柠檬苦素,诺米林含量测定方法
柑橘酒发酵过程中总黄酮、柠檬苦素和诺米林含量变化

柑橘酒具有酒精度低、酒质温和爽口的特点,基本保留柑橘原有风味和功效,并且具有防衰抗老、润肺、补肝、安神等保健作用[1]。
柑橘酒中存在多种功能性成分,如类胡萝卜素、黄酮类化合物和类柠檬苦素等。
柑橘中的类黄酮是一种具有C6-C3-C6苯并呲喃酮结构的多酚类化合物,具有抗肿瘤、抗病菌、抗炎、降低毛细血管脆性、抗过敏、抑制血小板凝集等多方面的药理作用[2-3]。
因此,柑橘酒中的黄酮含量可作为评价其营养保健价值的一个重要指标。
类柠檬苦素是一类高度氧化的四环三萜类化合物,常以苷元和配糖体存在,具有抗氧化性、抗肿瘤、抗心血管疾病、抗炎镇痛、抑菌抗病毒等多种生物活性[4-6]。
据报道,现已分离出类柠檬苦素苷元36种,类柠檬苦素糖苷17种,其中柠檬苦素(limonin)和诺米林(nomilin)最具代表性[7]。
果汁中的-环内酯能在酸性条件下被柠檬苦素-环内脂水解酶催化形成柠檬苦素,产生果汁加工“后苦”的现象[8],尤其在冰冻、机械损害这类非正常条件下的水果组织破坏,可增加果肉酸度和提高酶活,促使柠檬苦素生成量增加[9]。
在柑橘果汁加工中,通常认为柠檬苦素和诺米林为代表的苦味物质阈值为6mg/L,超过该质量浓度则太苦而不宜用于饮料加工[10-11]。
由此可知,柠檬苦素类似物虽具有多种生物活性,但它们带来的苦涩味严重影响了柑橘酒的口感,制约着柑橘酒的发展[12-13]。
因此,了解柠檬苦素类似物在柑橘酒酿造过程中的变化规律显得尤为重要。
目前,有关柑橘酒的研究主要针对于产品品质和风味的提高,而其发酵过程中功能性成分的变化方面尚未见报道。
基于此,本研究以实验室自酿的柑橘酒为试验材料,柑橘酒发酵过程中总黄酮、柠檬苦素和诺米林含量变化曾竟蓝1,马胤鹏1,秦丹1,2,曾璐3*,陈长松4(1.湖南农业大学食品科学技术学院,湖南长沙410128;2.湖南农业大学食品科学与生物技术湖南省重点实验室,湖南长沙410128;3.湖南农业大学湖南省作物种质创新与资源利用重点实验室,湖南长沙410128;4.天下果业开发有限公司,湖南湘西自治州416000)摘要:以实验室酿制的柑橘酒为试验材料,采用分光光度法对柑橘酒发酵过程中的总黄酮含量进行检测;利用高效液相色谱(HPLC)法对柑橘酒发酵过程中苦味物质(柠檬苦素和诺米林)的含量进行检测。
柑橘果实苦味物质研究进展

柑橘果实苦味物质研究进展目录1. 内容概括 (2)1.1 研究的背景与重要性 (3)1.2 柑橘果实苦味物质类型与特点 (4)1.3 研究目的与意义 (5)2. 柑橘果实中的苦味物质 (6)2.1 苦味物质的分类与特性 (7)2.2 柑橘果实苦味物质的主要化合物 (8)2.3 苦味物质的生物合成途径 (9)3. 苦味物质的检测与分析方法 (10)3.1 化学分析方法 (11)3.2 生物技术方法 (12)3.3 高通量筛选技术 (14)4. 苦味物质的生物合成与调控 (16)4.1 基因调控网络 (17)4.2 酶促合成途径 (18)4.3 环境因素对苦味物质合成的影响 (19)5. 苦味物质对柑橘品质的影响 (21)5.1 果实风味 (22)5.2 果实安全性 (23)5.3 消费者接受度 (24)6. 苦味物质的抑制与改良 (25)6.1 基因工程技术 (27)6.2 分子标记辅助选择 (28)6.3 栽培管理措施 (29)7. 苦味物质与柑橘产品的开发 (30)7.1 食品调味品的开发 (31)7.2 药用价值的研究 (32)7.3 新产品与市场应用 (34)8. 总结与展望 (35)8.1 研究进展总结 (36)8.2 存在问题与挑战 (37)8.3 未来研究方向 (38)1. 内容概括柑橘果实中的苦味物质主要来源于果皮、果肉和种子,这些苦味物质对于柑橘果实的口感和风味有着重要影响。
随着科学技术的发展,对柑橘果实苦味物质的研究取得了显著的进展。
本文将对柑橘果实苦味物质的种类、生物活性及其在农业生产中的应用等方面进行简要概述。
柑橘果实中的苦味物质主要包括黄酮类化合物、柠檬苦素类化合物和氨基酸衍生物等。
这些化合物具有不同的生物活性,如抗氧化、抗炎、抗癌等。
黄酮类化合物是柑橘果实中最为丰富的苦味物质之一,具有很强的抗氧化能力和抗菌活性。
在生物活性方面,柑橘果实中的苦味物质具有多种生理功能。
柠檬苦素类化合物具有抑制肿瘤细胞生长的作用,同时还具有抗病毒和抗真菌活性。
分光光度法测定椪柑果皮中柠檬苦素类似物

分光光度法测定柱柑果皮中柠檬苦素类似物吴杨伟(金华职业技术学院,浙江金华321017)喃要]以桔皮为原材料,以3种不同脱脂剂和提取剂对柠檬苦素的提取效果不同而进行多组实验,从中选择出最好的脱脂剂石油醚和提取剂丙酮,使提取的效果达到最好。
再从快速测定法中。
以721分光光度计的不同波K T钡,Ig_,从中选择出最大吸收波长,综合比较得出,桔皮中柠檬苦素的最佳测定方法是快速法、测定条件为5f1)nm波长、以石油醚和丙酮作为最佳脱脂溶刺和提取溶剂。
实验结果显示,快速法所测柠檬苦素类似物的含量为0.034%,传统方法所测柠檬苦素类似物的含量为0.021%。
哄键词]柠檬苦素;脱脂剂;提取荆;最失吸收波长据统计2000年全国柑桔种植面积12万总产量1235万t,面积和产量分别位居廿界第—和第三。
由于总产量的不断增加,柑桔皮渣等废弃物造成的环境污染也不容忽视,若柑桔果实的可食率以65%计算,皮渣废弃物的比例为35%,按2000年产量计算,柑桔皮渣废弃物达432万t,造成的污染程度可想而知。
如何加强柑桔深度加工研究,尤其是利用柑桔果实皮渣废弃物提取一些生物洲生物质,并加以利用,是提高柑桔产业效益,减少柑桔皮渣废弃物污染的重要途径。
柠檬苦素及其类似物(柠檬苦素类物质)在柑桔果实中,特别是在果皮、种子中含量丰富(葡萄柚种子中柠檬苦素占种-7-_鲜重的1.5%),由于这类物质具有抗癌与保健的功效,以及高效的除虫作用,因此,越来越受到人们的重视。
利用柑桔果实皮渣废弃物提取柠檬苦素类化合物,原料廉价,提取效率高,具有广阔的商业生产前景。
因此,对柑桔中柠檬苦素的含量加以测定,从而测出其中是否柠檬苦素及类1以物,以及含量的多少,对柠檬苦素的应用和方便的提取有一定的帮助。
1材料与方法1.1关验材精口柑果皮:市售药材(粉碎备用)12实验试剂无水乙醇、乙醚、正己烷、氯仿、二氯甲烷、丙酮、浓硫酸、对二一甲氨基苯甲醛、三氯化铁、召由醚(均为分析纯)反应液:125m g对二一甲氨基苯甲醛溶解于100m L硫酸一无水乙醇混合液(V:V=65:35)中,加入05m L O.9%三氯化铁溶液(O.909三氯化铁定溶于10.OO m l蒸馏水),现配现用。
219316082_柑橘中类柠檬苦素的提取、分离纯化及检测技术研究进展
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王夜梅,李江南,尹会平,等. 柑橘中类柠檬苦素的提取、分离纯化及检测技术研究进展[J]. 食品工业科技,2023,44(12):470−479. doi: 10.13386/j.issn1002-0306.2022070069WANG Yemei, LI Jiangnan, YIN Huiping, et al. Research Progress on Extraction, Separation, Purification and Detection Technology of Limonins in Citrus[J]. Science and Technology of Food Industry, 2023, 44(12): 470−479. (in Chinese with English abstract). doi:10.13386/j.issn1002-0306.2022070069· 专题综述 ·柑橘中类柠檬苦素的提取、分离纯化及检测技术研究进展王夜梅1,李江南1,尹会平1,张耀海1,陈爱华1,苏学素2,焦必宁1,*(1.西南大学柑桔研究所,农业农村部柑桔产品质量安全风险评估实验室(重庆),农业农村部柑桔及苗木质量监督检验测试中心,农业农村部柑橘类果品质量安全控制重点实验室,重庆 400712;2.西南大学化学化工学院,重庆 400715)摘 要:柑橘是世界第一大类水果,每年有大量的柑橘加工副产品产生,这些副产品中含有丰富的类柠檬苦素化合物,具有抗肿瘤、抗炎、抗病毒等多种生理作用,已被应用于食品、医药和农业等领域。
开发高效的类柠檬苦素提取、分离纯化技术,研发快速的类柠檬苦素分析检测方法,有着重要的理论和实践价值。
本文介绍了柑橘中类柠檬苦素结构特征及含量,重点综述了类柠檬苦素的提取、分离纯化及检测技术。
总结发现新兴技术如超声辅助、超临界流体提取类柠檬苦素的提取效率较好,联合应用大孔树脂吸附、高速逆流色谱、制备型高效液相色谱法分离效果好。
