秀丽隐杆线虫-泛耐药肺炎克雷伯菌感染模型的建立
基于秀丽隐杆线虫耐药菌感染模型筛选活性化合物

基于秀丽隐杆线虫耐药菌感染模型筛选活性化合物周雨朦;李继安;沈舜义;林惠敏;葛涵;朱春宝;陈代杰【摘要】目的建立秀丽隐杆线虫—甲氧西林耐药金黄色葡萄球菌感染模型,筛选抗耐药菌感染的活性化合物.方法利用耐药菌对线虫进行感染,建立液体条件感染和抗生素救治模型,通过观察感染线虫的存活情况,考察筛选样品活性.结果对456个样品进行考察,发现化合物sipi8294在浓度为16 μg/mL时,可以使感染线虫存活率达到60%左右.通过联合用药实验发现,8μg/mL sipi8294和8μg/mL氨苄西林联用,可以使线虫存活率提高到80%以上(vs.8μg/mL氨苄西林组,P<0.01).sipi8294与青霉素类药物联用,具有明显的增效作用.结论该模型能反映病原菌在线虫体内的耐药性,并可以用于化合物的筛选,发现具有抗感染或是辅助抗感染作用的化合物.【期刊名称】《中国抗生素杂志》【年(卷),期】2014(039)007【总页数】5页(P481-485)【关键词】筛选模型;秀丽隐杆线虫;耐药菌;抗感染【作者】周雨朦;李继安;沈舜义;林惠敏;葛涵;朱春宝;陈代杰【作者单位】中国医药工业研究总院,上海医药工业研究院,创新药物与制药工艺国家重点实验室,上海200040;中国医药工业研究总院,上海医药工业研究院,创新药物与制药工艺国家重点实验室,上海200040;中国医药工业研究总院,上海医药工业研究院,创新药物与制药工艺国家重点实验室,上海200040;中国医药工业研究总院,上海医药工业研究院,创新药物与制药工艺国家重点实验室,上海200040;中国医药工业研究总院,上海医药工业研究院,创新药物与制药工艺国家重点实验室,上海200040;中国医药工业研究总院,上海医药工业研究院,创新药物与制药工艺国家重点实验室,上海200040;中国医药工业研究总院,上海医药工业研究院,创新药物与制药工艺国家重点实验室,上海200040【正文语种】中文【中图分类】R378.1自青霉素被发现以来,抗生素在抗感染治疗中扮演了十分重要的角色。
秀丽隐杆线虫作为病原菌宿主模型的研究概述

制。目前,以 犆.犲犾犲犵犪狀狊 为 模 式 宿 主 进 行 研 究 的 病 原菌有真菌、细菌、病 毒 等,有 50 多 种(表 1)。 其 中
模式生物用于 研 究 动 物 发 育 和 行 为 的 模 式 动 物,现 研究较深入的 主 要 是 一 些 人 类 病 原 菌,如 铜 绿 假 单
已经发展成为研究动物发育、神经、衰 老、毒 理学、脂 肪沉积和天然免疫等方面 重 要 的 模 式 生 物 。 [1] 近 些 年来,以 犆.犲犾犲犵犪狀狊 作 为 病 原 菌 宿 主 模 型 来 研 究 病 原菌与宿主的相互作用逐渐成为了一个新的热点, 犆.犲犾犲犵犪狀狊作为 病 原 菌 宿 主 模 型 有 很 多 优 势,个 体 小 ,成 虫 的 长 度 大 约 1.5 mm;生 长 快 ,3d~3.5d 就
可以长成 成 虫;繁 殖 快,成 熟 的 线 虫 每 次 可 以 获 得 300个~350个 子 代 个 体;培 养 简 单,可 以 直 接 以 要 研究的细菌为食物[1];基因组 测 序 已 经 完 成;基 因 操 作系统完善,突变 体 数 量 齐 备,转 基 因 线 虫 和 RNAi 技 术 成 熟;表 型 易 观 察 等 特 征 。 [2] 目 前,犆.犲犾犲犵犪狀狊 作为病原菌宿 主 模 型,在 病 原 菌 的 致 病 机 制 和 宿 主 防御病原菌天然免疫等方面取得了一系列的进展。 本文就近些年 来 利 用 线 虫 作 为 宿 主 模 型,在 重 要 病 原菌的致病机制和线虫天然免疫信号通路取得的进 展进行综述。
鞠 守 勇 等 :秀 丽 隐 杆 线 虫 作 为 病 原 菌 宿 主 模 型 的 研 究 概 述
铜绿假 单 胞 菌 (犘狊犲狌犱狅犿狅狀犪狊犪犲狉狌犵犻狀狅狊犪,PA) 在自然界分布 广 泛,是 医 院 内 感 染 的 主 要 病 原 菌 之
肺炎克雷伯菌生物被膜的体外模型建立

lengesinstudiesofsurface-associatedmicrobialLife[ J] .JBacterial, 2004, 286:4427-4440. [ 3] STEPANOVICS, CIRKOVICI, MIJACV, eta1.Influenceoftheincubationtemperature, atmosphereanddynamiccondition(下转第 140 页 )
秀丽隐杆线虫抗菌药物筛选实验体系的建立

秀丽隐杆线虫抗菌药物筛选实验体系的建立徐阿晶;马婧;黄晓会;蒋兴浩【期刊名称】《实验室研究与探索》【年(卷),期】2018(037)002【摘要】建立了病原菌/药物/生物体三位一体的、多重视频指标的耐药菌敏感的抗菌药筛选评估研究体系,并利用该体系进行耐药病原菌治疗药物筛选.自制用于秀丽线虫培养、观察的多孔板摄影灯箱,用以观察被铜绿假单胞菌感染的秀丽隐杆线虫活动情况.将被感染的线虫置入抗菌药液培养,对秀丽线虫行为模式的视频内容进行记录与统计分析,从线虫死亡率判断药物的疗效.与对照组相比,铜绿假单胞菌感染模型组的秀丽线虫死亡率明显增加,而经抗菌药物(美罗培南)治疗后的秀丽线虫有效降低了死亡率.结论通过对秀丽线虫感染铜绿假单胞菌后的致死率进行评估,建立多重视频指标的耐药菌敏感药物筛选评估研究系统,应用于病原菌感染敏感药物快速简便筛选,及相应的抗菌作用机制研究.【总页数】5页(P28-31,34)【作者】徐阿晶;马婧;黄晓会;蒋兴浩【作者单位】上海交通大学医学院附属新华医院药剂科,上海200092;上海交通大学医学院附属新华医院药剂科,上海200092;上海交通大学医学院附属新华医院药剂科,上海200092;上海交通大学电子信息与电气工程学院,上海200240【正文语种】中文【中图分类】R915【相关文献】1.基于秀丽隐杆线虫耐药菌感染模型筛选活性化合物 [J], 周雨朦;李继安;沈舜义;林惠敏;葛涵;朱春宝;陈代杰2.秀丽隐杆线虫模型在中药活性筛选中的方法学考察 [J], 冀娇娇;袁将;张亚丽;王加利;全庆华;姬瑞芳;刘永刚3.具有反秀丽隐杆线虫捕食能力的根际细菌的筛选及其反捕食机理的研究 [J], 何清羚;刘星星;蒋秋悦;周晨昊;盛春;肖明4.耐药鲍曼不动杆菌感染秀丽隐杆线虫药物筛选模型的建立及应用 [J], 黄晓会;徐阿晶;俞静;陈其琪;费爱华;卜书红5.猪尿液中抗菌药物快速筛选拭子法的建立 [J], 伍金娥;宋士波;王玉莲;范盛先;常超;袁宗辉因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
浅谈秀丽隐杆线虫的模型建立与研究进程

浅谈秀丽隐杆线虫的模型建立与研究进程作者:邓阳来源:《大东方》2017年第04期摘要:秀丽隐杆线虫作为一种简单的多细胞真核生物由于具有较多优点成为科研者建立模型与药物靶点研究与新药研制的重点研究生物。
本文仅将近年来秀丽隐杆线虫的特点、模型建立及研究进展作简要整理与分析。
关键词:秀丽隐杆线虫;模型筛选建立一个较为优良的筛选模型,至少应具备良好的稳定性、重复性和可操作性这些特征。
在传统的药物研究中,实验者往往使用小鼠、兔子作为模型研究药物靶点和进行药物研发,但这些动物模型具有传代时间长、受环境因素影响较强、实验结果准确性低等缺点,而秀丽隐杆线虫作为一种操作较为简便的生物逐渐被尝试,优点也不断显现。
一、秀丽隐杆线虫(以下简称线虫)的“秀丽”之处1.易于培养。
实验过程中线虫一般在琼脂平板上或液体培养基中培养,温度在20℃左右,以E.coli OP50为食。
能在-80℃冰箱长期保存[1],因其稳定性较强而便于保存与使用。
2.繁殖快,且产后代数量多,成本较低。
其绝大多数个体为雌雄同体,雄虫仅占0.05%。
一只雌雄同体野生型线虫可以产出 300个左右的后代,其在产卵期产卵,优先选择雄性的精子。
若与雄虫交配,后代数则可多达1000个。
20℃时,野生型线虫发育一个世代仅需要3d左右,平均寿命为2-3 周。
3.线虫以动物整体作为实验对象,同时规模容易进行扩大研究。
线虫成虫体长仅1mm,体径30μm,结构相对简单。
从最初的培养板准备,到最终目的线虫筛选或特定量化性质的测定均可以实现全/半自动化,因此具有较高的操作性,准确率高。
目前研究者已完成线虫全基因组测序,并且这些基因中高达42%的基因与人类基因同源[1,2],其遗传背景相对清晰。
