动物组织石蜡切片制作
做切片方法
常规组织病理技术切片技术是病理检验技术的重要组成部分。
在实验室内的病理检查工作中，不仅要观察大体标本的病理变化，更重要的还要观察组织标本的病理变化，才能作出最后诊断。
大体标本的病理变化是用肉眼观察，而组织标本必须借助显微镜进行观察。
组织标本的质量将直接影响镜检观察，也就是影响到诊断和研究。
学习和从事切片技术工作，首先应当认识这一工作的重要性，提高责任感。
切片技术随着生物学和医学的发展而发展，随着光学仪器和切片机的日益精密而不断改进。
下面仅就目前兽医实验室最常用的石蜡切片的制作技术做一系统的介绍。
（一）石蜡切片制作方法和程序任何组织制成一张菲薄的切片标本需要经过一系列的处理过程，而每一过程的步骤和手续严密而复杂。
现将制作石蜡切片的主要程序介绍如下。
制作石蜡切片的主要程序：取材；固定；脱水；透明；浸蜡；包埋；切片；染色；封固。
1.取材病理组织大多数采自动物尸体剖检材料或活体检查组织，取材的种类、数量取决于诊断和研究的目的，病理组织要越新鲜越好，因此标本取材后要及时切成小块，进行固定。
取材时必须注意：⑴接受病理组织材料时，必须依据送检单详细检查送检物。
自己采的病料也要求及时填写送检单。
检查时注意标本名称、数量与送检单是否相符，并查明送检单位地址以及有无临床及化验等有关资料。
如果发现送检标本不符，标本固定不当以及标本发生腐败等而不能制作切片时，应立即退回；若检查无误，应将标本及时登记、编号。
⑵组织切块需用锐刀或剪，切忌对组织材料挤压，揉搓及扭折等损伤，以保持组织完整及生活时状态。
⑶切块要选择病变显著部位及可疑病灶。
切取组织块要包括病灶及其周围健康部分，重要病变可多取几块，以反映病变各阶段、各部分的形态变化。
采取组织应包括各该器官的各组成部分，如肾脏应包括被膜、肾皮质部、肾髓质部、肾乳头及肾盂。
⑷组织块不宜过大，通常长1厘米，宽为1.5厘米，厚度为0.3厘米，最宽可达1.5~3厘米，但厚度不超过0.5厘米为宜。
常用标本制备技术
常用标本制备技术一、常用光镜标本制备技术1.切片标本的制备：常用的切片方法为石蜡切片，其制备程序如下：⑴取材从动物身体割取所需的新鲜组织一小块（厚度约0.5厘米）。
手术愈快愈好，以防组织的死后变化。
⑵固定把切取的小块组织，迅速投入预先配好的固定液[如10%福尔马林、0.5%锇酸、包氏液、岑克氏液、卡氏等固定液]中固定，使组织细胞的蛋白质变性，组织块硬化，以保存组织细胞原有的形态。
⑶冲洗（洗涤）组织块自固定液取出后，须经流水冲洗或乙醇洗涤，使组织中含有的固定液全部除去，直至洗净为止。
⑷脱水脱水的目的在于除去组织中的水分。
因为组织中的水分和石蜡是不相溶的，为不使组织块在脱水时产生收缩，所以一定要经过各级浓度的脱水剂（如乙醇等）将水分脱净。
⑸透明组织块脱水后，须经既可和乙醇相混，亦可作石蜡溶剂的透明剂（如二甲苯）透明，使组织中的乙醇被透明剂所替代，才能浸蜡包埋。
⑹浸蜡浸蜡是将包埋剂（石蜡）透入整个组织的过程。
石蜡透入组织需要一定的温度（石蜡熔点）。
所以浸蜡都在恒温箱中进行。
⑺包埋制备一定形状的容器（如纸盒等），倒入熔化的石蜡，迅速夹取浸透石蜡的组织块放入盒内，待表面石蜡凝固后立即将容器投入水中，使它凝固成蜡块。
⑻切片组织块经上述处理后，不仅变硬，且有石蜡支撑，可用切片机将包埋组织的蜡块切成薄片，一般厚度是5～8微米。
⑼贴片把由切片机切下的蜡条，分割成小段，分别排放于滴有蒸馏水的载玻片上，在展片台上微热，使皱褶的蜡片伸展平正。
⑽烘片把贴有蜡片的载玻片置于45℃恒温箱中，烘烤3～4小时，使切片干燥。
⑾脱蜡与复水组织切片的脱蜡等过程是在染色缸中进行的，因此须预先准备洁净的染色缸，并分别放入二甲苯、各级浓度的乙醇及染料溶液，按顺序贴好标签。
染色前须先进行脱蜡和复水，即用二甲苯溶去切片上的石蜡后再经各级浓度乙醇（自高浓度到低浓度）下行到水的过程。
因为没有经过复水处理的切片不能用水溶性染料染色，所以在染色前必须再度复水。
石蜡切片步骤
石蜡切片基本步骤（一）取材和固定根据实验目的选择材料。
将整个虫体或虫体的内部器官（如肠道、马氏管、唾液腺等）取出后，立即投入固定液。
取材大小：0.5cm×0.5 cm×0.2或者1.0 cm×1.0 cm×0.2，厚度不宜超过3mm。
固定液：2.5%的戊二醛固定液，Bouin氏液，10%甲醛等。
固定时间：4ºC固定24小时。
注意事项：取材：1．勿使组织块受挤压切取组织块所用刀、剪要锋利，切割时不可来回切割。
夹取组织时，镊子要轻，切勿挤压，以免损伤组织。
取材时，组织块可稍大一点，以便在固定后，将组织块的不平整部分修去。
2.选好组织块的切面应熟悉器官组织的组成，并根据观察目的来确定纵切或横切。
3．保持材料的清洁组织块上如有血液、污物、粘液、食物等，先用生理盐水冲洗干净，再入固定液。
4．切除（清除）不需要的部分特别是组织周围的脂肪等，应尽可能清除掉，以免影响以后的程序和观察。
固定：1．材料新鲜取出组织后须立即固定。
否则时间相隔过久，体积就要收缩变形或发生自溶现象。
2．抽气生物组织常有气体的存在，使材料不能沉入固定液中，抽气使得固定液有效渗入。
真空泵抽气或者用空针管抽气。
昆虫整体固定，固定前用解剖针刺数个小孔，以利用固定液渗透。
3．固定剂用量一般为组织体积的10~20倍。
勿使组织贴于瓶底或瓶壁，以免影响固定剂的渗入。
4．避免阳光尽可能避免接触阳光以免失去固定作用。
5．加速固定轻轻摇动盛器使组织移动有利于固定液渗入，对长期固定的标本可经常更换固定液。
（二）洗涤2.5%戊二醛固定液固定的组织：0.2M, pH7.2磷酸缓冲液漂洗三次，每次10minBouin氏固定液固定的组织：直接入70%酒精更换数次即可脱水，注意苦味酸。
甲醛固定的组织：直接投入50%或70%酒精脱水，不经水洗。
但如果在甲醛中时间过长，则仍应当用流水冲洗。
陈旧性标本和混合性固定液应及时洗涤，有利于脱水、切片和染色。
小鼠部分组织器官石蜡切片制作方法的改良
