养标签的法定维生素A分析方法基本相同,能完全满足营养标签标示的需要。
国标维生素A的编号为GB/T12388-1990、GB/T 5413.9-1997。
5)维生素C:国标中维生素C的测定方法和FDA规定的用于营养标签的法定维生素C分析方法基本相同,能完全满足营养标签标示的需要。
通过比较发现AOAC的967.21与国标的GB/T 12143.3-89测定原理相同,AOAC的967.22与国标的GB/T12392-90测定原理相同,其中984.26半自动仪器测定原理相同与荧光法相同,只是更加简化了测定的步骤,便于操作者进行测定。
膳食纤维的测定方法
膳食纤维的测定方法作者:赵升鹏周超进来源:《都市家教·上半月》2013年第05期【摘要】膳食纤维被称为人体的第七营养素,对维持人体健康具有重要作用。
膳食纤维通过发酵产物短链脂肪酸和对肠道菌群的调节作用从而影响肠道健康,本文对膳食纤维的测定方法进行了综述。
【关键词】膳食纤维;定义;测定膳食纤维已被确认为与传统的六大营养素并列的“第七营养素”,对维持人体健康具有重要的生理作用。
膳食纤维的理化特性概括起来是膨胀作用、持水能力、胶体形成、离子交换、改善胃肠微生物菌落和产生低热量等。
这些特性产生的生理作用如下:使人产生饱腹感并抑制进食,从而预防肥胖;润肠通便,防治肠道疾病和便秘;调控血清胆固醇,降血压,防治冠状动脉硬化,胆石症和预防心脑血管疾病;降血糖,防治糖尿病等。
目前,结肠癌、炎症性肠炎和其他结肠紊乱疾病已经严重影响身体健康。
膳食纤维为肠道微生物生长提供均衡的能量和营养,这是维持结肠生态系统平衡所必需的,另外,膳食纤维的发酵,特别是丁酸发酵,有利于结肠健康。
目前国内外业已研究开发的膳食纤维共有6大类约30余种,其中实际生产和应用的不超过10种。
一、膳食纤维膳食纤维(Dietary Fiber,DF)被认为是食物中不被人体胃肠道消化酶水解,但能被肠道微生物消化的物质,特别是植物成分。
膳食纤维包括非淀粉多糖,如纤维素、半纤维素、树胶、果胶,以及木质素、抗性糊精和抗性淀粉。
二、膳食纤维的测定世界卫生组织建议的总膳食纤维摄入量下限为每人每天27.0克,上限为每人每天40.0克。
由此可见:膳食纤维检测结果的表示及产品标签标示等方面的问题应该作为膳食纤维研究中的又一个重要方面,而检测结果是由膳食纤维的检测方法和检测标准决定的,因此有必要建立统一的检测方法和标准。
DF的不同测定方法因其测定原理不同结果差异较大。
自20世纪60年代初以来,分析化学家们建立起大量的检测方法,具有代表性的几种方法为非酶重量法、酶-重量和酶-化学法。
酶重量法测定食品中膳食纤维含量方法的改进
酶重量法测定⾷品中膳⾷纤维含量⽅法的改进分析检割————————————————7⽡五⿀⾯函⾯⼚—鲤酶重量法测定⾷品中膳⾷纤维含量汪红,祁⽟峰,魏红(河南省农科院农业质量标准与检测技术研究中⼼,河南郑州450002)摘要:对酶重量法测定⾷品中总膳⾷纤维、不溶性膳⾷纤维和可溶性膳⾷纤维含量的⽅法进⾏了改进,利⽤磷酸缓冲液取代了价格较⾼的MESI—TRIS缓冲液,并在过滤过程中采⽤热过滤法以加快过滤速度。
利⽤改进法对燕麦⽚和红枣粉为原料与传统测定⽅法进⾏了⽐较,结果表明,两种⽅法测定结果基本⼀致。
同时,对改进法在不同实验室进⾏了对⽐测定,发现该⽅法稳定性较好,可以代替传统的AOAC测定⽅法。
关键词:酶重量法,膳⾷纤维,测定,改进Abstract:Themethod0fthedeterminationoftotal,solubleandinsolubledietaryfiberinfoodsbyenzymatic—gravimetricwasimprovedwithphosphorusacidamortizeliquidreplacingcostlyMESI—TRISamortizeliquid,andusinghot-filtratingtoincreasethespeedinthefiltrationTheimprovedmethodwascomparedwithtraditionalAOACmethodinthetestingofoatmealandChinesedatepowderTheresultsshowedthattheresultsintestingbytwomethodsareverycloseThismethodwastestedindifferentlaboratories,theresultsindicatedthatthismethodhadagoodstability,canreplacethetraditionalAOACmethodKeywords:enzymatic—gravimetricmethod;dietaryfiber;determination;improvement中图分类号:TS201.2+3⽂献标识码:A⽂章编号:1002-0306(2007)09—0203—03膳⾷纤维被称为继淀粉、蛋⽩质、脂肪、维⽣素、矿物质和⽔之后的第七营养元素,它与⼈体的营养和健康有着密切的关系,因其具有较强的持油、持⽔、增溶和诱导有益微⽣物的作⽤⽽引起各国营养学家的关注。
检测膳食纤维的方法
检测膳食纤维的方法膳食纤维是指那些不能被人体的消化系统吸收和消化的多糖和木质素物质。
膳食纤维对于保持肠道健康和预防心血管疾病等具有重要作用。
因此,准确测定膳食纤维的含量对于我们了解食物的营养价值以及饮食指导至关重要。
以下将介绍几种常用的检测膳食纤维的方法。
一、重量法(Gravimetric Method)重量法是膳食纤维分析中最常用的方法之一。
其基本原理是通过将样品持续加热至高温,使样品中的有机物燃尽,进而得到膳食纤维的含量。
该方法的一个主要优点是可以同时测定膳食纤维的水溶性和不溶性部分。
二、酶解法(Enzymatic-Gravimetric Method)酶解法是一种常用的分析膳食纤维的方法。
