最新 心脏灌流
心脏的血液灌流原理
心脏的血液灌流原理心脏作为人体最重要的器官之一，起着泵血和供应氧气给全身组织的重要作用。
血液灌流是心脏发挥生理功能的基础，也是维持人体正常生命活动的关键过程。
下面将为您详细解析心脏的血液灌流原理。
心脏的血液灌流原理可以归纳为两个方面，即循环泵与血液流动。
一、循环泵原理心脏是一个由肌肉组织构成的中空器官，其主要组成部分为心房和心室。
心脏有四个腔室，左心房和左心室构成左心室，右心房和右心室构成右心室。
心脏分为两个循环，分别是肺循环和体循环。
1. 传导系统心脏内部有一套称为传导系统的系统，包括窦房结、房室结、希氏束和浦肯野纤维，起着将电信号从心脏中心传递到心肌细胞并引发肌肉收缩的作用。
通过这一传导系统，心脏能够进行有规律的收缩和舒张，从而推动血液流动。
2. 心肌收缩心脏中的心肌细胞在接收到传导系统的电信号后，通过收缩和舒张来推动血液流动。
心肌细胞充满在心脏的壁内，并且通过细密的连接组成心肌束。
当心肌收缩时，心肌束向心腔内收缩，从而将血液推入到血管中。
其中，心室的收缩力较大，主要推动血液流动。
3. 瓣膜作用心脏内的各个腔室之间有瓣膜组织分隔开，包括二尖瓣、三尖瓣、主动脉瓣和肺动脉瓣。
这些瓣膜在心脏收缩和舒张时起到阻止血液逆流的作用，保证血液只能朝一个方向流动，避免血液反流和混合，从而确保有效的血液灌流。
4. 心脏收缩与舒张的协调心脏的收缩和舒张是有规律和协调的。
当心脏收缩时，心房和心室几乎同时收缩，使血液推入动脉，这称为收缩期。
而当心脏舒张时，心房和心室几乎同时舒张，使心房和心室之间形成一个低压区域，这称为舒张期。
通过这种良好的工作协调，心脏能够以稳定的速率泵血，保持血液灌流的稳定性和连续性。
二、血液流动原理心脏的血液流动是由心脏收缩产生的压力差和血液本身的特性共同驱动的。
1. 冠状血管系统心脏本身也需要血液供应，这个供应系统是冠状血管系统。
心脏收缩时，心室内的血液被推入主动脉，并通过冠状动脉通过分支供血给心肌。
离题心脏灌流实验报告
一、实验目的1. 掌握离体心脏灌流技术的基本操作方法。
2. 观察不同生理和化学因素对离体心脏活动的影响。
3. 了解心脏生理学中离子和体液调节在心脏功能中的作用。
二、实验原理心脏的正常节律性活动依赖于其内环境的稳定性。
离体心脏灌流实验通过在体外模拟心脏的生理环境，研究各种因素对心脏功能的影响。
实验中，离体心脏被置于特定的灌流液中，通过改变灌流液的成分，可以观察心脏的收缩、舒张以及心率等生理指标的变化。
三、实验材料1. 实验动物：青蛙或鱼类。
2. 实验器材：蛙心夹、张力传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、滴管、培养皿、棉线、任氏液、生理盐水、NaCl、KCl、CaCl2、乳酸、肾上腺素、乙酰胆碱等。
3. 实验试剂：任氏液、生理盐水、0.65%NaCl、2%CaCl2、1%KCl、3%乳酸、1:10000肾上腺素、1:10000乙酰胆碱等。
四、实验方法与步骤1. 蛙心插管法：将青蛙双毁髓后背位置于蜡盘中，暴露心脏，并在左主动脉下方穿一线，于动脉圆锥处结扎。
用蛙心夹固定心脏，将刺激电极插入心室。
2. 灌流液准备：将任氏液或生理盐水加热至37℃，保持恒温。
3. 灌流系统建立：将蛙心夹连接到张力传感器，通过支架固定。
将灌流液从灌流瓶经滴管缓慢滴入蛙心夹，通过张力传感器记录心脏的收缩和舒张。
4. 实验操作：a. 记录正常心脏灌流下的心率和收缩幅度。
b. 分别向灌流液中加入不同浓度的NaCl、KCl、CaCl2、乳酸、肾上腺素、乙酰胆碱等试剂，观察心脏活动的变化。
c. 重复上述步骤，观察不同因素对心脏活动的影响。
五、实验结果与分析1. 正常心脏灌流：在正常灌流条件下，心脏呈现规律的节律性收缩，心率和收缩幅度稳定。
2. NaCl：低浓度NaCl对心脏活动影响较小，高浓度NaCl会导致心率减慢，收缩幅度降低。
3. KCl：低浓度KCl对心脏活动影响较小，高浓度KCl会导致心率加快，收缩幅度降低。
4. CaCl2：低浓度CaCl2对心脏活动影响较小，高浓度CaCl2会导致心率加快，收缩幅度增强。
心脏灌流
Radnoti 离体工作心脏灌流系统 (Working Heart System)
可进行工作心脏实验， LANGENDORFF 恒 压，恒流，循环或非循环实验。实验可以是 起博或自发心跳状态。
灌流液从左心耳流入左心室，左心室收缩克服 主动脉阻力将心室内液体射入模拟主动脉管道， 使心脏在生理状态下进行灌流实验。在此装置 中，左心室充盈压（前负荷）及主动脉柱压 （后负荷）可以保持恒定，心率亦可通过电起 搏装置加以控制。因此，可以根据需要将三者 同时进行控制，观察药物对心肌收缩性能的影 响，或控制其中两项，观察心肌收缩性与另一 项的关系。此外通过测定冠脉流出液中某些物 质，可以了解药物或其它因素对心脏生化方面 的影响。
缺点和局限性
失去了机体完整统一的内环境和神经体液 调控作用，失去了体内各种组织、细胞之间
的相互关系，不能完全反映心脏在整体情况
下的活动规律与正常整体情况。
离体心脏灌流方法
两栖类动物： 蟾蜍、青蛙等 Straub法、八木法
哺乳类动物：大鼠、家兔、猫等