柠檬苦素(Limonin)
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于甲醇、乙醇、冰醋酸。熔点298℃,旋光度-128 °(c=1.21,丙酮)。
对于柠檬苦素类似物的生理活性研究, 是从栋科药用植物开始的。 柑桔科植物, 自1982 年柑桔柠檬苦素类似物对昆虫具有摄食阻害作用报导以来, 进展活跃。1989 年报导柑桔柠 檬苦素对动物肿瘤有抑制作用, 如对鼠的肺癌与胃癌, 田鼠的口腔癌有显著的抑制效果。 (1)抗肿瘤作用 文献报导, 柑桔类柠檬苦素化合物具有明显的抗肿瘤作用, 对豚鼠经口给予柠檬苦素和 诺米林等柠檬苦素类化合物可增强小肠粘膜和肝脏中的谷胱甘肽转移酶(GST)的活性 3-4 倍。 一般来讲,诱发 GST 活性的化合物能抑制化学致癌物质的致癌,由于柠檬苦素激活了此酶
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柠檬苦素类似物对麻醉小鼠的催眠试验研究发现,柠檬苦素、诺米林、奥巴叩酮、7 一 奥巴叩酮、70r 一柠檬苦醇等柠檬苦素类化合物均能延长由俚一氯醛糖和乌拉坦所引起的小 鼠睡眠时间,其中化合物诺米林的镇静作用较强。 (4)防虫杀虫活性 关于柠檬苦素类似物的摄食阻害, 从栋树(A zadirach ta indica)种子分离的印苦栋子素活 性高, 对 60 多种昆虫有效果。柑桔柠檬苦素类似物(奥巴叩酮、 诺米林、 柠檬苦素)对昆 虫与白蚁也表现活性。开发利用这些天然由来的柠檬苦素类似物生物防虫剂有很大意义。
2、产地生源:湖南、湖北、贵州、广东、广西、云南、江西、福建等长江以南各省。
二、产品描述
1、Cas 号:1180-71-8 2、英文名:Limonin 3、别 名:黄柏内酯、吴茱萸内酯
5、成分分类: 6、结构式:
7、分子量:470.51. 8、分子式:C26H30O8 9、性状: 白色粉末(98%) 10、理化性质:本品为具有苦味的晶体(二氯甲烷+异丙醇或乙酸) 。难溶于水、乙醚,溶
中药橘核质量标准研究
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中药橘核质量标准研究赵胜斌(汝州市人民医院药械科ꎬ河南汝州467500)摘要:目的㊀建立中药橘核中柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮高效液相色谱含量测定方法ꎮ方法㊀采用高效液相色谱法ꎬ色谱柱:AgilentSB-C18(4.5mmˑ250mmꎬ5μm)ꎬ流动相乙腈-水(64ʒ36)等度洗脱ꎬ柱温:30ħꎬ检测波长:210nmꎬ流速:1.0mL min-1ꎬ进样量:10μLꎮ结果㊀柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮分别在0.396~3.960㊁0.404~4.040㊁0 392~3.920μgꎻ柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮定量限分别为1.07㊁1.34㊁1.48ngꎻ检测限分别为0.39㊁0.22㊁0.35ngꎮ柠檬苦素平均加样回收率为100.23%ꎬRSD为0.21%ꎻ诺米林平均加样回收率为99.89%ꎬRSD为0.89%ꎻ黄柏酮平均加样回收率为100.68%ꎬRSD为1.13%ꎮ结论㊀本研究开发的中药橘核中柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮高效液相色谱含量测定方法ꎬ操作简便ꎬ重复性高ꎬ稳定性㊁精密性良好ꎬ可用于橘核的质量控制ꎮ关键词:橘核ꎻ高效液相色谱法ꎻ含量测定ꎻ质量标准中图分类号:R284.1㊀文献标识码:A㊀文章编号:2095-5375(2020)07-0394-004doi:10.13506/j.cnki.jpr.2020.07.006StudyonqualitystandardofChinesemedicinetangerineseedZHAOShengbin(DepartmentofPharmaceuticalMachineryꎬRuzhouPeopleᶄsHospitalꎬRuzhou467500ꎬChina)Abstract:Objective㊀ToestablishanHPLCmethodforthedeterminationoflimoninꎬnomilinandobacunoneinthetangerineseedoftraditionalChinesemedicine.Methods㊀Thecolumn:AgilentSB-C18(4.5mmˑ250mmꎬ5μm)ꎬthemobilephaseacetonitrile-water(64ʒ36)isocraticelutionꎬthecolumntemperature:30ħꎬthedetectionwavelength:210nmꎬtheflowrate:1.0mL min-1ꎬtheinjectionamount:10μL.Results㊀Thequantitativelimitsoflimoninꎬnomilinandobacunonewere0.396~3.960ꎬ0.404~4.040and0.392~3.920μgꎬrespectivelyꎻThequantitativelimitsoflimoninꎬnomilinandobacunonewere1.07ꎬ1.34and1.48ngꎬandthedetectionlimitswere0.39ꎬ0.22and0.35ngꎬrespectively.Theaveragerecoveryoflimoninwas100.23%ꎬRSDwas0.21%ꎬtheaveragerecoveryofnomilinwas99.89%ꎬRSDwas0.89%ꎬandtheaveragerecoveryofobacunonewas100.68%ꎬRSDwas1.13%.Conclusion㊀Themethodfordeterminationoflimoninꎬnomi ̄linandobacunoneintheorangenucleusdevelopedbythisresearchwassimpleꎬreproducibleꎬstableandprecise.Itcanbeusedforthequalitycontroloftangerineseed.Keywords:TangerineseedꎻHPLCꎻDeterminationꎻQualitystandard㊀㊀橘核为芸香科植物橘及其栽培变种干燥成熟种子ꎬ在我国有悠久的药用历史ꎬ早在五代时期的本草专著«日华子本草»中就有其应用的相关记载[1]ꎮ该药物味苦ꎬ平ꎬ无毒ꎬ主要用于治疗膀胱气痛㊁肾冷等ꎬ现代药理学研究结果显示橘核具有较强的镇痛抗炎㊁抗肿瘤等作用[2-3]ꎮ对于橘核的质量标准从«中国药典»1963年版至2015年版均有相关的记载ꎬ但目前橘核的质量标准仍以性状及显微鉴别为主ꎬ对其薄层色谱鉴别及含量测定等现代鉴别手段并无相关要求ꎬ已不能适应目前的用药要求ꎬ因此有必要对其质量标准进行提高以进一步提高质量控制水平ꎬ规范其质量[4]ꎮ经过多年研究发现ꎬ橘核内生物活性成分以柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮为主ꎬ本研究拟采用高效液相色谱法对橘核中上述成分进行定量分析ꎬ以期为橘核的质量控制提供参考依据ꎮ1㊀材料与方法1.1㊀仪器㊀采用美国安捷伦公司生产的1200型高效液相色谱仪(检测器:DAD二极管阵列检测器ꎬ色㊀作者简介:赵胜斌ꎬ男ꎬ主管药师ꎬ研究方向:药物信息ꎬE-mail:huanqean28428@163.com谱工作站为安捷伦公司专用工作站ꎬ四元梯度泵㊁柱温箱㊁自动进样器)ꎮAUW220D型十万分之一天平(日本岛津公司)ꎻBP121S万分之一天平(德国赛多利斯公司)ꎮ1.2㊀试药㊀柠檬苦素对照品(中国食品药品检定研究院ꎬ批号:110800-201707)ꎻ诺米林(赫澎生物上海科技有限公司ꎬ批号:1063-77-0)ꎻ黄柏酮(中国食品药品检定研究院ꎬ批号:111923-201604)ꎻ乙腈㊁甲醇为色谱纯购自德国默克化工技术有限公司ꎬ试验用水为自制纯化水ꎮ石油醚(60~90ħ)㊁乙醚㊁乙醇㊁甲醇为分析纯均购自天津四友精细化学品有限公司ꎮ橘核分别购自安徽亳州药材市场㊁广州清平药材市场㊁广西玉林药材市场及河北安国药材市场ꎬ均经汝州市药品检验所弓西方副主任中药师鉴定为芸香科植物橘(CitrusreticulataBlanco)及其栽培变种的干燥成熟种子ꎬ详见表1ꎮ表1㊀橘核药材来源样品号购买地产地购买日期1安徽亳州药材市场广东2017.12.092安徽亳州药材市场江西2017.12.283安徽亳州药材市场四川2018.1.244广州清平药材市场广东2018.2.255广州清平药材市场江西2018.3.276广州清平药材市场浙江3018.3.277广西玉林药材市场四川2018.4.188广西玉林药材市场广东2018.4.189广西玉林药材市场江西2018.5.2310河北安国药材市场四川2018.5.2711河北安国药材市场江西2018.6.121.3㊀色谱条件㊀色谱柱:AgilentSB-C18(4.5mmˑ250mmꎬ5μm)ꎬ流动相乙腈-水(64ʒ36)等度洗脱ꎬ柱温:30ħꎬ检测波长:210nmꎬ流速:1.0mL