该方法通过使用特定的消化酶来将非淀粉多糖和木质素水解为发酵产物,然后通过差异重量法测定发酵产物的重量来计算膳食纤维的含量。
酶解法具有准确、重复性好的特点,被广泛应用于食品分析实验室。
三、液相色谱法(Liquid Chromatography)液相色谱法是一种高效、准确的分析膳食纤维的方法之一。
该方法通过将样品溶解于适当的溶剂中并经过色谱柱分离,运用不同的检测器来检测膳食纤维的含量。
液相色谱法具有分离度高、准确性好以及可以获得更多关于多糖和木质素的组成信息的优点。
四、气相色谱法(Gas Chromatography)气相色谱法也是一种常用的分析膳食纤维的方法之一。
该方法通过将样品进行预处理,如提取和衍生化,然后通过气相色谱仪来分离和定量膳食纤维的成分。
气相色谱法主要适用于分析低分子量的挥发性膳食纤维成分。
五、光学显微镜法(Optical Microscopy)光学显微镜法是一种常用的视觉化分析膳食纤维的方法之一。
该方法通过显微镜观察样品中的颗粒形态和纹理来判断膳食纤维的含量。
光学显微镜法具有简便易行、成本低的优点,适用于快速初步判定膳食纤维含量。
需要指出的是,不同方法可能会对膳食纤维的不同成分产生不同的结果。
测量食品中膳食纤维的方法
测量食品中膳食纤维的方法测量食品中膳食纤维的方法有很多种,下面将简要介绍几种常用的方法。
1. 酶解-重结晶法:这是一种常见的方法,用于测量食品中的可溶性和不可溶性膳食纤维。
首先,将食品样品加入含有胰蛋白酶和淀粉酶的酶解液中进行酶解。
酶解后,通过滤纸将不溶性物质分离出来。
然后,将滤纸上的不溶性物质洗涤几次,最后将其干燥并称重。
可溶性膳食纤维通过减去不溶性物质的质量来计算。
2. 遥感法:这是一种非常便利的方法,可以用于大规模样品的测量。
遥感法利用红外光谱仪来分析和测量食品中的膳食纤维含量。
红外光谱仪发出红外线,不同的膳食纤维成分会吸收不同的红外光谱。
通过分析吸收率,可以确定膳食纤维含量。
3. 酶解-HPLC法:这是一种常用的高效液相色谱法,可以对食品中的膳食纤维进行测量。
首先,将食品样品加入含有酶解液的容器中进行酶解。
然后,通过HPLC分离和定量几种常见的膳食纤维成分,如纤维素、半纤维素和果胶。
4. 酶解-重结晶-GC法:这是一种分析食品中总膳食纤维含量的方法。
首先,将食品样品加入酶解液中进行酶解。
然后,通过过滤和多次洗涤,将不溶性物质分离出来。
接下来,将不溶性物质进行重结晶,将其中的膳食纤维组分与其他物质分离开来。
最后,使用气相色谱法(GC)对膳食纤维组分进行定量分析。
5. 倍半粗纤维法:这是一种常用的简化方法,用于测量食品中的总膳食纤维含量。
首先,将食品样品加入酸性和碱性溶液中,使其除去其他成分。
然后,通过电子天平测量样品在空气和水之间的重量差。
此差值代表食品中的总膳食纤维含量。
以上是几种常用的方法,用于测量食品中的膳食纤维含量。
不同方法适用于不同的食品和实验目的。
在实际应用中,可以根据需要,选择合适的方法进行测量。
食品中膳食纤维含量的测定与分析
食品中膳食纤维含量的测定与分析随着人们健康意识的提升,越来越多的人开始关注食物中的营养成分,其中膳食纤维作为一种重要的营养物质备受关注。
膳食纤维在维持肠道健康、调节血糖和血脂、预防肥胖等方面起着重要的作用。
那么,如何准确测定食品中的膳食纤维含量呢?一、测定方法目前常用的测定食品中膳食纤维含量的方法包括酶解-重量法(AOAC 985.29)和酶解-HPLC法(AOAC 991.43),其中HPLC法相对较为准确和简便。
在使用HPLC法测定膳食纤维含量时,通常采用两种酶解方法,即使用α-淀粉酶和葡萄糖酸酶进行酶解。
通过比较未酶解样品和酶解后样品中的膳食纤维含量,可以计算出样品中的膳食纤维含量。
二、食品中膳食纤维的分析1.粗纤维含量的分析粗纤维是指食物中不容易被消化吸收的纤维部分,一般包括纤维素、半纤维素和木质素等。
粗纤维含量的分析是衡量食品中纤维素含量的一种方法,一般通过水解和洗涤的方式来进行。
首先,将食品样品经过一定时间的水解,然后用水或酸进行洗涤,最后干燥并称重。
所得的质量差值即为粗纤维的含量。
2.溶解性膳食纤维含量的分析溶解性膳食纤维是指在水中可溶解的膳食纤维,如果胶、树胶等。
溶解性膳食纤维含量的分析主要通过酶解-过滤的方法进行。
首先,将食品样品经过一定时间的酶解,然后用滤液进行过滤,将溶解性膳食纤维从样品中分离出来。
最后,将滤渣干燥并称重,所得的质量差值即为溶解性膳食纤维的含量。
3.不溶性膳食纤维含量的分析不溶性膳食纤维是指在水中不溶解的膳食纤维,如纤维素、半纤维素等。
不溶性膳食纤维含量的分析主要通过酶解-过滤的方法进行。
首先,将食品样品经过一定时间的酶解,然后用滤液进行过滤,将溶解性膳食纤维从样品中分离出来。
将滤渣干燥并称重,所得的质量即为不溶性膳食纤维的含量。
三、膳食纤维含量的参考范围根据世界卫生组织的建议,成年人每天的膳食纤维摄入量应为25-30克。
然而,现代人的饮食结构大部分偏向高脂肪、高糖分的食物,膳食纤维的摄入量普遍不足。
高膳食纤维的标准
针对食物中膳食纤维含量的测定,要符合国家的下列标准:1. GB 5009.88-2014 食品安全国家标准食品中膳食纤维的测定本标准规定了食品中膳食纤维的测定方法(酶重量法)。
本标准适用于所有植物性食品及其制品中总的、可溶性和不溶性膳食纤维的测定,但不包括低聚果糖、低聚半乳糖、聚葡萄糖、抗性麦芽糊精、抗性淀粉等膳食纤维组分。
2. GB/T 9822-2008 粮油检验谷物不溶性膳食纤维的测定本标准规定了测定谷物不溶性膳食纤维的术语和定义、原理、试剂和材料、仪器设备、操作步骤、结果计算,以及精密度的要求。
本标准适用于谷物中不溶性膳食纤维的测定。
3. NY/T 1594-2008 水果中总膳食纤维的测定(非酶-重量法)本标准规定了水果中总膳食纤维含量测定的非酶-重量法。