因此作为整体动物实验,当药物在体内的作用靶点不止一个时,往往能提供更准确的评估。
4.线虫身体透明,便于染色、观察与荧光标记。
这一特点已被用于基于线虫的高通量筛选并获得了成功[3]。
二、药物模型的建立1.抗衰老药物模型的建立自20世纪70年代开始,研究者便开始逐步将秀丽隐杆线虫模型用于人体衰老、神经生理学等领域的研究。
秀丽隐杆线虫在抗感染研究中的应用

秀丽隐杆线虫在抗感染研究中的应用胡淦海;李德东;赵兰雪;王彦;姜远英【摘要】目的介绍秀丽隐杆线虫(Caenorhabditis elegans)作为模式生物宿主在抗感染研究中的应用,为秀丽隐杆线虫在抗感染研究领域的进一步应用提供参考.方法参阅近年来国内、外相关文献,对其进行分析、整合及归纳.结果发现秀丽隐杆线虫具有生长周期短、成本低等特点,被广泛用于病原微生物致病机制的研究以及抗感染药物的研发.结论秀丽隐杆线虫在病原微生物致病机制研究和抗感染药物研发中有广阔的应用前景.【期刊名称】《药学实践杂志》【年(卷),期】2014(032)001【总页数】4页(P5-8)【关键词】秀丽隐杆线虫;病原微生物;致病机制;抗感染药物【作者】胡淦海;李德东;赵兰雪;王彦;姜远英【作者单位】福建中医药大学药学院中药学教研室,福建福州350108;第二军医大学药学院新药研究中心,上海200433;第二军医大学药学院新药研究中心,上海200433;福建中医药大学药学院中药学教研室,福建福州350108;第二军医大学药学院新药研究中心,上海200433;第二军医大学药学院新药研究中心,上海200433;第二军医大学药学院新药研究中心,上海200433【正文语种】中文【中图分类】R931.74长期以来,医药领域的科研人员大多应用哺乳动物研究病原微生物的致病机制,然而哺乳动物(如小鼠)作为宿主涉及到伦理学问题,实验周期长且成本高,无法满足大规模高通量、低成本的筛选要求。
无脊椎动物模型为病原微生物致病机制研究和抗感染药物研发提供了新方案。
目前比较成熟的无脊椎动物模型包括秀丽隐杆线虫(Caenorhabditis elegans,简称线虫)[1]、黒腹果蝇(Drosophila melanogaster)[2]、斑马鱼(zebra fish) [3]等。
线虫模型用于高通量筛选方面有得天独厚的优势,本文重点对线虫在抗病原微生物方面的研究进行综述。
秀丽隐杆线虫作为抗感染药物筛选模型的研究进展

秀丽隐杆线虫作为抗感染药物筛选模型的研究进展
史秋佳;杨剑萍;陈缵光
【期刊名称】《中国药理学通报》
【年(卷),期】2013(29)10
【摘要】秀丽隐杆线虫(Caenorhabditis elegans)作为一种经典的模式生物,具有虫体小、生命周期短、虫体透明等特点,易于培养和观察,近年来在生命科学领域得到了广泛的运用.该文综述了利用秀丽隐杆线虫作为微生物感染模型进行抗感染药物体内研究的进展,并展望了秀丽隐杆线虫作为模式生物的应用前景.
【总页数】5页(P1333-1337)
【作者】史秋佳;杨剑萍;陈缵光
【作者单位】中山大学药学院,广东,广州,510006;中山大学药学院,广东,广
州,510006;中山大学药学院,广东,广州,510006
【正文语种】中文
【中图分类】R-05;R363-332;R383.1;R965.1
【相关文献】
1.利用秀丽隐杆线虫构建抗菌物质体内筛选模型 [J], 陈丽红;孙利芹;王长海
2.血管生成抑制剂药物筛选模型的研究进展 [J], 王小燕;张文贤;冯康虎;方鹏飞;韩立文
3.药物筛选模型的研究进展 [J], 高彤;丁冠守;苏萍萍;常敏;周莹;陈纯
4.杆状线虫整体生物筛选模型用于抗感染药物的筛选——一种更好的药物筛选方法[J], 刘念
5.耐药鲍曼不动杆菌感染秀丽隐杆线虫药物筛选模型的建立及应用 [J], 黄晓会;徐阿晶;俞静;陈其琪;费爱华;卜书红
因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
秀丽隐杆线虫作为抗感染药物筛选模型的研究进展

近年来 , 线 虫 模 型 的发 展 推 进 了我 们 对 于 一些 感 染 类 疾
病 发病 机制的理解 , 而对疾病本质 的深刻认识 自然会 为感染 类 疾病的治疗提供启示 , 同时也 大大加速 了新 型抗 生素 的发
现。E w b a n k等 综述 了一些种族 抗菌 肽和蛋 白质 , 可作 为 候选新型抗生素 。并且 阐述 了线 虫感染 系统提供 新 型抗 生 素大规模体 内筛选 的可能性 。这些 发现 为新型抗 菌疗 法提 供 了广阔前景 。 2 . 3 利用秀 丽隐杆线 虫感染模 型研 究新型抗茵药物作 用机 制 减 弱 细 菌 的毒 力 是 抗 菌药 物 的 研 发 的一 个 靶 点 , H o
菌 , 革兰 阴性菌铜绿假单胞菌
、 沙 门菌 ¨ 等。
耐药铜绿假 单 胞菌 ( p s e u d o m o n a s a e r u g i n o s a ) 是 常 见 的 院内感染致病菌 。通过 制备耐药 铜绿假 单胞菌 感染 秀丽 隐
秀丽隐杆线 虫可以通过检测并且识别 T o x A介导的翻译抑制
染。
杆线虫平板 , 周雨朦等 建立 线虫 一耐 药铜绿 假单 胞菌感
染模 型 , 并且在感染线虫救治实验中发现 , 可 以排 除毒性 高 、
体 内外相关性差 的化合物 , 线虫感染 模型适合用于筛选抑制
耐药菌生长和繁殖 的化合物 。陈丽红 等 建立 了铜绿假单 胞菌 一 线 虫感染模 型 , 确 立 了最佳 操作参 数 , 并且研 究 了不 同抗 生素对线虫存 活时间的影 响 , 得 出了线虫感染程度 可量
2 . 2 利用秀丽隐杆线虫感染模型研究细菌致病机制和 线虫
免疫机 制 早 期研究 中, G a  ̄i n等 采 用线虫 作为 宿 主模
秀丽隐杆线虫免疫衰老指标的建立

生物技术进展2017年㊀第7卷㊀第3期㊀230~235CurrentBiotechnology㊀ISSN2095 ̄2341研究论文Articles㊀收稿日期:2016 ̄11 ̄30ꎻ接受日期:2016 ̄12 ̄29㊀基金项目:上海市浦江人才计划项目(14PJD001)资助ꎮ㊀作者简介:ɦ白志慧与王彦为本文共同第一作者ꎮ白志慧ꎬ硕士研究生ꎬ研究方向为分子免疫药理ꎮE ̄mail:bzh_cat@126.comꎮ王彦ꎬ副教授ꎬ研究方向为抗感染药物药理ꎮE ̄mail:wangyansmmu@126.comꎮ∗通信作者:张俊平ꎬ教授ꎬ研究方向为分子免疫药理ꎮE ̄mail:jpzhang08@163.com秀丽隐杆线虫免疫衰老指标的建立白志慧ɦꎬ㊀王㊀彦ɦꎬ㊀张日丽ꎬ㊀许维恒ꎬ㊀张俊平∗中国人民解放军第二军医大学药学院ꎬ上海200433摘㊀要:秀丽隐杆线虫是研究衰老的重要模式生物ꎬ但目前对其免疫衰老的研究缺乏评价指标ꎮ建立了秀丽隐杆线虫-铜绿假单胞菌感染模型ꎬ考察了线虫抗感染免疫能力与衰老之间的关系ꎬ建立了线虫免疫衰老的评价指标ꎮ首先用铜绿假单胞菌感染线虫建立模型ꎬ将处于不同衰老程度的线虫用于感染实验ꎬ考察了线虫感染后的生存时间与衰老程度的关系ꎻ将感染后的生存时间作为抗感染免疫衰老的指标ꎬ其结果与线虫抗氧化能力和寿命指标的结果相互印证ꎮ结果显示ꎬ7d㊁14d㊁21d龄的线虫感染后的生存时间依次减少ꎬ与抗氧化能力的衰退情况相符ꎻ与野生型相比ꎬ长寿线虫(daf ̄2突变线虫)感染后的生存时间延长ꎬ短寿线虫(daf ̄16突变线虫)感染后的生存时间缩短ꎬ线虫的抗感染免疫指标与寿命指标结果相符ꎻ能延长线虫寿命的化合物酪氨酸也延长了线虫感染后的生存时间ꎮ因此线虫-铜绿假单胞菌感染模型可以用于评价线虫的免疫衰老ꎬ感染后线虫的生存时间可作为免疫衰老的评价指标ꎮ关键词:秀丽隐杆线虫ꎻ铜绿假单胞菌ꎻ抗感染ꎻ免疫衰老DOI:10.19586/j.2095 ̄2341.2016.0154EstablishmentofImmuneAgingIndexofCaenorhabditiselegansBAIZhihuiɦꎬWANGYanɦꎬZHANGRiliꎬXUWeihengꎬZHANGJunping∗SchoolofPharmacyꎬSecondMilitaryMedicalUniversityꎬShanghai200433ꎬChinaAbstract:Caenorhabditiselegansisanimportantmodelorganismtostudyaging.Howeverꎬitlacksanindexofimmuno ̄aging.InthisstudyꎬthroughestablishingC.elegans ̄Pseudomonasaeruginosainfectionmodelꎬtherelationshipbetweenanti ̄infectiveimmuneabilityandagingofC.eleganswasstudiedꎬandanindexofC.elegansimmuno ̄agingwasestablished.FirstlyꎬinfectionmodelwasestablishedusingP.aeruginosatoinfectC.elegans.C.elegansindifferentdegreesofagingwereusedintheinfectionmodeltoinvestigatetherelationshipbetweensurvivaltimeanddegreeofaging.Thesurvivaltimeafterinfectionwasusedasananti ̄infectiveimmuno ̄agingindex.Thedataofimmuno ̄agingindexwascomparedwiththedataofantioxidantcapacityandthelifespan.TheresultsindicatedthatwiththeagingofC.elegans(7dꎬ14dand21dold)ꎬthesurvivaltimeofinfectedC.elegansdecreasedsequentiallyꎬwhichwasconsistentwiththedeclineoftheirantioxidantcapacity.Comparedwithwildtypeꎬdaf ̄2mutationC.eleganswithlonglifespanexhibitedlongersurvivaltimeafterinfectionꎬwhiledaf ̄16mutationC.eleganswithshortlifespanexhibitedshortersurvivaltimewithinfection.Theresultsofanti ̄infectiveimmuno ̄agingindexwereinaccordancewiththedataoflifespanindex.Tyrosineꎬacompoundwithanti ̄agingactivityꎬprolongedthesurvivaltimeofC.elegansafterinfection.CollectivelyꎬC.elegans ̄P.aeruginosainfectionmodelcanbeusedtoevaluatetheimmuno ̄agingofC.elegans.ThesurvivaltimeofC.elegansafterinfectioncanbeusedasanindextoindicateimmuno ̄agingofC.elegans.Keywords:CaenorhabditiselegansꎻPseudomonasaeruginosaꎻanti ̄infectionꎻimmuno ̄aging㊀㊀秀丽隐杆线虫(Caenorhabditiselegansꎬ简称线虫)是衰老研究中重要的模式生物ꎮ线虫成虫体长约为1mmꎬ实验室培养以大肠杆菌EscherichiacoliOP50为食ꎬ20ħ下的线虫寿命为三周左右[1]ꎮ由于线虫用于寿命研究所需要的时间相对其他物种短ꎬ基因干扰技术简单ꎬ与人类有相似. All Rights Reserved.的衰老进程ꎬ组织器官的变化可以在显微镜下观察等优势ꎬ被广泛应用于衰老相关研究ꎬ例如有研究报道二甲双胍和酪氨酸对线虫具有抗衰老作用[2]ꎮ评价线虫衰老的指标有很多ꎬ包括寿命㊁抗氧化能力㊁吞咽次数㊁运动能力和生殖能力等[3]ꎮ寿命这一指标可以整体评价机体的衰老进程ꎬ但实验周期长[2]ꎻ寿命之外的观察指标可以从一个侧面来反映衰老的进程[4]ꎬ因此大多需要多个指标同时观察监测ꎬ从而对衰老进程有一个全面客观的评价ꎮ近年来对免疫衰老的研究逐渐成为研究的热点ꎮ随着机体年龄的增加ꎬ免疫功能逐渐退化称为免疫衰老[5]ꎮ衰老和免疫功能的退化互为因果关系ꎬ抗衰老的同时免疫功能得以维护和保持ꎬ而提高免疫功能的同时又常常可以延缓衰老[5]ꎮ线虫具有天然免疫[6]ꎬ但是还没有成熟的指标来指示线虫的免疫衰老进程ꎮ我们通过查阅文献发现先前有研究利用线虫-铜绿假单胞菌感染模型考察致病菌感染能力或者筛选抗感染化合物[7]ꎮ在本研究中ꎬ我们改进了线虫-铜绿假单胞菌感染模型ꎬ改进后的模型可以反映线虫的免疫功能状态ꎬ从免疫功能角度对线虫衰老的程度给予评价ꎬ以期为免疫衰老评价体系的建立提供参考ꎮ1㊀材料和方法1.1㊀材料1.1.1㊀线虫株和菌株㊀野生型线虫BristolN2㊁突变型线虫daf ̄16(mu86)Ⅰ㊁daf ̄2(e1370)Ⅲ㊁大肠杆菌E.coliOP50㊁铜绿假单胞菌P.aeruginosaPA14均由美国哈佛大学的EleftheriosMylonakis教授惠赠ꎮ1.1.2㊀试剂与仪器㊀酪氨酸㊁5 ̄氟尿苷(5 ̄Fluoro ̄2ᶄ ̄deoxyuridineꎬFUDR)购自南京宝曼公司ꎻ百草枯购自阿拉丁公司ꎻLB肉汤培养基㊁胰蛋白胨㊁琼脂粉购自BDꎬ其他试剂均为国药生产ꎮ体视显微镜(NikonSMZ745)ꎻX ̄300BS ̄Ⅲ型恒温培养箱产自上海新苗医疗器械制造有限公司ꎮ1.2㊀方法1.2.1㊀菌株培养㊀挑单克隆OP50在LB液体培养基中培养过夜ꎬ3500g离心10minꎬ浓缩20倍后均匀涂布在线虫培养板(nematodegrowthmedi ̄umꎬNGM)中ꎮ挑PA14单克隆于LB培养基中ꎬ37ħ振荡培养14~16h后(不可超过16h)ꎬ将菌液涂布于SK(slowkilling)板上ꎬ涂布后的SK板在37ħ静置培养24h后置于25ħ再静置培养24hꎮ1.2.2㊀线虫一般培养及同期化㊀所用方法参照Sutphin等[8]的方法ꎬ在20ħ下培养ꎬ线虫生长在涂有OP50的NGM培养板中ꎮ若培养板中食物缺失ꎬ将线虫转移至新的NGM板中ꎮ待板中线虫长至生殖期ꎬ将健康的有卵线虫成虫挑至新的NGM板中ꎬ20ħ下线虫自然产卵3~4h后将成虫挑出ꎬ剩下的卵在20ħ培养ꎬ2d后ꎬ线虫长至L4期ꎮ1.2.3㊀感染实验㊀实验方法参考Powell等[9]的方法ꎬ将长至L4期的线虫转移至实验NGM板中ꎬ每个9cm平板中约100条线虫ꎮ实验NGM板中加了49μmol/L的FUDR用以抑制线虫卵的生长ꎬ100mg/L氨苄青霉素用以防止其他杂菌污染ꎮ在培养过程中ꎬ2d观察一次线虫生长情况ꎬ一个星期内每2天转移一次线虫ꎬ一星期后每7d转移一次线虫ꎮ待线虫长至7d㊁14d㊁21d后随机挑取健康线虫转移至涂有铜绿假单胞菌PA14的SK板中ꎬ每天记录线虫生存死亡数直至线虫全部死亡ꎬ以OP50培养的线虫为健康对照ꎮ25ħ下培养ꎬ每组3块平行板ꎬ每板30条线虫ꎮ死亡标准:线虫无移动ꎬ且用铂金丝触碰线虫头部和尾部ꎬ线虫无反应视为死亡ꎮ酪氨酸处理线虫感染实验:将长至L4期的线虫转移至实验NGM板中ꎬ每个9cm平板中约100条线虫ꎮ实验NGM板中加了1mol/L的酪氨酸ꎬ49μmol/L的FUDR用以抑制线虫卵的生长ꎬ100mg/L氨苄青霉素用以防止其他杂菌污染ꎮ待线虫长至14dꎬ随机挑取健康线虫转移至涂有铜绿假单胞菌PA14的SK板中ꎬ每天记录线虫生存死亡数直至线虫全部死亡ꎮ1.2.4㊀氧化应激实验㊀实验方法参考Zarse[10]的方法ꎬ待线虫长至7d㊁14d㊁21d后随机挑取健康线虫转移至含有10mmol/L百草枯的NGM板中ꎬ每天记录线虫生存死亡数直至线虫全部死亡ꎮ在20ħ下培养ꎬ每组3块平行板ꎬ每板30条线虫ꎮ其余方法同感染实验ꎮ1.2.5㊀统计学分析㊀生存曲线采用Kaplan ̄Meier分析法ꎬLog ̄rank(Mantel ̄Cox)Text比较生存率差异ꎮ定量资料以平均值ʃ标准差表示ꎬP<0.05132白志慧ꎬ等:秀丽隐杆线虫免疫衰老指标的建立. All Rights Reserved.表示有统计学差异ꎮ文中数据统计及作图如无特殊说明均由SPSS18.0软件完成ꎮ2㊀结果与分析2.1㊀线虫-铜绿假单胞菌感染模型的建立铜绿假单胞菌PA14感染线虫后线虫活动力下降㊁死亡率升高ꎮ7d龄的线虫喂食大肠杆菌OP50125h后线虫状态良好ꎬ无死亡现象ꎮ7d龄的线虫喂食铜绿假单胞菌PA1432h后出现死亡现象ꎻ100h后线虫死亡率高于50%ꎻ125h后线虫死亡率为70%(P<0.0001ꎬ图1)ꎮ线虫喂食PA14后活动能力明显下降ꎬ被PA14感染的线虫死亡后身体逐渐透明(图1)ꎮ图1㊀铜绿假单胞菌与大肠杆菌感染后线虫的生存曲线(A)和状态(B)Fig.1㊀Thesurvivalcurve(A)andstate(B)ofC.elegansafterinfectionbyP.aeruginosaandE.coli.