小鼠部分组织器官石蜡切片制作方法的改良作者：陈思怀李德龙高继业来源：《安徽农业科学》2021年第11期摘要為了克服小鼠组织器官传统石蜡切片制作方法存在组织易碎、结构不完整的缺点，对传统石蜡切片制作进行了改良。
将浸蜡前的透明步骤改为异硬脂醇与石蜡混合液处理，替代苯类透明剂制作空肠、脾脏2种器官的石蜡切片，并以切片机切片时蜡带质量和HE染色后镜下质量为切片制作效果的评定指标。
结果表明，2种器官在切片机上均能切出完整、较长的蜡带，组织块无硬化、不碎裂，展片平整;HE染色过程中不掉片，染色后光镜下细胞质与细胞核染色对比清晰，器官组织结构完整。
就脾脏和空肠而言，应用异硬脂醇与石蜡混合液替代苯类透明剂能制作出优良的石蜡切片。
关键词石蜡切片;异硬脂醇;透明剂;小鼠中图分类号 R-361.2 文献标识码 A文章编号 0517-6611（2021）11-0094-02doi：10.3969/j.issn.0517-6611.2021.11.025开放科学（资源服务）标识码（OSID）：Improvement of Preparation Method of Paraffin Sections of Some Tissues and Organs in MiceCHEN Si-huai，LI De-long，GAO Ji-ye（College of Veterinary Medicine，Southwest University， Chongqing 402460）Abstract In order to overcome the defects of fragile tissue and incomplete structure in the traditional paraffin section preparation method of mice tissues and organs， the traditional preparation method of paraffin section was improved.Paraffin sections about jejunum and spleen were made with the mixed solution of isostearin and paraffin instead of benzene transparent agents.The quality of ribbon and microscopic observation after HE staining were selected as judgment indices .The results showed that two kinds of representative organs could be cut into long and complete wax bandes on the microtome， and flatten out with no hardening or non-fragmentation.After HE staining， the cytoplasm and nucleus were stained clearly， and the structures of organs and tissues were intact.As for jejunum and spleen，the mixture of isostearic alcohol and paraffin could be used to treat the tissues instead of benzene transparent agents to make good paraffin sections.Key words Paraffin section;Isostearic alcohol;Transparent agent;Mice小鼠作为实验动物，其组织器官在大小、质地等方面不同于成年畜禽，如小肠壁薄、肝细胞脂类丰富、脾脏小等。
石蜡切片法
包埋过程中易出现的问题及解决办法
问题：包埋后的石蜡块应为均匀半透明状，有时出现白色浑浊 结晶（像雪花一样）部分，这样在切片时就有妨碍，不易切出 薄的切片。 原因：①组织内部或石蜡中混有透明剂；②脱水不干净；③石 蜡本身品质不良；④组织块移入纸盒时动作太慢，周围的石蜡 已成凝固状态；⑤冷却用水温度不够低，石蜡凝固太慢。 解决办法：属于前三个原因者应在包埋之前就须注意；属于后 二个原因者，可将包埋块再投入Ⅲ蜡中熔化后重新包埋，但必 须注意熔化包埋过的石蜡块的时间不宜过久。
脱水（常用脱水剂：乙醇；脱水原则：低浓度到高浓度）（目的？） 脱水时间：视材料的性质、大小而定 小鼠肝脏：在各级AL中停留0.5-1h； 植物叶片：在各级AL中停留2-4h； 注意：脱水应彻底，否则与二甲苯混合后混浊，必须倒回重脱水；如需过夜， 则停留在70%酒精中。
二、实验步骤（2）
透明（置换） 常用透明剂：二甲苯； 透明原则：低浓度到高浓度 （½ 二甲苯+ ½ 100%酒精 二甲苯 二甲苯） 透明时间：小鼠肝脏每级停留0.5-1h；植物叶片每级停留1-3h。
染色原理－－化学作用
化学作用的主要理论根据是染色剂的性质可分为酸性、碱性和 中性染色剂，而动、植物的细胞内—般也可区分为酸性(阴离子) 和碱性(阳离子)部分。当碱性染色剂溶液中的有色部分成为阳 离子时，就能与细胞的阴离子(酸件部分)较牢固地结合，当酸 性染色剂溶液中的有色部分成为阴离子时，就能与细胞内的阳 离子(碱性部分)较牢固地结合。 例如，细胞核，尤其是核内的染色质，主要由核酸组成，是酸 性的组成成分．故和碱性染色剂(苏木精)的亲和力很强，易于 着色。细胞质含碱性物质，故和酸性染色剂(伊红、曙红)的亲 和力很大，易于着色。
甲醛－醋酸－酒精液(FAA) 50%或70％酒精 90ml 冰醋酸 5ml 甲醛 5ml 特点：过去称”标准固定液“或”万能固定液“；是 组织形态中常用的固定液；同时兼作保存液。是植物 制片技术中较为良好的固定液和保存液。除单细胞和 丝状藻类外，均可用此液固定．也通用于昆虫和甲壳 类的固定。
石蜡切片制作过程的脱水、透明、浸蜡最佳时间和方法的探讨