本标准适用于总膳食纤维含量≥10%、淀粉含量≤2%(以干基计)的水果中总膳食纤维含量的测定。
4. GB 5413.6-2010 食品安全国家标准婴幼儿食品和乳品中不溶性膳食纤维的测定本标准规定了婴幼儿食品和乳品中不溶性膳食纤维的测定方法。
本标准适用于婴幼儿食品和乳品中不溶性膳食纤维的测定。
膳食纤维产品的安全标准:1. DBS42/ 007-2015 食品安全地方标准魔芋膳食纤维本标准规定了魔芋膳食纤维的产品分类、技术要求、检验方法、检验规则以及标志、标签、包装、运输、储存和保质期。
本标准适用于湖北省地域范围内生产的供冲调或冲泡饮用的即食型魔芋膳食纤维。
魔芋膳食纤维产品分类:1)原味魔芋膳食纤维:以魔芋为单一原料,经加工、包装而成的供冲调或冲饮的即食型魔芋膳食纤维。
按照葡甘聚糖含量可以分为:特纯魔芋膳食纤维、高纯魔芋膳食纤维、魔芋膳食纤维。
2)复合魔芋膳食纤维:以原味魔芋膳食纤维为主要材料,添加其他食品原辅料和食品添加剂,经加工制成的供冲调或冲饮的即食型魔芋膳食纤维。
2. GB/T 22494-2008 大豆膳食纤维粉本标准适用于商品大豆膳食纤维粉。
酶——重量法测定食品中的膳食纤维
酶——重量法测定食品中的膳食纤维
陈忠良
【期刊名称】《品牌与标准化》
【年(卷),期】2008(000)017
【摘要】膳食纤维包括可溶性膳食纤维和不溶性膳食纤维,可溶性膳食纤维的作用主要为调节血脂、血糖及调节益生菌丛,而不溶性膳食纤维主要的作用为肠道通便。
目前市场上标明富含膳食纤维的食物和保健食品越来越多的,对食品中膳食纤维含量进行检测也越来越受到相关企业和质检部门的关注,
【总页数】2页(P18-19)
【作者】陈忠良
【作者单位】福建省中心检验所
【正文语种】中文
【中图分类】TS2
【相关文献】
1.应用酶-重量法测定秋葵荚中的膳食纤维 [J], 王琰;王英锋
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3.应用酶-重量法测定不同蘑菇中的膳食纤维 [J], 杨晓丹;李杏茹;唐忠雪;吕海娟;许婷婷;张逸鹏;苏梦怡;王英锋
4.酶重量法测定鲜食玉米中膳食纤维含量的研究 [J], 董晓丽;李为喜;王步军
5.酶-重量法测定不同品种芒果皮中膳食纤维的含量 [J], 郑毅;伍斌;邓建梅
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45.4.07AOAC Of f i c ial Method 985.29To t al Di e tary Fi b er in FoodsEnzymatic–Gravimetric MethodFirst Ac t ion 1985Fi nal Ac tion1986AOAC–AACC MethodCo d ex-Adopted–AOAC Method*A.Prin ci pleDu p li c ate test por t ions of dried foods, fat-extracted if con t ain i ng >10% fat, are gelatinized with Termamyl (heat-stable α-am y l ase), and then en z y m at i c ally di g ested with pro t e a se and amyloglucosidase to re m ove pro t ein and starch. (When an a l yz i ng mixed di e ts, al w ays ex t ract fat prior to de t er m in i ng to t al di e tary fi b er.) Four vol u mes of ethyl al c o h ol are added to pre c ip i t ate sol u b le di e tary fi b er. To t al res i d ue is fil t ered, washed with 78% ethyl al c o h ol, 95% ethyl al c o h ol, and ac e t one. Af t er dry i ng, res i d ue is weighed. One du p li c ate is an a l yzed for pro t ein, and other is in c in e r a ted at 525°C and ash is de t er m ined. To t al di e tary fi b er = weight res i d ue – weight (pro t ein + ash).B. Ap p a r a t us(a)Fritted cru c i b le.—Po r os i ty No. 2 (Py r ex No. 32940, coarse, ASTM 40-60 µm; or Corning No. 36060 Büchner, fritted disk, Py r ex, 60 mL, ASTM 40-60 µm). Clean thor o ughly, heat 1 h at 525°C, and soak and then rinse in H2O. Add ca 0.5 g Celite to air-dried cru c i b les and dry at 130°C to con s tant weight (≥ 1 h). Cool and store in des i c c a t or un t il used.(b) V ac u um source.