min-1ꎬ进样量:10μLꎮ1.4㊀溶液的制备1.4.1㊀混合对照品溶液㊀精密称取柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮对照品适量ꎬ分别置10mL量瓶ꎬ加入甲醇溶解并稀释至刻度ꎬ摇匀ꎬ得到含柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮对照品分别为0.99㊁1.01㊁0.98mg L-1的对照品储备液ꎬ分别精密量取上述对照品储备液各2mL置入同一10mL量瓶中并稀释至刻度ꎬ摇匀ꎬ以0.45μm微孔滤膜滤过ꎬ得到柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮浓度分别为0.198㊁0.202㊁0.196mg L-1的混合对照品溶液ꎮ1.4.2㊀供试品溶液的制备精密称取本品粉末0.5g(过三号筛)ꎬ精密加入无水乙醇25mLꎬ超声提取30minꎬ滤过㊁滤液蒸干ꎬ残渣加甲醇溶解ꎬ置10mL量瓶中ꎬ稀释至刻度ꎬ摇匀ꎬ以0.45μm微孔滤膜滤过ꎬ得到供试品溶液ꎮ2 结果2.1㊀方法学考察2.1.1㊀标准曲线的绘制㊀精密吸取 1.4.1 项下混合对照品溶液2㊁5㊁10㊁15㊁20μLꎬ分别按 1.3 项下色谱条件进行测定ꎬ记录峰面积ꎬ以峰面积为Y轴ꎬ对照品进样量为X轴进行线性回归ꎬ得到柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮回归方程ꎬ结果见表2ꎮ2.1.2㊀精密度试验㊀精密吸取 1.4.1 项下混合对照品溶液10μLꎬ按 1 3 项下色谱条件连续进行6次测定ꎬ记录柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮峰面积ꎬ计算相对标准偏差(RSD)ꎬ柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮分别为0.65%㊁0.62%㊁0.37%ꎮ表2㊀各对照品回归方程及相关系数对照品线性范围μg回归方程r柠檬苦素0.396~3.960Y=157.29X-45.0920.9995诺米林0.404~4.040Y=124.63X-33.9050.9992黄柏酮0.392~3.920Y=443.81X+4.9270.99932.1.3㊀重复性试验㊀取6份3号样品粉末ꎬ每份约0.5gꎬ精密称定ꎬ按 1.4.2 项下供试品溶液制备方法制备成供试品溶液ꎬ以 1.3 项下条件进行含量测定ꎬ记录柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮峰面积ꎬ计算RSD值分别为1.26%㊁1.09%和1.33%ꎮ2.1.4㊀稳定性试验㊀取3号样品粉末约0.5gꎬ精密称定ꎬ按 1.4.2 项下供试品溶液制备方法制备成供试品溶液ꎬ在配置后0㊁2㊁4㊁8㊁12㊁24h后分别按 1.3 项下色谱条件进行含量测定ꎬ记录柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮峰面积ꎬ计算RSD值分别为0.89%㊁1.27%㊁1.03%ꎬ提示24h内供试品溶液稳定性良好ꎮ2.1.5㊀定量限与检测限考察㊀取 1.4.1 项下混合对照品溶液适量进行倍比稀释ꎬ再 1.3 项下色谱条件连续进行6次进样检测ꎬ记录峰记录柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮峰面积ꎮ分别对定量限及检测限进行计算ꎬ以信噪比为10ʒ1时为定量限ꎬ信噪比为3ʒ1时为检测限ꎬ柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮定量限分别为1.07㊁1.34㊁1.48ngꎻ柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮检测限分别为0.39㊁0.22㊁0.35ngꎮ2.1.6㊀加样回收率试验㊀取已知含量的供试品(3号样品)6份ꎬ各0.25gꎬ精密称定ꎬ分别加入一定量的柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮对照品ꎬ分别按 1 4 2 项下供试品溶液制备方法制备成供试品溶液ꎬ以 1.3 项下条件进行含量测定ꎬ计算回收率ꎬ结果见表3ꎮ2.2㊀样品含量测定结果㊀取11批样品ꎬ 1.4.2 项下供试品溶液制备方法制备成供试品溶液ꎬ以 1.3 项下条件进行含量测定ꎬ分别计算各批次柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮质量分数(以干燥品计)ꎬ结果见表4ꎮ11批样品中柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮平均质量分数分别为0.702%㊁0.412%㊁0 072%ꎬ以均值-20%为其限度标准ꎬ暂定为橘核中柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮含量不得低于0.56%㊁0 33%㊁0.06%ꎮ表3㊀加样回收率试验结果成分取样量/g样品含量/mg加入量/mg测得量/mg回收率(%)平均回收率(%)RSD(%)柠檬苦素0.35062.1752.154.32199.81100.230.210.34772.1572.154.352102.090.35192.1832.154.32399.530.34692.1522.154.29599.670.35032.1732.154.26097.070.34952.1682.154.387103.21诺米林0.35061.3311.322.653100.1599.890.890.34771.3201.322.651100.830.35191.3351.322.63998.790.34691.3161.322.644100.610.35031.3291.322.63398.790.34951.3261.322.648100.15黄柏酮0.35060.3240.320.646100.62100.681.130.34770.3210.320.648102.190.35190.3250.320.64499.690.34690.3210.320.642100.310.35030.3240.320.64299.380.34950.3230.320.649101.88表4㊀样品含量测定结果样品号柠檬苦素(%)诺米林(%)黄柏酮(%)10.47050.14580.079220.58130.27940.088330.62040.37950.092440.83250.22060.028750.66540.50230.045860.77230.63170.046270.84190.61250.071980.78030.60920.120390.84110.40390.0914100.58920.26770.0569110.72950.48320.06973 