成骨细胞培养

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成骨细胞名词解释组织学

成骨细胞名词解释一、定义和性质成骨细胞，也称为骨细胞，是骨骼组织中的主要细胞类型之一。

它们是成熟的、功能活跃的骨形成细胞，负责骨组织的形成和重建。

成骨细胞位于骨质表面、骨膜内面及骨髓腔中，通常与基质结合形成骨组织。

在组织学上，成骨细胞具有特定的形态和结构特征，表现为长柱状或不规则形状，核大而深染，核仁明显，胞质丰富。

二、功能与特点1.骨形成：成骨细胞的主要功能是合成和分泌骨基质，包括胶原蛋白和骨钙蛋白等，这些成分是构成骨质的主要成分。

通过合成这些基质，成骨细胞有助于骨质的形成和增加。

2.骨重建：成骨细胞也参与了骨组织的重建过程。

在破骨细胞对旧骨质进行吸收后，成骨细胞会在吸收部位形成新的骨质，实现骨组织的更新和修复。

3.调节血钙平衡：成骨细胞还能调节血液中的钙浓度，通过调节骨质矿化和吸收，以维持机体血钙平衡。

4.黏附于骨表面：成骨细胞具有黏附于骨表面的能力，通过特定的受体与骨基质结合，维持骨组织的结构和完整性。

5.表达多种生长因子：成骨细胞能表达多种生长因子，如胰岛素样生长因子、转化生长因子等，这些因子能刺激成骨细胞的增殖和分化，对骨组织的形成和发育具有重要影响。

三、成骨细胞与骨组织的形成在胚胎发育过程中，间充质干细胞在一定的诱导条件下会分化为成骨细胞。

这些成骨细胞会合成和分泌骨质基质，形成原始的骨质。

随着胎儿的生长和发育，成骨细胞会不断合成新的骨质，使骨骼逐渐生长和发育成熟。

在成年后，成骨细胞仍保持着合成骨质的功能，同时参与破骨细胞的诱导和骨组织的重建过程。

四、成骨细胞的分化与调控1.信号转导途径：多种信号转导途径参与了成骨细胞的分化和调控。

例如，BMPs、TGF-βs等生长因子可通过相应的受体激活Smad或多条MAPK信号转导途径，调节成骨细胞的基因表达和功能活动。

2.转录因子：Runx2、Osterix等转录因子在成骨细胞的分化过程中发挥关键作用。

这些转录因子能调控成骨细胞的特异性基因表达，促进其向成熟成骨细胞分化。

人成骨细胞原代培养

人成骨细胞原代培养1.人成骨细胞的分离和培养：在无菌条件下取自体骨移植患者少量的松质骨，装入无菌HANK’S液中，迅速运送至实验室，充分剥离骨膜及软组织，把将骨块置于盛有DMEM培养液的培养皿中修整为1mm×1mm×1mm大小的碎块，将松质骨块置入含有2∼3mlPBS的EP管中，用力摇动数次，然后静止30秒，令骨块沉下，小心倒掉含有造血组织和细胞的上清液，无菌PBS冲洗3次。

在松质骨块粒内加入红细胞裂解液(碳酸氢钠840mg、乙二胺四乙酸37.2mg、氯化铵8.023g、双蒸水1000mL，pH为7.2)，体积比为1∶2，裂解8min，离心去上液，至骨片发白放入离心管内。

2.酶消化法：加入10倍的2.5g/L胰蛋白酶，在37℃恒温箱振荡预消化20min，胎牛血清终止消化，弃去消化液，PBS清洗两遍。

再加入体积比为1∶8的0.1%的Ⅰ型胶原酶密封置于37℃水浴箱内振荡消化1h，1000r/min离心5min，弃上清，沉淀用PBS洗涤后再1000r/min离心5min，沉淀用DMEM-F12完全培养液重新悬浮反复吹打均匀，将细胞悬液通过200目不锈钢筛网，去除可能存在的非成骨细胞和杂质成分，保留骨粒。

