Folin-Wu法定量测定血糖的含量(精)

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血糖的测定Folin吴法

血糖的测定Folin吴法

原理
无蛋白血滤液 葡萄糖
碱性铜试剂 磷钼酸试剂
Cu(OH) 2 磷钼酸
原理
葡萄糖 + Cu(OH)2
Cu2O↓
Cu2O + 磷钼酸
钼兰
原理
钼兰的蓝色深浅与葡萄糖的含量成正比 用比色法可测定空






已知浓度葡 萄糖溶液 0.025mg/ ml
未知浓度 无蛋白血 滤液
蒸馏水
(mg/dl) 空腹血糖
临床意义
正常
怀疑
糠尿病
<110 110-139 ≥140
餐后两小时血糖 <140 140-199 ≥200
服糖后两小时糖 <140 140-199 ≥200
注意事项
测定结果比实际血糖含量高,因为 无蛋白血滤液中,除含有葡萄糖外, 尚有微量的其他还原物质 ,如Vit C、 尿酸等。
实验八 血糖的测定
Folin-吴法
Folin-吴法
吴宪:我国著名生物化学家和营养学家 1912 年 美国麻省理工学院 学习化学 1917 年 哈佛大学医学院 师从美国著 名生物化学家福林(Otto Folin)教授 进行血液化学研究
Folin-吴法
研究期间改进血糖定量分析方法 吴宪改进的血糖测定法,为后来的胰岛 素发现奠定了基础

中国海洋大学资料生物化学课件实验实验 Folin-Wu法定量测定 (2)

中国海洋大学资料生物化学课件实验实验 Folin-Wu法定量测定 (2)

2、血糖的定量测定:

取25ml的血糖管3支,编号。第一支血糖管中加入2ml蒸 馏水(空白管);第二支血糖管中加2ml标准葡萄糖液; 用吸管吸取无蛋白血滤液2ml,放入第三支血糖管中。

然后向三支血糖管中各加入2ml新配制的碱性硫酸铜溶
液,同时置于沸水浴中8分钟,取出,在流水中迅速冷
却后,勿摇动,各加4ml酸性钼酸盐溶液。
式中: m=100ml全血中含血糖毫克数 ; C0=标准液葡萄糖含量 (0.1mg/ml) A1=样品液光吸收值 ; A0=标准液光吸收值
0.1:1ml无蛋白血溶液相对于0.1ml全血
七、思考题
实验过程中那些操作可能影响实验结果的
准确性?
实验中,血糖管有什么作用? 实验过程中,为什么要用流水冷却加入碱
无蛋白血滤液中的葡萄糖和碱性硫酸铜溶液共热反应, Cu2O又把酸性钼酸试剂(Mo6+)还原成低价的蓝色钼化合物— 钼蓝 。 Cu2O+酸性钼酸试剂 蓝色钼化合物 OD420比色
血滤液中葡萄糖的含量与产生的Cu2O成正比,而Cu2O的量 与产生的钼化合物的量成正比。可用比色法定量的测定。三、实Leabharlann 仪器性硫酸铜液反应后的血糖管?
注意事项
1.加硫酸、钨酸钠时,要边加边摇匀 2.沉淀由鲜红变为暗棕色,是因钨酸钠与硫酸生成钨酸,在 适当酸度时,使血红蛋白变性沉淀,如果沉淀不变暗棕色或 重新过滤后仍混浊,是因为血液中所加抗凝剂过多,可以加 入10%硫酸1-2滴,待暗棕色后再过滤。 3.用定量滤纸过滤后应该得到完全澄清无色之无蛋白血滤液。 如果得到仍带有红色的血滤液则说明蛋白质未被完全去除。