Langendroff 法
经典的离体蛙心灌流——Straub法
心室腔直接记录和测定左心室内压力变化，如左心室 收缩压（LVSP）、左心室舒张末期压（LVEDP）和左 心室压力变化速率（LV dP/dP）等； 利用放入肺动脉内的导管连接到PMH 73酸碱／血气检
测仪上的电极测定冠状静脉的 Po2, 并可结合灌流液的
Po2和冠状动脉流量计算心肌耗氧量； 经过两根固定在心脏表面的电极可记录心外膜心电图； 心脏内埋藏电极记录希氏束电图等。
• 配合不同的测量装置可测量： 左室压（LVP) 心电 温度 心肌张力 心输出量 灌注压 冠脉血流 新陈代谢 离子 转基因研究
心脏再灌注操作方法
心脏再灌注操作方法
心脏再灌注是一种恢复心脏血液供应的紧急操作，可被用于心脏骤停、心肌梗死或其他心脏疾病的救治。
该操作过程繁琐，下面给出具体的操作步骤：
1. 队员绿灯：对病人进行评估，确认需要再灌注。
2. 重点团队：由一个重点团队负责操作，包括医生、护士和其他专业人员。
3. 维持生命功能：首先需要抢救病人，包括辅助呼吸和机械通气、血气分析、呼吸道管理等，以尽快维持生命功能。
4. 心脏压缩：医生以交替压迫方式对病人的心脏进行中断性心脏压缩，以尽快再灌注。
5. 呼吸道管理：同时，护士负责进行呼吸道管理，包括持续通气和氧疗。
6. 药物治疗：医生还会使用药物来协助再灌注，包括肾上腺素、胺碘酮等。
7. 心电图监测：为确保再灌注的成功，医生还需要进行心电图监测，以及查看动脉血氧饱和度。
8. 全力操作：在进行再灌注操作时，所有团队成员要全力投入、注意力高度集
中，确保操作成功。
9. 持续监测：再灌注后，医生需要持续监测病人的心率、血压、呼吸等生命体征，以确保病人状态稳定。
10. 后续治疗：再灌注后，需要对病人进行继续治疗，包括行冠状动脉造影、介入治疗等。
总之，心脏再灌注是一项高度复杂的操作，需要精心设计和周密执行，仅能由经验丰富、技能熟练的医护人员进行。
心脏灌流实验报告 乳酸
心脏灌流实验报告乳酸引言心脏灌流实验是研究心脏功能和心脏病理生理的重要手段之一。
乳酸是一种生物体代谢中的重要指标，其水平变化可以反映细胞的能量代谢状况。
本实验旨在通过心脏灌流实验，研究乳酸在心脏功能损伤中的作用及其产生的机制，以期为心脏疾病的治疗提供一定的理论依据。
方法实验设备和试剂本实验所用设备包括灌流装置、心脏收缩力记录仪、乳酸监测仪等。
动物模型选取20只健康成年大鼠作为实验对象，随机分为两组，每组10只。
实验组动物给予乳酸注射剂，对照组动物给予等量的生理盐水作为对照。
实验步骤1. 对照组动物和实验组动物分别麻醉，并进行气管插管。
2. 给予每只实验组动物乳酸注射剂，剂量为每公斤体重100mg。
3. 进行心脏灌流实验，记录心脏收缩力和乳酸水平的变化。
4. 根据实验数据进行结果分析和统计学处理。
结果实验记录到的数据如下表所示：时间点（分钟）心脏收缩力（单位）乳酸浓度（mmol/L）0 100 0.110 85 0.520 70 1.030 60 1.540 55 2.0讨论根据实验数据可以发现，实验组动物的心脏收缩力明显下降，且乳酸浓度逐渐升高。
而对照组动物的心脏收缩力和乳酸水平变化较小。
乳酸的产生主要来自乳酸酶催化的糖酵解过程。
在心脏功能受损的情况下，细胞能量代谢不足，糖酵解过程加强，导致乳酸的产生增加。
乳酸的积累对心肌细胞功能具有一定的抑制作用，进一步降低心脏收缩力。
实验中，给予实验组动物乳酸注射剂，可能会加速乳酸的产生，导致实验组动物的心脏收缩力下降更加明显。
而正常情况下，心脏对乳酸的产生有一定的代谢能力，能够维持适当的乳酸水平。
结论通过心脏灌流实验，我们发现乳酸在心脏功能损伤中的作用是抑制心脏收缩力的关键因素之一。
乳酸的产生增加会导致心肌细胞功能的下降，从而影响心脏的正常收缩和泵血功能。
因此，针对乳酸积累可能是心脏疾病治疗的一个潜在方向，可以尝试通过调节乳酸的代谢以及改善细胞能量代谢来提高心脏功能。
离体心脏灌流实验报告
离体心脏灌流实验报告离体心脏灌流实验报告心脏是人体最重要的器官之一，它的正常运转对于维持身体的正常功能至关重要。
然而，心脏病是全球范围内的一大健康问题，每年造成数百万人死亡。
为了更好地研究心脏病的发病机制以及开发新的治疗方法，离体心脏灌流实验成为了一种重要的研究手段。
离体心脏灌流实验是指将动物或人体心脏取出后，通过人工装置对其进行血液灌流，模拟体内环境，以便研究心脏的生理和病理过程。
这种实验方法可以提供更加精确和可控的条件，避免了体内环境的干扰，从而更好地研究心脏的功能和疾病。
在离体心脏灌流实验中，首先需要将动物或人体心脏取出，并迅速将其连接到灌流装置上。
灌流装置通常由氧气供应系统、血液泵、温度控制系统等组成，以模拟体内环境。
通过调节血液流速、氧气浓度和温度等参数，可以控制心脏的工作状态，观察其生理反应。
通过离体心脏灌流实验，研究人员可以观察心脏在不同条件下的工作情况，如心脏收缩力、心脏节律等。
同时，还可以通过添加特定的药物或激素，研究其对心脏功能的影响。
这种实验方法可以提供更加直接和准确的数据，有助于深入了解心脏病的发病机制。
除了研究心脏的生理功能外，离体心脏灌流实验还可以用于研究心脏疾病的发展过程。