讨论3.1㊀供试品制备工艺的考察㊀制备工艺方面因橘核为种子类药材ꎬ含有大量的脂肪油ꎬ因此考虑先对药材进行脱脂处理ꎬ本研究先后对不脱脂无水乙醇超声提取30min㊁以石油醚(60~90ħ)超声脱脂处理30min后弃去石油醚液再乙醇超声30min及乙醚超声脱脂处理30min后弃去乙醚液再乙醇超声30minꎬ发现3种提取方法所提取的柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮得率RSD在3%以内ꎬ加上节能㊁减排的考虑ꎬ在提取前不做脱脂处理[5-6]ꎮ在提取方法上ꎬ本研究考察了超声㊁回流及高速匀浆3种提取方法ꎬ发现超声与回流提取所提取的柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮得率RSD在3%以内ꎬ故选择超声操作更为简便ꎬ另外高速匀浆法虽然目标物得率有所提高ꎬ但因该方法所使用的高速匀浆仪目前国内实验室普及率不高ꎬ考虑到标准的普适性暂未将该提取方法纳入本标准中ꎬ将来待该仪器在国内实验室普及率较高时可考虑使用高速匀浆法进行提取ꎬ该方法提取效率高㊁操作时间短ꎬ具有较明显的优势[7]ꎮ另外本研究还对提取时间㊁提取溶剂及料液比进行考察ꎬ提取时间方面考察了提取10㊁20㊁30㊁40㊁60minꎬ发现在提取30min后各目标成分含量并无明显上升ꎬ因此选择30min作为提取时间ꎮ提取溶剂方面考察了二氯甲烷㊁无水乙醇㊁甲醇ꎬ发现无水乙醇提取效率高且毒性小ꎬ料液比方面在1ʒ50时提取效率最高ꎬ随后料液比升高目标物得率并无明显上升ꎮ3.2㊀检测波长的确定㊀取柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮对照品溶液ꎬ以DAD检测器进行全波长扫描结果发现柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮最大吸收峰波长分别为210㊁211㊁214nmꎬ分别选择上述波长下色谱图分析发现在210nm时各色谱峰分离效果最佳ꎬ理论塔板数较高ꎬ故选作本次研究的测定波长ꎮ3.3㊀流动相的选择㊀流动相方面在查阅文献[8-9]的基础上本研究先对甲醇-水(62ʒ38)㊁乙腈-水(62ʒ38)进行对比发现乙腈-水系统色谱峰峰形更尖锐ꎬ理论塔板数更高ꎬ故选择该系统进行优化ꎬ在乙腈-水(64ʒ36)时分离效果最佳ꎬ对照品及供试品均可在15min完成检测ꎮ另外本研究还对不同品牌液相色谱仪及色谱柱进行分析ꎬ结果显示具有较高的重现性ꎮ橘核具有理气㊁散结㊁止痛的功效ꎬ临床上常用于治疗疝气疼痛㊁睾丸疼痛等疾病ꎬ临床应用较多[10]ꎮ但目前现行的«中国药典»2015年版中橘核的指标标准仅收载性状及显微鉴别方法ꎬ对其含量并未作要求ꎮ本研究开发的中药橘核中柠檬苦素㊁诺米林㊁黄柏酮高效液相色谱含量测定方法ꎬ操作简便ꎬ重复性高ꎬ稳定性㊁精密性良好ꎬ可用于提高橘核质量评价ꎮ参考文献:[1]㊀彭智祥.中药橘核和橘络的质量标准提高研究[D].昆明:云南中医学院ꎬ2017.[2]SUNTHꎬZHOUFꎬLIUCJꎬetal.TheDnaJ-likezincfingerdomainproteinORANGElocalizestothenucleusinetiolatedcotyledonsofArabidopsisthaliana[J].Protoplas ̄maꎬ2016ꎬ253(6):1599-1604.[3]王黎ꎬ罗静ꎬ裴瑾ꎬ等.橘核柠檬苦素类化合物积累与功能基因表达的灰色关联度分析[J].中草药ꎬ2017ꎬ48(2):345-350.[4]国家药典委员会.中华人民共和国药典2015年版(一部)[S].北京:中国医药科技出版社ꎬ2015:102-104. [5]杨凡ꎬ杜静ꎬ周舒ꎬ等.超声波辅助提取橘核油工艺及脂肪酸组成研究[J].中国油脂ꎬ2016ꎬ41(8):1-4.[6]橘核质量及柠檬苦素类似物纯化工艺的研究[D].成都:成都中医药大学ꎬ2012.[7]EGGENREICHBꎬRAJAMANICKAMVꎬWURMDJꎬetal.AcombinationofHPLCandautomateddataanalysisformonitoringtheefficiencyofhigh-pressurehomogeniza ̄tion[J].MicrobCellFactꎬ2017ꎬ16(1):134.[8]黄天山ꎬ王晓清ꎬ罗嘉琪ꎬ等.橘核质量标准的优化研究[J].广东药科大学学报ꎬ2015ꎬ31(5):607-611. [9]周滢ꎬ舒承倩ꎬ段恒.橘核盐制工艺的正交设计法优选[J].时珍国医国药ꎬ2016ꎬ27(2):361-362.[10]橘核柠檬苦素类化合物生物合成功能基因的克隆㊁表达及成分积累研究[D].成都:成都中医药大学ꎬ2015.(上接第389页)3 讨论3.1㊀现行版«中国药典»收录的原子吸收法(AAS法)㊁电感耦合等离子光谱法(ICP-OES法)㊁电感耦合等离子质谱法(ICP-MS法)均可用于元素的测定ꎮ在实际应用过程中ꎬ因ICP-MS法具有灵敏度高ꎬ可同时测定多种元素等特点ꎬ实现金属元素的高通量快速检测ꎬ其与HPLC联用更可用于元素价态的分析ꎬ其应用前景最为广泛ꎮ3.2㊀考虑到矿物药其本身的结构特性ꎬ仅少量可被胃液溶解吸收ꎬ大部分随粪便被排出体外ꎬ虽然骨折挫伤胶囊中含有自然铜㊁土鳖虫等矿物㊁动物药ꎬ其重金属含量较植物药更高ꎬ但其可被人体吸收的量可能很少ꎮ本研究采用的方法更接近于人体真实用药情况ꎬ可以更加客观的评价药品的安全性ꎮ«中国药典»2015年版中并未限定中成药中重金属的残留限量ꎬ随着药物安全性要求的不断提高ꎬ重金属元素的残留限量也成为关注的热点ꎬ建议在其限量标准的制定过程中ꎬ充分考虑处方组成㊁制备工艺㊁剂型㊁服用方式等影响因素ꎬ制定更加科学㊁合理的限度标准ꎮ参考文献:[1]㊀国家药典委员会.中华人民共和国药典2015年版(一部)[S].北京:中国医药科技出版社ꎬ2015:1188. [2]贺小龙ꎬ白卫国.带锁髓内钉联合骨折挫伤胶囊治疗胫骨骨折的疗效分析[J].西南国防医药ꎬ2017ꎬ27(7):668-670.[3]池雷霆ꎬ裴福兴ꎬ杨天府ꎬ等.骨折挫伤胶囊促骨折愈合的临床研究[J].华西医学ꎬ2001ꎬ16(1):25-26. [4]蒋燕萍ꎬ甘彦雄ꎬ严鑫ꎬ等.自然铜的研究进展[J].中药与临床ꎬ2016ꎬ7(4):62-64.[5]李梓澜ꎬ陈文清ꎬ陈依妮ꎬ等.自然铜中有害重金属的含量检测分析[J].广东化工ꎬ2015ꎬ42(15):41-42. [6]谭朝阳ꎬ王建华ꎬ郑宇ꎬ等.市售自然铜药材中有害元素铅㊁砷㊁镉㊁汞㊁铜的测定[J].中医药导报ꎬ2012ꎬ18(7):71-73.[7]严宝飞ꎬ富莹雪ꎬ宿树兰ꎬ等.不同产地黄芩茎叶无机元素的ICP-MS分析与评价[J].中草药ꎬ2018ꎬ49(22):5418-5425.[8]钱保勇ꎬ蔡鹏ꎬ袁华峰.ICP-MS法测定薄荷脑中的5种重金属元素[J].华西药学杂志ꎬ2015ꎬ30(4):521-522.[9]毛睿ꎬ陈永君.微波消解ICP-MS法测定寒水石二十一味散重金属含量[J].中国药业ꎬ2020ꎬ29(3):63-66. [10]张玉伟ꎬ田方园ꎬ姚元成ꎬ等.ICP-MS法测定前列欣胶囊中铅㊁镉㊁铜㊁汞㊁砷的残留量[J].中国药物评价ꎬ2019ꎬ36(6):430-434.[11]梁佳ꎬ王章伟ꎬ邓双炳ꎬ等.ICP-MS法测定喜炎平注射液中重金属及有害元素[J].中草药ꎬ2019ꎬ50(24):6002-6008.[12]关智博ꎬ王灿灿ꎬ赵尚锋ꎬ等.ICP-MS法检测四君子汤中10种金属元素[J].沈阳药科大学学报ꎬ2018ꎬ35(1):38-42.。
柠檬苦素检测

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柠檬苦素(Limonin),又称为黄柏内酯、吴茱萸内酯,和其他类似物化合物是柑橘类水果呈现苦味的主要原因,存在于柑橘、葡萄柚、柠檬、橘子中。
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HPLC 法测定不同产地和品种柠檬 果皮中柠檬苦素和诺米林含量
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㊀Guihaia㊀May2020ꎬ40(5):744-750http://www.guihaia-journal.comDOI:10.11931/guihaia.gxzw201901020涂勋良ꎬ张利ꎬ秦帆ꎬ等.HPLC法测定不同产地和品种柠檬果皮中柠檬苦素和诺米林含量[J].广西植物ꎬ2020ꎬ40(5):744-750.TUXLꎬZHANGLꎬQINFꎬetal.DeterminationoflimominandnomilinofdifferentvarietiesoflemonpeelfromdifferentareasbyHPLC[J].Guihaiaꎬ2020ꎬ40(5):744-750.HPLC法测定不同产地和品种柠檬果皮中柠檬苦素和诺米林含量涂勋良1ꎬ张㊀利3ꎬ秦㊀帆1ꎬ万㊀斌1ꎬ吕秀兰2∗(1.四川省农业科学院园艺研究所ꎬ成都610066ꎻ2.四川农业大学园艺学院ꎬ成都611130ꎻ3.