脱水
脱水是石蜡切片制作过程中的一个关键步骤，它旨在去除组织内的水分，为后 续的透明和浸蜡步骤创造条件。以下是几种常用的脱水方法及其原理和注意事 项：
1、真空干燥：将组织置于密封的容器内，在一定的负压下进行干燥。此方法 可有效去除组织内的水分，但需要严格控制负压大小和干燥时间，以避免组织 过度干燥或受到损伤。
准备工作
在制作石蜡切片前，需要做好以下准备工作：
1、材料和设备的选择：根据实验需要，选择合适的实验动物、包埋剂、切片 刀、染色剂等材料，同时准备好烘箱、水浴锅、注射器等设备。
2、实验前的准备：对实验动物进行麻醉、处死、解剖等操作，获取所需的组 织器官，并按照要求进行处理。
3、实验方案的制定：根据实验目的和操作流程，制定详细的实验方案，以便 有条不紊地进行实验。
在制作过程中，每个步骤都有需要注意的关键点和事项。例如，在涂布石蜡时， 需保证石蜡的均匀性和厚度；在制作切片时，应根据组织类型和观察需求选择 合适的切片厚度；在盖印时，应保证切片的平整度和无气泡。此外，为了获得 更好的观察效果，还需注意显微镜的调整和光源的选择。
四、注意事项
在制作石蜡切片标本时，需注意以下问题及相应的解决方案： 1、石蜡的纯度：选用纯度较高的石蜡，避免影响切片的制作和观察效果。
鼠组织采集主要采用处死法，常用的有颈椎脱臼法和吸入麻醉法。采集的组织 应尽可能保持完整，避免机械性损伤。采集后，将组织块置于预冷的0.9%生理 盐水中清洗，去除血渍和杂质，再放入4%多聚甲醛固定液中固定，以保持组织 形态和结构。
二、切片方法
石蜡切片是最常用的组织切片方法，其制作过程包括取材、固定、脱水、包埋、 切片和染色等步骤。另外，冷冻切片也是一种常用的切片方法，主要适用于新 鲜组织的观察和研究。
重要 动物组织切片制作技术
脂无作用，渗透力较弱，很少单独使用，固定后
收缩明显，用含苦味酸的固定液固定组织一般不
宜超过24小时。
14
（5）重铬酸钾：其穿透速度快，对组织收缩小并
稍有膨胀，重铬酸钾常备水溶液为3-5%。其混合 固定液，如Zenker液、Helly液及Regaud液等被 广泛用于组织学，凡经重铬酸钾、铬酸、铬酸盐 固定的组织，必须以流水冲洗后方能转入脱水剂。
11
（四）、固定液
1、固定液种类：一类是单纯固定液，即只有一种
试剂；另一类是混合固定液，由两种或两种以上试
剂组成。 作为较好的固定液，应有下列特性，首先，有 强渗透力，能迅速的渗入组织内部；其次，不使组 织过渡收缩或膨胀，并能使组织内欲观察的成分得 以凝固为不溶性物质；最后，能使组织达到一定的 硬度并获得较佳的折光率和对某些染料具有较强的
一般厚度约 5mm 的实质性器官，总的浸蜡时间约 2-
3h，均在恒温箱内进行。较理想的的浸蜡温度是石
蜡刚溶化的温度，或在蜡杯底部尚残留一小部分未 熔完蜡时的温度，浸蜡完成后，即做成包有组织的 蜡块。包埋蜡块的器材有专用的包埋框，也有自己 制作的包埋盒，只要是具有一定形状的容器，我们
都可以把它用作包埋盒。包埋的具体过程详述。
8
4、使组织块在脱水、包埋、切片、染色等过程 中不易损坏。 5、使不同组织成分对染料有不同的亲和力，经 染色处理后易于辨认。 6、防止细胞过度收缩或膨胀而失去其原有形态 结构。
7、使组织块硬化，便于制作薄片。
9
（三）、注意事项及影响固定的因素
1、组织块不易过大，一般以厚度5mm，长宽不超过
15×15mm。 2、固定液的量一般以组织块大小的20倍为宜。 3、必须选择渗透力强，又不使组织过渡收缩或膨 胀的试剂作为固定液。 4、有的固定剂是由氧化剂与还原剂混合而成，如 甲醛（还原剂）与重铬酸钾（氧化剂）混合成的 Helly液等。
介绍大鼠各组织器官石蜡切片制作法_高宝红
介绍大鼠各组织器官石蜡切片制作法山西省中医院（030012）高宝红在科研工作中，实验标本多为动物模型，如大鼠、小鼠及兔等。
大小鼠及兔的组织脏器较人体组织脏器稚嫩柔软，水分含量多。
因此在制作组织切片的过程中，必须根据其组织结构特点，采用不同于人体组织的处理方法，注意各种动物组织在固定、脱水、透明浸蜡、包埋、切片的每个程序中选择最佳的时间方案，才能避免组织块变脆，切片易碎、有裂隙，染色时易脱片等常见不良后果的发生，保证高质量石蜡切片一次成功。
本研究就如何制作优质的大鼠各组织器官石蜡切片作了总结，现从固定、取材、脱水、透明、浸蜡、包埋到切片、烤片、脱蜡、染色的经验介绍如下。
1如何制作优质大鼠各器官石蜡切片1.1标本：大鼠各个脏器———心、肝、脾、肺、肾、大脑、脊髓、胃肠、垂体、胸腺、淋巴结、肾上腺、卵巢、睾丸、子宫、膀胱、附睾。
1.2固定液：中性甲醛溶液，固定时间为24h。
1.3取材：心脏：最大纵断面取1块，厚度为2mm；肝脏：右叶纵断面取1块，厚度为2mm；脾脏：纵断面取1块，厚度为2mm；肺脏：纵断面取1块，厚度为2mm；肾脏：最大面剖开取一半，包括皮质、髓质和肾盂；大脑：最大面剖开取一半；脊髓：横断面剖开取1块，厚度2~3mm；胃：沿大弯侧剪开，纵切一长条，长1cm，宽2mm；肠：横断面切取一段，约2mm；垂体：全包；胸腺：全包；淋巴结：全包；肾上腺：全包；卵巢：全包；子宫：横断面剖开取一段，厚度2mm；睾丸：最大面剖开，取半；附睾：纵断面剖开取半；膀胱：剖开取半。
1.4各个脏器的脱水透明浸蜡时间：见第1024页表1。
1.5包埋：胃肠、子宫、膀胱立埋，其余脏器平埋，蜡温为65~ 70℃。
1.6切片：厚度4μm，摊片水温56℃左右，选取无皱折的4片。
2动物组织石蜡切片苏木素-伊红（HE）染色切片置70℃的烤箱中30min入二甲苯脱蜡20min；入梯度乙醇100%→95%→85%→75%，自来水冲洗2min；入苏木精30min，取出自来水冲洗2min；入盐酸乙醇分化5s，自来水冲洗2min；入伊红5 s，自来水冲洗2min；入梯度乙醇75%→85%→95%Ⅰ→95%Ⅱ→100%→100%；入二甲苯Ⅰ→二甲苯Ⅱ；中性树胶封片。
小鼠部分组织的石蜡切片制作