五、实验步骤
• 1、无蛋白血滤液的制备:
• 用奥氏吸管吸取全血(已加抗凝剂) 1ml, 缓缓放入 100ml 锥形瓶中,加蒸馏水 7ml ,摇匀,溶血后(血 液变为红色透明)加10%钨酸钠1ml,摇匀.。 • 再加0.33mol/L H2SO41ml,边加边摇,加毕充分摇匀, 放置5~15分钟,至沉淀变为暗棕色(如不变色可再 加0.33mol/L H2SO41-2滴)。 • 用干滤纸过滤。先倾入少许,待滤纸湿润后在全部 倒入,如滤液不清需重新过滤。每毫升无蛋白血滤 液相当于1/10ml全血。

folin吴法测血糖实验报告

folin吴法测血糖实验报告

folin吴法测血糖实验报告一、实验目的血糖的测定在医学诊断和糖尿病的监测中具有重要意义。

本实验旨在通过 folin 吴法测定血糖浓度,掌握该实验的原理、操作步骤及注意事项,并对实验结果进行分析和讨论。

二、实验原理folin 吴法是一种常用的血糖测定方法。

其原理基于葡萄糖在碱性溶液中与硫酸铜反应生成氧化亚铜,氧化亚铜与磷钼酸试剂反应生成蓝色的钼蓝。

颜色的深浅与葡萄糖的含量成正比,通过比色法可测定血糖浓度。

三、实验材料1、仪器分光光度计、离心机、恒温水浴锅、移液器、试管、刻度吸管等。

2、试剂(1)10%钨酸钠溶液(2)033mol/L 硫酸溶液(3)碱性硫酸铜溶液(4)磷钼酸试剂3、样本待测血液样本四、实验步骤1、样本处理(1)取适量待测血液,加入 10%钨酸钠溶液和 033mol/L 硫酸溶液,摇匀后离心,取上清液备用。

2、反应(1)取两支试管,分别标记为测定管和空白管。

(2)向测定管中加入处理后的上清液和碱性硫酸铜溶液,混匀后置于沸水浴中加热 8 分钟,取出后迅速冷却。

(3)向空白管中加入蒸馏水和碱性硫酸铜溶液,同样进行沸水浴加热和冷却处理。

3、显色(1)向测定管和空白管中分别加入磷钼酸试剂,充分混匀。

4、比色测定(1)使用分光光度计,以空白管调零,在波长 620nm 处测定测定管的吸光度值。

五、实验结果根据标准曲线或计算公式,将测定管的吸光度值转换为血糖浓度。

六、注意事项1、样本采集和处理要严格按照操作规程进行,避免溶血和污染。

2、试剂的配制要准确,保存条件要符合要求,避免失效。

3、反应过程中的温度和时间要控制准确,以保证反应的充分进行。

4、比色测定时要注意仪器的校准和调零,确保结果的准确性。

七、实验讨论1、实验结果的准确性分析可能影响实验结果准确性的因素,如样本采集、处理和保存不当,试剂质量问题,操作误差等,并提出相应的改进措施。

2、与其他血糖测定方法的比较简要介绍其他常见的血糖测定方法,如葡萄糖氧化酶法、己糖激酶法等,并比较它们与 folin 吴法的优缺点。

实验二血糖定量测定

实验二血糖定量测定
实验二 血糖定量测定 (Folin-Wu法)
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分光光度技术
有色溶液对光线有选择性的吸收作用,不同物质由 于其分子结构不同,对不同波长光线的吸收能力也不同, 因此,每种物质都具有其特异的吸收光谱。有些无色溶 液虽对可见光无吸收作用,但所含物质可以吸收特定波 长的紫外线或红外线。分光光度法是利用物质特有的吸 收光谱来鉴别物质或测定其含量的技术。使用的仪器则 称为分光光度计 。
Cu2+( CuSO4 ) 还原糖 Cu2O +酸性钼酸试剂
Cu+(Cu2O) 蓝色钼化合物
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测定血糖含量时必须先除去其中的蛋白质,制成 无蛋白滤液,再行检验。向抗凝血中加入钨酸钠、 硫酸锌、氢氧化锌及三氯乙酸等均可制得无蛋白滤 液,现常用钨酸法。钨酸钠与硫酸作用,生成钨酸, 可使血红蛋白等变性、凝固、沉淀,离心或过滤除 去沉淀,即得无蛋白血滤液,此种滤液还适用于测 定非蛋白氮、肌酸和尿酸等
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754型操作规程
1. 开启电源,用可见光测定时打开钨灯即可,如使用紫外测定则还需打开氘灯, 指标灯亮,使仪器预热20min以上。
2. 按“Mod”键选择测试方式,使开关置于"T"。 3. 打开样品室盖(光门自动关闭),按"0%T"键进行机械调零,使数字显示为
2.0
2.0
2.0
混匀,室温放置2min,以蒸馏水定容至25ml,混匀,倒入比色杯, 用754型分光光度计440nm波长比色(先以空白管调节零点,继测标准 管及样品管)。记录各管吸光度值。
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3、结果计算
根据比色结果计算每100ml血液中所含葡萄糖的毫克数: 100ml全血含血糖毫克数=OD1/OD2×C×10×100 其中C=标准葡萄糖含量(mg/ml); OD1=样品液光密度 OD2=标准液光密度