注:图中箭头方向为感染死亡线虫ꎮ2.2㊀线虫的抗感染能力与衰老之间的关系在线虫培养到第7d㊁14d和21d时ꎬ随着线虫的衰老ꎬ其抗感染能力逐渐降低ꎬ感染后的生存曲线逐渐左移(P<0.0001ꎬ图2)ꎮ7d龄的线虫感染后平均生存时间为111.93ʃ5.13hꎬ最长生存时间为196hꎻ14d龄的线虫感染后的平均生存时间为62.32ʃ2.70hꎬ最长生存时间为127hꎻ21d龄的线虫感染后的平均生存时间为45.61ʃ3.91hꎬ最长生存时间为115hꎮ表明线虫的抗感染能力随衰老而减弱ꎮ图2㊀不同衰老程度的线虫抗细菌感染生存曲线Fig.2㊀ThesurvivalcurvesofC.elegansindifferentagingconditionsagainstbacterialinfection.2.3㊀线虫的抗感染免疫指标与抗氧化之间的关系利用百枯草处理使线虫处于氧化应激ꎬ随着线虫的衰老ꎬ其抗氧化能力逐渐降低ꎬ百枯草导致氧化刺激后的生存曲线逐渐左移(P<0.0001ꎬ图3)ꎮ7d龄的线虫氧化刺激后平均生存时间为162.97ʃ5.33hꎬ最长生存时间为255hꎻ14d龄的线虫氧化刺激后平均生存时间为90.45ʃ4.94hꎬ最长生存时间为220hꎻ21d龄的线虫氧化刺激后平均生存时间为79.52ʃ4.34hꎬ最长生存时间为167hꎮ线虫的抗感染免疫指标与抗氧化指标的结果相符ꎮ图3㊀不同衰老程度的线虫抗氧化生存曲线Fig.3㊀ThesurvivalcurvesofC.elegansindifferentagingconditionsagainstoxidativestress.232生物技术进展CurrentBiotechnology. All Rights Reserved.2.4㊀长寿线虫和短寿线虫的抗感染能力为了进一步证明该感染模型中线虫的生存时间可以作为线虫衰老的评价指标ꎬ利用寿命相关基因突变的线虫开展研究ꎬ考察评价指标与公认的寿命指标是否相符ꎮ实验中利用了14d龄的线虫ꎮ14d龄的野生型线虫感染后的平均生存时间为62.32ʃ2.70hꎬ最长生存时间为127hꎻ14d龄的短寿线虫daf ̄16突变株感染平均生存时间为30 62ʃ1.29h(P<0.0001ꎬ图4)ꎬ最长生存时间为67.5hꎻ14d龄的长寿线虫daf ̄2突变株感染平均生存时间为96.13ʃ4.86h(P<0.0001ꎬ图4)ꎬ最长生存时间为220hꎮ先前的研究显示daf ̄16基因突变导致线虫寿命缩短[11]ꎬdaf ̄2基因突变导致线虫寿命延长[12]ꎬ本研究结果显示:长寿的线虫抗感染能力比短寿的线虫更强ꎬ说明抗感染能力与寿命指标相符ꎮ图4㊀不同线虫株抗铜绿假单胞菌感染生存曲线Fig.4㊀ThesurvivalcurvesofdifferentC.elegansstrainsagainstinfectionbyP.aeruginosa.2.5㊀抗衰老化合物酪氨酸能增强线虫的抗感染能力酪氨酸处理线虫14d能提高线虫的抗感染能力(P<0.05ꎬ图5)ꎮ14d对照组线虫感染平均生存时间为76.83ʃ3.23hꎬ酪氨酸处理组平均生存时间86.33ʃ3.50hꎬ增加了12.36%ꎬ最长生存时间从112h增加到136hꎬ这说明ꎬ能够延长线虫寿命的酪氨酸也可以增强线虫抗感染能力ꎮ3㊀讨论衰老常伴随着各种疾病的发生ꎬ例如糖尿病㊁心血管疾病和神经系统疾病等[13]ꎬ因此ꎬ抗衰老研究是一个历久弥新的领域ꎮ秀丽隐杆线虫是抗图5㊀酪氨酸处理14d的线虫抗铜绿假单胞菌感染生存曲线Fig.5㊀ThesurvivalcurvesofC.elegansagainstinfectionbyP.aeruginosafor14days.衰老研究中重要的模式生物ꎬ检测其衰老的指标有很多ꎬ其中自然寿命是衰老研究的首选指标ꎬ但其实验周期长ꎮ其他衰老指标包括吞咽㊁生殖㊁体长等[3ꎬ11ꎬ14]不能完全反应衰老的状况ꎬ如二甲双胍是第一个即将用于临床试验的抗衰老药物ꎬ但其对线虫吞咽功能没有影响[4]ꎻ姜黄素有延长线虫寿命的作用ꎬ但处理4d和8d后的线虫吞咽能力却有下降趋势ꎬ产卵率没有变化[15]ꎻ酪氨酸也有延长线虫寿命的作用ꎬ但该化合物对线虫体长没有影响[16]ꎮ衰老的生化指标一般利用抗衰老基因的表达情况㊁蛋白DAF ̄16核质转运情况等[17ꎬ18]ꎬ但衰老是多基因参与的过程ꎬ少数几个基因不能全面客观地评价线虫的衰老情况ꎮ近年来ꎬ衰老的免疫学说逐渐受到重视ꎬ从无脊椎动物到哺乳动物ꎬ机体的免疫功能至关重要ꎬ且与衰老过程互为因果[5]ꎬ因此ꎬ通过免疫力来延缓衰老也已成为研究的热点ꎮ然而ꎬ从线虫免疫角度来评价衰老的研究报道很少ꎮ为了全面客观地反映线虫的衰老状态ꎬ免疫功能的检测必不可少ꎬ因此本研究建立了线虫抗感染免疫衰老的指标ꎮ本研究利用改进后的线虫-铜绿假单胞菌感染模型反映线虫的免疫功能状态ꎬ为衰老研究提供了新的考察指标ꎮ在本研究开展之前ꎬ线虫-铜绿假单胞菌感染模型主要用于抗感染药物的筛选ꎬ研究者一般感染L4期或成虫期的线虫24~48hꎬ再将感染的线虫转移至含有化合物的板中ꎬ通过比较线虫的生存时间筛选或者评价抗感染化合物[19]ꎬ但未能与抗衰老研究相关联ꎮ本研究改进了原有的感染模型ꎬ将线虫在含有化合物的培养332白志慧ꎬ等:秀丽隐杆线虫免疫衰老指标的建立. All Rights Reserved.板中培养几天或者十几天后ꎬ得到了一定衰老程度的线虫ꎬ再让这些线虫感染铜绿假单胞菌ꎬ观察线虫对铜绿假单胞菌的易感性ꎬ利用线虫感染后的生存时间反映线虫的免疫衰老的情况ꎬ线虫在感染后的生存时间越短说明免疫衰老越严重ꎮ本研究改进了感染模型ꎬ将该模型用于免疫衰老研究ꎬ为考察线虫的免疫衰老提供了可靠的评价指标ꎬ该抗感染指标可以用于研究衰老相关基因ꎬ也可以用于筛选抗衰老化合物ꎬ而且实验周期短㊁可靠性强ꎮ抗氧化能力这一指标的设立是基于衰老的自由基学说ꎮ自由基学说认为机体的衰老是由于细胞正常代谢过程中产生的自由基不断积累造成的ꎬ随着年龄的增加以及外界环境的刺激ꎬ自由基不断积累引起DNA损伤㊁蛋白质核酸等大分子交联㊁损害生物膜ꎬ影响机体正常功能ꎬ因此提高机体抗氧化和清除自由基能力是抗衰老的重点[20]ꎮ在线虫研究中有抗衰老作用的化合物一般能提高线虫的抗氧化能力[21ꎬ22]ꎮ因此本研究以抗氧化能力作为衰老指标的阳性对照ꎬ通过研究发现ꎬ线虫的抗感染能力与抗氧化能力相符ꎬ7d㊁14d㊁21d龄的线虫抗氧化能力逐渐降低ꎬ其抗感染能力也同样逐渐降低ꎬ进一步说明本研究模型用于评价衰老具有可靠性ꎮ在线虫衰老的研究中ꎬ寿命是衰老的重要指标[23]ꎮ胰岛素/胰岛素样生长因子 ̄1(Insulin/IGF ̄1)信号通路是第一个被发现的与衰老相关的信号通路[24]ꎮDAF ̄2是线虫体内唯一的胰岛素样生长因子受体ꎬ在调控线虫衰老方面有重要作用ꎮDAF ̄2与配体结合后ꎬ激活Insulin/IGF ̄1信号通路下游的AGE ̄1㊁PDK ̄1ꎬ最终激活的AKT ̄1/2㊁SGK ̄1使转录因子DAF ̄16/FOXO磷酸化ꎬ阻止其入核发挥作用ꎮ而DAF ̄16/FOXO作为转录因子可以调控下游抗性基因ꎬ其正向作用于寿命性状[25]ꎮ因此ꎬdaf ̄2基因突变会延长线虫的寿命ꎬ延缓衰老ꎬ而daf ̄16基因突变会缩短线虫寿命ꎬ加速衰老ꎮ本研究分别利用了daf ̄2㊁daf ̄16突变线虫ꎬ实验结果表明应用抗感染能力这一评价指标和应用寿命这一公认指标相比可以得出同样的研究结论ꎬ这进一步证明抗感染能力可用于线虫衰老的评价ꎮ有文献报道酪氨酸能延长线虫寿命㊁提高抗氧化力ꎬ具有抗衰老作用[16]ꎮ本研究以文献报道的酪氨酸浓度处理野生型线虫14dꎬ结果表明酪氨酸能提高线虫的抗感染能力ꎬ说明抗感染能力这一指标可以用于评价抗衰老化合物ꎮ总之ꎬ线虫-铜绿假单胞菌感染模型在衰老研究中具有应用价值ꎬ可用于评价抗衰老化合物和抗衰老基因ꎮ本研究提出了免疫衰老这一评价指标ꎬ利用感染后线虫的生存时间作为免疫衰老的评价指标ꎬ可以与其他指标取长补短ꎬ有助于更全面客观地开展衰老相关研究ꎮ参㊀考㊀文㊀献[1]㊀StiernagleT.MaintenanceofC.elegans[EB/OL].http://www.wormbook.org/chapters/www_strainmain ̄tain/strainmain ̄tain.htmlꎬ2006.