四川农业大学理学院ꎬ四川雅安625014)摘㊀要:该研究建立了同时测定檬苦素和诺米林含量的高效液相色谱法ꎬ并采用该方法对8种不同柠檬样品中柠檬苦素和诺米林含量进行了测定ꎮ色谱条件如下:安捷伦EclipseXDB ̄C18(250mmˑ4.6mmꎬ5μm)色谱柱ꎬ流动相为0.1%磷酸水溶液(A)-乙腈(B)ꎬ梯度洗脱ꎬ流速为1.0mL min ̄1ꎬ柱温为30ħꎬ波长为210nmꎮ结果表明:3个产地尤力克果皮中柠檬苦素含量依次为云南瑞丽(EUR_D)㊁四川安岳(EUR_C)和广东河源(EUR_Y)ꎬ诺米林含量依次为EUR_D㊁EUR_C和EUR_Yꎻ不同品种柠檬果皮中柠檬苦素含量依次为北京柠檬(M_NM)㊁粗柠檬(R_NM)㊁无核柠檬(S_NM)㊁热那亚(RNY)㊁里斯本(LSB)ꎬ诺米林含量依次为S_NM㊁R_NM㊁LSB㊁RNY和M_NMꎮ综上结果表明ꎬ不同产地和品种柠檬果皮中柠檬苦素和诺米林含量均存在不同程度差异ꎬ该HPLC法可为不同产地和不同品种柠檬果实质量鉴别㊁资源评价及深度开发提供理论依据ꎮ关键词:柠檬ꎬ柠檬苦素ꎬ诺米林ꎬ高效液相色谱法(HPLC)中图分类号:Q946㊀㊀文献标识码:A文章编号:1000 ̄3142(2020)05 ̄0744 ̄07开放科学(资源服务)标识码(OSID):DeterminationoflimominandnomilinofdifferentvarietiesoflemonpeelfromdifferentareasbyHPLCTUXunliang1ꎬZHANGLi3ꎬQINFan1ꎬWANBin1ꎬLÜXiulan2∗(1.HorticultureResearchInstituteꎬSichuanAcademyofAgriculturalSciencesꎬChengdu610066ꎬChinaꎻ2.CollegeofHorticultureꎬSichuanAgriculturalUniversityꎬChengdu611130ꎬChinaꎻ3.CollegeofSciencesꎬSichuanAgriculturalUniversityꎬYa an625014ꎬSichuanꎬChina)Abstract:Thisstudyestablishedanhigh ̄performanceliquidchromatography(HPLC)methodforsimultaneousdetermi ̄nationoflimoninandnomilininCitruslimonꎬandthecontentsoflimoninandnomilinineightdifferentlemonsamples收稿日期:2019-03-04基金项目:国家现代农业产业技术体系四川创新团队专项项目ꎻ四川省科技支撑计划项目(2013FZ0036)[SupportedbyGrantsfromSpecialFundoftheNationalModernAgriculturalIndustryTechnologySystemofSichuanInnovationTeamꎻKeyTechnologyResearchandDevelopmentProgramoftheScience&TechnologyDepartmentofSichuanProvince(2013FZ0036)]ꎮ作者简介:涂勋良(1987-)ꎬ男ꎬ重庆綦江人ꎬ博士ꎬ助理研究员ꎬ研究方向为观赏植物繁育与栽培ꎬ(E ̄mail)txl0103@163.comꎮ∗通信作者:吕秀兰ꎬ博士ꎬ教授ꎬ研究方向为果树学ꎬ(E ̄mail)xllvjj@163.comꎮwasdeterminedbythismethod.ThechromatographicconditionwasperformedonanAgilentEclipseXDB ̄C18(250mmˑ4.6mmꎬ5μm)column.Themobilephaseconsistedof0.1%aqueousphosphoricacid(A)andacetonitrile(B)wasinvokedasgradientelutionwiththeflowrateat1.0mL min ̄1.Thecolumntemperaturewassetat30ħandthedetectionwavelengthwassetat210nm.Theresultswereasfollows:ThecontentoflimonininthelemonpeelofthreeproducingareaswasRuiliꎬYunnan(EUR_D)ꎬAnyueꎬSichuan(EUR_C)andHeyuanꎬGuangdong(EUR_Y)respectivelyꎬwhilethecontentofnomilinwasEUR_DꎬEUR_CandEUR_YꎻThecontentoflimoninindifferentvarie ̄tiesoflemonpeelwasMeyerlemon(M_NM)ꎬRoughlemon(R_NM)ꎬSeedlesslemon(S_NM)ꎬGenoa(RNY)andLisbon(LSB)ꎬwhilethecontentofnomilinwereS_NMꎬR_NMꎬLSBꎬRNYandM_NM.Theresultsdisplayedthatthecontentoflimoninandnomilininlemonpeelfromdifferentareasandvarietieswasdifferent.TheHPLCmethodcanpro ̄videatheoreticalbasisforthequalityidentificationꎬresourceevaluationandin ̄depthdevelopmentoflemonfruitsfromdifferentareasandvarieties.Keywords:Citruslimonꎬlimominꎬnomilinꎬhigh ̄performanceliquidchromatography(HPLC)㊀㊀柠檬苦素类似物(limonoids)是存在于芸香科(Rutaceae)和楝科(Meliaceae)植物中的一类具有呋喃环并且高度氧化的三萜类次生代谢产物(Maieretal.ꎬ1977)ꎮ在柑橘属中主要有苷元和糖苷两大类(潘利华等ꎬ2007)ꎬ它们是引起柑橘属果汁泛苦的主要原因之一ꎮ迄今已从柑橘属中分离出38种类似物和21种配糖体(Mannersꎬ2007)ꎬ常见的有柠檬苦素(limomin)㊁诺米林(no ̄milin)㊁奥巴叩酮(obacunone)㊁诺米林酸(nomilinicacid)和脱乙酰诺米林(deacetylnomilin)等ꎮ诺米林在植物茎韧皮部合成并转移至其他组织(Moriguchietal.ꎬ2003)ꎬ在酶的作用下ꎬ通过不同生物合成途径合成柠檬苦素㊁醋酸柠檬苦酯㊁宜昌根辛和卡拉敏等类似物(蔡护华和桥永文男ꎬ1996)ꎮ柠檬苦素类似物具有抗癌(Tanakaetal.ꎬ2000ꎻMilleretal.ꎬ2004)㊁抗氧化(Sunetal.ꎬ2005ꎻZouetal.ꎬ2016)㊁抑菌(罗水忠等ꎬ2006ꎻ李彪等ꎬ2012b)㊁抗炎镇痛(温靖等ꎬ2007)㊁除虫杀虫(李彪等ꎬ2012a)㊁抑制HIV病毒复制(Battinellietal.ꎬ2003ꎻYuetal.ꎬ2015)㊁降低胆固醇等多种生物活性ꎮ目前ꎬ柠檬苦素类似物主要测定方法有分光光度法(田庆国和丁霄霖ꎬ1999)㊁放射免疫测定法(Mcintoshꎬ2000)㊁薄层色谱法(Ohtaetal.ꎬ1993)㊁毛细管胶束电色谱方法(Raynoretal.ꎬ2015)㊁快速色谱法(flashchromatography)(Ramanetal.ꎬ2005)㊁高效液相色谱法(Bilaletal.ꎬ2013ꎻBreksaetal.ꎬ2015ꎻMannersetal.ꎬ2015)㊁LC/MS(Mannersetal.ꎬ2004ꎻWooetal.ꎬ2006)㊁LC ̄ToF/MS(Yuetal.ꎬ1993)ꎮBilaletal.(2013)采用HPLC法测得血橙中柠檬苦素为479.77μg mL ̄1ꎬ粗柠檬中诺米林为54.23μg mL ̄1ꎬ甜橙 succari 中诺米林仅为0.37μg mL ̄1ꎮ孟鹏和郑宝东(2012)采用UPLC法测得柠檬苦素含量依次为琯溪蜜柚>脐橙>尤溪金柑>柑橘ꎬ诺米林含量依次为脐橙>琯溪蜜柚>柑橘>尤溪金柑ꎮ彭腾等(2012)采用RP ̄HPLC法测得柠檬苦素含量依次为沙糖桔(金堂)>蜜橘(广元)>蜜橘(龙泉)>椪柑(新津)>椪柑(金堂)>广柑(青白江)>蜜橘(蒲江)ꎮ为了提高柠檬副产物的高效利用率ꎬ促进柠檬产业蓬勃发展ꎬ本研究选取了3个不同产地和5个不同品种柠檬为供试材料ꎬ采用HPLC法对柠檬苦素和诺米林含量进行定性和定量分析ꎬ发现不同柠檬果品间的含量差异ꎬ为柠檬品种鉴定㊁资源开发利用提供理论依据ꎬ从而提高柠檬果品的综合利用价值ꎮ1㊀材料与方法1.1材料、仪器和试剂样品为相同成熟度的成熟柠檬果实ꎬ柠檬样品信息详见表1ꎮ将果肉与果皮分离ꎬ果皮样品经冷冻干燥ң粉碎后备用ꎮBT124S电子天平(北京赛多利斯仪器系统有限公司)ꎻFW ̄80高速万能粉碎机(天津泰斯特仪器有限公司)ꎻLC ̄20AB型高效液相色谱仪(日本5475期涂勋良等:HPLC法测定不同产地和品种柠檬果皮中柠檬苦素和诺米林含量表1㊀柠檬样品信息表Table1㊀Informationoflemonsamples产地Producingarea品种Variety编码Code采收期Harvesttime四川安岳AnyueꎬSichuan尤力克EurekaEUR_C2015-10-22云南瑞丽RuiliꎬYunnan尤力克EurekaEUR_D2015-08-31广东河源HeyuanꎬGuangdong尤力克EurekaEUR_Y2015-09-18广东连南LiannanꎬGuangdong无核柠檬SeedlesslemonS_NM2015-09-21四川安岳AnyueꎬSichuan热那亚GenoaRNY2015-10-22重庆北碚BeibeiꎬChongqing里斯本LisbonLSB2015-10-30重庆北碚BeibeiꎬChongqing北京柠檬MeyerlemonM_NM2015-10-30重庆北碚BeibeiꎬChongqing粗柠檬RoughlemonR_NM2015-10-30图1㊀柠檬苦素和诺米林的化学结构式Fig.1㊀ChemicalstructuresoflimoninandnomilinShimadzu公司)ꎻLGJ ̄12冷冻干燥机(北京松源华兴科技发展有限公司)ꎻSB ̄600DTD超声波清洗机(宁波新芝生物科技股份有限公司)ꎻUPH ̄Ⅱ ̄20T超纯水机(四川沃特尔水处理设备有限公司)ꎻ索氏提取器ꎮ对照品柠檬苦素(批号MUST ̄13021606)㊁诺米林(批号MUST ̄12072101)购自成都曼思特生物科技有限公司ꎬ化学结构式如图1所示ꎬ各标准品纯度均满足定量检测需求ꎻ乙腈(色谱纯ꎬ美国Fisher公司)ꎻ磷酸㊁丙酮和石油醚(60~90ħ)(均为分析纯)购自成都科龙化工试剂厂ꎻ自制超纯水ꎮ1.2方法1.2.1色谱条件㊀色谱柱:AgilentEclipseXDB ̄C18(250mmˑ4.6mmꎬ5μm)ꎻ流动相:0.1%磷酸水溶液(A)-乙腈(B)ꎻ梯度洗脱:10%~50%B(0~10min)ꎬ50%~60%B(10~20min)ꎬ60%~90%B(20~25min)ꎬ90%~10%B(25~35minꎬ10%B(35~40min)ꎻ流速:1.0mL min ̄1ꎻ检测波长:210nmꎻ柱温:30ħꎻ进样体积:10μLꎮ1.2.2对照品溶液制备㊀精确称量对照品柠檬苦素2.83mg㊁诺米林2.54mgꎬ分别用80%丙酮溶解到10mL容量瓶中ꎬ超声使其充分溶解ꎬ定容ꎬ配成283mg L ̄1柠檬苦素和254mg L ̄1对照品储备液ꎮ吸取适量对照品储备液采用梯度稀释法配制了系列质量浓度的混合标准溶液ꎮ1.2.3供试品溶液制备㊀用定量滤纸包好冷冻干燥后的果皮样品ꎬ用石油醚(60~90ħ)在索氏提取器内彻底脱脂24hꎬ将脱脂样品置于干燥器中ꎬ待石油醚(60~90ħ)完全挥发ꎬ样品干燥后取出备用ꎮ称取0.5g上述粉末ꎬ置具塞锥形瓶中ꎬ加入80%丙酮溶液10mLꎬ称重ꎬ超声(80Wꎬ40kHzꎬ50ħ)1.5hꎬ冷却后用80%丙酮补重ꎮ0.22μm微孔滤膜过滤ꎬ收集滤液备用ꎮ2㊀结果与分析2.1HPLC色谱结果混合对照品与EUR_C供试品溶液的HPLC色谱图详见图2ꎮ在1.2.1条件下ꎬ柠檬苦素和诺米林分离度均大于1.8ꎬ分离效果极佳ꎬ目标峰对称性好ꎮ2.2标准曲线的建立在1.2.1条件下ꎬ平行测定各质量浓度按1.2.2制备的混合对照品溶液3次ꎬ取其峰面积平均值ꎬ以对照品质量浓度为X坐标ꎬ平均峰面积为Y坐标ꎬ绘制标准曲线ꎮ结果显示柠檬苦素和诺米林在一定质量浓度范围内与相应峰面积之间线性关系良好(表2)ꎮ2.3方法学考察2.3.1精密度试验㊀在1.2.1条件下ꎬ重复测定6次按1.2.2制备的混合对照品储备液ꎬ结果显示柠檬苦素和诺米林平均峰面积的RSD分别为0.88%㊁647广㊀西㊀植㊀物40卷1.柠檬苦素ꎻ2.诺米林ꎮ1.Limoninꎻ2.Nomilin.图2㊀对照品混标(A)与EUR_C(B)的HPLC色谱图Fig.2㊀HPLCchromatogramsofreferencesubstances(A)andlimonoidsextractedfromEUR_C(B)表2㊀柠檬苦素和诺米林的线性回归关系、检出限和定量限Table2㊀LinearregressionrelationshipꎬLODandLOQoflimoninandnomilin柠檬苦素类似物Limonoids回归方程Regressionequation相关系数Correlationcoefficient(R2)线性范围Linearrange(μg mL ̄1)检出限LOD(μg mL ̄1)定量限LOQ(μg mL ̄1)柠檬苦素LimoninY=42630.98X-4839.5051.00000.03~5.660.070.24诺米林NomilinY=57153.92X-4903.0051.00000.03~5.080.090.290.95%ꎬ说明仪器精密度良好ꎮ2.3.2稳定性试验㊀在1.2.1条件下ꎬ取按1.2.2制备的EUR_C供试溶液ꎬ分别于0㊁2㊁4㊁6㊁8㊁12和24h后进行HPLC分析ꎬ结果显示柠檬苦素和诺米林平均峰面积的RSD分别为0.76%㊁1.02%ꎬ说明供试品溶液在24h内稳定ꎮ2.3.3重现性试验㊀在1.2.1条件下ꎬ重复测定6次按1.2.2制备的EUR_C供试溶液ꎬ结果显示柠檬苦素和诺米林平均峰面积的RSD分别为0.63%㊁0.78%ꎬ说明该方法重现性较好ꎮ2.3.4加标回收率试验㊀在1.2.1条件下ꎬ在EUR_C供试溶液中加入定量的对照品储备液ꎬ重复测定6次ꎬ由表3可以看出ꎬ柠檬苦素和诺米林的加标回收率分别为100.36%㊁99.79%ꎻRSD分别为1.07%㊁1.12%ꎬ说明该方法准确度较高ꎮ2.4不同产地柠檬果皮中柠檬苦素和诺米林含量测定结果在1.2.1条件下ꎬ参照1.2.2制备供试品溶液ꎬ对不同产地尤力克柠檬果皮中柠檬苦素和诺米林进行定量和差异性分析ꎬ结果见表4ꎮ由表4可知ꎬ不同产地尤力克果皮中柠檬苦素和诺米林含量存在不同程度的差异ꎮ云南瑞丽和四川安岳两地的尤力克柠檬果皮中柠檬苦素的含量没有差异ꎬ含量分别为0.421和0.418mg g ̄1ꎬ广东河源的尤力克柠檬果皮中柠檬苦素的含量为0.337mg g ̄1ꎬ与云南瑞丽和四川安岳两地的含量呈显著差异ꎻ不同产地对尤力克柠檬果皮中诺米林含量的影响较大ꎬ其中云南瑞丽的含量最高ꎬ为0.269mg g ̄1ꎬ其余两地依次是四川安岳(0.219mg g ̄1)和广东河源(0.070mg g ̄1)ꎬ云南瑞丽与四川安岳两地的含量呈显著差异ꎬ且均与广东河源产地的含量呈极显著差异ꎮ2.5不同品种柠檬果皮中柠檬苦素和诺米林含量测定结果在1.2.1条件下ꎬ参照1.2.2制备样品溶液ꎬ对不同品种柠檬果皮中柠檬苦素和诺米林进行定量7475期涂勋良等:HPLC法测定不同产地和品种柠檬果皮中柠檬苦素和诺米林含量表3㊀柠檬苦素和诺米林加标回收率试验结果Table3㊀Recoveryratestestsforlimoninandnomilin柠檬苦素类似物Limonoids样品含量Contentofsample(mg g ̄1)添加量Addedcontent(mg g ̄1)测得量Foundedcontent(mg g ̄1)回收率Recoveryrate(%)RSD(%)柠檬苦素Limonin0.2780.2830.563100.361.07诺米林Nomilin0.2190.2540.47299.791.12表4㊀不同产地尤力克柠檬果皮中柠檬苦素和诺米林含量Table4㊀Contentsoflimoninandnomilinoflemonpeelfromdifferentareas产地Area编码Code含量Content(mg g ̄1)柠檬苦素Limonin诺米林Nomilin四川安岳AnyueꎬSichuanEUR_C0.418ʃ0.04Aa0.219ʃ0.02Ab云南瑞丽RuiliꎬYunnanEUR_D0.421ʃ0.04Aa0.269ʃ0.03Aa广东河源HeyuanꎬGuangdongEUR_Y0.337ʃ0.03Ab0.070ʃ0.01Bc㊀注:同一列数值后大写字母表示差异极显著(P<0.01)ꎻ同一列数值后小写字母表示差异显著(P<0.05)ꎮ下同ꎮ㊀Note:Capitallettersinthesamecolumnmeanextremelysignificantdifferences(P<0.01)ꎻLowercaselettersinthesamecolumnmeansig ̄nificantdifferences(P<0.05).Thesamebelow.