中国海洋大学资料生物化学课件实验生物化学实验教案 (2)

中国海洋大学资料生物化学课件实验生物化学实验教案 (2)
–CH2OH; –CHOH;-CH2NH2等基团的存在,甚至过量铵盐也干扰本实 验。
操作: 1、双缩脲的反应:取少量尿素晶体放在干
燥的试管中,微火加热使其熔化成液体, 此时有氨气放出,可用湿润的试纸检验, 至液体重新结晶出现白色固体时, 停止加 热,冷却。然后加10%NaOH溶液1ml,摇匀, 再加2-4滴1% CuSO4溶液,混匀,观察有无 紫色出现。 2、蛋白反应:取蛋白液 1ml,加10%NaOH溶 液 1ml ,摇匀,再加 2-4 滴 1% CuSO4 溶液, 混匀,观察有无紫色出现。
(四)
茚三酮反应
原理:蛋白质与茚三酮共热,产生兰紫色的还原茚三酮、茚 三酮和氨的缩合物。此反应为一切蛋白质及a-氨基酸所共 有。亚氨基酸(脯氨酸和羟脯氨酸)与茚三酮反应呈黄色, 含有氨基的其他物质(氨、β-Ala和许多一级胺)亦呈此 反应。反应灵敏度达1:1500000(pH5-7),广泛用于氨基酸 定量测定。
匀,用蒸馏水稀释定容至1000ml,贮于棕色瓶中。
五、实验步骤
1、无蛋白血滤液的制备: •用奥氏吸管吸取全血(已加抗凝剂—草酸钠)1ml,缓缓
放入50ml 锥形瓶中,加蒸馏水 7ml ,摇匀,溶血后(血
液 变 为 红 色 透 明 ) 加 10% 钨 酸 钠 1ml , 摇 匀 。 再 加 0.33mol/LH2SO41ml ,边加边摇,加毕充分摇匀,防止
温下乙醇、丙酮、中性盐硫酸胺等。
不可逆的沉淀反应:内部结构、空间构象遭到破坏,失去天然特性, 不能恢复溶解状态。重金属、生物碱试剂、过酸碱、加热、超声波、
有机溶剂等。
二、实验仪器
1、移液管 2、吸管 3、试管 4、电炉
三、实验试剂
1 、卵清蛋白液:鸡蛋清用蒸馏水稀释 10-20 倍,3-4 层纱布过滤,滤液 放在冰箱里冷藏备用。 2、饱和硫酸铵溶液:100ml蒸馏水中加硫酸铵至饱和。 3、硫酸铵晶体:用研钵研成碎末。 4、95%乙醇。 5、醋酸铅溶液:1g醋酸铅溶于蒸馏水并稀释至100ml。 6、硫酸铜溶液:1g CuSO4晶体溶于蒸馏水,稀释至100ml。 7、氯化钠晶体。 8、10%三氯乙酸溶液:10g三氯乙酸溶于蒸馏水中并稀释至100ml。 9、饱和苦味酸溶液:100ml蒸馏水中加苦味酸至饱和。 10、1%醋酸溶液。