例如，通过给心脏注射特定的病原体或药物，可以模拟心脏病的发病过程，观察心脏在不同阶段的变化。
这种实验方法可以为心脏病的早期诊断和治疗提供重要的参考。
然而，离体心脏灌流实验也存在一些限制。
首先，由于实验条件的局限性，离体心脏灌流实验无法完全模拟人体内复杂的生理环境，因此得到的结果可能与实际情况存在一定的差异。
其次，由于需要使用动物或人体心脏进行实验，涉及到伦理和道德问题，需要严格遵守相关法律和伦理规定。
尽管存在一些限制，离体心脏灌流实验仍然是研究心脏病的重要手段之一。
通过这种实验方法，研究人员可以更加深入地了解心脏的生理和病理过程，为心脏病的预防和治疗提供重要的理论依据。
未来，随着技术的不断进步，离体心脏灌流实验将进一步发展，为心脏病研究带来更多的突破。
离体心脏灌流实验报告
一、实验目的1. 熟悉离体心脏灌流技术的基本操作。
2. 观察和分析不同生理、病理因素对离体心脏功能的影响。
3. 掌握记录和分析心脏功能指标的方法。
二、实验原理离体心脏灌流实验是生理学研究中常用的一种方法，通过将心脏从机体中取出，在体外模拟生理环境条件下进行灌流，观察和分析心脏功能的变化。
实验中，通过改变灌流液的成分、温度、pH值等条件，可以研究不同因素对心脏功能的影响。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：青蛙、蛙心夹、蛙板、蛙类手术器械、二道仪、任氏液、长滴管、铁支架、玻璃管、量筒、秒表等。
2. 实验仪器：显微镜、电子天平、恒温器、恒温水浴箱、高压消毒锅等。
四、实验方法与步骤1. 实验准备（1）取一只青蛙，用蛙类手术器械进行解剖，暴露心脏。
（2）将心脏夹在蛙心夹上，用线固定在蛙板上。
（3）在心脏主动脉下方穿一线，结扎并留出一段备用。
（4）将心脏主动脉左支结扎，于动脉圆锥处剪一向心斜切口，插入灌流管。
2. 灌流实验（1）将灌流管一端插入恒温器中的任氏液中，另一端与心脏主动脉相连。
（2）调整恒温器，使任氏液温度保持恒定。
（3）开启灌流泵，使任氏液以恒定速度灌流心脏。
（4）观察心脏收缩情况，记录心率、收缩幅度等指标。
（5）依次改变灌流液的成分、温度、pH值等条件，观察心脏功能的变化。
3. 实验数据记录与分析（1）记录不同灌流条件下心脏的心率、收缩幅度等指标。
（2）分析不同生理、病理因素对离体心脏功能的影响。
（3）绘制心脏功能曲线，分析实验结果。
五、实验结果与分析1. 灌流液中加入肾上腺素后，离体心脏心率加快，收缩幅度增强。
2. 灌流液中加入乙酰胆碱后，离体心脏心率减慢，收缩幅度减弱。
3. 降低灌流液温度后，离体心脏心率减慢，收缩幅度减弱。
4. 提高灌流液pH值后，离体心脏心率加快，收缩幅度增强。
六、实验结论1. 肾上腺素和乙酰胆碱对离体心脏功能具有调节作用，肾上腺素使心脏兴奋，乙酰胆碱使心脏抑制。
2. 温度和pH值对离体心脏功能有显著影响，低温和碱性环境有利于心脏功能的维持。
心肺脑复苏最新进展
Rats, dogs,and pigs are not humans!
-Dr.Peter safar
人体资料
_________________________________
No. CC only CC+V 241 279 ROSC% 40.2 34.1 Survival% 14.6 10.4
Hallstrom AP et al: N Engl J Med 2000;342:1546
大量实践表明,4 min 内进行复苏者可能 有50 %人被救活;4 min～6 min 开始进 行复苏,可能有10 %的人被救活;超过6 min 者存活率仅4 %;10 min 以上开始进 行复苏者,存活率可能更低。
ABC 方案。①A (assessment + airway) 判断 和畅通呼吸道。 ②B(breathing) 人工呼吸:口对口人工呼吸,口 对鼻人工呼吸或口对“S”通气管进行通气。如 在院内,即应用气管插管行呼吸机辅助呼吸与输 氧,纠正低氧血症。 ③C(circulation) 人工循环:心肺复苏时胸外心 脏按压,产生的血压和心排出量对复苏成功及病 人的预后有着决定性的影响 。
2000 年心肺复苏指南仅将血管加压素作 为肾上腺素的备选药物。已发表的临床 试验结果还难以令人满意。因此, 要全面 认识和明确血管加压素在CPR 中的作用 和地位, 还需要进行进一步的临床研究。
溶栓治疗
大约50 %～70 %的院外猝死的患者, 其 病因为急性心肌梗死(AMI) 或大面积肺栓 塞( PE) 。
血管加压素在CPR 期间的应用
基础研究表明, 与肾上腺素相比, 血管加 压素能够更好地增加重要器官功率 和复苏后的神经功能。
较大规模( n = 200) 的血管加压素和肾 上腺素进行院内复苏的比较研究显示, 血 管加压素在患者成活出院、1 h 生存率和 神经功能恢复方面较肾上腺素没有任何 优越性 。
心脏灌流实验报告
一、实验目的1. 学习离体心脏灌流技术的基本原理和方法。
2. 观察不同灌流液成分对离体心脏活动的影响。
3. 分析Na+、K+、Ca2+等离子及肾上腺素、乙酰胆碱等药物对心脏功能的作用。
二、实验原理离体心脏灌流实验是通过将离体心脏置于特定的灌流液中，模拟心脏在体内的生理环境，研究心脏生理功能的一种实验方法。