剩余骨粒重复Ⅰ型胶原酶消化，共3次。

然后将3次消化所得的细胞悬液用血球计数板计数，制成5×107L-1的细胞浓度(台盘蓝染色显示存活的细胞不少于95%)，接种于无菌培养皿中，在体积分数5%CO2、95%湿度培养箱中37℃条件下培养。

48h后换液，弃去悬浮细胞，每隔2d换液1次，细胞接近融合时传代。

3.组织块法：将消化过的骨块，先用血清润湿，然后用吸管均匀接种至25 cm2的培养瓶中，翻转培养瓶，小心加入5 mL DMEM-F12完全培养液后，放入体积分数5%CO2、95%湿度培养箱中37 ℃条件下培养4 h后小心翻瓶。

每周换液1次，第3周起每周换液2次，细胞接近融合时按1∶ 2传代。

成骨细胞-血管内皮细胞共培养体系的研究进展

最佳ＯＢｓ／ＶＥＣｓ比例。１．１ＯＢｓ — ＶＥＣｓ共培养的培养基条件在ＯＢｓ — ＶＥＣｓ共培养
２．１ＯＢｓ — ＶＥＣｓ细胞间的直接作用
共培养体系中，ＯＢｓ与
ＶＥＣｓ通过间隙连接发挥细胞间直接作用，间隙连接的实质
为：两种细胞内的各自的水性通道组成特殊的膜区域，通过这种特殊的膜区域实现两相邻细胞间胞质连接。因此，特殊生物结构决定了该连接仅允许Ｃａ，ｃＡＭＰ，ｃＧＭＰ，肌糖ｉｎｏｓｉｔｏｌ（１，４，５）－磷酸三酯ｔｒｉｓｐｈｏｓｐｈａｔｅ（ＩＰ３）等离子及小分子通过。在调节体系中，一个完整的通道由两个半通道对接组成或者通过两种细胞胞膜中的连接子组成。每一个连接
ＯＢｓ — ＶＥＣｓ共培养实验研究已经证实：与ＯＢｓ或ＶＥＣｓ单独培养相比，ＯＢｓ与ＶＥＣｓ的共培养能显示出更高的碱性磷酸酶（ａｌｋａｌｉｎｅｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ，ＡＬＰ）活性及血管样结构，表明两类细胞问存在着相互促进的生物学作用，各自体现在分化、成熟和特异性结构的表达上。然而，Ｅｔ前国内外报道中涉及这一共培养体系细胞间生物学现象发生机制的研究甚少。因此，ＯＢｓ — ＶＥＣｓ细胞共培养实验尚有待进一步的深入探讨。首先列入研究的内容是共培养最适培养基的条件及

成骨细胞与破骨细胞的共培养体系

成骨细胞与破骨细胞的共培养体系
1 建立成骨细胞与破骨细胞共培养体系
成骨细胞和破骨细胞是骨再生的重要细胞，在成骨和破骨之间存
在矛盾性相互作用，为解决该矛盾性作用，建立成骨细胞与破骨细胞
共培养体系是有必要的。

1.1 获取细胞
获取成骨细胞和破骨细胞是共培养体系的第一步。

一般的获取方
式有从动物原位骨组织采集、从动物移植位骨组织采集以及从动物分
化出的骨细胞培养采集等；此外，还可以利用旁路移植操作获得成骨
和破骨细胞，以及通过多剂量胶原纤维骨再生制备法获取到成骨细胞，以及经过分离纯化的单个样品。

1.2 制备培养基
共培养体系建立的必要组成部分之一是，必须将对成骨细胞和破
骨细胞培养基进行优化；即构建一个基于实验的的多层联合的培养体系。

1.3 实现活细胞共培养
实现活细胞共培养仅用AMP法是不能取得理想效果的，而且很容
易造成细胞成骨破骨细胞凋亡和发生假复合，因此需要考虑利用有特
殊支架结构的凝胶体，或者应用其他生物材料来实现活细胞共培养。

