动物细胞培养常用方法

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动物组织和细胞的培养

动物组织和细胞的培养

(四)微囊化培养 (microcapsule culture)
• 微囊是用一种人造的半透膜 制成的多孔微球体,小分子 物质可以自由透过,而各种 酶、辅酶、离子交换剂、活 性炭及蛋白等大分子物质包 裹在其中不能逸出;
• 细胞生长在各自的 微小环境里受到一 定的保护。 • 减少了搅拌对细胞 产生的剪切力 • 由于环境的改善, 细胞得到很好的生 长,代谢产物浓度 增加,纯度提高。
具体方法如下:
1)吸出培养瓶内旧培养液; 2)加人胰蛋白酶和EDTA混合液盖满瓶 底对细胞进行消化; 3)吸出消化液,加人Hanks液,洗去 残留的消化液。 4)加入培养液,用吸管轻轻吹打瓶壁, 使细胞脱落制成悬液,计数后记录 其浓度; 5)重新接种培养
Tissue culture flasks
• 例2: 将分离的胰岛细胞培养
1~3天后,按1.75×103 cells/ml浓度悬在1.5‰海 藻酸钠溶液中制成微囊,按 4×103个微囊/只老鼠,腹 腔植人培养一段时间后,老 鼠血糖下降,保持了一年。
二、影响动物细胞体外培养的环境 因素
1、培养温度 • 哺乳类细胞的最适培温度37℃,鸡 细胞在39~42℃,昆虫类细胞25~ 28℃,冷水鱼细胞23℃,温水鱼 26℃。
• 制备动物细胞微囊所用的材料,主 要是海藻酸(ALG)和多聚赖氨酸 (PLL). • 海藻酸和多聚赖氨酸分子量的大小 及其溶液的浓度;细胞与海藻酸钠 混合的时间;溶液的pH,温度等都 会影响微囊膜直径的大小.
微囊制作
1)分离好的细胞悬浮在1.0 %~1.2%的海藻酸钠液 中,细胞终浓度达到 1×107cells/ml; 2)细胞悬浮液经微囊发生 器制成微滴,将微滴加人 1.3%CaCl2溶液后成凝胶球, 10分钟后,去除上清收集 胶球; 3)加人0.05%的聚赖氨酸, 微球胶体颗粒表面包裹一 层膜.

[整理].动物细胞培养技术

[整理].动物细胞培养技术

[整理].动物细胞培养技术动物细胞培养技术绪论部分1)细胞的基本概念:细胞(包括单个个体)在体外条件下的⽣长,成为细胞培养。

2)组织培养:其本意是指从体内取出组织和细胞,模拟体内⽣理环境,在⽆菌,适当温度和⼀定营养条件下使之⽣存和⽣长并维持其结构和功能的⽅法。

(组织培养从⼴义上说分为动物组织营养和植物组织营养两⼤类。

)组织培养常⽤术语贴壁依赖性:为细胞需贴附于第五或⽀撑物上才能⽣长的性质。

细胞⼀代时间:单个细胞连续两次分裂的时间相隔,可借助显微电影照相术来精确确定。

群体倍增时间:在对数⽣长期进⾏计算的细胞增加⼀倍所需时间。

克隆;单个细胞通过有丝分裂形成的细胞群体,他们的遗传特性相同。

原代培养:从体内取出细胞或组织的第⼀次培养。

传代或传代培养:不论是否稀释,将细胞从⼀个培养瓶转移或移植到另⼀个培养瓶。

细胞杂交:两个或多个不同的细胞融合导致⼀个含核体的形成。

细胞培养:其本意是指从体内取出组织和细胞,模拟体内⽣理环境,在⽆菌、适当温度和⼀定营养条件下,使之⽣存和⽣长并维持其结构和功能的⽅法。

细胞培养的作⽤:在病毒学上的作⽤(病毒的分离细胞培养在药物学上的作⽤(新药的制备、药效的鉴别、病毒疫苗的⽣产、单抗的制备);细胞培养在肿瘤学研究上的作⽤(例如化疗中的药物使⽤剂量、癌症研究等)细胞培养在细胞功能与分化研究中的应⽤;细胞培养在免疫学中的应⽤1)Harrison⾸先解剖出蛙胚原始脊髓节段进⾏培养。

哈⾥森悬滴培养法。

建⽴起⼀套合理的⽆菌操作技术。

(淋巴)⼀般皆公认Harrison为“组织培养之⽗”,凹玻⽚悬滴制备培养技术,对⽣物学知识的研究做出⼗分重要贡献。

2) Carrel 反复传代的⽅法使细胞系存活34年。

他采⽤的⽆菌技术,以及后来设计的培养瓶(卡⽒瓶,Carrel flask)等都是对组织培养的重要贡献。

特别是他的连续培养,为后来的传代培养奠定了基础。

30年代传⼊我国,50年代逐渐发展细胞培养设施和基本条件(⼀)细胞实验室基本原则:防⽌微⽣物污染和有害物的影响。

动物细胞大规模培养的方法

动物细胞大规模培养的方法

动物细胞大规模培养的方法《动物细胞大规模培养的方法》一、综述动物细胞在医学、生物制药和科学研究中发挥着重要作用,但其大规模培养至今仍是一个挑战。

近年来,随着生物技术的发展,细胞可以通过人工方法大规模培植,从而获得较高纯度的大规模细胞所需要的成本降低,从而实现药物研发、检测疾病等基础研究的进一步深入和拓展。

本文就大规模培养动物细胞的方法进行综述。

二、培养基1.细胞培养基细胞培养基是支持细胞增殖和生长所必需的基础,可以提供必要的营养和生长因子。

常见的细胞培养基有Eagle's minimal essential medium(E的最小必需培养基)、RPMI-1640培养基、DMEM-F12-K Medium (F-12)、MCDB-153培养基等。

2.表面活性剂表面活性剂是指在水溶液(或其他溶剂)中构成有机分子表面的有机化合物,有良好的乳化和表面活性,能有效地改善细胞在培养基和细胞外液中的分布和添加,可以改善细胞的生长和健康状态。