—V ac u um pump or as p i r a t or equipped with in-line dou b le vac u um flask to pre v ent con t am i n a t ion in case of H2O backup.(c) Vac u um oven.—70°C.Al ter na tively,105°C air oven can be used.(d) Des ic ca tor.(e)Muf fle fur nace.(f)Wa t e r b a t h s.—(1)B o i l i n g.(2)C o n s t a n t tem p er a t ure.—Ad j ust a ble to 60°C, with ei t her multistation shaker or multistation mag n etic stir r er to pro v ide con s tant ag i t a t ion of di g es t ion flasks dur i ng en z y m atic hy d ro l y s is.(g) Beakers.—Tall-form, 400 or 600 mL.(h) Bal a nce.—An a lyt i cal,readability to0.1mg.(i)pH me t er.—Stan d ard i zed with pH 7 and pH 4 buff e rs.C. Re a gents(a) 95% Eth a n ol.—v/v. Technical grade.(b) 78% Eth a n ol.—Place 207 mL H2O into 1 L vol u m et r ic flask. Di l ute to vol u me with 95% ethyl al c o h ol. Mix and di l ute to vol u me again with 95% ethyl al c o h ol if nec e s s ary. Mix. One vol u me H2O mixed with 4 vol u mes 95% ethyl al c o h ol will also give 78% ethyl al c o h ol fi n al con c en t ra t ion.(c)Ac e tone.(d)Phos p hate buffer.—0.08M, pH 6.0. Dis s olve 1.400 g so d ium phos p hate dibasic, an h y d rous (Na2HPO4) (or 1.753 g dihydrate) and 9.68 g so d ium phos p hate monobasic monohydrate (NaH2PO4⋅H2O) (or 10.94 g dihydrate) in ca 700 mL H2O. Di l ute to 1 L with H2O. Check pH with pH me t er.(e) Al p ha-amylase (heat sta b le).—Termamyl. (1) Store in re frig er a tor.Based on Nel s on/Somogyi re d uc i ng sugar with sol u b le starch as sub s trate.—10 000 + 1000 units/mL (1 unit is de f ined as the amount of en z yme re q uired to re l ease 1 µmole re d uc i ng sugar equiv a l ents/min at pH 6.5 and 40°C). (2) Based on Ceralpha method us i ng p-nitrophenyl-maltosaccharide as sub s trate in the pres e nce of a thermostable al p ha-glucosidase.—3000 + 300 Ceralpha units/mL (1 unit of en z yme is re q uired to re l ease 1 µmole p-nitrophenyl/min at pH 6.5 and 40°C).(f) Pro te ase.—Keep re frig er ated.(1)Ca sein as say.—300–400 Units/mL. (1 pro t e a se unit is de f ined as the amount of en z yme re q uired to hy d ro l yze (and solubilize in TCA) 1 µmole ty ro sine equiv a l ents/min from sol u b le ca s ein at pH 8.0 and 40°C); 7–15 units/mg (1 unit will hy d ro l yze ca s ein to pro d uce color equiv a l ent to 1.0 µmole ty r o s ine/min at pH 7.5 and 37°C). Color by Folin-Ciocalteau re a gent. (2) Azo-casein as s ay.—300–400 Units/mL [1 unit endo-peptidase ac t iv i ty is de f ined as the amount of en z yme re q uired to hy d ro l yze (and solubilize in TCA) 1 µmole ty r o s ine equiv a l ents/min from sol u b le ca s ein at pH 8.0 and 40°C].