小鼠部分组织的石蜡切片制作一、实验原理：利用脱水剂除去组织中的水分，再用透明剂二甲苯可以去除脱水剂酒精，而二甲苯可以溶解石蜡并将其导入到已脱水的组织细胞中，然后用熔化的石蜡对组织进行包埋，冷却后即可将柔软的组织包埋在石蜡中，使其具有一定硬度，且不改变其大小和形状。
用旋转切片机可将其切为极薄的薄片，经染色、脱水、装片后在显微镜下可以清晰地观察其组织结构。
二、材料与用具1．材料：小鼠肝脏、脾脏等。
2．用具：溶蜡箱、蜡杯、不同熔点的石蜡、酒精灯等。
三、实验内容与步骤1．取材及固定取小鼠，采用拉颈处死或麻醉处死法将其杀死，取其脾脏和肝脏，切为边长约为0.5cm的组织块。
用先用0.85％的生理盐水漂洗以洗去血液与污渍，如果是管状组织则必须把管腔中污物洗净，可用注射器自一端向管腔中注射生理盐水数次，使其管腔冲洗干净，切忌不可用刀或其他器具刮之。
由动物身上切取的组织必须是新鲜的，材料越新鲜越好，一般不应超过死后24 hr。
如果是管状器官或是其中有分泌之消化液，则死后应迅速采取，以免组织自溶或上皮剥落。
取下的材料马上进行固定，采用FAA固定液，固定液的用量与组织块体积之比一般在20:1，固定时间2 hr以上，超过24hr时可继续浸泡或转入70%酒精中保存。
不应使组织块贴于容器壁上，应记录固定液的名称，材料的种类，动物品种及开始固定的时间。
2．冲洗固定后的组织块在进行脱水前用70%酒精洗去固定液。
3．脱水和硬化经过固定后的组织在水洗后要进行脱水，脱水的目的将组织内的水分用酒精或其他溶剂置换出来，使组织逐渐变硬，便于油类或其他透明及浸入，为熔化的石蜡浸渗到组织中创造条件。
常用的脱水剂是不同浓度的酒精，因为酒精与水有很大的亲和力，酒精浓度可以逐渐升高，置换出组织中的水。
脱水必须充分，脱水不充分会影响透明和浸蜡。
脱水过程要逐级上升，不能操之过急，跳级脱水会引起组织块强烈的收缩变形。
脱水所用的酒精浓度及过程如下：30％—→50％—→70％—→80％—→90％—→95％—→100％(Ⅰ)—→100％(Ⅱ)组织块在各级较低浓酒精（小于70％）中脱水的时间应视组织块的大小而定，大小不超过0.5立方厘米的组织块脱水时间为6～12 hr，在高浓度酒精中（大于70％）脱水时间为3 hr 左右。
重要动物组织切片制作技术
（2）Carnoy液：冰醋酸一份，氯仿三份，无水酒精 六份。此液浸透速度快，固定时间不宜过长，小块 组织2-3小时即可，固定后直接入无水酒精脱水。常 用于糖原及尼氏体固定。一般固定时须放在冰箱中， 低温环境可明显减少收缩作用。
（3）中性甲醛液：最常用的固定液之一，配方:40% 甲醛120ml,蒸馏水880ml，磷酸二氢钠4g，磷酸氢二 钠13g，pH7.0。
9
（三）、注意事项及影响固定的因素 1、组织块不易过大，一般以厚度5mm，长宽不超过 15×15mm。 2、固定液的量一般以组织块大小的20倍为宜。 3、必须选择渗透力强，又不使组织过渡收缩或膨 胀的试剂作为固定液。 4、有的固定剂是由氧化剂与还原剂混合而成，如 甲醛（还原剂）与重铬酸钾（氧化剂）混合成的 Helly液等。
11
（四）、固定液 1、固定液种类：一类是单纯固定液，即只有一种 试剂；另一类是混合固定液，由两种或两种以上试 剂组成。
作为较好的固定液，应有下列特性，首先，有 强渗透力，能迅速的渗入组织内部；其次，不使组 织过渡收缩或膨胀，并能使组织内欲观察的成分得 以凝固为不溶性物质；最后，能使组织达到一定的 硬度并获得较佳的折光率和对某些染料具有较强的 亲和力。
4
4、尽量保持组织的原有形态
新鲜组织经固定后，或多或少产生收缩现象，为此可将组织 展平，以尽可能维持原形。
5、要熟悉取材部位
要能准确的按解剖部位取材，如胰腺，一般取胰岛较多的 胰腺尾部；肺应取有细支气管及带有软骨片的小支气管部。
6、动物品种的选择
如观察肥大细胞，以大、小鼠皮下组织及肠系膜、大网膜 铺片为佳，欲观察运动终板，可用小鼠的肋间肌等。
2、空气栓塞法
如家兔可用50ml注射器将空气由耳静脉推入，使动物很快 死亡。
石蜡切片、HE、免疫组化步骤
石蜡切片、HE、免疫组化实验一：取材及石蜡切片的制作（本次取材为小肠、膀胱、子宫、宫颈）①取材：小鼠脱颈处死后，应立即找到自己所需的组织器官，用一张滤纸将所需器官放在其上（可以加一些生理盐水在上面，防止干了），修去多余的脂肪、系膜等不要的组织，根据不同器官切成合适大小的形状（如小肠应切成1cm长度的长柱形）。
将切好的组织装于冻存管中，加入4%的PFA（PFA的作用是保护蛋白，防止蛋白降解）固定过夜（固定时间不能超过24h，如果24h后不能完成脱水工作，可以先50%、70%酒精脱水后，置于4℃冰箱保存。
）②脱水（目的是为了使组织从水相置换到有机相）（根据不同的组织，脱水时间不同）：将PFA中的组织取出，放入组织盒（组织盒子应尽量选择小格子，防止组织脱水过程中掉出来），一个组织盒可以放4~8个组织小块，切一张与格子大小合适的纸条一并装入，做好标签，防止后期辨认不出具体组织（只能用铅笔写，中性笔会被酒精脱去）。
使用自动脱水机进行脱水，设定程序为：酒精50%、70%、80%、90%（各20min）、无水乙醇（30min/次，两次）、酒精二甲苯混合物（1：1）20min、二甲苯20min（两次）、二甲苯石蜡混合物（1：1）30min、石蜡Ⅰ1h；脱水结束后，取出组织盒，置于石蜡Ⅱ中1h（石蜡应提前融化，且不能凝固，放在70℃烘箱中）。
③包埋：用4X6cm的小纸条根据小木块形状，叠成盒子（盒子最好四边叠平，不要左右不平，便于放融化的蜡进去后能得到比较好的形状，最好不要漏），取一个盒子，将融化的石蜡Ⅱ倒入，在其快要凝固的时候，将组织按照所需的形状，摆正（如小肠切成的小柱子应立起来，便于后面切片的时候，可以切到所需的形状），再用做好标记的长纸条贴着盒子壁固定（为了包埋后识别组织，且不能将纸条放在蜡块中央，后期不好取出，会损坏刀片），倒蜡之前，可以将盒子放在铁皮或小铁块上（能够让石蜡更快凝固。
），每次用镊子拿组织或摆正组织之前，先烧一下（能够更好摆正组织块，可以随时调整组织位置）。
“动物组织的石蜡切片制作及HE染色”微课教案