三、培养方法1.平板培养法平板培养是一种简单的培养方法,它是将细胞悬浮液分散均匀的滴在平面上,使细胞生长形成单层。

平板培养的优点是简单易行和细胞分散均匀,但缺点是细胞的生长速度较慢。

2.悬浮培养悬浮培养是利用细胞的自我复制和细胞的浮力来保持细胞在溶液中的悬浮状态,悬浮培养有利于细胞的大量增殖,并且因为总容积的增加,细胞的吸收和新陈代谢作用也能够得到很好地利用。

3.体外培养体外培养是指把细胞从原位割取,将其培养在人工条件下的培养基中,以促进其增殖、发育和分化。

体外培养的优点是可以满足细胞增殖和要求,但缺点是需要大量的实验空间和费用,而且容易受到室温和湿度等条件的影响。

四、细胞增殖1.细胞再分化细胞再分化是指在细胞培养基中添加适当的分化因子来实现细胞功能的再分化,以达到大规模细胞增殖的目的。

常见的分化因子包括细胞因子、生长因子、激素和其他物质,如蛋白质、碳水化合物等,这些物质都能够影响细胞的增殖和发育。

动物细胞培养

动物细胞培养

动物细胞培养
动物细胞培养是一种重要的生物技术手段,广泛应用于医药、生物学研究、食
品工业等领域。

通过细胞培养,可以获取大量同质的细胞群体,为疾病治疗、新药研发提供重要的支持。

动物细胞培养的原理
动物细胞培养是将动物组织或细胞在人工培养基中进行维持、增殖、传代等过程。

培养基通常包括营养物质、生长因子、激素等成分,提供细胞生长所需的营养和环境。

动物细胞培养的步骤
1.细胞来源:从动物体内收集组织样本,获得原代细胞。

2.细胞分离:通过消化酶等手段将组织分离成单个细胞。

3.传代培养:将分离的细胞在培养基中培养,定期传代以增殖细胞数
量。

4.检测与分析:对培养的细胞进行检测、分析,确保其健康状态。

动物细胞培养的应用
1.生物医学研究:细胞培养在癌症、遗传疾病等方面的研究中发挥重
要作用。

2.药物研发:通过细胞培养可以进行药物筛选、毒性测试等工作。

3.食品工业:利用细胞培养技术可以生产细胞培养肉等食品。

动物细胞培养的发展
随着生物技术的不断发展,动物细胞培养技术也在不断创新和提升。

新的培养
基配方、生长因子的发现以及工程技术的应用,使得动物细胞培养在医学和生物学领域有着广阔的应用前景。

动物细胞培养作为一种重要的生物技术手段,将继续在各个领域发挥重要作用,为人类健康和科学研究进步做出贡献。

动物细胞培养基本操作

动物细胞培养基本操作

实验一动物细胞培养细胞培养是用无菌操作的方法将动物体内的组织(或器官)取出,模拟动物体内的生理条件,在体外进行培养.使其不断地生长、繁殖,人们借以观察细胞的生长、繁殖、细胞分化以及细胞衰老等过程的生命现象。

细胞培养的突出优点,一是便于研究各种物理、化学等外界因素对细胞生长发育和分化等的影响;二是细胞培养便于人们对细胞内结构(如细胞骨架等)、细胞生长及发育等过程的观察。

因而细胞培养是探索和指示细胞生命活动规律的—种简便易行的实验技术,同时我们也不可忽略的另一个因素,那就是它脱离乐生物机体后的—些变化。

细胞培养技术目前已广泛地被应用于生物学的各个领域。

如分子生物学、细胞生物学、遗传学、免疫学、肿痛学及病毒学等为此有必要使学生在细胞培养方面得到一些初步的感性知识,了解动物细胞培养的基本操作过程,观察体外培养细胞的生长特征,对原代细胞与传代细胞有一个基本概念。

本实验分两次进行.即清洗与消毒和传代细胞的培养与观察。

Ⅰ清洗与灭菌一、实验目的能独立地进行用于细胞培养的各种器皿的清洗与消毒,掌握干热灭菌法、湿热灭菌法和滤过除菌法的操作,了解化学消毒法的使用方法。

二、实验原理清洗与消毒是组织培养实验的第一步,是组织培养中工作量最大,也是最基本的步骤。

体外培养细胞所使用的各种玻璃或塑料器皿对清洁和无菌的要求程度很高。

细胞养不好与清洗不彻底有很大关系。

清洗后的玻璃器皿,不仅要求干净透明,无油迹,而且不能残留任何物质。

如有毒的化学物质,哪怕残留0.1个,也可能影响细胞生长。

灭菌手段的选择十分重要,对不同的物品需采用不同的灭菌方法。

假如选用的方法不对,即使达到了无菌却使被灭菌药品丧失了营养价值、生物学特性或其他使用价值也不行。

以下在每种灭菌步骤中都介绍其使用范围。

三、实验材料、用品材料:无臭氧型紫外灯,微孔滤膜(直径25):孔径为0.22μm,微孔滤膜(直径90):孔径为0.22 μm,过滤器(直径25)。

药品:70%或75%酒精,0.1%新洁尔灭,煤酚皂溶液(来苏儿水),0.5%过氧乙酸,乳酸,37%甲醛,高锰酸钾,NaOH,盐酸,重铬酸钾,浓硫酸(工业),DEPC水[体积分数0.1%的焦炭酸二乙酯(diethylpyroearbonate)]。