(g) Amyloglucosidase.—Keep re frig er ated.(1)Starch/glu c ose oxidase–peroxidase method.—2000–3300 Units/mL (1 unit en z yme ac t iv i ty is de f ined as the amount of en z yme re q uired to re lease1µmole glu c ose/min at pH 4.5 and 40°C). (2) PNPBM (p-nitrophenyl beta-maltosidase) method.—130–200 Units/mL (1 unit en z yme ac t iv i ty [PNP unit] is the amount of en z yme, which in the pres e nce of ex c ess lev e ls of beta-glucosidase, will re l ease 1 µmole p-nitrophenyl from p-nitrophenyl beta-maltosidase/min at 40°C).The only en z yme which has been found to be sig n if i c antly con tam i nated with in ter fer ing ac tiv i ties is amyloglucosidase. Thermostable al p ha-amylase and pro t e a se from com m er c ial sources have been found to be gen e r a lly free of in t er f er i ng en z ymes. Low lev e ls of beta-glucanase have been de t ected in pro t e a se prep a r a t ions, but at lev e ls well be l ow that which would in t er f ere with to tal di etary fi ber anal y sis.The ma jor con tam i nant in amyloglucosidase prep a r a t ion was shown to be an endo-cellulase and re s ulted in endo-depolymerization of mixed-linkage beta-glucan from bar l ey and oats, with re s ul t ant un d er e s t i m a t ion of this di etary fi ber com po nent.The con tam i na tion of amylogucosidase with endo-cellulase (beta-glucanase) can be eas ily de tected.Al t er n a t ively, there are kits con t ain i ng all 3 en z ymes (pre t ested) avail a ble from a num b er of com p a n ies.(h)So dium hy drox ide so lu tion.—0.275M. Dis s olve 11.00 g NaOH ACS in ca 700 mL H2O in 1 L vol u m et r ic flask. Di l ute to vol u me with H2O.(i) Hy d ro c hlo r ic acid so l u t ion.—0.325M. Di l ute stock so l u t ion of known ti t er, e.g., 325 mL 1M HCl, to 1 L with H2O.(j) Celite.—Acid-washed.© 2005 AOAC IN T ER N A T IONAL Ta b le 985.29. Test sam p les for en z yme pu r ityTest sam p leAc tiv itytestedTest por t ionweight, gEx pectedre cov ery,% Cit rus pec tin Pectinase0.195–100 Stractan (larch gum)Hemicellulase0.195–100 Wheat starch Am y lase 1.00–1Corn starch Am y lase 1.00–2Ca sein Pro te ase0.30–2β-Glucan (bar l ey gum)aβ-Glucanase0.195–100aSigma Chem i c al Co. or Megazyme In t er n a t ional Ire l and, Ltd.D.En zyme Pu rityTo en sure ab sence of un de sir able en zy matic ac tiv ity in en zymes used in this pro c e d ure, run ma t e r i a ls listed in Ta b le 