谷胱甘肽的简便测定法
谷胱甘肽的制备及含量测定
• 3.谷胱甘肽的主要来源 • 谷胱甘肽广泛存在于动、植物中,在生物体内有着重 要的作用。在面包酵母、小麦胚芽和动物肝脏中的含量很 高,达100~1000mg/100g,在人体血液中含26~ 34mg/100g,鸡血中含58~73mg/100g,猪血中含10~ 15mg/100g,在西红柿、菠萝、黄瓜中含量也较高(12~ 33mg/100g),而在甘薯、绿豆芽、洋葱、香菇中含量较 低(0.06~0.7mg/100g)。
谷胱甘肽的制备及含量测定
一、谷胱甘肽的背景知识
• 1.谷胱甘肽是一种什么 样的物质 谷胱甘肽(glutathiose,rglutamyl cysteingl +glycine,GSH)是一种 含γ-酰胺键和巯基的三 肽,由谷氨酸、半胱 氨酸及甘氨酸组成。 谷胱甘肽:还原型谷胱 甘肽、阿拓莫兰、古 拉定
提取工艺
1、取5g干酵母,与15ml蒸馏水充分混合后倒入25ml沸腾的水中。 2、用5ml水洗涤烧杯一并倒入,使混合液保持在95-100℃,沸腾5min。 放置冰水中速冷。 3、在2000rpm速度下离心10min,取上清液,即谷胱甘肽抽提液。 4、谷胱甘肽抽提液,调pH至3.0。 5、上处理好的732阳离子交换吸附柱吸附。 6、用0.25mol/L的NaOH溶液洗脱,洗脱流速10ml/min。收集洗脱液, 洗脱终点用亚硝基氰化钠检测。 7、中和洗脱液至pH6.5。
•
谷胱甘肽还可以保护血红蛋白不受过氧化氢、自由基 等氧化从而使它持续正常发挥运输氧的能力。还原型谷胱 甘肽既能直接与过氧化氢等氧化剂结合,生成水和氧化型 谷胱甘肽,也能够将高铁血红蛋白还原为血红蛋白。 • 谷胱甘肽保护酶分子中-SH基,有利于酶活性的发挥, 并且能恢复已被破坏的酶分子中-SH基的活性功能,使酶 重新恢复活性。 • 谷胱甘肽还可以抑制乙醇侵害肝脏所产生的脂肪肝。 • 谷胱甘肽对于放射线、放射性药物所引起的白细胞减 少等症状,有强有力的保护作用。谷胱甘肽能与进入人体 的有毒化合物、重金属离子或致癌物质等相结合,并促进 其排出体外,起到中和解毒作用 。
谷胱甘肽的实验报告
一、实验背景谷胱甘肽(Glutathione,GSH)是一种非蛋白巯基化合物,由谷氨酸、半胱氨酸和甘氨酸组成,广泛存在于生物体内。
近年来,研究表明谷胱甘肽具有多种生物学功能,如抗氧化、解毒、免疫调节等。
本实验旨在探究谷胱甘肽的抗氧化活性,为其在医药、食品等领域的应用提供理论依据。
二、实验材料与方法1. 实验材料(1)谷胱甘肽标准品(纯度≥98%)(2)维生素E标准品(纯度≥98%)(3)FeSO4·7H2O(4)EDTA-Na2(5)无水乙醇(6)蒸馏水(7)721分光光度计(8)电子天平2. 实验方法(1)标准曲线绘制①准确称取维生素E标准品10mg,置于100mL容量瓶中,加入无水乙醇溶解,定容至刻度,配制成100μg/mL维生素E标准溶液。
②分别取1.0mL、2.0mL、3.0mL、4.0mL、5.0mL维生素E标准溶液于10mL容量瓶中,加入0.1mol/L FeSO4·7H2O溶液1.0mL,EDTA-Na2溶液1.0mL,混匀。
室温下放置10min。
③以蒸馏水为空白,于510nm波长处测定吸光度。
④以维生素E浓度为横坐标,吸光度为纵坐标,绘制标准曲线。
(2)谷胱甘肽抗氧化活性测定①准确称取一定量的谷胱甘肽标准品,加入无水乙醇溶解,配制成一定浓度的谷胱甘肽溶液。
②取1.0mL谷胱甘肽溶液于10mL容量瓶中,按照维生素E标准曲线绘制方法进行实验。
③以蒸馏水为空白,于510nm波长处测定吸光度。
④根据标准曲线计算谷胱甘肽的抗氧化活性。
三、实验结果与分析1. 标准曲线绘制以维生素E浓度为横坐标,吸光度为纵坐标,绘制标准曲线,得回归方程为:y=0.066x+0.0015,R²=0.998。
2. 谷胱甘肽抗氧化活性测定取1.0mL谷胱甘肽溶液进行实验,测定吸光度为0.068。
根据标准曲线计算,谷胱甘肽的抗氧化活性为80μg/mL。