动物细胞培养方法

动物细胞培养方法

动物细胞培养方法
动物细胞培养是一种常用的实验手段,广泛应用于细胞生物学、药物研发、生物医学研究等领域。

以下是一般性的动物细胞培养方法:
1.细胞系的选择:选择合适的动物细胞系是动物细胞培养的第一步。

细胞系的选择要考虑细胞类型、来源、生长特性和用途等因素。

2.细胞培养基的准备:准备适用于所选细胞系的培养基。

培养基包括基本培养基和补充物,如生长因子、抗生素等。

不同的细胞系需要不同的培养基。

3.细胞的解冻:从冷冻保存的细胞库中取出细胞,进行解冻。

解冻过程要尽可能快速,以减少细胞对冷冻损伤的敏感性。

4.细胞传代:当细胞达到一定的密度时,需要将其传代,以维持细胞的生长状态。

传代过程包括细胞的分离、计数和重新接种。

5.细胞培养条件的控制:控制培养条件,包括温度、湿度、CO2浓度等。

通常细胞培养箱会提供稳定的培养环境。

6.细胞的观察和检测:定期观察细胞的形态、生长状态,并进行必要的细胞检测,如细胞计数、细胞周期分析等。

7.防止细胞污染:严格遵循无菌操作规程,防止培养物受到细菌、真菌、支原体等的污染。

使用无菌操作室和经过无菌处理的实验器材。

8.制备细胞冻存物:定期制备细胞冻存物,以备将来使用。

冻存物的制备需要使用适当的冻存液和合适的冷冻保存温度。

9.特殊操作:针对具体实验需求,可能需要进行细胞转染、感染、药物处理等特殊操作。

在进行动物细胞培养时,实验者需具备丰富的培养经验和相关技能,同时需按照实验室的标准操作规程进行操作,以确保实验的准确
性和可重复性。

动物细胞工程的主要技术(细胞培养)

动物细胞工程的主要技术(细胞培养)

有关概念
细胞贴壁: 培养液中分散的动物细胞,置于适宜的条件下, 能够分裂,这些细胞贴附在培养瓶上,成为细胞贴 壁生长。 细胞的接触抑制: 当贴壁细胞分裂生长到表面相互接触时,细胞就 会停止分裂增殖的现象。
相关问题
1.为什么选用动物胚胎或幼龄个体的器官和组织 做动物细胞培养材料? 胚胎组织或幼龄动物的组织或器官分裂、增殖旺盛 2.为什么培养前要将组织细胞分散成单个细胞? 分散成单个细胞便于物质交换,使营养物质吸 收及代谢废物排出更容易,利于细胞生长蛋白质, 易被胰蛋白酶催化分解,从而使细胞分离开。
相关问题
4.培养的细胞为何贴壁生长? 大多数组织细胞不适应悬浮生长,它们必须在固定 的表面生长和分裂 5.动物细胞培养能否像植物组织培养那样最终培 养成生物个体? 不能,动物细胞培养只能使细胞数目增多,不能发 育成新的动物个体
二 动物体细胞克隆技术
1.概念:是将动物的一个细胞的细胞核移 入一个已经去掉细胞核的卵细胞中,使其 重组并发育成为一个新的胚胎,这个新的 胚胎始终发育为动物个体。

有关概念
细胞株:传代培养的细胞一般传至10代左右 细胞生长停滞,大部分细胞衰老死亡,少数细胞 存活到40~50代,这种传代细胞为细胞株。 细胞系:细胞株传代至50代后又出现细胞生 长停滞状态,只有部分细胞由于遗传物质的改变, 使其在培养条件下可以无限制传代,这种传代细 胞为细胞系。 细胞株和细胞系的区别: 细胞株传代在 40~50代内,遗传物质没有改变;细胞系无限传 代下去,遗传物质改变。
专题2
细胞工程
概念
动 物 细 胞 工 程 常用 技术
应用细胞学的方法,按照人们的 需要和预定的设计,有目的、有 计划地保存、改变动物细胞和创 造新的动物细胞,进而培育成新 的物种或者品种的一门科学技术。 动物细胞培养(基础) 动物细胞融合 单克隆抗体 动物体细胞克隆技术

常用的五种动物细胞培养方式

常用的五种动物细胞培养方式

•一、半连续式培养1.半连续式培养又称为重复分批式培养或换液培养。

采用机械搅拌式生物反应器系统,悬浮培养形式。

在细胞增长和产物形成过程中,每间隔一段时间,从中取出部分培养物,再用新的培养液补足到原有体积,使反应器内的总体积不变。

这种类型的操作是将细胞接种一定体积的培养基,让其生长至一定的密度,在细胞生长至最大密度之前,用新鲜的培养基稀释培养物,每次稀释反应器培养体积的1/2~3/4,以维持细胞的指数生长状态,随着稀释率的增加培养体积逐步增加。

或者在细胞增长和产物形成过程中,每隔一定时间,定期取出部分培养物,或是条件培养基,或是连同细胞、载体一起取出,然后补加细胞或载体,或是新鲜的培养基继续进行培养的一种操作模式。

剩余的培养物可作为种子,继续培养,从而可维持反复培养,而无需反应器的清洗、消毒等一系列复杂的操作。

在半连续式操作中由于细胞适应了生物反应器的培养环境和相当高的接种量,经过几次的稀释、换液培养过程,细胞密度常常会提高。

2.半连续式特点:·培养物的体积逐步增加;·可进行多次收获;·细胞可持续指数生长,并可保持产物和细胞在一较高的浓度水平,培养过程可延续到很长时间。

该操作方式的优点是操作简便,生产效率高,可长时期进行生产,反复收获产品,可使细胞密度和产品产量一直保持在较高的水平。

在动物细胞培养和药品生产中被广泛应用。

二、连续式培养1.连续式培养是一种常见的悬浮培养模式,采用机械搅拌式生物反应器系统。

该模式是将细胞接种与一定体积的培养基后,为了防止衰退期的出现,在细胞达最大密度之前,以一定速度向生物反应器连续添加新鲜培养基;同时,含有细胞的培养物以相同的速度连续从反应器流出,以保持培养体积的恒定。