985.29 through en t ire pro c e d ure each time lot of en z ymes is changed, or at max i m um in t er v al of 6 months to en s ure that en z ymes have not de g raded.E. Test Por t ion Prep a r a t ionDe t er m ine to t al di e tary fi b er on dried test sam p le. Ho m og e n ize test sam p le and dry over n ight in 70°C vac u um oven, cool in des i c c a t or, and dry-mill test sam p le to 0.3–0.5 mm mesh. If test sam p le can n ot be heated, freeze-dry be f ore mill i ng. If high fat con t ent (>10%) pre v ents proper mill i ng, defat with pe t ro l eum ether (3 times with 25 mL por t ions/g test sam p le) be f ore mill i ng. Re c ord loss of weight due to fat re m oval and make ap p ro p ri a te cor r ec t ion to fi n al % di e tary fi b er found in de t er m i n a t ion. Store dry-milled test sam p le in capped jar in des i c c a t or un t il anal y s is is car r ied out.F.De ter mi na tionRun blank through en t ire pro c e d ure along with test por t ions to mea s ure any con t ri b u t ion from re a gents to res i d ue.Weigh du p li c ate 1 g test por t ions, ac c u r ate to 0.1 mg, into 400 mL tall-form beak e rs. Test por t ion weights should not dif f er >20 mg. Add 50 mL pH 6.0 phos p hate buffer to each beaker. Check pH and ad j ust to pH 6.0 ± 0.2 if nec e s s ary. Add 0.1 mL Termamyl so l u t ion. Cover beaker with Al foil and place in boil i ng water bath 15 min. Shake gently at 5 min in t er v als. In c rease in c u b a t ion time when num b er of beak e rs in boil i ng water bath makes it dif f i c ult for beaker con tents to reach in ter nal tem per a ture of95°–100°C. Use ther mom e ter to in di cate that 15 min at 95°–100°C is at t ained. To t al of 30 min in water bath should be suf f i c ient.Cool so l u t ions to room tem p er a t ure. Ad j ust to pH 7.5 ± 0.2 by add i ng 10 mL 0.275M NaOH so l u t ion.Add 5 mg pro t e a se. (Pro t e a se sticks to spat u la, so it may be pref e r a b le to pre p are en z yme so l u t ion (50 mg in 1 mL phosphate buffer) and pipet 0.1 mL to each sam p le just be f ore use.Cover beaker with Al foil. In c u b ate 30 min at 60°C with con t in u o us ag i t a t ion. Cool. Add 10 mL 0.325M HCl so l u t ion. Mea s ure pH and dropwise add acid if nec e s s ary. Fi n al pH should be 4.0–4.6. Add 0.3 mL amyloglucosidase, cover with Al foil, and in c u b ate 30 min at 60°C with con tin u ous ag i ta tion.Add280mL 95% ethyl al c o h ol pre h eated to 60°C (mea s ure vol u me be f ore heat i ng). Let pre c ip i t