实验方法---单抗制备
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抗D-二聚体单克隆抗体的制备和鉴定
1 材料和方法
1.1 实验材料
1.1.1 动物和细胞
6周龄BALB/c雌鼠,体重18~22g,购于武汉大学实验动物中心;小鼠骨髓瘤细胞SP2/0细胞。
1.1.2 试剂
小牛血清(NCS)——56℃灭活30分钟过滤除菌、HT及HAT选择培养液(筛选杂交瘤细胞,Sigma 公司)、8-氮杂鸟嘌呤(8-azaguanine)、RPMI 1640、Hank's液、辣根过氧化物酶标记羊抗鼠IgG (HRP-GAM-IgG)及鼠源McAb亚类检测试剂盒(Sigma公司/ Roche公司)、Western blot 试剂盒(Roche 公司)、96孔和24孔细胞培养板、5%脱脂奶粉、ELISA板、FPLC(快速蛋白液相层析)、弗氏完全和不完全佐剂(Sigma公司)、D-二聚体标准品、台盼蓝染色细胞存活率检测试剂盒(Sigma公司)、二甲基亚砜(DMSO,分析纯)、75%酒精。
1.1.3 主要仪器设备
CO2培养箱、液氮、细胞计数板、酒精灯、玻璃平皿、平底烧瓶、200目不锈钢网筛、细胞培养板、培养瓶、解剖器械(剪刀和镊子)、加样枪及枪头(黄,蓝,白)、一次性无菌塑料离心管(15ml)、滤菌器、PH试纸、酶标仪、蛋白检测仪、蛋白纯化系统、高速冷冻离心机、低速大容量多管离心机、层析柱、倒置显微镜、电热干燥箱。
1.2 方法
1.2.1 动物免疫
首次免疫以100ug D-二聚体+完全佐剂按1:1乳化,于小鼠颈背部皮下多点注射;第二次和第三次改为不完全佐剂,其他免疫指标不变,于小鼠颈背部皮下多点注射。注射量均为0.3ml/只。
1.2.2 ELISA法测定小鼠血清效价
小鼠血清抗体效价应>1:10 000,融合前3天加强免疫一次。
1.2.3细胞融合前的准备
1.2.3.1 骨髓瘤(浆细胞瘤)细胞的选择和培养:
骨髓瘤细胞系应和免疫动物属于同一品系,这样杂交融合率高,也便于接种杂交瘤细胞在同一品系小
鼠腹腔内产生大量McAb。常用骨髓瘤细胞系有:SP2/0、NS1、P3/X63-Ag8.653等。
骨髓瘤细胞的培养适合于一般的培养液,如RPMI1640,DMEM培养基。小牛血清的浓度一般在10~20%,细胞浓度以104~105/ml为宜,最大密度不得超106/ml,一般扩大培养以1:3~1∶10稀释传代,传代培养要保持细胞的对数生长期(约105细胞/毫升,细胞形态规则要一致,圆而亮,有一定的立体感,机能要活跃,活细胞数在90—95%以上。要得到这种细胞,其培养技巧在于,在融合前24小时,将生长良好的细胞全部自瓶壁冲下来,并除去1/2或更多的细胞,加入新鲜培养液令细胞重新贴壁分裂增繁),每3~5天传代一次,细胞的倍增时间为16~20小时,一般可间隔3天更换一次培养液(一般一传三或把一瓶细胞弃去一半后再一传二,这样24小时后又全部长满。)。细胞在传代过程中,部分细胞可能有返祖现象,应定期用8-氮杂鸟嘌呤进行处理(15~20ug/ml),HGPRT阳性细胞利用8-AG后,合成毒性核苷酸而死亡,只有HGPRT阴性细胞能持续生长,从而避免细胞的返祖现象,使生存的细胞对HA T呈均一的敏感性。上述三株骨髓瘤细胞系均为悬浮或轻微贴壁(半贴壁)生长,无须用姨蛋白酶消化,直接用吸管轻轻吹打即可使细胞分散。骨髓瘤细胞的最高生长浓度为9X105/ml,倍增时间通常为10~15h。
一般在准备融合前两周就应开始复苏骨髓瘤细胞(融合前经8-氮杂鸟嘌呤筛选2周)。用于融合试验前必须做对HAT选择培养基敏感性试验。由于HGPRT酶缺损,DNA合成障碍细胞应发生死亡,否则有变异,不能用于试验。为阻止出现返祖现象,确保该细胞对HAT的敏感性,在筛选建株时应在含8-氮杂鸟嘌呤致死剂的培养液中(20~30mg/L)培养一代后(条件摸索:两代),换成常规培养基培养。融合细胞应选择处于对数生长期、细胞形态和活性佳的细胞(活性应大于95%),在细胞融合前1天用新鲜培养基调细胞浓度为2×105/ml,一般次日即为对数生长期细胞。每3~6月应用8-AG(8氮杂鸟嘌呤)筛选一次,以防止细胞的突变。复苏的主要步骤及注意事项见《医用细胞工程》第111页。
1.2.3.2 免疫脾细胞的制备:
免疫脾细胞指的是处于免疫状态脾脏中B淋巴母细胞一般取最后一次加强免疫3天以后(第4天,融合当天)的脾脏,制备成细胞悬液,由于此时B淋巴母细胞比例较大,融合的成功率较高。
脾细胞悬液的制备:
a 摘除小鼠眼球放血,留作阳性对照。
b 拉颈处死小鼠,用75%的酒精浸泡消毒小鼠皮毛3~5分钟。
c 无菌条件下打开腹腔取出脾脏,去除脂肪和结缔组织,用无血清的培养液(1640)或Hank's液洗
去红细胞。
d 置不锈钢筛网上用注射器内芯研磨成细胞悬液后吸入小试管中,直立小试管3 min使大块的结缔组
织下沉,把脾细胞悬液吸入离心管中(不锈钢筛网置于玻璃平皿中,加入洗液,用注射器内芯研磨好后,再用适量洗液将不锈钢筛网上的脾细胞冲入平皿)。
e 用洗液洗2次,再用无血清1640洗一次。洗液充满离心管,经1000 r / min离心5 min(与此同时
开始制备骨骼瘤细胞)。
f 弃上清加入完全培养基(10%FCS的RPMI 1640),用吸管吹打分散,收集上层悬液,除去沉下的
大块。
g 用计数板进行细胞计数(第125页),细胞计数,并用培养基调整适当的细胞浓度(1~2×108/L
左右)置室温待融合用;以台盼兰染色用显微镜检查,活细胞数应高于80%为合格。
一般免疫后脾脏体积约是正常鼠脾脏体积的2倍,细胞数为1~2.5×108/L左右。
1.2.3.3 饲养细胞的制备:
为防止细胞融合时因损伤而难以生长、促进杂交瘤细胞生长、增加克隆数,常需制备饲养层细胞。可用肉汤刺激小鼠腹腔并收获腹腔中的巨噬细胞,该细胞有助于清洁培养表面和吞噬死亡细胞。
小鼠腹腔巨噬细胞的制备:
小鼠采用与免疫小鼠相同的品系,常用BaLb/c小鼠6~10周龄
↓
拉颈处死浸泡于75%酒精,消毒3~5分钟