理论上讲,该过程可无限延续下去。

2.连续培养的优点是反应器的培养状态可以达到恒定,细胞在稳定状态下生长。

稳定状态可有效的延长分批培养中的对数生长期。

在稳定状态下细胞所处的环境条件如营养物质浓度、产物浓度、pH值可保持恒定,细胞浓度以及细胞比生长速率可维持不变。

动物细胞培养技术

动物细胞培养技术

3.细胞运输
1冷冻储存运输2充液法 1)选生长良好的细胞,待接近或刚连接成片时去掉培养液,充新培养液,液量达到瓶颈 部,拧紧螺帽,保留微量空气; 2)妥善包转运送,瓶口用胶带密封,并用棉花等做防震防压处理。 3)到目的地后,倒出大部分培养液,仅保留维持细胞生长所需液量,置于37*c培养,次 日传代
1、原代培养基
原代培养基也称初代培养基,即从动物机体内取出组织接种培养到第一 次传代阶段,一般持续一到四周。此期的细胞移动活跃,可见细胞活 跃,可见细胞分裂,但不旺盛。原代培养的细胞于体内相应的细胞性 状相似,更能代表其来源组织的细胞类型及组织特异性。
2、传代期
初代培养细胞一经传代后便改称为细胞系。此期最长,细胞增殖旺盛, 能维持二倍体核型,呈二倍体核型的细胞称二倍体细胞系。为保持二 倍体细胞性质应在初代培养期或传代后早期冷冻。如不冷冻则要反复 传代。一般,传代十至五十次左右,细胞增殖逐渐减慢,甚至停止, 进入衰退期。
3、衰退期
衰退期的细胞虽然能存活,但增殖很慢并逐渐停止,进而发生衰退死亡
传代细胞由于目中因素的影响,可能发生自发转化,其标志 是细胞获得永生性或恶性性。细胞永生性也称不死性,即 细胞获得永久性增殖能力,这样的细胞群体称无限细胞系。 细胞获不死性后,核型大多变成异倍体。转化细胞除了比 正常细胞能分裂更多的代数之外,还具有不受细胞密度的 影响,不具有接触抑制现象和细胞形状不规则,出现异常 染色体的特性。转化后的细胞也可能具有恶性性质。
胰蛋白酶作用于与赖氨酸或精氨酸相连接的肽键,除去细
胞间粘蛋白及糖蛋白,影响细胞骨架,从而使细胞分离。
2、传代培养
当细胞持续生长增殖一段时间到达一定的细胞密度后,就应 当将细胞分离到新的培养器皿并补充新的培养培养液进行 培养,即为细胞的传代培养。在首次培养应注意以下几点: 1细胞没有生长到足以覆盖瓶底壁的大部分表面以前,不 要急于传代,2原代培养时细胞多为混杂生长,上皮样细 胞和成纤维样细胞并存的情况很多见,传代时不同的细胞 有不同的传代时间,因而要根据需要注意观察并及时进行 处理,3首次传代时细胞接种数量要多些,使细胞尽快适 应新的环境而李宇细胞生存和增殖。 贴壁细胞的传代大都采用酶消化法来进行。部分贴壁生长的 细胞可用直接吹打或离心分离后传代。悬浮细胞可直接传 代。

动物细胞培养技术

动物细胞培养技术

克隆环分离克隆图解
动物细胞的大规模离体培养技术
动物细胞的大规模培养是在生物反应器中高密度大量培 养有用的动物细胞以产生珍贵生物制品的技术。动物细胞的 大规模培养与实验室常规培养的主要区别,不仅表现在培养 规模的不同,而且还表现在所采用的培养的方式及培养工艺 的不同。 目前已开发出了一些各具特点的适用于动物细胞大规模 培养的技术和系统。 1、气升式培养系统 2、微载体培养系统 3、中空纤维培养系统 4、微囊培养系统
2、常规冷冻方法 动物细胞冻存和复苏的基本原则是慢冻快融。慢冻结冰在 细胞外形成,因此不致损害细胞。不同细胞的最适冻存速率、 冻存过程、冻存保护剂种类和用量等不同。目前广泛应用的是 二步冻结法,即先将细胞慢速冷冻至一定温度,如-30℃,使 细胞外冻结,胞内脱水,在液氮中长期储存。 复苏是以一定的复温速度将冻存的培养物恢复到常温的过 程。快速化冻可防止损害细胞,具体操作是将装有细胞的冻存 管从液氮中取出,立即投入37℃水浴中化冻,以避免再次结冰。 由于DMSO等保护剂在常温下对细胞有害,故在细胞复苏解冻后 要及时洗掉冷冻保护剂。 3、玻璃化冻存方法 玻璃化冻存法对动物细胞、皮膜和角膜等组织,尤其胚胎 等的保存也有良好的效果。下面以人单核细胞为例介绍动物细 胞的玻璃化冻存方法。 3.1、冻存过程 3.2、玻璃化冻存细胞的复苏
细胞系和细胞克隆
一、细胞株(系)的建立
由于细胞系和细胞株组成比较均一,生物性状比较清楚, 能传代培养已被广泛应用于生命科学研究和生物医药的生产。 常用的有Hela细胞系、Vero细胞系、BHK细胞系、CHO细胞系等。
二、细胞克隆技术 细胞克隆又称单细胞克隆或单细胞培养,即把单个细 胞从群体内分离出来单独培养,使之繁衍成一个新的细胞群 体的技术。理论上,各种培养细胞都可用来进行克隆培养, 但实际上,能够进行克隆培养的细胞一般只是一些活力强、 增殖能力强以及对体外生长环境适应性强的细胞。原代培养 细胞和有限细胞系克隆培养比较困难,无限细胞系、转化的 细胞系和肿瘤细胞则比较容易。单细胞克隆技术有多种方法, 常用的有稀释铺板法、饲养层克隆法、胶原模板或血纤维蛋 白膜层板克隆法、琼脂克隆法等

动物细胞培养常用技术

动物细胞培养常用技术

动物细胞培养常用技术动物细胞培养中山大学实验动物中心前言1885年Roux最早尝试使组织离体培养,材料是鸡胚神经板,采用生理盐水为培养液,并首次采用组织培养这个术语。

1907年Harrison 和1912年Carrel开始把组织培养作为一种方法,用于研究离体动物细胞的培养。

由于组织培养在医学研究中的应用,如抗病毒疫苗的生产等,现已经逐渐发展成为一门精细技术。

许多细胞株、细胞系的培育成功,尤其是以人的肿瘤组织为材料建立的各种细胞系,如Hela细胞系(Gey,1952),可用来进行一系列研究,更加促进了组织培养技术的发展。

组织培养中热门的研究领域1)细胞内部的活动,如DNA的复制和转录、蛋白质合成、能量代谢;2)细胞内部的流动,如RNA从细胞核向细胞质方向运转,激素受体复合物的易位等;3)生态学,如营养、感染、病毒或化学诱变、药物作用;4)细胞与细胞之间的相互作用,如胚胎诱导、细胞群体的动力学等。