在实验过程中，通过改变灌流液的成分，可以观察心脏的收缩、舒张、心率、传导性等生理指标的变化，从而了解不同因素对心脏功能的影响。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：青蛙、常用手术器械、蛙板、蛙心夹、计算机采集系统、张力传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、滴管、培养皿、棉线、任氏液、0.65%NaCl、2%CaCl2、1%KCl、1:10000肾上腺素、1:10000乙酰胆碱、3%乳酸。
2. 实验仪器：手术显微镜、手术刀、镊子、剪刀、缝针、线、电子天平、量筒、移液器、秒表、温度计等。
四、实验方法与步骤1. 蛙心制备：- 取青蛙一只，用手术刀在颈部背侧切开皮肤，暴露心脏。
- 用镊子轻轻夹住心脏周围的组织，使其脱离周围组织。
- 将心脏置于蛙板上，用手术刀将心脏周围的血管和神经分离。
- 将心脏固定在蛙心夹上，连接张力传感器。
2. 灌流液准备：- 将任氏液、0.65%NaCl、2%CaCl2、1%KCl、1:10000肾上腺素、1:10000乙酰胆碱、3%乳酸等试剂按照实验要求配置好。
3. 实验操作：- 将蛙心置于任氏液中，调节温度至37℃。
- 用移液器将配置好的灌流液滴入蛙心，记录心脏的收缩、舒张、心率等生理指标。
- 依次更换灌流液，观察不同灌流液成分对心脏功能的影响。
- 记录实验数据，并进行统计分析。
4. 结果分析：- 分析不同灌流液成分对心脏收缩、舒张、心率等生理指标的影响。
- 分析Na+、K+、Ca2+等离子及肾上腺素、乙酰胆碱等药物对心脏功能的作用。
五、实验结果与分析1. 正常灌流液对心脏功能的影响：- 心脏在正常灌流液中呈现规律性的收缩和舒张，心率稳定。
Langendorff 离体心脏灌流
Langendorff离体心脏灌流离体心脏系统的概念是由Oscar Langendorff在一个多世纪前提出的，现在作为一种非常有效的技术，在生理学和药理学的研究中广泛应用。
该技术使研究者在没有神经体液调节的条件下可以研究心脏的收缩功能、心率以及冠状动脉的特性等。
Langendorff标本通过心脏主动脉插管逆向灌注灌流液，由于灌流液压的作用，动脉瓣关闭，灌流液顺势流入冠状动脉，从而使心脏维持跳动数小时。
推荐硬件：Langendorff离体心脏灌流系统这是一套完整的系统，包含灌流装置、记录系统和所需的各种放大器、传感器以及附件。
特殊设计的灌流系统引入电子压力/流量反馈系统，按动一个按钮就可以在恒定流量或恒定压力模式之间进行轻松地切换，并且无需高架灌流容器来维持恒定的灌流压力。
推荐软件：LabChart Pro专业版血压分析软件模块：左心室发展压以及相关参数(LVP、dP/dt max、dP/dt min等)心电图分析软件模块：PQRST幅值和RR、PR、JT、QT等间期心率变异度(HRV)软件模块：绘制Poincaré Plot、Tachogram、Spectrum、Period Histogram和Delta NN Histogram量效关系分析软件模块：绘制量效曲线、计算EC50和Hill slopes论文摘要：Hypoxia and AMP independently regulate AMP-activated protein kinase activity in the heartM. Frederich, L. Zhang and J. A. Balschi, American Journal of Physiology: Heart and Circulatory Physiology, 2412-2421, 2005。
心肌灌流实验报告
一、实验目的1. 理解心肌灌流实验的基本原理和操作方法。
2. 观察不同灌流液对心肌收缩活动的影响。
3. 分析心肌细胞兴奋性、传导性和收缩性的生理机制。
二、实验原理心肌灌流实验是研究心肌生理学的重要方法之一。
通过在离体状态下对心脏进行灌流，可以模拟心脏在体内的生理环境，观察和分析心肌细胞在不同灌流液条件下的兴奋性、传导性和收缩性变化。
本实验采用蛙心灌流法，利用蛙心作为实验对象，通过改变灌流液的成分，观察心肌细胞在不同条件下的生理反应。
三、实验材料1. 实验动物：蛙2. 实验仪器：蛙心夹、张力传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、滴管、培养皿、棉线、任氏液、0.65%NaCl、2%CaCl2、1%KCl、1:10000肾上腺素、1:10000乙酰胆碱、3%乳酸等。
四、实验方法与步骤1. 制备蛙心标本（1）取一只蛙，用剪刀剪开蛙的腹部，暴露心脏。
（2）用镊子轻轻夹住心脏，沿心脏长轴剪开心脏，暴露心脏的左右心室。
（3）将心脏放入装有任氏液的培养皿中，用棉线固定心脏。
2. 连接实验装置（1）将蛙心夹固定在支架上，将蛙心夹的尖端插入心脏的左心室。
（2）将张力传感器连接到蛙心夹，用于记录心肌的收缩活动。
（3）将刺激电极插入心脏的右心室，用于刺激心肌细胞。
3. 灌流实验（1）将蛙心放入任氏液中，观察心脏的节律性收缩。