1.4 动物实验
为了在实际应用中证实共培养体系的可行性，需要在动物实验上进行实验验证，有助于进一步用于临床应用，以达到促进骨再生的目的。

建立成骨细胞与破骨细胞的共培养体系具有重要的理论指导意义和临床应用价值，从而实现骨量的增加与骨质的维持，这不仅将有助于改善骨健康，而且有助于促进骨骼可塑性，有助于改善患者的生活质量，也是进一步改善骨病患者的治疗方法。

成骨培养基配方

成骨培养基配方一、前言成骨培养基是一种用于细胞培养的营养液，主要用于骨细胞的生长和分化。

成骨培养基中含有多种营养物质和生长因子，可以促进骨细胞的增殖和分化，从而加速骨组织的形成和修复。

成骨培养基配方的制备需要严格控制各种成分的比例和浓度，以保证其对骨细胞具有最佳的促进作用。

二、成骨培养基配方1. 基础培养基成骨培养基的基础部分通常采用Dulbecco's Modified Eagle's Medium（DMEM）或Minimum Essential Medium（MEM）等常见的细胞培养基。

这些基础培养基中含有必需氨基酸、糖类、维生素、盐类等多种营养物质，可以为细胞提供必要的生长条件。

2. 补体为了促进骨细胞在体外生长和分化，成骨培养基中通常添加一些补体。

这些补体包括：（1）胎牛血清（Fetal bovine serum，FBS）：FBS是最常用的补体之一，可以为细胞提供多种生长因子和营养物质，促进细胞增殖和分化。