和差异性分析ꎬ结果见表5ꎮ由表5可知ꎬ不同品种柠檬果皮中柠檬苦素和诺米林含量差异显著ꎮ北京柠檬中柠檬苦素的含量与其他4个品种存在极显著差异ꎬ达到0.589mg g ̄1ꎬ其余依次为粗柠檬(0.464mg g ̄1)㊁无核柠檬(0.393mg g ̄1)㊁热那亚(0.334mg g ̄1)㊁里斯本(0.326mg g ̄1)ꎬ且粗柠檬与无核柠檬㊁热那亚㊁里斯本也存在极显著差异ꎬ而后三者之间无差异ꎮ里斯本㊁热那亚和北京柠檬的诺米林含量存在显著差异ꎬ含量分别为0.203㊁0.130㊁0.050mg g ̄1ꎬ而无核柠檬和粗柠檬与前三者含量之间的差异极显著ꎬ且两者之间差异极显著ꎬ含量分别为0.688㊁0.386mg g ̄1ꎮ3㊀讨论与结论高效液相色谱法(HPLC)是测定柠檬苦素类似物最常用的方法之一ꎮMannersetal.(2015)建立了同时测定不同柑橘种子中17种柠檬苦素类似物含量的高效液相色谱法ꎻ刘亮等(2007)建立了同时测定柑橘中柠檬苦素和诺米林含量的高效液相色谱法ꎮ本研究建立了同时测定不同柠檬果品中柠檬苦素和诺米林含量的高效液相色谱法ꎬ采用常规的乙腈-磷酸缓冲体系可在20min内完成柠檬苦素和诺米林的同时测定ꎮ该方法操作简单ꎬ具有较好的精密度㊁重现性㊁稳定性及高回收率等特点ꎬ可作为测定柠檬果品中柠檬苦素和诺米林含量的常规分析方法ꎬ为柠檬果实质量评价提供理论依据和手段ꎮ柠檬苦素类似物研究主要集中在不同类型柑橘比较ꎬ少有不同产地与不同品种间的比较ꎮ本研究对供试样品中柠檬苦素和诺米林的检测结果表明成熟柠檬果品中柠檬苦素含量明显高于诺米林含量ꎬ无核柠檬(柠檬苦素:0.393mg g ̄1ꎬ诺米林:0.688mg g ̄1)除外ꎮ这是因为诺米林是柠檬苦素类似物生物合成途径的原始前体ꎬ柠檬苦素生物合成途径是柑橘类水果中柠檬苦素类似物的主要代谢途径(蔡护华和桥永文男ꎬ1996)ꎬ诺米林含量的降低意味着柠檬苦素含量的升高ꎬ形成 此消彼长 的趋势ꎬ该研究结果与此相同ꎮ847广㊀西㊀植㊀物40卷表5 不同品种柠檬果皮中柠檬苦素和诺米林含量Table5㊀Contentsoflimoninandnomilinoflemonpeelsindifferentvarieties品种Variety编码Code含量Content(mg g ̄1)柠檬苦素Limonin诺米林Nomilin里斯本LisbonLSB0.326ʃ0.03Cc0.203ʃ0.02Cc北京柠檬MeyerlemonM_NM0.589ʃ0.06Aa0.050ʃ0.01De粗柠檬RoughlemonR_NM0.464ʃ0.04Bb0.386ʃ0.04Bb无核柠檬SeedlesslemonS_NM0.393ʃ0.04BCbc0.688ʃ0.07Aa热那亚GenoaRNY0.334ʃ0.03Cc0.130ʃ0.01CDd㊀㊀从本研究结果可以看出ꎬ3个产地的尤力克果品中柠檬苦素和诺米林含量存在显著差异ꎬ这与3个产地的气候条件㊁水分和土壤等条件息息相关ꎮ柠檬树体生长和果实发育的适宜年均气温为17~19ħꎬ四川安岳的年均气温为18.5ħꎬ年均降水量为924.9mmꎬ正是柠檬生长的最佳适宜条件ꎬ安岳年产柠檬鲜果70万tꎬ占全国总产量的80%ꎬ排全世界第8位ꎬ综合上述因素ꎬ安岳被称为 中国柠檬之乡 ꎮ从5个不同品种柠檬的比较实验结果可得出柠檬苦素含量依次为北京柠檬>粗柠檬>无核柠檬>热那亚>里斯本ꎬ诺米林含量依次为无核柠檬>粗柠檬>里斯本>热那亚>北京柠檬ꎮ8个柠檬果品中柠檬苦素和诺米林的含量差异显著ꎬ其累积规律与不同产地的生态气候条件㊁不同品种㊁不同部位㊁不同生长发育阶段㊁不同采收期及采后储运等诸多因素密不可分ꎮ随着柠檬多元化的功能性产品开发ꎬ有待进一步对柠檬种植资源进行综合的品质评价ꎬ建立完善的质量评价体系ꎮ依据不同品种活性成分含量的差异ꎬ培育并栽培推广专用型的柠檬品种ꎬ具有广泛的市场前景ꎮ参考文献:BATTINELLILꎬMENGONIFꎬLICHTNERMꎬetal.ꎬ2003.EffectoflimoninandnomilinonHIV ̄1replicationoninfectedhumanmononuclearcells[J].PlantMedꎬ69(10):910-913.BILALHꎬAKRAMWꎬHASSANSAꎬetal.ꎬ2013.Determina ̄tionoflimoninandnomilincontentsindifferentCitrusculti 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柠檬苦素的色谱研究进展

柠檬苦素的色谱检测方法研究进展摘要:赣南脐橙主要以鲜食为主,脐橙加工业落后,其主要原因为脐橙等柑橘类汁具严重的后苦作用,影响产品风味。
其中柠檬苦素为加工中主要苦味来源。
本文就柠檬苦素的色谱检测方法作简要的概述,旨在为脐橙的深加工中控制产品的质量提供一些参考。
关键词:脐橙;柠檬苦素;检测;色谱前言赣南是我国著名的脐橙生产基地,素有“中国脐橙之乡”之称。
赣南脐橙年产量已经突破150万吨,但目前国内对脐橙的开发利用率较低,95%以上产品仍依赖鲜销;且赣州以纽荷尔脐橙为主栽品种,占种植品种的90%以上,上市集中,常常出现“丰产不丰收”,脐橙滞销,果农“卖果难”等问题。
解决赣南脐橙滞销问题,最可行的办法就是大力发展脐橙深加工,而脐橙原料在深加工过程中变苦,是困扰脐橙果酒生产的难题。
脐橙鲜食或其鲜榨果汁并无苦味,但压榨的橙汁在室温中存放几个小时或在冰箱中冷藏过夜,会变苦。
这种脐橙果汁中的延迟苦味源于无苦味的前体物生成了柠檬苦素。
据报道,脐橙等柑橘类汁出现延迟苦味的原因主要是在酸性、加热、冰冻或机械损伤等逆境环境条件下,果实中所存在的非苦味的柠檬苦素A环内酯转变成了具有强烈苦味的柠檬苦素[1]。
脐橙苦味主要来自柠檬苦素类(limonin)的变化。
柠檬苦素含量的高低直接影响脐橙及其产品的品质,测定柠檬苦素的含量可用于控制脐橙及其相关产品的质量。
随着仪器分析技术的广泛应用和检测技术的发展,研究者建立了多种检测柠檬苦素类似物的方法,主要有分光光度法、薄层色谱法(TLC)、高效液相色谱法(HPLC)等。
1.薄层层析法薄层色谱法的优点是简便快捷,缺点是由于是目测,结果误差较大,所以分析重现性一直束缚着其的发展。
Dreyer 在最初的柠檬苦素检测方面做出了重要贡献,1965 年,Dreyer 首次使用薄层层析法( TLC) 对柠檬苦素类似物甙元进行了定量分析,用核磁共振技术(NMR)对柠檬苦素结构的解析[2]。
随后Hasegawa 和Bennett 利用这两种方法分离、鉴定30 种柠檬苦素苷配基和20 种柠檬苦素配糖体[3]。
不同甜橙品种果汁中柠檬苦素含量的变化

不同甜橙品种果汁中柠檬苦素含量的变化李一兵;龚桂芝;彭祝春;王艳杰;王炯;洪棋斌【摘要】为了减少柠檬苦素对橙汁品质的影响,为橙汁加工的原料品种和加工时间选择提供参考,对20个甜橙品种的鲜榨果汁与巴氏灭菌果汁,在7个不同成熟期,采用高效液相色谱法检测了柠檬苦素和诺米林含量.结果表明:各成熟阶段的所有测试甜橙品种的鲜榨果汁与巴氏灭菌果汁均能检测到柠檬苦素,巴氏灭菌果汁中柠檬苦素含量更高,平均是鲜汁的约2倍;随着果实的成熟,柠檬苦素含量总体逐步降低,到11月中旬时,试验甜橙品种的鲜榨果汁与巴氏灭菌果汁的柠檬苦素含量已低于人的苦味阈值,适于橙汁加工;不同甜橙品种甚至不同脐橙品种之间,柠檬苦素的含量存在明显差异;诺米林含量与柠檬苦素含量呈现类似变化,但含量更低,不是导致橙汁苦味的主要因素.此外,短期的冷冻贮藏对柠檬苦素的含量影响不大.%To avoid the negative effect of limonin on orange juice and to set a reference for the selection of sweet orange varieties and their mature stage for juice processing,the contents of limonin and nomilin in fresh juice and pasteurized juice of 20 cultivars of Citrus sinensis Osbeck at seven different mature stages were analyzed using high performance liquid chromatography.The results were as follows:Limonin can be detected in fresh juice and pasteurized juice from all sweet orange cultivars at all tested mature stage.The content of limonin in pasteurized juice is higher and about 2 times of that in the fresh juice.Along the ripening of the fruit,the content of the limonin gradually decreased.Until