四、结论本实验结果表明,谷胱甘肽具有一定的抗氧化活性,其抗氧化活性为80μg/mL。
土壤谷胱甘肽测定
土壤谷胱甘肽测定
土壤谷胱甘肽测定是一种分析土壤中谷胱甘肽(glutathione,GSH)含量的方法。
谷胱甘肽是一种重要的抗氧化剂,对于维持土壤中微生物代谢活性和土壤生态系统的稳定具有重要作用。
谷胱甘肽测定可以通过不同的方法进行,常用的方法包括光谱法、显色法和高效液相色谱法等。
光谱法是一种简便快捷的方法,通过分析土壤中谷胱甘肽的光吸收特性来测定其含量。
在特定波长下,谷胱甘肽分子会吸收一定量的光线,通过测量吸收光的强度可以间接测定谷胱甘肽的含量。
显色法是一种常用的定性定量方法,通过化学反应使谷胱甘肽与某些试剂形成可见色素,然后通过比色测定色素的强度来判断谷胱甘肽的含量。
高效液相色谱法是一种精确和灵敏度高的测定方法,通过将土壤中的谷胱甘肽提取出来,并使用高效液相色谱仪进行分离和定量分析。
这种方法可以准确测定谷胱甘肽的含量,并且可以同时测定土壤中其他相关成分的含量。
土壤谷胱甘肽测定可以帮助研究者了解土壤中谷胱甘肽的含量和变化情况,进而评估土壤的养分供应能力、抗氧化能力以及土壤生态系统的稳定性。
这对于土壤质量评估、环境保护和农业可持续发展具有重要意义。
一种简便廉价的谷胱甘肽测定法
一种简便廉价的谷胱甘肽测定法
蓝金贵;罗登柏;曹巍
【期刊名称】《化学与生物工程》
【年(卷),期】2004(21)4
【摘要】报道了一种快速、简便和廉价的谷胱甘肽(GSH)含量测定的新方法.利用GSH的还原性将磷钼杂多酸还原成磷钼杂多蓝,在710 nm最大吸收波长处测其吸光度,吸光度与GSH的浓度在3.3×10-7~1.3×10-4mol·L-1范围内呈线性关系,相关系数r=0.9982,方法检测限为1.6×10-7 mol·L-1,相对标准偏差RSD =
1.1 %(n=6),回收率为97.1 %~103.5% .该法应用于药品中GSH含量的直接测定,结果满意.
【总页数】2页(P55-56)
【作者】蓝金贵;罗登柏;曹巍
【作者单位】中南民族大学化学与生命科学学院,湖北,武汉,430074;中南民族大学化学与生命科学学院,湖北,武汉,430074;中南民族大学化学与生命科学学院,湖北,武汉,430074
【正文语种】中文
【中图分类】Q51;Q503
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1.一种简便、廉价净化水的物质——石墨烯生物泡沫 [J], ;
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氧化型谷胱甘肽测定方法
氧化型谷胱甘肽测定方法引言:氧化型谷胱甘肽(oxidized glutathione, GSSG)是一种重要的抗氧化物质,它在细胞内起到清除自由基和保护细胞免受氧化损伤的作用。
因此,准确测定氧化型谷胱甘肽的含量对于了解细胞氧化状态和维持细胞正常功能具有重要意义。
本文将介绍几种常用的氧化型谷胱甘肽测定方法。
一、梅尔二硫代苯酚法梅尔二硫代苯酚法是一种常用的氧化型谷胱甘肽测定方法。
该方法利用氧化型谷胱甘肽与2,2'-二硫代苯酚反应生成深黄色化合物,通过比色法测定其吸光度来计算氧化型谷胱甘肽的浓度。
该方法简单、快速,且具有较高的灵敏度和准确性。
二、高效液相色谱法高效液相色谱法是一种常用的氧化型谷胱甘肽测定方法。
该方法利用高效液相色谱仪对氧化型谷胱甘肽进行分离和测定。
首先将样品中的氧化型谷胱甘肽与还原剂还原生成还原型谷胱甘肽,然后通过高效液相色谱仪进行分析。
该方法具有分离效果好、灵敏度高、准确性高的优点,但操作复杂,需要专门的仪器设备。
三、酶联免疫吸附测定法酶联免疫吸附测定法是一种基于酶标记技术的氧化型谷胱甘肽测定方法。
该方法利用特异性抗体与氧化型谷胱甘肽结合,然后通过酶标记的二抗与抗体结合,最后通过底物的酶促反应生成产物,通过测定产物的光吸光度来计算氧化型谷胱甘肽的浓度。
该方法具有高灵敏度、高特异性和较强的抗干扰能力,但需要较长的操作时间。
四、电化学法电化学法是一种常用的氧化型谷胱甘肽测定方法。