高校生物学教学研究（电子版）2019年2月，9（1）：3-4ISSN 2095-1574 CN 11-9307/R DOI 10.3868/j.issn 2095-1574.2019.01.001专题［编者按］在信息技术与教育教学深度融合的背景下，“微课”作为一种重要的在线学习资源已被广泛应用于教学实践与教学改革中。
为进一步促进高校生命科学类课程教师的教学理念更新和教学能力提升，本刊将陆续刊登各高校微课教学优秀作品及其教学设计方案，以供各高校教师相互交流与借鉴。
“动物组织的石蜡切片制作及HE 染色”微课教案李玉明（），谢莉萍，王洪钟，王宏英，张贵友清华大学生命科学学院，北京，100084基金项目：清华大学校级教改项目支持（ZY01_03）通讯作者：李玉明，E -mail：ym -li@生物学是一门实验性很强的学科，各领域的实验技术自成体系、操作性强。
作为从事生物实验教学多年的工作者，深感近年兴起的微课对生物学实验教学颇有益处。
传统的生物学实验教学模式通常以教师的语言、文字描述为主，虽然直面学生，但对技术细节的展示不够直观。
因此作为补充，常会设置演示实验环节，由教师或助教示范，学生观摩，但因操作者的习惯不同，使得演示过程缺乏规范性，并且如果一个班的学生人数多于20人，示范的效果便更不理想。
以微课的形式呈现一项生物实验技术的好处在于：①通过图片、动画、声音、视频等媒介传递知识，可以紧紧抓住学生的注意力，激发学生的学习兴趣，传递更为丰富的信息。
②通过字幕、旁白、整体与细部操作的逐层深入，可以准确呈现实验技术的流程与要点。
③减少授课者的重复劳动，以便将更多精力投入到教学研究之中。
④有效实现教育资源共享，一门优秀的微课可以被广泛传播，使更多的学习者获益。
教学背景本文介绍的“动物组织的石蜡切片制作及HE 染色”技术对于从事细胞生物学、发育生物学、临床医学等学科的教学、科研人员而言是一项常用的实验技术，也是生物学专业本科生需要理解和掌握的一项实验技能。
石蜡切片
石蜡切片切片法：切片法是将材料处理后用切片机将标本切成薄片好后封藏观察切片法：❖切片法的种类:石蜡切片技术冷冻切片技术半薄切片技术❖切片法制片的过程：取材（动物或植物）——固定——洗涤——染色（整体染色）——脱水（梯度酒精）——透明——浸蜡透入（包埋剂）——包埋——切片（黏附切片与载玻片上）——脱蜡——复水——染色与复染——脱水——透明——封藏石蜡切片的主要过程：杀生（取材）——固定——冲洗——脱水——保存——透明——石蜡透入——包埋——切片——复水——染色——脱水——封藏——观察保存（一）取材杀生（动物）• 1.目的：动物有时需要杀生，然后取出所需组织• 2.方法：一般采用乙醚（氯仿）麻醉后解剖，取出所需组织。
• 3.注意事项：–尤其细胞学方面的研究，对于材料的新鲜的程度要求十分严格。
尽量割取活的动物组织快。
–性别合适；–麻醉前动物生活正常，以免影响其代谢活动，进而影响细胞结构；–取材部位要准；–速度快。
取材：1.目的：得到所需要的组织2.方法：a.用剪刀剪下组织b.冲洗动物组织，动物（生理盐水、糜蛋白酶溶液）植物（缓冲液或水）冲洗干净，防止失水，避免压挤损伤，用生理盐水、糜蛋白酶冲去表面的血、粘液和赃物。
c.切成小块3注意事项：»要准»要快»避免损伤（方向，刀要快，不能挤压）❖植物取材：用剪刀剪下材料时一定要植物生活正常，不要因缺水、营养和温度光照发生明显改变，影响细胞结构，同时发育程度、部位要准。
（二）固定1.目的：为了使取样的细胞在形态结构和成分方面保持与生活的状态一样，就必须迅速杀死细胞避免失水变形，自溶破坏结构等。
固定液的选择：快；不溶解；不收缩膨胀；软硬适中；增加折光度；增加染色能力；长期保存等7项。
2.方法（1）固定剂的种类：一般采用化学固定单纯固定：只用一种试剂固定：混合固定：用两种或两种以上的试剂混合在一起进行固定如：❖四川师范大学第二章石蜡切片技术单纯固定：乙醇：可与水任何浓度混合❖适合固定浓度为70%_100%：与福尔马林和醋酸等混合使用效果更佳。
动物上皮组织实验报告内容或步骤
动物上皮组织实验报告内容或步骤1. 引言上皮组织是动物体内一种重要的组织类型，它覆盖和保护了动物体表面和内脏器官的表面。
为了更好地了解上皮组织的结构和功能，本实验通过取得动物组织标本，进行显微镜下的观察和研究。
本文将详细介绍实验步骤和观察结果，并对实验结果进行简要分析和讨论。
2. 实验步骤2.1 实验材料准备- 实验动物（如小鼠、大鼠、猪等）；- 手术工具（手术刀、手套、止血夹等）；- 石蜡切片；- 生理盐水；- 10%中性缓冲福尔马林溶液。
2.2 动物取材1. 实验动物需根据实验需求选择，确保动物权益；2. 使用无菌手术刀和止血夹将实验动物的组织（如皮肤、肠道等）切割取样；3. 将取样的组织迅速放入生理盐水中，避免组织干燥。
2.3 组织固定与包埋1. 取出保存于10%中性缓冲福尔马林溶液中的组织标本；2. 用生理盐水将组织标本洗净，去除多余的缓冲液；3. 将组织标本逐渐脱水处理，分别浸入酒精浓度从低到高的醇溶液中，重复数次；4. 将脱水后的组织标本进行透明化处理，使用透明剂（如xylene）浸渍标本，直至组织透明；5. 将透明的组织标本放入石蜡中，进行包埋处理。
2.4 切片和染色1. 用石蜡切片机将包埋后的组织标本切割成4-6微米厚的切片；2. 将切片平铺于载玻片上，用热力法使切片与载玻片牢固结合；3. 使用特殊染色剂（如血液标本使用伊红染色），将切片染色；4. 染色后，将载玻片上的切片用凝胶剂封装，并标记样本信息。
2.5 显微镜下观察1. 将制作好的载玻片放置于显微镜下；2. 使用适当的物镜（如20倍或40倍）进行观察；3. 观察并记录上皮组织的细胞形态、排列方式、细胞核结构等信息；4. 注意观察上皮组织的细胞间连接方式和是否有微绒毛等特征。
3. 结果与讨论根据观察结果，上皮组织通常由单层或多层上皮细胞组成。
上皮细胞常常具有紧密排列的细胞间连接，如紧密连接、绒毛连接和间接连接等。
在染色后的切片中，可以明显观察到上皮细胞的细胞核和细胞质。
动物组织石蜡切片制作流程
2min 95 1:1无水乙醇、二甲苯（）
5min二甲苯Ⅰ
5min
二甲苯Ⅱ
..