生物化学实验--Folin-Wu法定量测定

生物化学实验--Folin-Wu法定量测定
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
2、血糖的定量测定:
• 取25ml的血糖管3支,编号。第一支血糖管中加入2ml蒸馏
水(空白管);第二支血糖管中加2ml标准葡萄糖液;用吸 管吸取无蛋白血滤液2ml,放入第三支血糖管中。 • 然后向三支血糖管中各加入2ml新配制的碱性硫酸铜溶液, 同时置于沸水浴中8分钟,取出,在流水中迅速冷却后,勿摇
• 掌握7200型可见分光光度计的使用方
法。
二、实验原理
葡萄糖是一种多羟基的醛类化合物。其醛基具有还原性, 与碱性铜试剂混合加热,葡萄糖分子中的醛基被氧化成羧 基,Cu2+即被葡萄糖还原成Cu+(Cu2O)而沉淀。 Cu2+( CuSO4 )+葡萄糖 Cu+ (Cu2O)
无蛋白血滤液中的葡萄糖和酸性钼酸盐溶液共热反应, Cu2O又把酸性钼酸试剂(Mo6+)还原成低价的蓝色钼化合 物—钼蓝 。 Cu2O+酸性钼酸试剂 蓝色钼化合物 OD420比色
血滤液中葡萄糖的含量与产生的Cu2O成正比,而Cu2O的量 与产生的钼化合物的量成正比。可用比色法定量的测定。
三、实验仪器
1、25mL血糖管×3支; 3、沸水浴小锅×1个; 5、电炉×1个; 7、吸耳球×2个; 2、血糖管橡胶塞×3个; 4、100mL锥形瓶×2个; 6、滤纸×1盒; 8、7200型分光光度计×1台;
四、实验试剂
5、酸性钼酸盐溶液: • 称取钼酸钠600g,用少量蒸馏水溶解后倾入2000ml 的容量瓶中,加蒸 馏水至刻度,摇匀,倾入另一较大的试剂瓶中,加溴水0.5ml,摇匀, 静止数小时后取上清夜500ml,于1000ml容量瓶中,徐徐加入 225ml85%磷酸,边加边摇匀,再加25%硫酸150ml。 • 置暗处次日,用空气将剩余的溴赶去。然后加99%醋酸75ml,摇匀, 用蒸馏水稀释定容至1000ml,贮于棕色瓶中。

18生物化学实验吴宪Folin法测定血糖含量

18生物化学实验吴宪Folin法测定血糖含量

18生物化学实验--吴宪-Folin法测定血糖含量标题:18生物化学实验——吴宪-Folin法测定血糖含量一、实验目的1.掌握吴宪-Folin法测定血糖含量的原理和方法。

2.学习使用分光光度计测量样品吸光度。

3.了解血糖的生理意义及其调节机制。

二、实验原理吴宪-Folin法是一种利用邻甲苯胺和硫酸铜反应生成紫红色络合物的原理,通过测量该络合物在特定波长下的吸光度来测定血糖含量的方法。

由于葡萄糖分子中含有醛基,因此可以利用这一特性进行测定。

本实验采用吴宪-Folin法进行血糖含量的测定。

三、实验步骤1.样品准备:收集受试者在禁食12小时后的静脉血,分离血清备用。

2.试剂准备:将邻甲苯胺、硫酸铜、碳酸钠等试剂按照配方准确称量,溶解定容,现配现用。

3.测定步骤:将试剂和样品按照规定比例混合,在规定温度下静置一段时间,用分光光度计在特定波长下测量吸光度,记录数据。

4.数据处理:根据吸光度和标准曲线计算血糖浓度。

四、实验结果与数据分析1.数据记录:记录受试者血糖吸光度数据(表1)。

表1:血糖吸光度数据记录表表2:血糖浓度计算表3.数据统计:对所有受试者的血糖浓度进行平均值和标准差统计(表3)。

表3:血糖浓度统计表平均值:x̄= ΣC/n (mg/dl) 标准差:s= [Σ(C-x̄)²/n]½五、结论总结与讨论根据实验数据,我们得出以下结论:1.所有受试者的血糖浓度均处于正常范围内。