（2）骨形成素（Bone morphogenetic protein，BMP）：BMP是一种重要的生长因子，可以促进骨细胞的分化和骨组织的形成。

（3）维生素D3（Vitamin D3）：Vitamin D3是一种脂溶性维生素，在体内可以促进钙的吸收和利用。

在成骨培养基中添加适量的Vitamin D3可以促进骨细胞的分化和钙化。

（4）β-甘油磷酸钠（β-glycerophosphate）：β-glycerophosphate是一种有机磷酸盐，在体内可以促进钙离子的沉积和骨组织的形成。

在成骨培养基中添加适量的β-glycerophosphate可以促进骨细胞的分化和矿化。

3. 抗生素为了防止培养基受到污染，通常会在成骨培养基中添加一些抗生素。

常用的抗生素包括青霉素、链霉素等，可以有效地抑制细菌和真菌的生长。

4. 其他成分除了以上几种成分外，成骨培养基中还可能添加一些其他的营养物质和生长因子，以满足不同类型的骨细胞对营养物质和生长因子的特殊需求。

成骨培养基配方

成骨培养基配方
成骨培养基是一种特殊的细胞培养基，它可以用于培养和研究骨细胞、软骨细胞和成骨细胞。

成骨培养基的配方是关键之一，下面介绍一种经典的成骨培养基配方。

1. DMEM/F12培养基：DMEM和F12培养基的混合物能够提供足够的营养物质和生长因子，支持细胞的存活和生长。

2. FBS：胎牛血清(FBS)是细胞培养中最广泛使用的血清，提供多种生长因子和营养物质，促进细胞的增殖和分化。

3. 抗生素和抗真菌剂：如青霉素和链霉素，保持培养物的纯度和无菌状态。

4. 抗氧化剂：细胞长期培养会产生氧化应激，影响细胞的生长和功能，加入抗氧化剂如谷胱甘肽(GSH)和丙酮酸可以减少氧化应激的影响。

5. 骨形态发生蛋白-2(BMP-2)：BMP-2是一种重要的成骨分化因子，能够促进干细胞向成骨细胞的转化，加入BMP-2能够促进细胞的成骨分化。

6. 维生素C：维生素C是一种重要的抗氧化剂，能够抑制细胞凋亡和促进胶原合成，加入适量的维生素C可以促进细胞的生长和分化。

以上是一种经典的成骨培养基配方，但随着科学技术的发展和研究的深入，配方也在不断改进和完善。

未来的成骨培养基会更加精细化，能够更好地模拟人体环境，促进细胞的生长和分化。

成骨细胞原代培养

成骨细胞原代培养
成骨细胞是一类能够形成骨组织的细胞，它们可以通过原代培养的方法进行研究。

下面是成骨细胞原代培养的步骤：
1.选择合适的细胞来源：成骨细胞可以来源于小鼠、大鼠、人等，根据研究需要选择合适的动物或人类来源。

2.预处理组织：从动物或人体中取出骨骼组织，去除软组织和肌肉，然后将骨骼切成小块。

3.分离成骨细胞：用酶等物质对骨骼块进行消化，获得含有成骨细胞和间充质细胞的细胞悬液。

4.培养：将获得的细胞悬液接种在含有成骨细胞培养物的培养皿中，培养温度为37℃，CO2浓度为5%。

5.细胞传代：细胞在生长过程中会不断分裂，可以将细胞培养到达一定密度后用胰酶等物质分离，得到更多的细胞用于后续实验。

通过原代培养方法获得的成骨细胞具有更高的细胞活力和稳定性，适合用于体外研究成骨细胞的生物学特性和调控机制。

植块法成骨细胞体外培养方法改良论文

植块法成骨细胞体外培养方法的改良【摘要】目的：对成骨细胞体外培养改良植块法的可行性进行观察。

方法：应用改进的植块接种培养技术进行成骨细胞的分离培养，通过细胞形态学、碱性磷酸酶（alp）细胞化学染色、骨钙素（bgp）免疫细胞化学染色、钙化结节的形成四方面对成骨细胞进行鉴定。

结果：(1)原代及传代细胞均贴壁生长，呈三角形、多角形、梭形等不规则形态，条件培养基中形成钙化结节，碱性磷酸酶细胞化学染色及骨钙素免疫细胞化学染色呈阳性。

结论：改进的植块接种培养法可获得成骨细胞，缩短成骨细胞的培养周期。

【关键词】成骨细胞 ;体外培养 ;方法 ;改良【中图分类号】r329 【文献标识码】a【文章编号】1044-5511（2011）11-0453-02近20年来随着细胞生物学及生物材料学技术的发展而出现了一门新的边缘学科——骨组织工程学。

骨组织工程学研究的方向主要在：种子细胞及载体材料两方面。

种子细胞主要来源是骨外膜成骨细胞［1］、松质骨组织中的成骨细胞［2］、软骨细胞［3］及骨髓基质细胞［4］。

传统的成骨细胞体外培养方法需多次传代，具有耗时、易污染的缺点，我们对体外培养方法进行了改良，现总结如下：一、材料与方法1实验动物：健康新西兰大白兔（赣南医学院实验动物中心提供，体重1.5-2kg）2、主要试剂及仪器：胎牛血清（华美生物工程公司）dmem（gibco）胰蛋白酶（gibco）edta（gibco）青霉素g钠盐（华美生物工程公司）链霉素（华美生物工程公司）骨钙素抗体（解放军总医院放免研究所）sabc试剂盒（博士德公司）倒置显微镜（olympus）低温冰箱（indesit）二氧化碳细胞培养箱（forma scientific）3、兔成骨细胞的植块接种原代培养及传代：组织块的来源是新西兰大白兔的肋骨，无菌操作下采取骨组织块，在无菌室内进行植块前的处理：去除肋骨四周的软组织（包括骨膜及软骨）及将肋骨剪成1mm×1mm×1mm大小的骨组织块，用中性d-hanks液反复冲洗组织块，直至液体清亮为止。