（2）分别用0.65%NaCl、2%CaCl2、1%KCl、1:10000肾上腺素、1:10000乙酰胆碱、3%乳酸等灌流液替换任氏液，观察心肌的收缩活动变化。
（3）记录不同灌流液条件下的心脏收缩幅度、节律和心率。
五、实验结果与分析1. 正常蛙心灌流在任氏液灌流条件下，心脏以正常的节律收缩和舒张，收缩幅度适中，心率稳定。
2. 0.65%NaCl灌流将灌流液更换为0.65%NaCl后，心脏收缩幅度稍微减小，心率稍微减弱。
这可能是因为细胞外环境中缺乏Ca2+，导致心肌细胞动作电位2期Ca2+内流减少，胞浆中Ca2+减少，心肌收缩力降低。
冠心病的心脏再血流灌注疗法与应用
冠心病的心脏再血流灌注疗法与应用冠心病是一种常见的心血管疾病，其主要原因是冠状动脉供血不足所引起的心肌缺血、缺氧。
冠心病患者可以通过心脏再血流灌注疗法来改善血液供应，保护心肌功能。
本文将介绍冠心病的心脏再血流灌注疗法及其应用。
一、心脏再血流灌注疗法概述心脏再血流灌注疗法是指通过介入治疗手段，恢复冠状动脉的血流，从而改善冠心病患者的心肌供血。
常见的心脏再血流灌注疗法包括冠状动脉扩张术、血管内球囊反搏术、介入手术等。
1. 冠状动脉扩张术冠状动脉扩张术是通过导管植入至狭窄的冠状动脉部位，通过扩张血管，改善冠状动脉的血流通畅。
常见的冠状动脉扩张术包括冠状动脉支架置入术和球囊扩张术。
2. 血管内球囊反搏术血管内球囊反搏术是通过导管将球囊插入主动脉，通过球囊的膨胀和缩小，改善冠状动脉血流，并增加冠状动脉的压力。
这种治疗方法可以有效改善心肌供血，减少心肌缺血、缺氧病变。
3. 介入手术对于严重的冠心病患者，可能需要进行冠状动脉搭桥手术或冠状动脉旁路移植术，通过手术手段进行冠状动脉的重建，从而恢复心肌的供血和功能。
二、心脏再血流灌注疗法的应用心脏再血流灌注疗法主要应用于冠心病患者，尤其是急性冠脉综合征患者和心肌梗死患者。
这些患者常常存在严重的心肌缺血、缺氧，需要尽快恢复冠状动脉供血，以保护心肌细胞，并避免进一步心肌损伤。
除此之外，心脏再血流灌注疗法还可应用于冠状动脉粥样硬化患者、心绞痛患者等。
通过改善血液供应，可以缓解症状，提高生活质量。
三、心脏再血流灌注疗法的效果与风险心脏再血流灌注疗法可以明显改善冠心病患者的症状，减少心肌缺血、缺氧，并提高心肌功能。
大量临床研究表明，该疗法对急性心肌梗死患者的生存率、生活质量和预后具有显著改善作用。
然而，心脏再血流灌注疗法并非适用于所有冠心病患者。
对于一些年龄较大、合并其他严重疾病的患者，心脏再血流灌注疗法的风险可能会较大，需要综合考虑患者的整体情况，选择合适的治疗方案。
此外，心脏再血流灌注疗法可能会出现一些并发症，如出血、血肿、心律失常等。
心脏再灌流实验报告
一、实验目的1. 了解心脏再灌流的概念及其在临床治疗中的应用。
2. 观察再灌流对心脏功能的影响，分析再灌流对心肌细胞损伤的修复作用。
3. 掌握心脏再灌流实验的基本操作步骤和注意事项。
二、实验原理心脏再灌流是指在心脏缺血、缺氧状态下，通过血液流动恢复心脏供血、供氧的过程。
再灌流可以减轻心肌细胞损伤，恢复心脏功能。
本实验通过建立心脏缺血模型，观察再灌流对心肌细胞损伤的修复作用。
三、实验材料1. 实验动物：成年雄性大鼠，体重200-250g。
2. 实验仪器：手术显微镜、心脏灌流装置、离心泵、微量注射泵、多导生理记录仪、恒温箱、手术器械等。
3. 实验药品：生理盐水、氯化钠、氯化钾、氯化钙、葡萄糖、肾上腺素、乳酸、生理盐水等。
四、实验方法1. 动物分组：将实验动物随机分为对照组、缺血组、再灌流组，每组10只。
2. 建立心脏缺血模型：对缺血组动物进行开胸手术，暴露心脏，阻断冠状动脉血流，造成心脏缺血。
3. 再灌流处理：在阻断冠状动脉血流5分钟后，对再灌流组动物进行心脏再灌流，使用生理盐水灌流，维持心脏功能。
4. 心肌细胞损伤检测：在实验结束时，采集动物心脏组织，检测心肌细胞损伤程度。
5. 数据处理：采用统计学方法对实验数据进行处理和分析。
五、实验结果1. 缺血组动物心肌细胞损伤程度较对照组明显增加，再灌流组动物心肌细胞损伤程度较缺血组明显减轻。
2. 再灌流组动物心脏功能指标（如心率和血压）较缺血组明显改善。
六、实验讨论1. 心脏再灌流可以减轻心肌细胞损伤，恢复心脏功能。
实验结果显示，再灌流组动物心肌细胞损伤程度较缺血组明显减轻，心脏功能指标明显改善。
2. 再灌流过程中，维持心脏功能对于减轻心肌细胞损伤至关重要。
本实验中，通过使用生理盐水灌流，维持了心脏功能，有利于减轻心肌细胞损伤。
3. 本实验结果提示，心脏再灌流在临床治疗中具有重要的应用价值。
对于心脏缺血患者，及时进行再灌流可以减轻心肌细胞损伤，提高治愈率。
离体心脏灌流 - 成都泰盟软件有限公司
Tolerance to acute ischemia in adult male and female spontaneously hypertensive rats. Physiol Res. 2006 Jun 22; GENE EXPRESSION OF STRETCHACTIVATED CHANNELS AND MECHANOELECTRIC FEEDBACK IN THE HEART. Clin Exp Pharmacol Physiol. 2006 Jul;33(7):642-648.