mid-November,the limonin content of fresh juice and pasteurized juice in most sweet orange cultivars has fallen below the bitterness threshold forcommon people.Therefore,mid-November is a better time for orange juice processing of most cuhivars.The content of limonin existed significant differences among tested varieties of sweet orange and even among the navel orange.The change of nomilin contents was very similar to limonin,but its content is much lower than limonin and is not the main factor of juice bitterness.In addition,a short term frozen storage had little effect on limonin content change in orange juice.【期刊名称】《食品与发酵工业》【年(卷),期】2017(043)002【总页数】5页(P201-205)【关键词】甜橙汁;柠檬苦素;诺米林;后苦味【作者】李一兵;龚桂芝;彭祝春;王艳杰;王炯;洪棋斌【作者单位】西南大学柑桔研究所/中国农业科学院柑桔研究所,国家柑桔工程技术研究中心,重庆,400712;西南大学柑桔研究所/中国农业科学院柑桔研究所,国家柑桔工程技术研究中心,重庆,400712;西南大学柑桔研究所/中国农业科学院柑桔研究所,国家柑桔工程技术研究中心,重庆,400712;西南大学柑桔研究所/中国农业科学院柑桔研究所,国家柑桔工程技术研究中心,重庆,400712;西南大学柑桔研究所/中国农业科学院柑桔研究所,国家柑桔工程技术研究中心,重庆,400712;西南大学柑桔研究所/中国农业科学院柑桔研究所,国家柑桔工程技术研究中心,重庆,400712【正文语种】中文橙汁是世界上最大的果汁加工品,富含VC、类胡萝卜素、叶酸、黄酮类化合物和类柠檬苦素、优质水溶性纤维等营养功能成分[1]。
诺米林研究进展

Байду номын сангаас
工艺 , 能从 3 0加仑的橘籽压榨油 中分离 出 8 诺米林 , 0 g 此外还可以得到 2 的柠檬苦素. 0 g 贵州医学院罗 喜荣等人研究 了『 临界 C 9 1 超 O 萃取橘核 中诺米林 的工艺条件 , 并进一步考察萃取压力 、 萃取温度 、 夹带剂用 量对诺米林萃取量的影响. 结果表明 : 诺米林的优化萃取条件为萃取压力 2 P . 5 a萃取温度 5 ℃, M 1 夹带剂用 量 1 /, 此条 件下诺 米 林 收率达 到 06%. 临界法 诺 米林 提取 量 略低 于二 氯 甲烷 回流法 , 明显优 .mLg在 5 . 3 超 但
图 1 诺米林的分子结构式
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石家庄学院学报
21 0 2年 5月
到类柠檬苦素粗的提取液 , 提取液用重结晶的方法分离, 得到诺米林 , 收率仅为 0 0 . 0 %. 0 3 2柑橘. ) 柑橘产于秦岭南坡以南, 伏牛山南坡诸水系及大别山区南部 , 向东南至台湾 , 南至海南岛 , 西南 至西藏东南部海拔较低地区 , 广泛栽培. 国 E e ot 美 m r n] s s 开展了从橘籽压榨油( 产地 : 美国佛罗里达州 , 雷克 兰 ) 离诺米 林 的研究 .橘 籽压 榨油 首先 与石 油醚 混合 , 过过 滤 (u e e)一些 苦 的物 质被 分离 出来 , 分 经 sprc1, 继
( 家庄 学院 化S 学院 , 石 - 河北 石 家庄 0 03 ) 505
摘
要: 诺米林是一类重要 的天然有机化合物.主要研 究报道 了诺米林 2种制备方法 : 植物萃
柠檬苦素质量标准
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柠檬苦素质量标准
柠檬苦素的质量标准因用途和纯度要求而异。
以下是关于柠檬苦素质量标准的一些信息:
柠檬苦素的质量标准通常包括以下几个方面:
1. 纯度:柠檬苦素的纯度是衡量其质量的重要标准之一。
根据不同的用途,纯度要求会有所不同。
一般来说,食品级柠檬苦素的纯度应达到98%以上。
2. 外观:柠檬苦素的外观应为淡黄色或类白色粉末,无杂质和异味。
3. 含量:柠檬苦素的含量应符合相关标准,以保证其有效性。
一般来说,食品级柠檬苦素的含量应达到97%以上。
4. 安全性:柠檬苦素应符合国家食品安全标准,无毒、无害、无残留,对人体无害。
5. 稳定性:柠檬苦素应具有一定的稳定性,能够在常温下保存不易变质,不易氧化和变色。
总之,柠檬苦素的质量标准需要根据具体用途和客户需求来确定。
在生产过程中,需要采取一系列质量保证措施,确保产品的质量稳定性和可靠性。
同时,也需要注意产品的安全性,确保产品的使用不会对人体造成危害。
冷榨柠檬籽油复合脱苦工艺优化及其理化特性和脂肪酸组成分析
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1. 1 材料与试剂 柠檬籽粒,由重庆汇达柠檬科技集团有限公司加
工厂提供,以柠檬 果 实 深 加 工 后 的 破 碎 籽 粒 居 多, 粒 径(4. 83 ± 0. 68) mm,含水量(58. 59 ± 3. 73) % ;柠檬 苦素标准品( ≥95 % ) 、诺米林标准品( ≥95 % ) ,美 国 Sigma 公司;37 种脂 肪 酸 混 合 标 准 品,上 海 康 朗 生 物科技有限公司;α-L-鼠李糖苷苷酶 ( 食品级) ,上海 伊卡生物技术有限公司;β-D-葡萄糖苷酶( 食品级) , 北京华越洋生物科技有限公司;木瓜蛋白酶、纤维素 酶、果胶酶和淀粉酶( 均为食品级),山东隆科特酶制 剂有限公司;活性白土,济南清海化工有限公司;活性 炭、硅酸镁和硅胶粉,河南嵩山科技有限公司。 1. 2 仪器与设备
166 2021 Vol. 47 No. 12 ( Total 432)
量较高的油脂色泽黯淡,酶解法和吸附法从原理上分 析更适合于柠 檬 籽 油 的 脱 苦 操 作[11 - 12] 。 因 此,本 研 究即以冷榨柠 檬 籽 油 为 原 料,分 析 酶 法-吸 附 联 合 脱 苦工艺对柠檬籽油品质改良的效果并对相关工艺进 行优化,最后将成品柠檬籽油与市售常见食用油进行 综合品质参数的比较,以期为开发柠檬籽油产品奠定 基础。
2021,47(12) :166 - 175. JIANG Yongbo,WANG Kaituo,DAI Lingjun, et al. Optimization of combined debitteration processes for cold-pressed lemon seed oil and the analysis of its physicochemical properties and fatty acid composition[ J] . Food and Fermentation Industries,2021,47(12) :166 - 175.
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编号:FZD0163 枳实提取物中柠檬苦素和诺米林的含量测定方法
一、色谱条件
色谱柱:Hypersil ODS C18 4.6×150mm 5μm
流速:1.0mL/min
检测波长:210nm
灵敏度:0.01AUFS
柱温:25℃
进样量:10μ
流动相:A:甲醇-水(40:60,V/V)
B:甲醇-水(60:40,V/V)
梯度条件: T(min) A% B%
0 100 0
16 0 100
40 0 100
40.01 100 0
二、溶液制备
1.对照品溶液制备精密称取柠檬苦素和诺米林约10mg于50mL容量瓶中,加入甲醇溶解定容。
2.品溶液制备精密称取提取物样品适量于50mL容量瓶中(控制柠檬苦素的浓度大于20ug/ml,诺米林的浓度大于10ug/ml),加甲醇约30ml,超声振荡20min,冷却至室温,定容,用0.45μm滤膜过滤后,即得样品溶液。
三、样品测定
在上述色谱条件下,等仪器稳定,基线平稳后,进样测定,柠檬苦素和诺米林的保留时间分别为18、22min左右,与杂质分离良好,用外标法计算各组份含量。