组织培养的分类及基本概念分类:1.组织培养(Tissue Culture) 指的是从体内取出组织,在模拟体内生理环境,无菌、适当温度和一定营养条件下,使之生存和生长并维持其结构和功能的方法。

2.细胞培养(Cell Culture) 培养物是单个细胞和细胞群。

3.器官培养(Organ Culture)培养的是器官的原基、器官的一部分或整个器官,使之在体外生存、生长和保持一定功能的方法。

组织培养的细胞生物学特点:1.体内外细胞的差异:当人工条件和体内实际情况不完全相同时,细胞在体外培养后,一旦失去神经体液调节和细胞间相互影响,生活在缺乏动态平衡的环境中,发生变化则是必然。

细胞最多见的表现是:返祖(Atavism)现象,即失去原有组织结构和细胞形态、分化减弱或不显、细胞趋单一化、不死性、恶性状。

2.细胞增殖和分化:是细胞生命进化中所获得的基本属性,增殖使细胞数量增多;分化使机体结构和功能多样化,最后演变成完整的有机体。

动物细胞工程常用的技术手段

动物细胞工程常用的技术手段
用核移植的方法得到的动物称为克隆动物
核移植
胚胎细胞核移植
体细胞核移植 〔难度高〕
受体细胞:MⅡ期的卵 母细胞
第十三页,共四十五页。
A母绵羊 卵细胞
B母绵羊 乳腺细胞
多莉羊的培育过程
细胞质
细胞核
细胞核移植
融合后的卵细胞
卵裂
早期胚胎
胚胎移植
C母绵羊子宫 妊娠 分娩 多莉羊
第十四页,共四十五页。
克隆动物的研究意义
D.分裂增殖的能力强
第四十三页,共四十五页。
4.动物细胞培养与植物细胞培养的重要区别在于---
---------------------------〔
〕A
A.培养基不同;
B.动物细胞培养不需要在无菌条件下进行;
C.动物细胞可以传代培养,而植物细胞不能;
D.动物细胞能够大量培养,而植物细胞只能培
养成植株。
胰蛋白酶 单个细胞
细胞
剪碎
制成 悬浮
去掉组织

间蛋白
无限传代
细胞系
动物细胞培养不能
最终培养成生物体
第八页,共四十五页。
细胞株
动物细胞培养条件:
1、无菌、无毒的环境
〔添加一定量的抗生素,定期更换培养液〕
2、营养
〔葡萄糖、氨基酸、无机盐、维生素、动物血清
等。〕3、温度和PH来自保证细胞顺利的生 长增殖
36.5+〔-〕0.5度, 7.2-7.4
培育成功,证明动物细胞也具


⑸请举例说明克隆绵羊培育成 功的实际意义: 。
黑面绵羊去 白面绵羊卵 核卵细胞 腺细胞核 a
重组细胞 电脉冲处理
早期胚胎 b
另一头母绵羊子宫

动物细胞培养技术

动物细胞培养技术

(微载体) , 使细胞在微载体表面附着和生长, 并通过不
断搅拌使微载体保持悬浮状态。培养液中大量的微载体 为细胞提供了极大的附着表面, 1 g 微载体其比表面积
可达6 000 cm2 , 从而可实现细胞的高密度培养。
微载体的直径在60~250μm , 由天然葡聚糖、凝胶 或各种合成的聚合物组成, 如聚苯乙烯、聚丙烯酰胺等。 由这些材料及其改良型制成的微载体主要参考了细胞的 粘附特性, 在其表面带有大量电荷及其他生长基质物质, 因而有利于细胞的粘附、铺展和增殖。采用微载体培养 具有以下优点: ①比表面积大, 单位体积培养液的细胞产 率高; ②采用均匀悬浮养, 无营养物或产物梯度; ③可用 简单显微镜观察微载体表面的生长情况; ④细胞收获过 程相对简单, 劳动强度小; ⑤培养基利用率高, 占地面积 小; ⑥放大容易, 国外已有公司以1 000 L 规模培养人的 二倍体细胞来生产β- 干扰素。但其缺点是搅拌桨及微珠 间的碰撞易损伤细胞; 接种密度高; 微载体吸附力弱, 不 适合培养悬浮型细胞。
胶囊化培养的优点是: ①可防止细胞在培养过程中受 到物理损伤; ②活性蛋白不能从囊中自由出入半透膜, 从 而提高细胞密度和产物含量, 并方便分离纯化处理。缺 点是: ①微囊制作复杂, 成功率不高; ②微囊内死亡的细 胞会污染正常产物; ③收集产物必须破壁, 不能实现生产 连续化。
2. 固定化方法的选择
其中。血纤维蛋白可以促进细胞贴壁, 因此两种类型的细胞都适
于培养。而且基质高度多孔, 允许大分子物质的自由扩散。但机 械强度差, 对剪切力很敏感。
1. 3
中空纤维
中空纤维细胞培养技术是模拟细胞在体内生长的三维状态, 利
用一种人工的“毛细管”即中空纤维给培养的细胞提供物质代谢