成骨细胞培养方法

成骨细胞培养方法嘿，朋友们！今天咱就来讲讲成骨细胞培养方法，这可是个有趣又重要的事儿呢！你想想看，培养成骨细胞就好像是在建造一座小小的骨头城堡。

咱得先给它们准备好一个合适的“家”。

这个“家”呢，就是培养皿啦。

可别小瞧这培养皿，它得干净、无菌，就像咱自己的家要整洁干净一样。

然后呢，得给成骨细胞准备它们爱吃的“食物”，这就是培养液啦。

这培养液就像是给它们准备的大餐，得营养丰富，能让它们茁壮成长。

接下来就是关键步骤啦，要把成骨细胞小心翼翼地放到培养皿里。

这可得轻点儿、慢点儿，就像你对待一个小婴儿似的，可不能粗鲁。

然后把它们放在一个温暖舒适的地方，就像咱冬天喜欢呆在暖和的屋里一样。

这个地方要有合适的温度和湿度，让成骨细胞能舒舒服服地生长。

在培养的过程中，咱可不能偷懒哦！要时不时地去看看它们，就像你会经常去看看自己养的花有没有长好一样。

观察它们的生长情况，看看有没有什么变化。

有时候啊，可能会遇到一些小问题，比如说培养液变得浑浊啦，或者细胞长得不那么好啦。

这时候可别慌张，咱得冷静下来想想办法，是不是哪里出了问题呀？就像你遇到难题时，得静下心来思考一样。

培养成骨细胞可真是个需要耐心和细心的活儿。

就好比你种一棵树，你得天天浇水、施肥，盼着它快快长大。

培养成骨细胞也是这样，你得付出时间和精力，才能看到它们健康成长。

而且啊，这过程中还得注意无菌操作，可不能让细菌啊、病毒啊这些坏家伙来捣乱。

这就好像你要保护好自己的宝贝，不能让别人随便碰一样。

等成骨细胞培养好了，那可真是满满的成就感呀！你会觉得自己就像一个小小的科学家，完成了一项了不起的任务。

总之呢，成骨细胞培养可不是一件容易的事儿，但只要你有耐心、细心，肯下功夫，就一定能成功。

大家都试试吧，说不定你就能培养出一群健康又可爱的成骨细胞呢！。

现代医学实验学-成骨细胞的培养和骨折模型的制作

3.培养基问题：低糖的DMEM培养基
4.培养瓶培养瓶在接种前，使用1%多聚赖氨酸快速包被（具体方法：每个50ml培养瓶加3-4ml1%多聚赖氨酸，尽量是底壁均铺满液体，拧上盖子，放置30min，倒掉1%多聚赖氨酸液体，用去离子水或PBS 液冲洗两遍），包被的培养瓶，细胞很容易贴壁。
大鼠成骨细胞
2铝
目前认为一些疾病如骨质疏松、骨软化等与铝中毒有关。铝蓄积于骨骼，对骨骼和神经系统等产生危害。文献报道低浓度铝可刺激体外培养的成骨细胞的增殖和分化，铝对成骨细胞的作用不受培养液中生长因子变化的影响。高剂量铝可抑制成骨细胞的生长发育并对其产生一定的毒性作用
3氟
氟一方面作为骨基质构成物参与骨形成过程，另一方面，过量的氟摄入可导致齿、骨等组织及器官的损害。体外研究则表明，氟通过对成骨细胞的有丝分裂的作用促使成骨细胞的生长速度加快、数量增多、功能增强。氟对成骨细胞的作用与铝有所不同，需依赖于培养液中部分生长因子，除去这些生长因子，可消除氟对成骨细胞的作用.
传代培养步骤
1.弃除旧的培养液（可以吸，可以倒，倒的时候小心） 2.用PBS冲洗一遍（加PBS清洗或换液时，不要将细胞冲刷下来） 3.用0.25%的胰酶消化液消化30-45s，在显微镜下观察，细部变圆，间距增大时，可用手拍打瓶侧壁与底壁，会发现细胞很快悬浮。 4.加入含15%的牛血清培养液终止消化 5.用吸管反复细心吹打瓶底，置离心管中后，可以用PBS或DHANKS再吹打，可以反复几次，目的是将细胞尽可能的洗刷干净
样细胞不会引起明显的改变 ,而单次高剂量辐射（ 400 cGy）却使克隆成骨细胞系MC3T3-E1 的 ALP 活性增加. 2 微重力目前认为失重条件下骨形成受到抑制是造成骨质脱钙的主要原因，特别是成骨细胞数目的减少和活性