Isolated Working heart Perfusion apparatus
基础灌流液：K-H液 Nacl 118mM KCl 4.7mM KH2PO4 0.93mM NaHCO3 24mM 1.5mM se 10mM 加d.H2O至1000ml /pH7.4 在此基础上，可加白蛋白，氨基酸，去纤维蛋白 血，RBC…… 灌流液的气体：95%O2+5%CO2 1.5升/分（25ml/s） 灌流压力：80~100mmHg
Calcium measurements with a new highaffinity n.m.r. indicator in the isolated perfused heart Biochem. J. (1993) 293, 407-411
注意事项
1. 待灌流装置运转良好，灌流液充分氧合、37℃ 后，再开始准备取心脏。 2. 取心脏的过程要快捷、轻柔，尽可能长地保留升 主动脉。 3. 心脏取出后迅速置于冷仃跳液中，使心脏仃跳， 并轻压心脏排出心脏和冠脉中残留的血液。 4. 插管时保持主动脉始终在液面下，避免空气进入 主动脉。 5. 插管不宜太深，避免顶住冠脉入口，甚至进入左 心室。
血液灌流基本知识
血液灌流基本知识血液灌流是一项重要的医疗技术，它可以帮助维持人体各个器官的正常功能。
本文将为您介绍血液灌流的基本知识，探讨其原理、应用和注意事项。
一、血液灌流的原理血液灌流是利用外界的设备将血液引出体外进行处理，然后再重新灌注到人体内。
其主要原理是利用机械设备替代心脏的功能，保证血液的循环，从而维持各个器官的供血和供氧。
血液灌流系统通常包括血液引流管、过滤装置、气泡分离器、加温装置和动力泵等组成。
当心脏手术或者其他疾病导致心脏无法正常工作时，医生会将患者的血液通过引流管引出体外，然后经过过滤装置和气泡分离器等设备进行处理，最后再通过动力泵重新灌注到患者体内。
二、血液灌流的应用1. 心脏手术血液灌流在心脏手术中扮演着重要的角色。
当心脏需要进行矫正、修复或置换时，医生会使用血液灌流系统来代替心脏的功能，确保手术期间和手术后患者的心脏供血和供氧。
2. 器官移植器官移植手术通常需要长时间的手术操作，血液灌流系统可以在手术期间保持供血供氧，确保器官在离体状态下仍然能够得到充分的血液灌注，减少损伤和延长器官的保存时间。
3. 体外循环血液灌流也被广泛应用于体外循环技术中。
体外循环是一种在心脏手术中维持患者生命体征的技术，通过血液灌流系统维持血液的循环和氧合，保证患者器官的正常功能。
三、血液灌流的注意事项1. 严格操作血液灌流是一项技术性较高的操作，需要严格按照医生的操作要求进行。
医护人员在进行血液灌流操作前应接受专业培训，并且熟悉设备的使用方法。
2. 安全措施在血液灌流过程中，应严格遵守消毒和防护措施，保证操作环境的洁净和设备的安全。
3. 监测与调整血液灌流期间，医生和护士应密切监测患者的生命体征，如血压、心率、血氧饱和度等，并根据监测结果进行调整，确保血液灌流的效果和患者的安全。
4. 术后护理血液灌流手术后，患者需要进行密切观察和护理，包括留置导管的护理、抗凝治疗和预防感染等。
总之，血液灌流是一项重要的医疗技术，广泛应用于心脏手术、器官移植和体外循环等领域。
大鼠离体心脏灌流技术
附录三 大鼠离体心脏灌流技术大鼠离体心脏灌流（Langendorff）是研究离体心脏在人工控制条件下，观察各种因素（药物、缺氧、离子等）对大鼠心脏活动（心脏的收缩功能、舒张功能、冠脉流量、心肌电活动等）的影响的一种可靠方法。
心脏从大鼠体内摘出之后，以一定压力、温度及充氧的生理溶液经主动脉根部流入进行灌流。
灌流液经冠状动脉口进入冠状血管营养心脏，维持心脏的节律活动。
灌流液经冠状血管进入右心房，然后由腔静脉口和肺动脉口流出，其流出量即为冠状血管的管流量。
离体心脏的节律性活动及心肌电活动变化可以通过记录系统进行记录和分析。
用Langendorff发灌流心脏，其节律性活动可维持较长的时间（一般可维持3~6h）。
仪器装置：仪器的核心部分是恒温、循环和浴槽三部分组成，一般进口这套设备需人民币十几万元。
我们教研室因经费十分紧张又急需这样的设备，针对这种情况，我们自行设计和制作出这套离体心脏灌流设备（见下图）。
经过反复的试验，验证了这套灌流装置无论在性能上、稳定性上都达到了要求，而且只用了二千元人民币。
循环装置恒温装置离体心脏及浴槽操作步骤1．摘取心脏先准备好手术器械（手术剪1把、无勾镊1把、眼科剪1把、眼科镊1把、止血钳2把、50ml烧杯1个、5ml和20ml注射器各1个、1号缝合线等）和充氧之冷台氏液（4℃左右）。
将大鼠麻醉或颈部脱臼后，打开胸腔充分暴露心脏，轻轻提起心脏并迅速摘取心脏。
手术过程中注意不要损伤心脏。
主动脉根部要保留0.5cm长以备插管用。
心脏摘取后立刻置于预先准备好的充氧冷台氏液中，用手指轻压心室将腔内的血液排出，防止血块形成。
心脏停跳后迅速剪去心脏周围的组织，操作中注意避免损伤静脉窦。
2．灌流心脏先将灌流系统的管道内充满台氏液（或其他灌流液），并连续充气（纯氧或O2 95%+CO2 5%的混合气体），灌流液温度保持在37℃。
将主动脉套进灌流管末端的动脉套管上并结扎固定好。
套管进入主动脉不易过深，以免损伤主动脉瓣或堵住冠状动脉开口处影响冠状血管的灌流。
心脏灌流
1、灌流前的准备工作：输液器，瓶装生理盐水（常温），瓶装4%多聚甲醛（4摄氏度），50ML注射器针头（针尖剪掉并且磨平），针头套在输液器远端，血管钳一把，大剪刀一把，眼科剪一把；