[2]㊀LeesHꎬWaltersHꎬCoxLS.Animalandhumanmodelstoun ̄derstandageing[J].Maturitasꎬ2016ꎬ93:18-27. [3]㊀KeithSAꎬAmritFRꎬRatnappanRꎬetal..TheC.eleganshealthspanandstress ̄resistanceassaytoolkit[J].Methodsꎬ2014ꎬ68(3):476-486.[4]㊀OnkenBꎬDriscollM.Metformininducesadietaryrestriction ̄likestateandtheoxidativestressresponsetoextendC.elegansHealthspanviaAMPKꎬLKB1ꎬandSKN ̄1[J].PLoSONEꎬ2010ꎬ5(1):e8758.[5]㊀DrelaN.Immunologicaltheoryofsenescence[J].Postepy.Biochem.ꎬ2014ꎬ60(2):221-232.[6]㊀ErmolaevaMAꎬSchumacherB.Insightsfromtheworm:TheC.elegansmodelforinnateimmunity[J].Semin.Immunol.ꎬ2014ꎬ26(4):303-309.[7]㊀PappDꎬCsermelyPꎬSötiC.AroleforSKN ̄1/NrfinpathogenresistanceandimmunosenescenceinCaenorhabditiselegans[J].PLoSPathog.ꎬ2012ꎬ8(4):e1002673. [8]㊀SutphinGLꎬKaeberleinM.MeasuringCaenorhabditiseleganslifespanonsolidmedia[J].J.Vis.Exp.ꎬ2009(27):1152. [9]㊀PowellJRꎬAusubelFM.ModelsofCaenorhabditiselegansin ̄fectionbybacterialandfungalpathogens[J].MethodsMol.Biol.ꎬ2008ꎬ415:403-427.[10]㊀ZarseKꎬJabinSꎬRistowM.L ̄theanineextendslifespanofa ̄dultCaenorhabditiselegans[J].Eur.J.Nutr.ꎬ2012ꎬ51(6):765-768.[11]㊀CollinsJJꎬHuangCꎬHughesSꎬetal..Themeasurementandanalysisofage ̄relatedchangesinCaenorhabditiselegas[EB/OL].http://www.wormbook.org/chapters/www_measuremen ̄tanalysisCelegans/measurementanalysisCelegans.htmlꎬ2007-09-07.[12]㊀KenyonCꎬChangJꎬGenschEꎬetal..AC.elegansmutantthatlivestwiceaslongaswildtype[J].Natureꎬ1993ꎬ366(6454):461-464.[13]㊀DᶄAntonaGRagniMꎬCardileAꎬetal..Branched ̄chainaminoacidsupplementationpromotessurvivalandsupportscar ̄diacandskeletalmusclemitochondrialbiogenesisinmiddle ̄agedmice[J].CellMetab.ꎬ2010ꎬ12(4):362-372. [14]㊀HuangCꎬXiongCꎬKornfeldK.Measurementsofage ̄related432生物技术进展CurrentBiotechnology. All Rights Reserved.changesofphysiologicalprocessesthatpredictlifespanofCae ̄norhabditiselegans[J].Proc.Natl.Acad.Sci.USAꎬ2004ꎬ101(21):8084-8089.[15]㊀LiaoVHꎬYuCWꎬChuYJꎬetal..Curcumin ̄mediatedlifes ̄panextensioninCaenorhabditiselegans[J].Mech.Ageing.Dev.ꎬ2011ꎬ132(10):480-487.[16]㊀CañueloAꎬGilbert ̄LópezBꎬPacheco ̄LiñánPꎬetal..Tyrosolꎬamainphenolpresentinextravirginoliveoilꎬincrea ̄seslifespanandstressresistanceinCaenorhabditiselegans[J].Mech.AgeingDev.ꎬ2012ꎬ133(8):563-574.[17]㊀ZhangJꎬLuLꎬZhouL.Oleanolicacidactivatesdaf ̄16toin ̄creaselifespaninCaenorhabditiselegans[J].Biochem.Bio ̄phys.Res.Commun.ꎬ2015ꎬ468(4):843-849.[18]㊀ZhangLꎬZhangJꎬZhaoBꎬetal..Quinicacidcouldbeapo ̄tentialrejuvenatingnaturalcompoundbyimprovingsurvivalofCaenorhabditiselegansunderdeleteriousconditions[J].Reju ̄ven.Res.ꎬ2012ꎬ15(6):573-583.[19]㊀ConeryALꎬLarkins ̄FordJꎬAusubelFMꎬetal..High ̄throughputscreeningfornovelanti ̄infectivesusingaC.eleganspathogenesismodel[J].Curr.Protoc.Chem.Biol.ꎬ2014ꎬ6(1):25-37.[20]㊀HarmanD.Thefreeradicaltheoryofaging[J].AntioxidRedoxSignalꎬ2003ꎬ5(5):557-561.[21]㊀MaHꎬMaYꎬZhangZꎬetal..L ̄arginineenhancesresistanceagainstoxidativestressandheatstressinCaenorhabditiselegans[J].Int.J.Environ.Res.PublicHealthꎬ2016ꎬ13(10):e969.[22]㊀ChenWꎬSudjiIRꎬWangEꎬetal..Ameliorativeeffectofas ̄palathinfromrooibos(Aspalathuslinearis)onacuteoxidativestressinCaenorhabditiselegans[J].Phytomedicineꎬ2013ꎬ20(3-4):380-386.[23]㊀CollinsJJꎬEvasonKꎬKornfeldK.PharmacologyofdelayedagingandextendedlifespanofCaenorhabditiselegans[J].Exp.Gerontol.ꎬ2006ꎬ41(10):1032-1039.[24]㊀SellC.Minireview:ThecomplexitiesofIGF/Insulinsignalinginaging:Whyfliesandwormsarenothumans[J].Mol.En ̄docrinol.ꎬ2015ꎬ29(8):1107-1113.[25]㊀RuaudAFꎬKaticIꎬBessereauJL.Insulin/Insulin ̄likegrowthfactorsignalingcontrolsnon ̄dauerdevelopmentalspeedinthenematodeCaenorhabditiselegans[J].Geneticsꎬ2011ꎬ187(1):337-343.532白志慧ꎬ等:秀丽隐杆线虫免疫衰老指标的建立. All Rights Reserved.。