这表明受试者在禁食12小时后的血糖水平处于生理正常范围。

这一结果与我们所知的人体在禁食状态下的血糖调节机制相符。

当人体处于禁食状态时,胰高血糖素分泌增加,促进肝糖原分解,使血糖水平维持在正常范围。

2.实验结果存在一定差异。

这可能与个体差异、采血时间、实验操作等因素有关。

为了获得更为准确的数据,需要进一步改进实验方法,提高操作精度和标准化程度。

此外,对于不同个体之间的比较,应考虑个体差异对实验结果的影响。

3.吴宪-Folin法是一种灵敏度高、操作简便的血糖测定方法。

2 血糖的定量测定(Folin-Wu法)

2 血糖的定量测定(Folin-Wu法)

中国海洋大学实验报告姓名庞裕智专业年级生命基地班2011 题目血糖的定量测定(Folin-Wu法)学号************科目生物化学实验时间周一90节同组者田特一、实验目的1、掌握Folin-Wu法测定血糖含量的原理和方法。

2、学会制备无蛋白血滤液。

3、掌握7200型可见分光光度计的使用方法。

二、实验原理葡萄糖是一种多羟基的醛类化合物。

其醛基具有还原性,与碱性铜试剂混合加热,葡萄糖分子中的醛基被氧化成羧基,Cu2+即被葡萄糖还原成Cu+(Cu2O)而沉淀。

Cu2+(CuSO4) + 葡萄糖 Cu+ (Cu2O)无蛋白血滤液中的葡萄糖和酸性钼酸盐溶液共热反应, Cu2O又把酸性钼酸试剂(Mo6+)还原成低价的蓝色钼化合物——钼蓝。

Cu2O+酸性钼酸试剂蓝色钼化合物 OD420比色血滤液中葡萄糖的含量与产生的Cu2O成正比,而Cu2O的量与产生的钼化合物的量成正比。

可用比色法定量的测定。

三、实验仪器1、25mL血糖管×3支;2、血糖管橡胶塞×3个;3、1mL胖肚吸管×1支;4、100mL锥形瓶×2个;5、漏斗架×1个;6、普通漏斗×2个;7、水浴锅×1个;8、电炉×1个;9、移液管1mL×2支;2mL×3支;5mL×2支;10mL×1支;10、滤纸×1盒;11、吸耳球×2个;12、7200型分光光度计×1台;13、表面皿×1个。

四、实验试剂1、标准葡萄糖溶液(0.1mg/ml)(1)1%葡萄糖母液:称取1.000g葡萄糖,溶于蒸馏水,稀释并定容至100ml。

(2)葡萄糖标准液:取1.0ml葡萄糖母液于100ml容量瓶中,加蒸馏水定容。

2、10%钨酸钠溶液:称取钨酸钠10g,溶于蒸馏水并定容至100毫升。

3、0.33mol/L H2SO4溶液:于53ml蒸馏水中加入1ml的浓硫酸。

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血糖含量的定量测定(Folin-Wu法
一、目的
1、掌握Folin-Wu法测定血糖含量的原理和方法。

2、学会制备无蛋白血滤液。

3、掌握7200型可见分光光度计的使用方法。

二、实验原理
葡萄糖是一种多羟基的醛类化合物。

其醛基具有还原性,与碱性铜试剂混合加热,葡萄糖分子中的醛基被氧化成羧基,,Cu2+即被葡萄糖还原成Cu+(Cu2O)而沉淀。

无蛋白血滤液中的葡萄糖和酸性钼酸盐溶液共热反应, Cu2O又把酸性钼酸试剂(Mo6+)还原成低价的蓝色钼化合物—钼蓝。

血滤液中葡萄糖的含量与产生的Cu2O成正比,而Cu2O的量与产生的钼化合物的量成正比。

可用比色法定量的测定。

3、实验仪器
1、25mL血糖管×3支;
2、血糖管橡胶塞×3个;
3、1mL胖肚吸管×1支;
4、100mL锥形瓶×2个;
5、漏斗架×1个;
6、普通漏斗×2个;
7、水浴锅×1个;
8、电炉×1个;
9、移液管 1mL×2支; 2mL×3支;5 mL×2支;
10 mL×1支; 10、滤纸×1盒;
11、吸耳球×2个;
12、7200型分光光度计×1台;
13、表面皿×1个
4、实验试剂
1、标准葡萄糖溶液(0.1mg/ml)
(11%葡萄糖母液:称取1.000g葡萄糖,溶于蒸馏水,稀释并定容至100ml。

