动脉插管和气管插管课件

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6、将充满肝素的动脉插管向近心端插入，用线打 双结结扎，再固定于插管缠胶布处（二次固定）。
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7、打开生物机能实验系统，观察并记录动 脉血压。
•先小心松开动脉夹，确认无误后再取走。若有渗血或血 液回流等意外，可立刻夹闭再进一步处理。
•进入BL－410/420系统。
1:10000生理盐水肝素，并关闭三通管。
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三通管的使用
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3、用玻璃分针分离一侧颈总动脉， 暴露血管2-3cm，穿双线备用。
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4、结扎颈总动脉远心端，在近心端 用动脉夹夹闭。
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5、在靠近结扎线处用眼科剪剪一“v”形切口，切 口大小约为动脉口径的1/3~1/2。
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操作练习
全身麻醉 家兔 气管插管
颈总A插管
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哺乳动物手术器材清单
金属用品 粗剪1把
玻璃/塑料用品 气管插管1个
其他 纱布
手术剪1把
动脉插管1根
棉签
眼科剪1把
玻璃分针1根
丝线
血管钳4把
三通管1-2个
布条
手术镊1把
注射器2支 压力换能器
手术刀1把
动脉夹1个
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药品
• 戊巴比妥钠（1.5%）
为中效巴比妥类药物。是最常用的麻醉剂，需保
存在阴凉处。一般作用时间可维持2-4h。使用剂 量为2ml/kg，使用方法为静脉注射（iv.）或腹腔 注射（ip.）。
• 生理盐水肝素（1:10000）
肝素是一种酸性粘多糖，主要是 由肥大细胞
和嗜碱性粒细胞产生。肺、心、肌肉等组织中含
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针对不同的动物，选择不同的麻醉药物、实施 不同的麻醉方法。
麻醉药物应用原则： • 依据动物体重计算麻醉药物的剂量； • 依据动物生命体征变化控制给药速度； • 掌握宁少勿多、分阶段给药的方式。
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家兔耳缘静脉注射麻醉具体操作
• 备皮。
• 用手指轻弹血管，使耳缘静脉充盈。
• 用左手食指和中指夹住静脉近心端，拇指和小指夹住耳缘部 分，以左手无名指和小指放在耳下作垫。
• 右手持注射器使针头由静脉末端呈30°刺入，顺血管方向 向心端推进约1-1.5cm
• 放松左手拇指和食指对血管的压迫，右手试推注射器针芯， 若注射阻力较大或出现局部肿胀，说明针头没有刺入静脉， 应立即拔出针头，若推注阻力不大，可将药物徐徐注入，注 射完毕后将针头抽出，随即以棉球压迫止血。
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实验二 动物实验基本操作技术
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实验目的
掌握：常用实验动物的捉取、固定与给药方法；实验动物 的麻醉方法、气管插管方法、动静脉插管方法、尿管插管 方法、输尿管插管方法。
熟悉：颈部和腹部手术操作的基本技术，常用仪器设备与 手术器械的使用方法，实验动物取血法和处死的方法。
了解：常用实验动物的主要生物学特性及应用；动物的去 毛、编号、去毛、取血和处死方法。
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给药速度
前2/3快速推入，使动物能顺利、快速地渡 过兴奋期；后1/3速度宜慢，且边注射边注 意观察动物的生命体征变化，当确定已达到 麻醉效果时，即停止给药，不必急于将剩余 的麻醉药物全部推入。
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麻醉成功标志
角膜反射迟钝 肢体肌肉松弛 疼痛反射消失 呼吸变浅变慢
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动物实验常用插管技术
• 气管插管术 • 颈动脉插管术 • 颈静脉插管术
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插管技术的基本步骤
1. 动物称重、麻醉、固定。 2. 插管部位皮肤去毛、备皮。 3. 皮肤切开。 4. 皮下组织结构的分离。 5. 目标器官或组织结构的游离。 6. 导管的插入或固定。
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家兔颈部神经和血管的解剖位置
•选择“实验项目” →选择“循环实验” →“兔动脉血 压调节”实验模块。 •选 择 “ 输 入 信 号 ” → 选 择 “ 通 道 ” → “ 压 力 ” → 点 击 “开始”实验按钮，即可在屏幕上观察到正常的血压曲 线。
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动脉插管注意事项
• 动脉插管和血压换能器内一定要排净空气； • 压力换能器与动物心脏等高； • 动脉插管与颈总动脉呈一条直线，方向一致； • 掌握好三通管的方向； • 结扎固定牢固。
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4、在甲状软骨下方第 3-4 软 骨 环 处 作 一 倒 “T”形切口，向胸腔 方向插入气管插管， 确认插管通畅后用线 固定，再在插管分叉 处打结（二次固定）。
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颈动脉插管技术
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1、由颈正中剪开一约5-7cm的口、钝性分离 皮下筋膜（略）。
2、换能器与插管的准备。 换能器与三通管、动脉插管连接，充灌满
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迷走神经
交感神经
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减 压 神 经
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气管插管术
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1、麻醉固定、颈部皮 肤去毛、备皮
2、在颈前区正中 作一约5-7cm的切 口
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3、钝性分离皮下组织、肌肉，游离出气管，穿线 备用。
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量丰富，生理情况下血浆中含量甚微。无论在体
内还是体外，肝素的抗凝作用都很强，故临床把
它作为抗凝剂广泛使用。肝素在动物体内抗凝的
剂量一般为3-10mg/kg，体外血液抗凝浓度为0.1-
0.2mg/ml。
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家兔全身麻醉
麻醉剂：1.5%戊巴比妥钠2ml/kg 给药方法：耳缘静脉注射
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