秀丽隐杆线虫-多重耐药鲍曼不动杆菌感染模型的建立

5 g N a C 1 , 0 . 2 5 g Mg S O 4・ 7 H 2 O, 宜 现用现配 。线虫 裂
解液 : 4 m L蒸馏水 , 0 . 4 g N a O H, 2 mL 1 0 % 次 氯 酸钠 溶液 , 现用 现 配 。5一氟 一 2脱 氧 尿 嘧 啶 ( F U D R) 购
MD R A B由南方 医科 大 学 南 方 医 院 临 床微 生 物 检 验 科 提供 。
近年来 引起 医院感 染 常 见 的 革 兰 阴性 条 件 致 病 菌 , 主要 引起 医 院获 得 性 肺 炎 尤 其 是 呼 吸 机 相 关 性 肺 炎、 尿 路感 染 、 菌 血 症 和 继 发性 脑膜 炎 等 J 。A b是 我 国最 重 要 的超级 耐 药 菌 , 具 有 快 速 获 得 和 传 播 耐
欧 阳妮 ,张亚莉 , 周 浩 ,彭黎 ,孙树 梅
南方 医科大学 南方 医院 儿科 , 感染 管理 科( 广东广 州 5 1 0 5 1 5 )
【 } 商 要】 目的 采 用线 虫液 体培 养 法 , 建 立 秀丽 隐杆 线 虫 一多重 耐 药鲍 曼不 动杆 菌 ( m u h i d r u g r e s i s t a n c e
究A b致病 机制 及从 整 体 动物 水 平 观 察药 物 抗 菌 效 果奠 定 实验 基础 。 秀丽 隐杆 线 虫 ( C a e n o r h a b d i t i s e 1 .
e g a n s , C . e l e g a n s ) 是 一种 以细 菌 为 食 的模 式 生 物 , 其
秀丽隐杆线虫麻醉药物生物模型的构建方法、构建的生物模型及其检测方法[发明专利]
![秀丽隐杆线虫麻醉药物生物模型的构建方法、构建的生物模型及其检测方法[发明专利]](https://img.taocdn.com/s3/m/c3109568d4d8d15abe234eff.png)
专利名称:秀丽隐杆线虫麻醉药物生物模型的构建方法、构建的生物模型及其检测方法
专利类型:发明专利
发明人:杨婉,陈兰仁,孔令锁,朱兴兴,王瑞祥
申请号:CN201910677218.3
申请日:20190725
公开号:CN110384076A
公开日:
20191029
专利内容由知识产权出版社提供
摘要:本发明公开一种秀丽隐杆线虫麻醉药物生物模型的构建方法,涉及生物模型技术领域,包括以下步骤:将秀丽隐杆线虫置于含有不同浓度麻醉药物的NGM培养基Ⅰ中培养后,经裂解、离心后沉淀,并将沉淀重悬后铺板于含有麻醉药物的NGM培养基Ⅱ上,培养至第一期幼虫,即建立秀丽隐杆线虫麻醉药物生物模型,本发明还提供由上述构建方法构建的秀丽隐杆线虫麻醉药物生物模型及其检测方法。
本发明的有益效果在于:本发明公开的秀丽隐杆线虫麻醉药物生物模型的的构建方法及构建的生物模型,为麻醉药物安全性评价提供新的技术支持。
申请人:安徽省肿瘤医院
地址:236000 安徽省合肥市蜀山区环湖东路107号
国籍:CN
代理机构:合肥市浩智运专利代理事务所(普通合伙)
代理人:王亚洲
更多信息请下载全文后查看。
关于秀丽隐杆线虫的综述

关于秀丽隐杆线虫的综述生物153班刘通宇摘要:本文为关于秀丽隐杆线虫的综述文章,主要介绍了秀丽隐杆线虫的一些基本信息,并结合这些基本信息引出秀丽隐杆线虫的细胞周期、神经系统等方面的研究价值与药物筛选、毒性评价方面的应用价值,并结合以上信息讨论笔者对于秀丽隐杆线虫研究现状的评价以及在药理、进化论等方面的应用与研究展望,并探讨了其在回答生命意义中的价值。
关键词:秀丽隐杆线虫;研究价值;应用价值Abstract: This is a summative article about Caenorhabditis elegans, mainly introduced some of the essential information and then elicit the research value on the cell circle, nervous system, and also applications value on medicine screening, toxicity assessment. At the end, the author gives out his personal assessment about the research that had been conducted, and also introduced his personal prospect about the application and research in pharmacology and evolutionism, etc. It also discussed the Caenorhabditis elegans’ role in answer ing the question for the meaning of life.Key words:Caenorhabditis elegans; research value; application value模式生物是生物学家实验中用于探究某种普遍生命现象的生物物种。
秀丽隐杆线虫—泛耐药鲍曼不动杆菌感染模型用于外排泵抑制剂逆转环丙沙星耐药的研究

秀丽隐杆线虫—泛耐药鲍曼不动杆菌感染模型用于外排泵抑制剂逆转环丙沙星耐药的研究段欣冉;姜志辉;杨相海;李健【期刊名称】《中国感染控制杂志》【年(卷),期】2017(016)012【摘要】目的建立秀丽隐杆线虫-泛耐药鲍曼不动杆菌感染模型,用于外排泵抑制剂(EPIs)逆转泛耐药鲍曼不动杆菌(XDR-AB)对于环丙沙星耐药的研究.方法建立秀丽隐杆线虫-泛耐药鲍曼不动杆菌感染模型,选用6种EPIs(CCCP、PAβN、NMP、奥美拉唑、利血平和维拉帕米)与氟喹诺酮类药物环丙沙星联合使用,记录秀丽隐杆线虫生存率以评价体内药效,同时进行毒性试验及体外药敏试验.结果不同浓度XDR-AB对秀丽隐杆线虫的致死情况不同,选择5×106CFU/mL作为XDR-AB感染秀丽隐杆线虫浓度.秀丽隐杆线虫生存实验显示,XDR-AB感染线虫3h后线虫组与加入多粘菌素B的对照组生存曲线比较,差异无统计学意义(x2 =3.154,P>0.05),感染线虫6、9h,与对照组比较,差异均有统计学意义(均P<0.001),但感染6h与9h组的生存曲线比较,差异无统计学意义(x2=0.669,P>0.05),最终选择6h作为感染时长,36 h为合适的抗菌药物治疗时长.环丙沙星联合EPIs应用于感染模型实验中,低浓度的PAβN、NMP、奥美拉唑、利血平可将线虫存活率分别提高30%~40%、15%~20%、20%~30%、20%,高浓度的维拉帕米可将感染线虫的存活率提高30%左右.体外药敏试验和毒性试验结果显示,环丙沙星分别与CCCP、奥美拉唑和维拉帕米联合可降低MIC至原来的1/4,分别联合PAβN,NMP和利血平可降低MIC至原来的1/2,其中CCCP体外联合抑菌效果最佳,但毒性较大不适于体内药效研究.结论首次成功构建了秀丽隐杆线虫-泛耐药鲍曼不动杆菌感染模型,得到6种EPIs逆转环丙沙星耐药性的初步研究.