ate form at room tem p er a t ure for 60 min. Weigh cru c i b le con t ain i ng Celite to near e st 0.1 mg, then wet and re d is t rib u te bed of Celite in cru c i b le by us i ng stream of 78% ethyl al c o h ol from wash bot t le. Ap p ly suc t ion to draw Celite onto fritted glass as even mat. Main t ain suc t ion and quan t i t a t ively trans f er pre cip i tate from en zyme di gest to cru ci ble.Wash res i d ue suc c es s ively with three 20 mL por t ions of 78% ethyl al c o h ol, two 10 mL por t ions of 95% ethyl al c o h ol, and two 10 mL por t ions of ac e t one. Gum may form with some prod u cts, trap p ing liq u id. If so, break sur f ace film with spat u la to im p rove fil t ra t ion. Time for fil t ra t ion and wash i ng will vary from 0.1 to 6 h, av e r a g i ng 0.5 h per sam p le. Long fil t ra t ion times can be avoided by care ful in ter mit tent suc tion through out fil tra tion.Dry cru c i b le con t ain i ng res i d ue over n ight in 70°C vac u um oven or 105°C air oven. Cool in des i c c a t or and weigh to near e st 0.1 mg. Sub t ract cru c i b le and Celite weight to de t er m ine weight of res i d ue. An a l yze res i d ue from 1 test por t ion of set of du p li c ates for pro t ein by 960.52 (see 12.1.07), us i ng N × 6.25 as con v er s ion fac t or, ex c ept in cases where N con t ent in pro t ein is known.In c in e r a te sec o nd test por t ion of du p li c ate 5 h at 525°C. Cool in des i c c a t or and weigh to near e st 0.1 mg. Sub t ract cru c i b le and Celite weight to de t er m ine ash.G.Cal cu la tionsDe t er m i n a t ion of blank:B = blank, mg = weight res i d ue − P B−A Bwhere weight res i d ue = av e r a ge of res i d ue weights (mg) for du p li c ate blank de t er m i n a t ions; and P B and A B = weights (mg) of pro t ein and ash, re s pec t ively, de t er m ined in first and sec o nd blank res i d ues.Cal c u l ate TDF as fol l ows:TDF, % =[(weight res i d ue −P−A−B) / weight test por t ion] × 100 where weight res i d ue = av e r a ge of weights (mg) for du p li c ate blank de t er m i n a t ions; and P and A = weights (mg) of pro t ein and ash, re s pec t ively, in first and sec o nd test por t ion res i d ues; and weight test por t ion = av e r a ge of 2 test por t ion weights (mg) taken.Ref er ences:JAOAC 68, 677(1985); 69, 259(1986).Re v ised: June 2003* Adopted as a Co d ex De f ining Method for gravimetry/en z y m atic di g est of to t al di e tary fi b re in spe c ial foods.© 2005 AOAC IN T ER N A T IONAL。