成骨细胞培养条件

成骨细胞培养条件嘿，朋友，今天咱们来摆摆龙门阵，聊聊那个高大上的话题——成骨细胞的培养条件。

别慌，我尽量用咱们四川话，让你听得巴巴适适的。

首先啊，说起成骨细胞，那可是骨头里的“建筑师”，得给它们整个好环境，才能让它们安心“盖房子”。

这第一步，就是培养基的选择，得用那种基础中的战斗机，比如DMEM（咱就简称“得卖”），就像是给细胞们准备的豪华大餐底料。

然后嘞，得加点料进去，让这“大餐”更丰盛。

血清，懂不？就是细胞的“营养快线”，常用的有胎牛血清（咱们就叫它“小牛奶”吧），加点进去，细胞们喝得那叫一个欢。

还有生长因子，比如维生素C、β甘油磷酸钠这些，就像是给细胞们打的“兴奋剂”，让它们长得更快，分化得更好。

再来说说环境，成骨细胞可是娇气得很。

温度得刚刚好，37°C，不冷不热，就像咱们四川的春天一样巴适。

还有气体，培养箱里头得有5%的二氧化碳，这样酸碱平衡才稳当，细胞们才不会“憋气”。

湿度也不能少，70%80%，湿润润的，细胞们住着才舒服。

还有啊，得定期给它们换“房子”里的水，也就是换培养基，一般两三天换一次，保持环境清洁卫生。

细胞们长多了，还得给它们分家，叫传代培养，这样才能保证每一家都过得红红火火，不至于“打挤”。

最后，咱们还得鉴定一下这些细胞，看看它们是不是真的成骨细胞，有没有好好干活。

用些特别的染色法，比如碱性磷酸酶活性检测、茜素红染色，就像给它们拍写真一样，看看它们长得美不美，分化得好不好。

总之啊，成骨细胞的培养，就像照顾小娃娃一样，得细心、耐心，还得有点科学精神。

只有这样，它们才能茁壮成长，为我们的健康贡献力量。

好了，今天咱们就摆到这里，下次有机会再继续聊哈！。

成骨细胞培养

成骨诱导液：地塞米松，β-磷酸甘油，维生素C，OB或3T3-E1：α-MEM+10%FBS+50ug/ml ascorbic acid+10mM β-glycerophosphatePG(磷酸甘油)和Vc配好放四度，Vc尽量分装保存，减少与空气接触，三种分开配，不能配一起，培养液也是现用现配成骨细胞分离培养：无菌条件下取出新生鼠的颅盖骨，置入冷PBS中，剔除附着的结缔组织。

用PBS液清洗3次，将其置入盛有DMEM培养基的培养皿中，剪成0.5 mm×0.5 mm大小碎块，约30块，加入0.25%胰蛋白酶5 mL，置入孵箱中消化20 min，血清终止消化，弃上清液，加入1.0 g/L Ⅰ型胶原酶10 mL，置于孵箱中消化90 min，1 000 r/min 离心10 min，使细胞沉淀，用PBS洗涤细胞2次，200目滤网过滤去除骨碎片。