%Objective To establish an extensively drug-resistant Acinetobacter baumannii (XDR-AB) infection model using Caenorhabditis elegans (C.elegans),and evaluate the effect of efflux pump inhibitors(EPIs) on reversal of ciprofloxacin resistance in XDR-AB.Methods XDR-AB infection model of C.elegans was established,six EPIs(CCCP,PAβN,NMP,omeprazole,reserpine,and verapamil)combined with ciprofloxacin were used to treat the infected model,the survival rate of C.elegans was recorded to evaluate the in vivo activities of drugs,toxicity test and in vitro drug susceptibility test were also performed.Results Lethal effect of different concentrations of XDR-AB on C.elegans was varied,5 × 106 CFU/mL of XDR-AB was selected to infect C.elegans.C.elegans survival test showed that survival curves of C.elegans infected with XDR-AB for 3 hours and curves of control group (polymixin B was added) were not significantly different (x2 =3.154,P>0.05);compared with control group,survival curves of C.elegans infected with XDR-AB for 6 hours or 9 hours were significantly different (both P<0.001),but 6 hours and 9 hours were not significantly different(x2 =0.669,P>0.05),6 hours was chosen as the duration of infection,36 hours was appropriate for the duration of antimicrobial therapy.Ciprofloxacin with EPIs for infection model revealed that low concentration of PAβN,NMP,omeprazole,and reserpine could improve the survival rate of C.elegans by 30%-40%,15%-20%,20%-30%,and 20% respectively,high concentration of verapamil could improve the survival rate of infected C.elegans by about 30%.In vitro susceptibility test and toxicity test results showed that ciprofloxacin combinedrespectively with CCCP,omeprazole,and verapamil could reduce minimum inhibitory concentration(MIC) to the original 1/4,combined respectively with PAβN,NMP,and reserpine could reduce MIC to the original 1/2,CCCP had the best bacterial inhibitory effect in vitro,but the toxicity was large,and was not suitable for the study of pharmacodynamics invivo.Conelusion The infection model of C.elegans XDR-AB is initially and successfully established,which is used to evaluate the efficiency of six EPIs for reversing ciprofloxacin resistance.【总页数】8页(P1101-1108)【作者】段欣冉;姜志辉;杨相海;李健【作者单位】广东药科大学,广东广州 510000;广州军区广州总医院,广东广州510000;广州军区广州总医院,广东广州 510000;长沙医学院,湖南长沙410000;广东药科大学,广东广州 510000;广州军区广州总医院,广东广州 510000【正文语种】中文【中图分类】R378【相关文献】1.泛耐药鲍曼不动杆菌主动外排泵adeB基因表达及耐药性研究 [J], 徐轶;章白苓;章洁苓;尚姝;张楠;胡晓彦2.鲍曼不动杆菌adeB基因检测及外排泵抑制剂逆转亚胺培南耐药性的研究 [J], 张立然;刘原;柯蕊;敬蓉;冯雁京;和平;马淑珍3.多重耐药及泛耐药鲍曼不动杆菌外排泵基因adeB的研究 [J], 孙静娜;刘青松;刘泽世;赵帅;王国欣;张征4.外排泵抑制剂对泛耐药鲍曼不动杆菌生物被膜的影响 [J], 王清会;蔺飞;袁明勇;凌保东5.外排泵抑制剂用于肺炎克雷伯菌耐药逆转的研究 [J], 许宁;苏显中;陶秀祥;吕则鹏因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
一种秀丽隐杆线虫对病原细菌遗忘的动物模型的建立方法[发明专利]
![一种秀丽隐杆线虫对病原细菌遗忘的动物模型的建立方法[发明专利]](https://img.taocdn.com/s3/m/714b34da3968011ca2009166.png)
专利名称:一种秀丽隐杆线虫对病原细菌遗忘的动物模型的建立方法
专利类型:发明专利
发明人:邹伟,王琦,柏桦,张敏
申请号:CN202110020119.5
申请日:20210107
公开号:CN112772560A
公开日:
20210511
专利内容由知识产权出版社提供
摘要:本发明公开一种秀丽隐杆线虫对病原细菌遗忘的动物模型的建立方法,具体包括以下步骤:将秀丽隐杆线虫进行同步化处理,培养至青年状态,将部分线虫加入到涂满PA14细菌平板上训练4h;训练完成后将其分别移入M9培养基中,设置0.5h、1h、2h、4h遗忘时间点,检测对照组线虫、PA14训练线虫、不同时间点遗忘线虫偏好指数,绘制遗忘曲线;通过检测病原处理前、处理时、移除后,线虫对病原细菌的偏好指数的变化以明确遗忘时间点。
本发明所述方法建立的模型可用于研究秀丽隐杆线虫对病原菌的记忆遗忘机制,还用于研究病原菌与宿主之间的相互作用关系。
申请人:昆明医科大学
地址:650000 云南省昆明市呈贡新城雨花街道春融西路1168号
国籍:CN
代理机构:昆明合盛知识产权代理事务所(普通合伙)
代理人:牛林涛
更多信息请下载全文后查看。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
秀丽隐杆线虫-泛耐药肺炎克雷伯菌感染模型的建立王讯;孙树梅;欧阳妮;张亚莉;芮勇宇【摘要】目的:建立泛耐药肺炎克雷伯菌(XDRKP)感染秀丽隐杆线虫感染模型。
方法在液体条件下,利用临床分离的 XDRKP 菌株感染秀丽隐杆线虫,观察线虫存活及体内细菌数量变化情况。
结果线虫感染 XDRKP后活动明显迟缓,不同浓度的XDRKP 对线虫的致死情况不同。
log-rank 检验显示,1.5×106 CFU/mL XDRKP 组与 E.coli OP50对照组的生存曲线差异无统计学意义(χ2=0.08,P >0.05);1.5×107、1.5×108 CFU/mL 组与E.coli OP50对照组的生存曲线差异均有统计学(χ2值分别为229.37、275.98,均 P <0.001),1.5×108与1.5×107 CFU/mL XDRKP 组线虫的生存率低于对照组。
实验获得上清悬液,经细菌纯培养后进行细菌鉴定和药敏测试,证实为 XDRKP。
XDRKP 感染线虫4、6、12、24 h 后,线虫体内细菌总量分别为(0.28±0.02)×105、(0.50±0.38)×105、(1.73±0.56)×105、(2.62±0.53)×105 CFU/mL,不同时间线虫体内细菌总数存在统计学差异(F=1363.39,P <0.001)。
结论成功建立了秀丽隐杆线虫-XDRKP 感染模型。