(2葡萄糖标准液:取1.0ml葡萄糖母液于100ml容量瓶中,加蒸馏水定容。

2、碱性硫酸铜溶液
A液:无水碳酸钠35g,酒石酸钠13g及碳酸氢钠11g溶于蒸馏水,稀释定容至1000ml.
B液:硫酸铜晶体5g,溶于蒸馏水并定容至100ml。

临用时,A液:B液=9:1混合(体积比),混合液于冰箱中保存(4℃)。

3、10%钨酸钠溶液:称取钨酸钠10g,溶于蒸馏水并定容至100毫升。

4、0.33mol/LH2SO4溶液:于53ml蒸馏水中加入1ml的浓硫酸。

5、酸性钼酸盐溶液:
称取钼酸钠600g,用少量蒸馏水溶解后倾入2000ml 的容量瓶中,加蒸馏水至刻度,摇匀,倾入另一较大的试剂瓶中,加溴水0.5ml,摇匀,静止数小时后取上清夜500ml,于1000ml容量瓶中,徐徐加入225ml85%磷酸,边加边摇匀,再加25%硫酸150ml。

置暗处次日,用空气将剩余的溴赶去。

然后加99%醋酸75ml,摇匀,用蒸馏水稀释定容至1000ml,贮于棕色瓶中。

5、实验步骤
1、无蛋白血滤液的制备:
氏吸管吸取全血(已加抗凝剂)1ml,缓缓放入100ml锥形瓶中,加蒸馏水7ml,摇匀,溶血后(血液变为红色透明)加10%钨酸钠1ml,摇匀.。

再加0.33mol/L H2SO41ml,边加边摇,加毕充分摇匀,放置5~15分钟,至沉淀变为暗棕色(如不变色可再加0.33mol/L H2SO41-2滴)。

用干滤纸过滤。

先倾入少许,待滤纸湿润后在全部倒入,如滤液不清需重新过滤。

每毫升无蛋白血滤液相当于1/10ml全血。

2、血糖的定量测定:
1、取25ml的血糖管3支,编号。

第一支血糖管中加入2ml蒸馏水(空白管);第二支血糖管中加2ml标准葡萄糖液;用吸管吸取无蛋白血滤液2ml,放入第三支血糖管中。

2、然后向三支血糖管中各加入2ml新配制的碱性硫酸铜溶液,同时置于沸水浴中8分钟,取出,在流水中迅速冷却后,勿摇动,各加4ml酸性钼酸盐溶液。

3、一分钟后,用蒸馏水稀释至25ml,混匀,用7200分光光度计在420nm波长处比色,以空白管调节零点。

六、实验结果
样品A1(吸光度)标准液A0
(吸光度)

(吸光度)
10.1690.1300.000 20.1900.1350.000 30.1940.1280.000平均值0.1840.1310.000
m=A1/A2*C*10*100
m代表100ml全血中含血糖毫克数
C0代表标准液葡萄糖含量(0.1mg/ml)
A1代表样品液光吸收值
A0代表标准液光吸收值
所以可得出m=0.184/0.131*0.1*10*100=140.4580153···约等于140.458mg。

7、实验分析
1、实验过程中哪些操作可能影响实验结果的准确性?
在沉淀不完全时过滤,吸管中放出血液太快使大量血液黏在吸管内壁,或有亚铜离子氧化成铜离子,比色测量时也可能会出现误差。

2、实验中,血糖管有什么作用?
可减少亚铜离子与空气的接触,防止氧化成铜离子。

3、实验过程中,为什么要用流水冷却加入碱性硫酸铜液反应后的血糖管?
流水冷却比较稳定,可以迅速降温。

如不冷却会继续反应造成误差。

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