所沉淀物以含体积分数10%的胎牛血清、100 U/mL青霉素，100 mg/L链霉素的DMEM培养液重悬细胞，吹打均匀，接种至多个25 cm2培养瓶。

于37 ℃，含体积分数5%CO2培养箱培养。

48 h后换液，以后隔日换液1次。

成骨细胞的培养，纯化及传代：在原代培养过程中，每48 h换液1次至细胞融合成单层，密度长至80%融合时，1∶3的比例进行传代培养。

将原代培养细胞用0.25%胰酶消化，制成细胞悬液，采用差速贴壁法进行成骨细胞的纯化。

成骨细胞鉴定：活细胞形态观察细胞：培养后每日用倒置相差显微镜观察细胞形态变化及生长状况并拍照。

Giemsa染色：将纯化后的第2代细胞调整细胞浓度至5×107 L-1，接种到12孔细胞培养板中，每孔接种0.75 mL，以后每3 d换液。

待细胞分布均匀、约80%融合时，PBS洗3次，甲醇固定10 min，Giemsa 染液染2 min，蒸馏水冲洗，显微镜下观察拍照。

碱性磷酸酶活性检测细胞化学染色：细胞接种方法同上，体积分数95%乙醇固定30 min，按碱性磷酸酶活性检测试剂盒要求进行检测。

BMSCs成脂成骨分化实验总结

骨髓间充质干细胞（BMSCs）培养以及成脂、成骨诱导分化一，C57小鼠BMSCs原代培养1，实验前准备好相关手术器械，培养器材及相关试剂PBS 平衡缓冲液、10％FBS，IMDM培养基。

2，脱颈法处死C57小鼠，在75％乙醇中浸泡5min，转移至超净工作台中，无菌条件下分离出小鼠的长骨(股骨和胫骨)，浸泡于PBS溶液中。

3，对股骨和胫骨进行深层次解剖，去除附着的肌肉组织，剪掉长骨两端的干骺端，用10％FBS，IMDM培养基反复冲洗骨髓腔，直至骨髓腔发白，收集洗涤液，用移液枪轻轻吹散分离为单个细胞。

4，细胞接种于六孔板中培养，轻微摇匀，使细胞在孔中均匀分布，放置于37℃、5％CO2培养箱中静置培养，培养期间不要移动六孔板，使BMSCs充分贴壁。

5，培养48h后换液，用预热的PBS缓冲液轻轻洗涤细胞2次，添加新鲜培养基，之后每隔48h换液1次。

原代培养6-7d 后细胞铺满80％(图1)，可进行传代培养。

图1：BMSCs原代培养6-7d二，BMSCs成脂诱导分化BMSCs铺皿，细胞融合达80％以上后，弃去原培养基，添加成脂诱导培养基(IMDM中加入10%FBS，10μg/ml胰岛素，1μM 地塞米松，0.5mMIBMX，0.1mM吲哚美辛)。

3d换液1次，分化12d。

待脂滴形成后进行油红O染色，PBS缓冲液清洗3次，10％中性甲醛固定20min，再用PBS缓冲液清洗2次，油红O染液浸染30min，PBS缓冲液清洗2次，苏木素染液浸染1min，弃去染液，倒置显微镜下观察拍照。

成脂诱导分化过程中发现在诱导5d时，细胞形态开始变圆并大量脱落，部分细胞中出现细小脂滴(图2)。

图2：BMSCs成脂诱导5d三，BMSCs成骨诱导分化BMSCs铺皿，细胞融合达80％以上后，弃去原培养基，添加成骨诱导培养基(IMDM中加入10%FBS,5μg/ml胰岛素，0.1μM 地塞米松，0.2mM维生素C和10mMβ-甘油磷酸盐)。