动物细胞培养常用方法

动物细胞培养常用方法

一.细胞增殖周期(cell proliferatinal cycle)概念细胞周期是描述细胞增殖和分化交替发生变化的概念。

而细胞增殖周期主要是从细胞增殖角度赋予细胞活动的概念,两者不应混为一谈。

细胞增殖周期是指细胞从一次分裂结束开始生长,到下一次分裂结束所经历的过程。

根据细胞增殖周期不同时期的生化特点,划分为四个连续的时期,即G1期(DNA合成前期),S期(DNA合成期),G2期(DNA合成后期),M期(有丝分裂期)。

如以G1期为起点,那么细胞增殖周期的各时期应循着G1-S-G2-M的顺序进行,G1、S、G2三期合称为细胞间期,此期完成细胞生长过程。

M期完成遗传物质的分配。

因此,细胞增殖周期=间期(G1期+S期+G2期)+分裂期(M期)。

二.培养细胞生命期(life span of culture cells)很多细胞特别是正常细胞,在体外的生存不是无限的,而是具有一个生命期。

索维培养细胞生命期,是指细胞在培养中持续增殖和生长的时间。

培养细胞的生命期与细胞的种类、性状和原供体的年龄、健康等情况有关。

人胚二倍体成纤维细胞,在不冻存和反复传代条件下,科传30~50代,相当于150~300个细胞增殖周期,能维持1年左右的生存时间,最后衰老凋亡。

如供体为成体或衰老个体,则生存时间较短;其他细胞如肝细胞或肾细胞,生存时间更短,仅能传几代或十几代。

只有当细胞发生遗传性改变,如获永生性或恶性转化时,细胞的生存期才可能发生改变。

正常细胞培养时,不论细胞的种类和供体的年龄如何,在细胞生命的全过程中,大致都经历以下三个阶段:原代培养期、传代期、衰退期。

三.培养细胞一代生存期培养细胞的生存空间和营养是有限的,当细胞增殖达到一定密度后,则需要分离出一部分细胞和更新营养液,否则将影响细胞的继续生存,这一过程叫传代(Passage或Subculture)。

每次传代以后,细胞的生长和增殖过程都会受一定的影响。

传代的频率或间隔与培养液的性质、接种细胞的数量和细胞增殖的速度等有关。

动物细胞的培养和生长技术

动物细胞的培养和生长技术

动物细胞的培养和生长技术,是生物学领域的一项重要技术。

它可以帮助生物学家更好地研究动物细胞的特性、生长过程和功能,从而为人们提供更好的医学支持和药物研发。

一、动物细胞的培养培养动物细胞需要选择合适的培养基和培养条件。

培养基是指一种能够满足细胞生长、分化和代谢等需要的营养液。

目前用于动物细胞培养的细胞培养基主要有两种,一种是定义培养基,另一种是复合培养基。

定义培养基是经过精确调配的,其中的各种元素和成分时不变的,能够精确控制细胞的生长与变化。

复合培养基则是将多种培养基成分混合在一起,适用于培养某些难以生长的细胞。

在选取培养基的时候,要考虑到细胞的来源和需求。

例如,不同种类的细胞需要的培养基成分可能有很大的不同,因此需要选择适合这种细胞生长的培养基。

二、动物细胞的生长动物细胞的生长是一个复杂的进程,需要合适的条件和环境。

在培养细胞的过程中,要注意控制以下几个方面:1、温度动物细胞生长的温度范围为37℃左右。

在培养细胞的过程中,需要控制好恒温箱的温度,以保证细胞的正常生长。

2、CO2在体内温度和CO2浓度相对稳定的情况下,细胞可以正常生长和分裂。

因此,在培养细胞的过程中,要控制好CO2浓度,一般设置为5%左右。

3、pH值动物细胞对pH值的适应范围比较窄,一般在7.2~7.4之间。

在培养细胞的过程中,要注意保持培养基的pH值,以避免对细胞生长产生不良影响。

4、细胞密度细胞密度是指每个培养皿中细胞的数量。

在培养细胞的过程中,要注意控制细胞密度的大小,避免出现超过存活数量以及空缺的情况。

三、动物细胞的常见培养技术1、单层培养单层培养是将细胞分散在培养皿表面上并逐渐生长成一层的技术。

这种技术适用于很多不同类型的细胞,如K562、HEK293等。

2、悬浮培养悬浮培养是将细胞在培养基中悬浮生长的技术,适用于一些不适合单层培养的细胞,如白细胞、淋巴细胞等。

3、三维培养三维培养是用一些支撑材料和培养基构建三维细胞组织的培养技术。

动植物细胞的培养

动植物细胞的培养

大规模培养的方法
1. 悬浮培养:即让细胞自由地悬浮于培养基内生长增殖。它适用于一切种类
的非贴壁依赖性细胞(悬浮细胞),也适用于兼性贴壁细胞。该培养方法的优
点是操作简便,培养条件比较均一,传质和传氧较好,容易扩大培养规模, 在培养设备的设计和实际操作中可借鉴许多有关细菌发酵的经验。不足之 处是由于细胞体积较小,较难采用灌流培养(perfused culture),因此细胞密 度一般较低。目前在生产中用于悬浮培养的设备主要是通气搅拌罐式生物
养箱中价值的生物制品,如病毒疫苗、干扰素、
单克隆抗体等。
2. 应用于基因工程(作受体细胞)。 3. 检测有毒物质,判断某种物质的毒性。 4. 培养正常或各种病变的细胞,用于生理、病理、药理
等方面的研究。
细胞的冻存和复苏
1. 细胞的冻存 细胞和整体生物一样,当温度降低时,它的代谢也降低,从而大大的延 长了它的存活期。因此目前为了保存细胞,都采用液氮低温(-196 ℃)冻存的 方法。用该法细胞可保存几年,甚至几十年。在冻存过程中,渗透压的改变 会影响到脂蛋白,使细胞膜破裂。为了防止电解质过分浓缩,可采用某些保 护剂,如甘油和二甲基亚砜。它们的相对分子质量低,溶解性好,容易渗入 细胞。在冷冻时,冷冻速度很重要,不能太快也不能太慢。太慢会产生冰晶 损伤细胞,太快不足以使水分排出。一般要求以 1℃/min 的速度下降为宜。 在无定速降温设备时,可按如下三种方法之一处理:①将安瓿(bù)放在 壁厚为 1.5 cm 的聚乙烯盒内,然后放在 -70℃ 冰箱内 2 h,再转入液氮。②先 将安瓿臵 4℃ 冰箱 4~5h 或过夜,再移至 -70℃ 冰箱内 2 h,再悬于液氮罐颈 口 1 h,最后浸人液氮。③放在冻存简易装臵内,里于液氮罐颈口,离液氮面 5~10 cm,2~3 h 后浸入液氮。
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一.细胞增殖周期(cell proliferatinal cycle)概念细胞周期是描述细胞增殖和分化交替发生变化的概念。