2、大鼠麻醉后采取仰卧位，用血管钳从大鼠胸骨最下端提起皮肤，用大剪刀顺着方向从胸骨两边向上剪开肋骨及膈肌，完全暴露心脏；
3、左手持心脏，因为针尖已经磨钝，需右手拿眼科剪在左心室前剪一小口，但不要剪穿，因为剪穿后血液流出，心脏不充盈，反而不好操作；
4、右手持针头，顺着剪口插进心脏，向左上角插入，可明显感觉无阻力且有空间感，此时迅速打开输液器，使得盐水顺利进入左心室（如果动作缓慢，血液很有可能凝固堵住针头）；
5、右心耳剪口，使血液流出，灌注生理盐水时，盐水呈水柱状流下，如果流不畅可适当调整针头位置，防治组织堵住；
6、当肝脏发白后，换成4%多聚甲醛灌流，此时的液体要成水滴状流下，不可太快；
7、当大鼠身体僵硬后即可停止灌注。
心脏灌流原代细胞分离技术
心脏灌流原代细胞分离技术哎呀，说到心脏灌流原代细胞分离技术，这事儿可真是让我头疼又兴奋。
你知道的，这种技术听起来就像是科幻电影里的情节，但实际上，它可是科学研究中的一项重要技术呢。
记得有一次，我在实验室里，穿着白大褂，戴着手套，正准备开始我的实验。
那天，阳光透过窗户洒在实验台上，一切都显得那么平静。
我手里拿着那个小小的心脏，它看起来那么脆弱，却又那么强大，毕竟，它可是生命之源啊。
我得先说说这个心脏灌流的过程。
首先，你得把心脏放在一个特制的容器里，然后慢慢地注入一种特殊的液体，这个液体就像是给心脏洗澡一样，把里面的血液一点点冲出来。
这个过程得非常小心，不能太快，也不能太慢，得刚刚好，就像是给心脏做个温柔的按摩。
然后，就是分离细胞的环节了。
这可是个技术活儿，你得用那些细细的针管，一点点地把细胞从心脏组织里分离出来。
这个过程就像是在做一个微观的雕塑，你得非常专注，不能有一丝一毫的马虎。
我还记得，有一次，我差点把一个细胞弄破了，那感觉就像是打翻了一杯牛奶，心里那个紧张啊。
但是，当你看到那些分离出来的细胞在培养皿里慢慢生长，那种成就感，真的是无法用言语来形容。
它们就像是一群小小的生命，在你的手中一点点地成长，那种感觉，既神奇又让人感动。
说到这儿，我突然想起了那次实验中的一个小插曲。
就在我全神贯注地分离细胞的时候，实验室的门突然被推开了，是我的同事小李，他手里拿着一杯咖啡，脸上带着那种“我就知道你会在这里”的笑容。
他看着我，笑着说：“嘿，你这是在和心脏细胞谈恋爱呢？”我抬头看了他一眼，回了一句：“是啊，它们可是我的宝贝。
”我们俩相视一笑，那种轻松的氛围，让整个实验室都变得温馨起来。
最后，当我完成了所有的实验步骤，看着那些在培养皿里活跃的细胞，我不禁感慨，这心脏灌流原代细胞分离技术，虽然听起来高大上，但其实，它就像是我们生活中的点点滴滴，需要耐心，需要细心，更需要爱心。
所以，你看，心脏灌流原代细胞分离技术，不仅仅是一项技术，它更是我们对生命的尊重和热爱。
心脏灌流
Necly等(1967)：在肺静脉或左心房内插入另一根 导管，灌流液经此导管进入左心房，并通过二尖瓣进入 左心室，左心室收缩时将灌流液通过主动脉泵出，该方 法可改变心脏的前后负荷，测定心输出量、压力－容积 作功关系等。
经肺静脉、左心房和二尖瓣将微型压力传感器放入左心室腔可 直接记录和测定左心室内压力变化，如左心室收缩压（LVSP）、左 心室舒张末期压（LVEDP）和左心室压力变化速率（LV dP/dP）等； 利用一根放入肺动脉内的导管连接到PMH 73酸碱／血气检测 仪上的E 5046型电极可测定冠状静脉的Po2,并可结合灌流液的Po2和 冠状动脉流量计算心肌耗氧量； 经过两根固定在心脏表面的电极可记录心外膜心电图；心脏内 埋藏电极记录希氏束电图等。
方
法
1. 破坏蟾蜍脑脊髓，仰卧位固定在蛙板上，打开胸腔和 心包膜，暴露心脏。
2. 心室插管：在主动脉干下方引2根线，一条在左主动脉上端结 扎作插管时牵引用，另一根则在动脉圆锥上方，系一松结用于结扎固 定蛙心插管。在松结上方左主动脉根部剪一小斜口．将盛有少许任氏 液的蛙心插管由此剪口处插入动脉圆锥。当插管头到达动脉圆锥时， 再将插管稍稍后退，并转向心室中央方向，在心室收缩期插入心室。 判断小插管是否进入心室可根据插管内的任氏液的液面是否能随心室 的舒缩而上下波动。如蛙心插管已进入心室，则将预先准备好的松结 扎紧，并固定在蛙心插管的侧钩上以免挂心插管滑出心室。剪断主动 脉左右分支。 3. 游离蛙心：轻轻提起蛙心插管以抬高心脏，用一线在静脉窦 与腔静脉交界处作一结扎，注意避免不要损伤静脉窦，在结扎线外侧 剪断所有组织，将蛙心游离出来。
实验方法
1.麻醉、取出心脏：在戊巴比妥钠麻醉和人工呼吸的情况下迅速取出心 脏，置于盛满37 ℃氧饱和的Ringer’s液的盘中，去除粘附的心包和肺组织， 确定主动脉的位置，并恰好在其分支下方切断。 2. 主动脉插管：将一个玻璃或塑料的插管插入主动脉，注意插管不要 过深以免损伤主动脉瓣，结扎固定。 3. 灌流：将心脏转移到一个双层壁的玻璃浴槽（类似于做离体小肠平 滑肌灌流用的恒温浴槽或麦氏浴槽）中，浴槽内加入Ringer’s液或Krebs— Henseheit缓冲液，利用恒温水浴使这一装置保持在37℃。经主动脉插管 灌 注 氧 饱 和 的 Ringer’s 液或 Krebs—Henseheit缓 冲液 ， 并 持 续保 持 400 mmHg灌注压。
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测仪上的电极测定冠状静脉的 Po2, 并可结合灌流液的
Po2和冠状动脉流量计算心肌耗氧量； 经过两根固定在心脏表面的电极可记录心外膜心电图； 心脏内埋藏电极记录希氏束电图等。
离体心脏灌流的优点
1. 排除在整体情况下体内各种复杂因素的干扰，直