成骨细胞的体外培养与鉴定

成骨细胞的体外培养与鉴定☆
王勇平，廖皴，蒋矗
Ｉｖｔｏｌｕｒｎｄｉｎｉｒｃｕｔｅａｄｅｎｉｃｔｏｎｏｔｏａ；ｔｉａｉｆｏｓｅｂｌｓｓｆｔ
ＷａｇＹｇｐｎ，ｉｏＹｉＪａｇＹａｎｏｎ－ｉｇＬａ，ｉｎｏ
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１３ｃｏ６ｍ
Ｒｅｅｉｅ：０１－２０ｃｖｄ２１０－９Ａｃｐｅ：０１－４２ｃｅｔ２１０－４ｄ
王勇平，廖皴，蒋壶．骨细胞的体外培养与鉴定［．国组织工程研究与临床康复，２１，１（３：３ —２４成Ｊ中】０１５３）２１３６６
ＡｂｓｒｃｔｔａＢＡＣＫＧＲＯＵＮＤ：ｅｍｅｈｓｏｓｅｂａｔｕｔｒ『ｖｔａｅｃｒｎｌｉｔｓＴｈｔｏｄｆｏｔｏｌｓｌｅ门ｉｏｈｖｅｔｉｔｉｃｕｒａｉｍａｏｎ．０ＢＪＥＣＴＩＶＥ：ｕＴＯｓｍｍａｒｅｏｓｅｂａｔｓｕｃｉｉｏｃｔｅｍｅｈｄ，ｕｌｒｏｎｉｏｎａｄｉｅｎｉｃｔｎｓｇｓｉｔｏｌｓｏｒｅ，ｎｖｔｕｌｔｏｃｔｅｃｄｔ，ｎｚｒｕｒｕｉｄｔａｉｉｎｉｆｏＭＥＴＨＯＤＳ：ｃＡｏｍｐｔｒｂｅｅｒｖｓｐｒｍｅｄｉｂＭｅｎａｆｎｄａａａｅｅｃｕｅ－ａｓｄｒｔｉａｌｅｗａｅｆｏｒｎＰｕｄａｄＷｎａｇｔｂｓｓｔｓａｒｈｍａｎｓｒｐｓｐｂｉｈｄｏｕｃｉｔｕｌｅｓｂｔｅ００ａｎ０１ｔｈｅｙｗｏｄｓｓｅｂｌｓ．ｅｌｕｌｅｉｅｔｃｔｎ”ｉＥｎｉｈａｄＣｈｎｓｎｕａｅ．ｅｐｐｓｅｗｅｎ２０ｄ２ｗｉｔｅｋｒ ”ｏｔｏａｔｃｌｃｔ，ｄｎｉａｉ０ｈｕｒｉｆｏｎｇｌｎｉｅｅｌｇｇｓＴｈａｅｒｓａｄｓｒｉｇｉｉｏｃｌｅａｎｎｉｃｔｎｏｓｅｂａｔｒｎｌｄｅ．ｅｃｉｎｖｔｕｔｄｉｔｉａｉｆｏｔｏｌｓｓｗｅｅｉｃｕｄＲｅｐｔｉｅｒｓａｃｎｂｎｒｕｒｄｅｆｏｅｉｖｅｅｒｈａｄＭｅｔｎｙｉｒｃｕｅｔａａａｌｓｓｗｅｅｅｘｌｄｄ．ＲＥＳＵＬＴＡＮＤＳＣＯＮＣＬＵＳｌＯＮ：ｉｈｅｅｏｍｅｔｆｅｌｕｔｒｈｎｑｕｓ／ｉｏ．ｓｅｂａｔｒＷｔｔｅｄｖｌｐｈｎｌｃｌｅｔｏｃｕｅｃｉｅｎｖｔｏｔｏｌｓｓｆｒ０ｍｎｍａｏｎａｉＩｂｅ．ｐｉｔｕ．ｏｎｅｒｅｍｂｅｍａｒｗｎｄｎｎｂｎｉｓｅｈｖｅｕｃｓｆｌｕｔｒｄ．ｕｉａｅｓｏｈｔｈｓｔｏｌｓｓｈｖｏｓｒａｏ．ｏｅｌｕａｅｂｅｎｓｃｅｓｕｌｃｌｅＳｔｄｅｓｈｖｈｗｎｔａｅｅｏｓｅｂａｔａｅｏｓｙｕｔｔｐｃｌｈａｔｉｔｓａｄｇｏｄｂｏｏｉａｒｐｔｅ．ｒｅｎｌ，ｈｕｔｒｄｏｓｅｌｔｅｃｍｍｏｘｅｉｎａｄｅｔｙｉａａｒｃｅｒｉｎｏｉｌｇｃｌｏｅｒｓＣｕｒｔｔｅｃｌｅｔｏｂａｓｓａｒｏｃｓｃｐｉｙｕｎｅｐｒｍｅｔｌｍｏｌｎｖｒｉｉｏ