而细胞增殖周期主要是从细胞增殖角度赋予细胞活动的概念,两者不应混为一谈。

细胞增殖周期是指细胞从一次分裂结束开始生长,到下一次分裂结束所经历的过程。

根据细胞增殖周期不同时期的生化特点,划分为四个连续的时期,即G1期(DNA合成前期),S期(DNA合成期),G2期(DNA合成后期),M期(有丝分裂期)。

如以G1期为起点,那么细胞增殖周期的各时期应循着G1-S-G2-M的顺序进行,G1、S、G2三期合称为细胞间期,此期完成细胞生长过程。

M期完成遗传物质的分配。

因此,细胞增殖周期=间期(G1期+S期+G2期)+分裂期(M期)。

二.培养细胞生命期(life span of culture cells)很多细胞特别是正常细胞,在体外的生存不是无限的,而是具有一个生命期。

索维培养细胞生命期,是指细胞在培养中持续增殖和生长的时间。

培养细胞的生命期与细胞的种类、性状和原供体的年龄、健康等情况有关。

人胚二倍体成纤维细胞,在不冻存和反复传代条件下,科传30~50代,相当于150~300个细胞增殖周期,能维持1年左右的生存时间,最后衰老凋亡。

如供体为成体或衰老个体,则生存时间较短;其他细胞如肝细胞或肾细胞,生存时间更短,仅能传几代或十几代。

只有当细胞发生遗传性改变,如获永生性或恶性转化时,细胞的生存期才可能发生改变。

正常细胞培养时,不论细胞的种类和供体的年龄如何,在细胞生命的全过程中,大致都经历以下三个阶段:原代培养期、传代期、衰退期。

三.培养细胞一代生存期培养细胞的生存空间和营养是有限的,当细胞增殖达到一定密度后,则需要分离出一部分细胞和更新营养液,否则将影响细胞的继续生存,这一过程叫传代(Passage或Subculture)。

每次传代以后,细胞的生长和增殖过程都会受一定的影响。

传代的频率或间隔与培养液的性质、接种细胞的数量和细胞增殖的速度等有关。

接种细胞数量大,细胞基数大。

相同增殖速度条件下,细胞数量增加与饱和速度相对要快(实际上细胞接种数量大时细胞增殖速度比稀少时要快);连续细胞系和肿瘤细胞系比初代培养细胞增值快;;培养液中血清含量多时细胞增殖比少时快。

以上情况都会缩短传代时间。

所谓细胞“一代”一词,仅指从细胞接种到分离培养时的一段时间,这已成为培养工作中的一种习惯说法,它与细胞时代或倍增非同意含义。

如某一细胞系为第20代细胞,即指该细胞系已传代20次。

在细胞一代中,细胞能倍增3~6次。

细胞传一代后,一般要经过以下六个阶段:游离期、贴壁期、潜伏期、指数增长期、停滞期、衰退期。

四.无菌操作要求(一)实验前培养室和超净台的消毒。

在工作台面消毒时,切勿将培养细胞和培养用液用紫外线照射;工作台面上的用品不要过多或重叠放置,否则会遮挡射线,降低消毒效果;一些操作用具,如移液器、废液缸、污物盒、试管架等用75%酒精擦拭后置台内同时紫外线照射消毒。