.
..
15min无水乙醇2min95乙醇2min85乙醇2min70乙醇2min50乙醇2min蒸馏水2min苏木精15min蒸馏水洗去多余染液1盐酸分色60sec自来水蓝化20min蒸馏水2min50乙醇2min70乙醇2min85乙醇2min伊红2min95乙醇2min无水乙醇2min无水乙醇2min无水乙醇二甲苯1
.
动物组织石蜡切片制作流程
1.固定：10％福尔马林浸泡24h
2.洗涤：自来水冲洗24h
3.脱水、透明
5％乙45min
1.5h7％乙1.5h％乙81h9％乙醇30min无水乙醇Ⅰ
30min无水乙醇Ⅱ20min 1:1无水乙醇、二甲苯（）30min二甲苯Ⅰ
30min二甲苯Ⅱ℃的石蜡）浸蜡（4.58-60 30min二甲苯、石蜡（1:1）30min石蜡Ⅰ30min石蜡Ⅱ
30min
石蜡Ⅲ5.包埋、切片、展片、贴片6.染色
10min石蜡
2min石蜡5min无水乙醇、二甲苯1:12min无水乙醇
2min％乙醇952min 85％乙醇
2min 70％乙醇2min 50％乙醇2min蒸馏水
15min
苏木精
洗去多余染液蒸馏水
60sec％盐酸分色1
20min自来水蓝化
2min蒸馏水2min 50％乙醇2min％乙醇70
小鼠部分组织的石蜡切片制作【范本模板】
小鼠部分组织的石蜡切片制作一、实验原理：利用脱水剂除去组织中的水分，再用透明剂二甲苯可以去除脱水剂酒精，而二甲苯可以溶解石蜡并将其导入到已脱水的组织细胞中，然后用熔化的石蜡对组织进行包埋，冷却后即可将柔软的组织包埋在石蜡中，使其具有一定硬度，且不改变其大小和形状。
用旋转切片机可将其切为极薄的薄片，经染色、脱水、装片后在显微镜下可以清晰地观察其组织结构.二、材料与用具1．材料：小鼠肝脏、脾脏等.2．用具：溶蜡箱、蜡杯、不同熔点的石蜡、酒精灯等.三、实验内容与步骤1．取材及固定取小鼠，采用拉颈处死或麻醉处死法将其杀死，取其脾脏和肝脏,切为边长约为0。
5cm的组织块。
用先用0.85％的生理盐水漂洗以洗去血液与污渍,如果是管状组织则必须把管腔中污物洗净,可用注射器自一端向管腔中注射生理盐水数次,使其管腔冲洗干净,切忌不可用刀或其他器具刮之。
由动物身上切取的组织必须是新鲜的，材料越新鲜越好，一般不应超过死后24 hr.如果是管状器官或是其中有分泌之消化液，则死后应迅速采取，以免组织自溶或上皮剥落.取下的材料马上进行固定，采用FAA固定液，固定液的用量与组织块体积之比一般在20：1，固定时间2 hr以上，超过24hr时可继续浸泡或转入70％酒精中保存。
不应使组织块贴于容器壁上，应记录固定液的名称，材料的种类，动物品种及开始固定的时间.2．冲洗固定后的组织块在进行脱水前用70％酒精洗去固定液。
3．脱水和硬化经过固定后的组织在水洗后要进行脱水，脱水的目的将组织内的水分用酒精或其他溶剂置换出来,使组织逐渐变硬,便于油类或其他透明及浸入,为熔化的石蜡浸渗到组织中创造条件。
常用的脱水剂是不同浓度的酒精，因为酒精与水有很大的亲和力，酒精浓度可以逐渐升高，置换出组织中的水。
脱水必须充分,脱水不充分会影响透明和浸蜡。
脱水过程要逐级上升，不能操之过急，跳级脱水会引起组织块强烈的收缩变形。
脱水所用的酒精浓度及过程如下：30％—→50%—→70％—→80％—→90％—→95％—→100％(Ⅰ)—→100％（Ⅱ)组织块在各级较低浓酒精（小于70％）中脱水的时间应视组织块的大小而定，大小不超过0.5立方厘米的组织块脱水时间为6～12 hr，在高浓度酒精中（大于70％)脱水时间为3 hr 左右。
鸡睾丸组织切片
创新学分试验论文（设计）题目鸡肝脏组织石蜡切片制作系别 _______专业＿＿＿＿年级 _________学号 ___姓名 ____ _____指导教师 _＿ __＿＿二0一一年十二月目录1. 材料与方法 (3)1.1材料 (3)1.2方法 (3)2.试验结果 (8)3.讨论 (8)参考文献： (9)致谢： (10)鸡肝脏组织石蜡切片制作Xxxx摘要：石蜡切片是组织学、发育生物学研究的主要实验方法，同时也是病理学中观察病理变化的重要手段，为科研和临床做出了卓越贡献。
该技术应用石蜡与动植物的组织能够很好地结合这一基本原理，经过标本采集、固定、脱水、透明、浸蜡、包埋、切片、摊片、贴片、哄片、脱蜡、染色、脱水、透明等一系列特殊处理方法制成透明的薄片，在显微镜下观察肉眼看不到的结构，为更深入的研究做准备。
关键字：石蜡切片，细胞质，细胞核，二甲苯，显微镜paraffin section methodxxxAbstract:the paraffin section is not only used to observe the morphological structure of normal cell organization, but also the morphological structure forensic pathology and subjects such as to research, observation and judgment of the tissue change shape of main ways. The method of making paraffin section take small organization form the small animals, such as the fixed, dehydration, transparent, leaching wax, embedding, section, booth slice, chipping, baking sheets, dewaxing, dyeing, dehydration, transparent and so on a series of special treatment made of transparent slice, facilitate under a microscope invisible structure, for more in-depth research for preparation.Keyword: paraffin section，cytoplasm，cell nucleus，xylene，microscope1.材料与方法1.1材料器材和仪器：切片机、纱布、绸布、剪刀、镊子、刀片、毛笔、载玻片、盖玻片、烤箱、显微镜、烧杯、酒精灯、蜡杯、蜡刀、染色架、冲洗盒、包埋筐、片盘等。