%Objective To establish an infection model using Caenorhabditis elegans (C.elegans)-extensively drug-resistant Klebsiella pneumoniae (XDRKP)system.Methods Clinically isolated XDRKP strains were used to infect C.elegans in the liquid killing assay,the nematode survival and the number of bacteria inC.elegans digestive tract was observed.Results C.elegans was significantly retarded after being infected by XDRKP,different concentra-tions of XDRKP led to different patterns of the worm death.Log-rank test showed that survival curves of C. elegans infected with 1 .5×106 CFU/mL of XDRKP andE.coli OP50 (control)were not significantly different (χ2=0.08,P >0.05);survival curves of C.elegans infected with 1 .5 ×107CFU/mL,1 .5 ×108 CFU/mL of XDRKP and E.coli OP50 were significantly different(χ2 =229.37,275.98,respectively,both P <0.001).The survival ratesof 1 .5×108 and 1 .5 ×107 CFU/mL XDRKP groups were both lower than that of the control group.Supernatant suspension obtained from test was performed bacterial culture,identification and antimicrobial susceptibility testing, XDRKP was determined.After being infected with XDRKP4,6,12,and 24 hours,the total number of bacteria in C.eleganswere(0.28±0.02)×105 CFU/mL,(0.50 ±0.38)×105 CFU/mL,(1 .73 ±0.56)×105 CFU/mL,and (2.62±0.53)×105 CFU/mL,respectively,the number of bacteriain C.elegans digestive tract was significantly different at different time points (F =1 363.39,P <0.001).Conclusion The infection model ofC.elegans-XDRKP is established successfully.【期刊名称】《中国感染控制杂志》【年(卷),期】2016(015)007【总页数】4页(P457-460)【关键词】秀丽隐杆线虫;泛耐药;肺炎克雷伯菌;感染;模型【作者】王讯;孙树梅;欧阳妮;张亚莉;芮勇宇【作者单位】南方医科大学南方医院,广东广州510515;南方医科大学南方医院,广东广州 510515;南方医科大学南方医院,广东广州 510515;南方医科大学南方医院,广东广州 510515;南方医科大学南方医院,广东广州 510515【正文语种】中文【中图分类】R383.1肺炎克雷伯菌(Klebsiella pneumoniae,KP)属肠杆菌科细菌,是引起医院感染的常见条件致病菌。
近年来,随着碳青霉烯类抗生素的长期、大量、广泛使用,导致耐碳青霉烯类肠杆菌科(carbapenem-resistant Enterobacteriaceae,CRE)菌株的检出率呈上升趋势。
2014年CHINET中国细菌耐药性监测结果发现,绝大多数肠杆菌科细菌中均存在CRE菌株,以克雷伯菌属最多,该菌对亚胺培南和美罗培南的耐药率均>10% [1]。
由于CRE菌株往往呈泛耐药(extensively drug resistance,XDR)或全耐药(pandrug resistance,PDR)的特征,导致感染患者可能陷入无药可用的困境[2]。
秀丽隐杆线虫(Caenorhabditis elegans)是一种国际公认、简单有效的模式生物,其具有结构简单、遗传背景清晰、生命周期短等特点,在病原菌研究中的应用越来越广泛。
目前,已证实约40种人类致病菌(包括革兰阳性菌、革兰阴性菌和真菌)会对线虫造成感染[3],其致病机制与其在哺乳动物中的表现极相似。
鉴于国内外关于KP感染秀丽隐杆线虫少有报道,本研究利用临床上分离的泛耐药肺炎克雷伯菌(extensively drug-resistant Klebsiella pneumoniae,XDRKP),建立秀丽隐杆线虫-泛耐药肺炎克雷伯菌感染模型,为研究病原菌致病机制及抗感染药物筛选奠定基础。
1.1 材料1.1.1 线虫和细菌野生型秀丽隐杆线虫(WT Bristol N2)、大肠埃希菌(Escherichia coli,E.coli)OP50由中山大学实验室惠赠;临床分离的XDRKP由广州市南方医院临床微生物室提供,采用美国BD公司生产的Phoenix-100型全自动细菌鉴定和药敏测试系统,依据2015年美国临床实验室标准化协会(CLSI)M100-S25药敏试验标准判定[4]。
1.1.2 培养基NGM(nematode growth media)培养基:胰蛋白胨25 g,琼脂粉17 g,NaCl 3 g,加入蒸馏水975 mL,高温高压灭菌后冷却至55℃,分别加入无菌胆固醇溶液(5 mg/mL,无水乙醇)1 mL,PBS液(pH=6.0)25 mL,1mol/L MgSO4 1 mL,1 mol/L CaCl2 1mL,1 mol/L制霉菌素1 mL,分装至直径10 cm的培养皿中,备用;LB(Luria-Bertani)培养基按常规方法配制。
1.1.3 缓冲液及试剂M9缓冲液:6 g Na2HPO4,3 g KH2PO4,5 g NaCl,0.25 g MgSO4·7H2O,加入蒸馏水1 L,高压灭菌后备用;线虫裂解液:4 mL蒸馏水,2 mL次氯酸钠溶液,0.45 g NaOH,现用现配;叠氮化钠(NaN3)、5-氟-2-脱氧尿嘧啶(FUDR)均购置于Sigma公司。
1.2 方法1.2.1 线虫的培养线虫按照国际标准程序[5]进行培养。
1.2.2 线虫同期化处理用M9缓冲液从NGM培养板上洗下虫体,收集、离心(3 500 r/min,3 min)、弃上清,剩余3.5 mL,加入1.5 mL线虫裂解液,剧烈震荡约8 min,M9洗涤3次,即从妊娠的成体线虫中分离得到虫卵,后20℃振荡过夜孵育,获得L1期幼虫,将其置于新的NGM平板E.coli OP50菌苔上,20℃培养48 h,即得到同步化的L4期线虫。
1.2.3 菌悬液的配制将冻存的菌株复苏,划线培养,挑取单个菌落,再接种于5 mL的LB液体培养基中,37℃,150 r/min 震荡培养一定时间,备用。
1.2.4 线虫感染致死实验用M9缓冲液从平板上洗下培养至L4期线虫,离心(3 500 r/min,3 min),重复2~3次,悬浮后取10 μL在显微镜下观察线虫悬液中线虫的数量,然后取含有20~30条线虫的悬液置于96孔板中,感染组分别加入终浓度为1.5×108、1.5×107 、1.5×106 CFU/mL的XDRKP,阴性对照组加入终浓度为1×109 CFU/mL的 E.coli OP50,空白对照组加入20%LB溶液;每种菌液做5个平行,其中为防止N2线虫繁殖,滴加0.2 mmol/L的FUDR,96孔板放置于相对湿度80%~85%的培养箱,20℃培养,每天记录线虫的存活数。
所有组均重复3次。
1.2.5 线虫肠道内细菌计数选取1.5×108 CFU/mL XDRKP感染线虫,每隔一定的时间,挑取10条经细菌感染的线虫,用含有l mmol/L NaN3(麻醉剂)的M9缓冲液清洗3遍,以清除线虫体表的细菌,然后转移至装有400 mg石英砂的小试管,加1 mL PBS缓冲液涡旋振荡2~3 min,得到的上清悬浮液稀释涂布、计数,以确定每条线虫体内细菌数量。