接观测离体心脏标本的各项指标。
2. 易于严格控制实验环境，方法简便精确，有利于
分析作用机制及对药物的药效作定量研究。
3. 易于获得准确、精细的结果。
缺点和局限性
失去了机体完整统一的内环境和神经体液 调控作用，失去了体内各种组织、细胞之间
负荷和后负荷。
注意事项
① 不能损伤或结扎静脉窦； ② 主动脉内的插管不要过深以免抵住主动脉瓣 ③ 两根插管有一定相对位置，插管前要考虑好方向， 插管后应避免血管扭曲，保证灌流畅通 ④ 避免气泡进人心脏。
哺乳类动物离体心脏灌流
——Langendorff 法
Langendorff首次描述了保持哺乳动物离体心
Necly等的改进(1967)
在肺静脉或左心房内插入另一根导管，灌流液经 此导管进入左心房，并通过二尖瓣进入左心室，左 心室收缩时将灌流液通过主动脉泵出，该方法可改 变心脏的前后负荷，测定心输出量、压力－容积作 功关系等。
Bardenheuer等的改进(1983)
小球囊插入左心室，通过一个插管将球囊内的液体泵
灌流压大小恰当，压力过低则冠状动脉灌流量不足，
过高则因主动脉根部过于扩张导致主动脉瓣关闭不全。
灌流液温度恒定：37 ℃ (95% O2 + 5% CO2饱和)。
Langendorff 法的缺陷与改进
由于在实验过程中心室不充盈，心室不按照容
量－压力曲线作功。
后来其实验方法被不断改进，以适应各种不同研 究的需要，如在按上述灌流方法进行灌流以保持心脏 存活的同时，在用另一根插管插入右心房灌流心脏，
人一个体外的闭合循环通路中，并由两个弹性瓣膜控制其
单向流动。
每次心脏收缩时，由球囊排除的液体量相当于心脏的
每搏输出量，可以通过顺序连接的一个流量计探头和一个 积分仪进行测量。前负荷和后负荷可以分别调整。经主动 脉逆灌进入冠状动脉的灌注液流量也可单独记录下来。
其它改进
将微型压力传感器经肺静脉、左心房和二尖瓣放入左
离体心脏灌流
Cardiac Perfusion in Vitro
离体心脏灌流的基本原理
将动物的心脏从体内取出放入特定的生理代
用液中，根据不同的实验目的和不同种属动物特
点进行恒温、通氧或恒温灌流及建立与动物机体
内环境基本相似的人工环境，以保证心脏维持正 常活动状态。
离体心脏灌流的意义
在离体条件下观察并记录心脏的生理活动、 病理变化以及各种药物和试剂等施加因素对其 生理生化及形态变化的影响。
的相互关系，不能完全反映心脏在整体情况
下的活动规律与正常整体情况。
离体心脏灌流方法
两栖类动物： 蟾蜍、青蛙等 Straub法、八木法
哺乳类动物：大鼠、家兔、猫等
Langendroff 法
经典的离体蛙心灌流——Straub法
灌流途径与正常循
环途径不同，蛙心插管
通过主动脉瓣直接插入 心室腔内，灌流液通过 同一蛙心插管进入心室 腔和流出，前负荷和后
脏存活的方法，采用恒压或恒流方式，从主动脉
根部逆向用含氧灌流液灌流心脏，这种方式的逆
向灌注关闭了主动脉瓣，使得灌注液经冠状动脉
分布，并流入冠状窦和右心房。
实验方法
1.麻醉、取出心脏：在戊巴比妥钠麻醉和人工呼吸
的 情 况 下 迅 速 取 出 心 脏 ， 置 于 盛 满 37 ℃ 氧 饱 和 的
Ringer’s液的盘中，去除粘附的心包和肺组织，确定主 动脉的位置，并恰好在其分支下方切断。 2. 主动脉插管：将一个玻璃或塑料的插管插入主 动脉，注意插管不要过深以免损伤主动脉瓣，结扎固 定。
负荷相等。
方
1. 破坏脑脊髓，暴露心脏。
法
2. 心室插管 3. 游离蛙心 4. 使用张力传感器
5. 改变灌流液成分
注
① 不能损伤或结扎静脉窦 ② 插管一定要进入心室腔
意
③ 出现作用后立即用新鲜任氏液换洗三次，以免心肌受损
④ 蛙心插管内液面应保持恒定，以免影响结果
八木法离体蛙心灌流
特点： 灌流途径按正常循环途径 设计，一根蛙心插管插入左肝 静脉并进入静脉窦，另一根蛙 心插管仅插入主动脉，并不穿 过主动脉瓣进入心室腔内，可 以根据实验要求设定不同的前
离体工作心脏
Isolated working heart preparation
冠状动脉结扎与心肌缺血再灌
Scholz 等(1992,1993)在进行心肌缺血再灌实验 时，用65 mmHg恒定压力灌注离体工作心脏20 min ( 缺血前期) 后，夹闭左冠状动脉近端 15 min，造成
4. 连接记录装置：
将一特制的金属小钩固定在心尖部，利用张力传
感器与多导记录仪相连并描记心脏收缩曲线和测定
收缩力等指标。
Langendorff 离体心脏灌流装置可用于测定不同
种生理学试剂和药物的直接效应，以及对这些药物
的拮抗作用。还可观察冠脉流量的变化。
注意事项
取心脏和插管操作需迅速。 插管不易过深，以免损伤主动脉瓣。
3. 灌流：
将心脏转移到一个双层壁的玻璃浴槽（类似于做离体
小肠平滑肌灌流用的恒温浴槽或麦氏浴槽）中，浴槽内加
入 Ringer’s 液或 Krebs—Henseheit 缓冲液，利用恒温水浴
使这一装置保持在37℃。 经 主 动 脉 插 管 灌 注 氧 饱 和 的 Ringer’s 液 或 Krebs— Henseheit缓冲液，持续保持适当的灌注压。
则可研究压力－容积作功关系。
Gottlieb等的改进(1904)
将可充水的小球囊固定在一根导管末端，经肺静脉、
左心房和二尖瓣放入左心室。
球囊内注水量与左心室容积相等，相当于前负荷大
小，可根据实验要求选择预定的前负荷或改变前负荷。
心脏收缩舒张过程给球囊一个有节律的压力，传导 到压力传感器上。 优点：压力变化和前负荷大小可以读出 (mmHg)，可 记录左心室收缩曲线，并记录心率。