石蜡切片的制作过程
使其沉淀或过滤后再使用。浸蜡不透包埋后会出现白色不透明部分，此时需要在浸蜡一次。 6．包埋 包埋就是将已经浸渗好的组织块包埋于浸渗剂中，石蜡包埋法如下。 浸蜡终了时，将预先预热好的和第四杯石蜡相同熔点的石蜡倒入折好的蜡槽内，然后从第四 个蜡杯中取出组织块，放入蜡槽内，摆好位置，注意组织切面的摆放方向。放好组织后可以 自然冷却，也可以放入冷水中直接冷却。 7．塑型和切片 取已经包埋好的蜡块，将纸盒拆下，用加热的刀片或解剖刀将其分成若干块（每块组织占一 块），用解剖刀将组织块周围多余的石蜡切去，注意不要切到组织。把有组织的蜡块修成正 方形或梯形。在进行塑型时一定要注意组织块切面的方向。蜡块塑好后将其粘在小木块上。 注意要粘牢。最后在木块侧面用铅笔记上组织块名称、编号。 切片时采用手摇连续切片机。使用切片机进行切片时，将蜡块固定在切片机上，调好距离和 所要求的切片厚度，然后用右手摇动手柄，即可进行切片了。一般来讲生物切片的厚度在 5～ 10 微米。 对于切下的切片不要用手去取，因为体温可以使蜡片粘到手上，正确的做法是用毛笔或牙签 挑取，然后放在载玻片上进行展片和粘片。 8．展片和粘片 切下的组织蜡片往往带有皱褶，所以在染色前必须进行蜡片的展片和粘片，即把切好的蜡片 平整的粘在载玻片上。展片的温度因石蜡熔点的不同而的不同，一般的 56～58℃的石蜡切 片℃的温水进行展片，48～52℃的石蜡切片用 35℃的温水进行展片。等到蜡片充分展平后， 取一清洁载玻片，载玻片上涂一薄层蛋白甘油，然后在水中捞取蜡片，捞完后将蜡片摆正， 放到格盘内，置 38℃温箱中烘干，然后即可进行染色。 展片和粘片比较简单容易做，但是如果处理不好则无法进行染色，即使能染上色，组织切片 内部的结构也往往被破坏。 9．染色和封固 为了观察组织内部的细微结构，必须应用某些与固定后的原生质有亲合性的染料，对组织进 行染色，否则有碍观察。普通的染色法有两种即苏木紫伊红染色法（简写为 H•E）染色结果 是细胞核为紫色，细胞质为粉红色；另一种方法为铁苏木紫染色（简写为 I•A），染色的结 果是全部着以深浅不同的蓝色。 苏木紫伊红染色法整个染色过程如下： 取已经干燥的切片，放于盛有二甲苯的染缸内脱蜡 10min 左右，这个过程称为脱蜡。脱完 蜡后的切片即可进行染色，具体染色过程和时间如下： （1）100％酒精洗去二甲苯 2～5min。 （2）95％酒精 2～5min。 （3）90％酒精 2～5min。 （4）80％酒精 2～5min。 （5）70％酒精 2～5min。 （6）50％酒精 2～5min。 （7）蒸馏水洗 2～5min。 （8）苏木紫染液 10～20min。 （9）普通水洗 1min。 （10）盐酸酒精分色数秒～半分钟（70％酒精 100ml＋盐酸 1ml），分色到切片为带粉红色 后立即取出。 （11）自来水冲洗数小时。镜检切片呈清朗的蓝色，细胞核非常明显。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
动物学教研室 顾 勇
实验目的
• 制作实验动物的组织切片并染色，掌握动 物组织制片技术
实验用品
1．动物的组织。 2．器材和仪器：切片机、展片仪、毛笔、载 玻片、盖玻片、烤箱、显微镜。 3．试剂：60%乙醇、70%乙醇、80%乙醇、90% 乙醇、95%乙醇、无水乙醇、二甲苯、石蜡、 中性树胶。
（13）
石蜡Ⅲ
30min
30min
40min
注意事项
• 一般实质性脏器的组织及肿瘤组织应把最大切面朝下包埋；食管、胃、 肠等组织须将管壁横断面朝下包埋，若在同一蜡块中包埋数块管壁组 织时，应平行横埋且黏膜面（内膜）的方向应一致，以便切片及观察。 △同一蜡块包埋多个组织块时，组织的性质应相同，方向要一致，不 能把大小、厚薄差别悬殊的组织包埋在一起，组织块间的距离不能太 大。 △皮肤、骨等难切组织及需要连续切片的组织都应单独包埋。 △神经、脊髓及需要定向包埋的组织应注意组织块的相互关系。 △包埋（尤其在室温较低的情况下）操作应迅速，防止组织块变凉、 蜡液凝结及出现气泡，组织块与蜡液不能很好凝固定在一起，导致组 织与蜡分离。 △遇有管腔或空洞标本与小标本同埋一个蜡块时，不能将小标本放入 其他标本的管腔或空洞内。
实验2
HE染色技术
• 二甲苯Ⅰ脱蜡 10分钟。 二甲苯Ⅱ脱蜡 10分钟。 100％酒精Ⅰ2－5分钟。 100％酒精Ⅱ2－5分钟。 95％酒精1－2分钟。 90％酒精1－2分钟。 85％酒精1－2分钟。 自来水洗 片刻 蒸馏水 片刻 苏木素 10—15分钟 自来水洗 1—2分钟 1%盐酸酒精分化 0.5—1分钟 流水冲洗 蓝化10分钟—至数小时
实验2
HE染色技术
• 蒸馏水冲洗 1－2分钟。 70％酒精1－2分钟。 85％酒精1－2分钟。 90％酒精1－2分钟。 伊红（醇溶）5-20秒 95％酒精（Ⅰ）1秒 95％酒精（Ⅱ）1秒 100％酒精（Ⅱ）1－2分钟。 100％酒精（Ⅱ）3－5分钟。 二甲苯（Ⅰ）5-10分钟。 二甲苯（Ⅱ）5-10分钟。 中性树胶封片。