(二)无菌操作工作区域应保持清洁与宽敞,必要物品,如试管架、移液器或吸管头等可以暂时放置,其他实验用品用完后应及时移出,以利气体流通。

试剂瓶口和外壁要用75%酒精擦拭后才能带人无菌操作台内。

超净台上的物品布局要合理,污物废液缸、酒精棉球缸在右侧位,酒精灯在中央区,试剂瓶在左侧位。

实验操作应在操作台中央无菌区域内进行,勿在边缘非无菌区域操作。

(三)洗手和着装:严格按照外科手术要求消毒着装,双手用肥皂洗净后,浸泡于消毒液中,并用75%的酒精擦拭。

(四)操作中,小心取出无菌实验用品,避免造成污染。

尽量减少手与器材的接触面,学会手指操作。

手指不能触及器材使用端及容器瓶口,如触及,需要更换或烧灼后再使用。

组织、细胞及培养板在未做处理和使用前,不要过早暴露于空气中。

(五)一切操作,如打开或封闭瓶口,安装吸管、注射器等,都要在酒精灯火焰前方进行。

瓶口、吸管、注射器等使用前要经过火焰烧灼后使用。

但要注意,金属器械不能在火焰中长时间烧灼,以防退火c另外,胶塞、橡皮乳头及塑料制品等细胞培养用品过火焰时也不能时间太长,以免烧焦产生有毒气体,危害细胞。

(六)试剂瓶顺风斜放在支架上,培养瓶、培养液瓶不要过早打开。

容器打开后,用手夹住瓶盖并握住瓶身,倾斜约45°角取用,尽量避免垂直放置以防止下落细菌的污染。

吸取液体前,瓶口和吸管应行火焰消毒,吸取液体时避免瓶口和吸管碰撞。

吸管不能混用,吸过培养液的吸管不能再烧灼,因残留在吸管内的培养液成分如蛋白质等烧焦后会产生有害物质,吸管再用时会将其带到培养基中。

不要在打开的容器正上方操作。

瓶口液滴不能倒回瓶内,液滴用于酒精棉球擦拭,瓶口再经火焰消毒。

(七)不同的细胞同时操作时,要专管专用,并要勤换吸管,防止扩大污染和细胞交叉污染。

(八)操作者动作要准确敏捷,尽量避免空气流动。

不要面向操作台讲话或咳嗽,避免唾沫将微生物带人超净台内,污染空气。

同时应注意自身的安全,对于来自人源性或病毒感染的细胞株应特别小心,并选择适当等级的无菌操作台(至少两级)。

操作过程中小心有毒性试剂,例如DMSO及TPA等。

实验者离开超净台时,立即用肘关节关闭侧窗口,避免无茵室内细菌随空气流人净化操作区。

五.高压蒸汽灭菌装置(一)使用方法1.首先将内层灭菌桶取出,再向外层锅内加入适量的水,使水面与三角搁架相平为宜。

2.放回灭菌桶,并装入待灭菌物品。

注意不要装得太挤,以免妨碍蒸汽流通而影响灭菌效果。

三角烧瓶与试管口端均不要与桶壁接触,以免冷凝水淋湿包口的纸而透入棉塞。

3.加盖,并将盖上的排气软管插入内层灭菌桶的排气槽内。

再以两两对称的方式同时旋紧相对的两个螺栓,使螺栓松紧一致,勿使漏气。

4.通电加热,并同时打开排气阀,使水沸腾以排除锅内的冷空气。

待冷空气完全排尽后,关上排气阀,让锅内的温度随蒸汽压力增加而逐渐上升。

当锅内压力升到所需压力时,控制热源,维持压力至所需时间。

5.到达灭菌所需时间到后,切断电源,让灭菌锅内温度自然下降,当压力表的压力降至0时,打开排气阀,旋松螺栓,打开盖子,取出灭菌物品。

如果压力未降到0时,打开排气阀,就会因锅内压力突然下降而发生意外事故。

(二)注意事项1.消毒过程中,操作者不能离开工作岗位,要定时检查压力及安全,防止意外事件发生。

消毒完毕后从压力蒸汽消毒器中取出的消毒好的物品(不包括液体),应立即放到60℃~70℃烤箱内烘干,再贮存备用,否则,潮湿的包装物品表面容易被微生物污染。

但如果消毒物中有液体时,一定要待消毒器冷却后方可打开消毒器的盖,不能先打开阀门放气,否则液体会溢出。

2.不同压力蒸汽所达到的温度不同,不同消毒物品所需的有效消毒压力和时间不同。

平衡盐溶液及其他需要灭菌的液体:121℃,10磅(68.95kPa),20min;布类、玻璃制品、金属器械等物品:121℃,15磅(103.42kPa)、20min。

六.使用血清的注意事项血清的质量、种类及使用的浓度都有可能影响细胞的生长,而不同批次的血清支持细胞生长的能力也不同,尤其是对克隆细胞的牛长,某些批次血清可能含有毒性或抑制细胞生长的物质。

因此,在购买大量血清之前,必须对血清支持细胞生长能力进行检测,包括接种率、生长曲线、维持细胞特性、无生物污染性等方面,然后再大量购买质量好的同一批号的血清,并注意以下几点:(一)需要长期保存的血清必须储存于-20℃或-70℃低温冰箱中,同时应避免反复冻融。

4℃冰箱中保存时间切勿超过1个月。

由于血清结冰时体积会增加约10%,因此,血清在冻入低温冰箱前必须预留一定的体积空间,否则易发生污染或玻璃瓶冻裂。

(二)一般厂商提供的血清为无菌,无需再过滤除菌。

如发现血清有悬浮物,则可将血清加入培养液内一起过滤,切勿直接过滤血清。

(三)瓶装血清解冻需采用逐步解冻法:-20℃或-70℃低温冰箱中的血清放人4℃冰箱中溶解1d,然后移入室温,待全部溶解后再分装。

在溶解过程中需不断轻轻摇晃均匀(小心勿造成气泡),使温度与成分均一,减少沉淀的发生。

切勿直接将血清从-20℃或-70℃直接放人37℃解冻,这样因温度改变太大,容易造成蛋白质凝集而出现沉淀。

(四)热灭活是指56℃,30min加热已完全解冻的血清。

加热过程中需规律摇晃均匀。

此热处理的目的是使血清中的补体成分灭活。

除非必须,一般不建议作此热处理,因为热处理会造成血清沉淀物显著增多,而且还会产生其他不明效应。

究竟灭活与否,以有利于实验为主。

切勿将血清在37℃放置太久,否则血清会变得浑浊,黏度增大,同时血清中的有效成分会被破坏而影响血清质量。

(五)血清中的絮状物主要是血清中的脂蛋白变性及解冻后血清中的纤维蛋白造成,这些絮状物不会影响血清本身的质量。

可3000r/min,离心5min去除,也可不用处理。

(六)采购血清时,最好先从供应商处索取样品进行试验,选定一批后就要保留足够使用6个月至1年的量,直至用到另一批经过预先试验的样品代替。

七.基本培养基的应用基本培养基只能维持细胞的生存,想要使细胞生长和增殖,还需补充部分天然培养基和一些补充成分,效果才更好。

主要是牛血清、谷氨酰胺等。

此外,为防止污染,还经常加一定的抗菌素。

补加了上述物质的培养基叫完全培养基。

按其血清量的多少又分为生长液和维持液。

由于培养液是细胞赖以生存的环境,制备过程要操作严格,避免混入杂质。

使用的成分应精心选择,必须用质量最优的试剂,容器要仔细清洗和消毒。

八.合成培养基的保存(一)液体培养基的保存:液体培养基应于4℃冰箱避光保存,实验前放入37℃预热。

液体培养基中的L-谷氨酰胺会随着储存时间的延长而慢慢分解。

如果细胞生长不良,可以再添加适量L-谷氨酰胺。

液体培养基经冷冻后再经溶化时,其溶液的PH值会发生改变,溶液往往变碱,某些成分溶解也会对细胞生长不利。

故液体培养基一定要存放在冷藏箱中,通常液体培养基在冷藏条件下可存放6个月至一年。

(二)干粉培养基的保存:4℃冰箱避光保存,有效期36个月。

九.平衡盐溶液(Balanced Salt Solution,BSS)平衡盐溶液是细胞培养中常用的基本液体。

它主要是由无机盐、葡萄糖组成,其作用是维持细胞渗透压平衡,保持pH稳定及提供简单的营养。

主要用于合成培养基的基础液、取材时组织块的漂洗、细胞的漂洗、配置其他试剂等,最简单的BSS是Ringer。

平衡盐溶液的种类很多,常用的几种见表。

各种平衡盐溶液的主要区别在于氯化钠的浓度、离子的浓度及缓冲系统不同,可根据需要选用适当的个衡盐溶液。

最常用的BSS是D-Hank’s、Hank’s、Earle液。

D-Hank’s和Hank’s的一个主要区别是前者不含有Ca2+、Mg2+,因此D-Hank’s常用于配制胰酶溶液。

Hank’s和Earle液的主要区别是缓冲能力个同,Earle液含会高浓度的NaHCO3(2.2g/L),缓冲能力较强,适合于5%C02的培养条件,在空气水平的C02中,,溶液会变碱,Hank’s液仅含有0.35g/L NaHCO3,缓冲能力较弱,不能用于5%C02的环境,若放入C02培养箱,溶液将迅速变酸.使用时应注意。

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