实验1 石蜡切片的制做技术
• 试剂与器材：甲醛，酒精，二甲苯，苏木精，伊 红，中性树胶，双面刀片，蜡板，镊子，滤纸， 200ml容量瓶（广口）、玻璃标本缸，载玻片，盖 玻片，染色பைடு நூலகம்，毛笔，新鲜鸡蛋，甘油 空闲时间：参观冰冻切片的制做 石蜡切片的制做程序（详细过程请查看讲义） 组织取材2毫米厚度，固定于福尔马林2小时。 组织流水冲洗1－2小时。
方案二 石蜡切片的制作
二、切片的步骤： 1、将蜡块固定于切片机头上的夹座内， 2、调整蜡块组织切面恰好与刀口接触，旋 紧刀架 3、根据需要调整切片厚度。 4、修整切片，直到切出完整的最大组织切 面后，再行切制。 5、切下的切片带，用毛笔从刀口向上挑起， 拉下切片带
方案二 石蜡切片的制作
三、切片的注意事项 1、切片质量的好坏，与技术熟练程度和切片机、 切片刀的好坏有关外。 2、切片机的各个零件和螺丝应旋紧，否则将会产 生震动。 3、在摇动切片机时，用力要求均匀一致，不宜过 重过猛，否则造成切片厚薄不均。或空洞现象。 4、在夏秋季节进行切片时，应使用冰块加强冷却， 可保持石蜡的硬度，减少切片的褶皱。
方案一:病理石蜡切片的制作
（一）石蜡组织块制作 1．取材。 2．固定。 3．脱水、透明及浸蜡（具体步骤见表）。 4．包埋
步 骤 （1） （2） （3） （4） （5） （6） （7） （8） （9） （10） （11） （12）
操作项目 60%乙醇 70%乙醇 80%乙醇 90%乙醇 95%乙醇Ⅰ 95%乙醇Ⅱ 无水乙醇Ⅰ 无水乙醇Ⅱ 二甲苯Ⅰ 二甲苯Ⅱ 石蜡Ⅰ 石蜡Ⅱ
•
【切片制作过程】 以使用旋转式切片机石蜡切片为例： 1．将切片刀装在刀架上，后将蜡块装在切片机固定装臵上。调整蜡块与刀 至合适位臵（刀刃与蜡块切面呈5°夹角）旋转式切片机切取组织，是由下 向上切，为得到完整的切片，防止组织出现刀纹裂缝，应将组织硬脆难切的 部分放在上端（如皮肤组织，应将表皮部分向上。而胃肠等组织，应将浆膜 面朝上）。 2．左手执手笔，右手旋转切片机旋转轮。先粗切标本，直到暴露出组织最 大切面（但对小标本不要修切得太多，以免将整个组织块修切掉）。再连续 旋转切出蜡带，左手持毛笔将蜡片带下端轻轻托起，右手用镊子夹起蜡带上 端，正面向上放入展片仪水盒内，展片温度根据使用的石蜡熔点进行调整， 一般水温为45℃左右，待蜡片带中的组织展平后，即可进行分片和捞片。对 于展片困难的切片经30%的乙醇初展后，再用载玻片捞起蜡带放人展片仪水 盒内可使切片更易展平。在夏季切片时可用冰块冷却切片刀和组织块，减少 切片刀与组织块在切片过程中产生的热时，使石蜡保持合适的硬度以利于切 片。 3．捞起切片后，写上编号。捞片时注意切片的位臵，一般切片的中心位于 载物片右侧1/3与2/3交界处为佳，并注意整齐美观。 4．烤箱60℃左右烘烤切片30min，对血凝块和皮肤组织应及时烤片，烤片温 度应稍低；脑组织切片捞出后直立晾干，再烤片，否则产生气泡。
（二）石蜡切片制作
• 用切片机将石蜡包埋的组织块（蜡块）制成适宜厚度的切 片，是目前在病理学科中最常用的一种制片方法。切片厚 度为一般4~6μm。 【切片前的准备】 1、修切蜡块 切片前应先修块，即切去组织周围过多的 石蜡，一般留下约2mm宽度的蜡边为宜。注意蜡块不能留 得太窄，在切片时易损坏组织；蜡边不能留得太多，否则 影响展片。室温过高时，可将修好的蜡块放到冰箱中冷却 一定时间。 2、切片用品准备 （1）切片刀：预先磨好切片刀备用或切片前更换新的一 次性切片。 （2）载物片：载物片经清洁液、95%乙醇处理后备用。 （3）展片仪：加入温水，接通电源，调整温度。 （4）其他用品：准备好毛笔、记号笔、镊子、冰块等。
小 鼠 15min 15min 20min 20min 20min 20min 20min 20min 5min 3min 10min 20min
大鼠 20min 20min 30min 30min 30min 20min 30min 30min 8min 5min 15min 25min
家 兔 30min 30min 40min 40min 40min 30min 40min 40min 10min 5min 20min 30min
实验1 石蜡切片的制做技术
• 70％酒精2－4小时。 85％酒精2－4小时。 95％酒精（Ⅰ）2－3小时。 95％酒精（Ⅱ）1－2小时。 100％酒精（Ⅰ）1－2小时。 100％酒精（Ⅱ）0.5－1小时。 100％酒精：二甲苯（1：1）0.5－1小时。 二甲苯（Ⅰ）20—30分钟。 二甲苯（Ⅱ）10—20分钟。 浸蜡（Ⅰ）40分钟。 浸蜡（Ⅱ）40分钟。 组织包埋。 蜡块整修。切片。贴好的切片臵于60℃恒温箱内 干燥2小时。
方案二 石蜡切片的制作
四、贴片： 1、将单张切片，用镊子夹住蜡片的一边并提起， 铺于恒温水中（光亮的一面朝下）立即用毛笔轻 轻拉展以切片无皱褶为最好。 2、待切片在恒温水内充分摊开展平后，将载玻片 垂直插入水中轻靠切片，随即将玻片直立提起， 拨正切片位臵。 3、用铅笔在玻片的毛玻璃上写上标本编号，字要 写得小而清楚、端正。 4、贴好的切片臵于60℃恒温箱内干燥2小时，蛋 白质凝固后即可染色。
方案二 石蜡切片的制作
1—6微米。制作大批的或是连续的切片。长期保存。 一、切片前的准备： 1、恒温水浴锅首先预热至35℃—40℃。 2、蜡块整修，暴露组织并修平，减少刀的磨。 3．载玻片应事先洗涤干净，无油腻和不透明现象。涂粘片 剂。 4、将锋利的刀片，调整角度和位臵，以20°-30°为佳。 5、备用小型毛笔、小型无钩镊子、铅笔。