该方法利用电极对氧化型谷胱甘肽进行氧化还原反应,并通过测定电流的变化来计算氧化型谷胱甘肽的浓度。
该方法具有快速、准确、灵敏度高的优点,但需要专门的电化学仪器设备和操作技术。
结论:氧化型谷胱甘肽测定方法有多种选择,每种方法都有其特点和适用范围。
选择合适的测定方法需要根据实际需求和条件来决定。
无论采用哪种方法,都需要严格控制实验条件和操作步骤,以确保测定结果的准确性和可靠性。
希望本文介绍的几种常用的氧化型谷胱甘肽测定方法对读者有所帮助。
谷胱甘肽(GSH)含量测定
谷胱甘肽(GSH)含量测定一、实验目的1.了解植物组中中抗坏血酸-谷胱甘肽循环代谢过程;2.学习还原型谷胱甘肽含量的测定原理和方法。
二、实验原理谷胱甘肽是有谷氨酸(Glu)、半胱氨酸(Cys)、甘氨酸(Gly)组成的天然三肽,是一种含巯基(—SH)的化合物,广泛存在于动物组织、植物组织、微生物和酵母中。
它作为体内重要的抗氧化剂和自由基清除剂,如与自由基、重金属等结合,从而把机体内有害的毒物转化为无害的物质,排泄出体外。
谷胱甘肽能和2-硝基苯甲酸(DTNB)反应产生2-硝基-5-巯基苯甲酸和谷胱甘肽二硫化物(GSSG),2-硝基-5-巯基苯甲酸为一黄色产物,在波长412nm 处具有最大光吸收。
因此,利用分光光度计法可测定样品中谷胱甘肽的含量。
三、实验材料小麦幼嫩叶片四、实验方法及步骤1.制作标准曲线取7只干净的试管编号,按如下表格加入各试剂,反应20分钟后在412nm 下用分光光度计测其吸光度,制作标准曲线;2.样品测定a、称取小麦叶片0.2g,加入少量5%偏磷酸缓冲液研磨提取,并用5%偏磷酸缓冲液定容至6ml,8000rpm离心10min,取上清液;b、取上述上清液2ml显色,操作同标准曲线。
3.结果计算:GSH含量(ug/Gfw)= (Cx*Vt)/(Fw*Vs)注:Cx---2ml样品中GSH含量(ug),即每管中GSH的含量Vt---样品提取液总体积(ml);Vs----显色时所取样的体积(ml);FW---样品鲜重(g)。
五、实验结果1.标准曲线1.样品测定结果六、注意事项1.使用移液管吸取试剂时,视线要垂直于移液管且与液面凹面水平,不能斜视,以免量取试剂不准确。
2.在提取样品时,最好沉淀出去蛋白质,以防止蛋白质中所含巯基及相关酶对测定结果的影响。
3.在研磨叶片时,为方便研磨,刚开始时加入少量的提取液。
食用菌中谷胱甘肽的测定
食用菌中谷胱甘肽的测定谷胱甘肽是一种重要的抗氧化物质,被广泛应用于食品工业中。
食用菌是一类含有高丰富谷胱甘肽的食材,因此测定食用菌中谷胱甘肽的含量具有重要的意义。
本文将介绍几种常用的测定食用菌中谷胱甘肽的方法。
一、硫巴比妥酸法测定谷胱甘肽含量硫巴比妥酸法是目前测定谷胱甘肽含量最常用的方法之一。
该方法的原理是谷胱甘肽与硫巴比妥酸在碱性条件下反应生成黄色产物,通过测定产物的吸光度可以间接测定谷胱甘肽的含量。
具体操作步骤如下:1. 将食用菌样品粉碎并称取适量,加入酸性溶液中,破坏细胞结构释放出谷胱甘肽。
2. 加入碱性溶液和硫巴比妥酸,使谷胱甘肽与硫巴比妥酸反应生成黄色产物。
3. 使用分光光度计测定产物的吸光度,利用标准曲线计算样品中谷胱甘肽的含量。
二、高效液相色谱法测定谷胱甘肽含量高效液相色谱法是一种常用的分离和定量化合物的方法。
该方法的原理是利用色谱柱对样品中的谷胱甘肽进行分离,通过检测谷胱甘肽的峰面积或峰高来定量谷胱甘肽的含量。
具体操作步骤如下:1. 将食用菌样品制备成适宜的提取液,经过离心等处理步骤,获得待测样品。
2. 使用高效液相色谱仪,将待测样品注入进样器,经过一定的流动相条件下,在色谱柱中进行分离。
3. 通过检测谷胱甘肽的峰面积或峰高,利用标准曲线计算样品中谷胱甘肽的含量。
三、氧化还原法测定谷胱甘肽含量氧化还原法是一种直接测定谷胱甘肽含量的方法。
该方法的原理是利用谷胱甘肽与还原剂在适宜的条件下发生氧化还原反应,通过测定反应前后还原剂的含量变化来确定谷胱甘肽的含量。
具体操作步骤如下:1. 将食用菌样品制备成适宜的提取液,通过离心等处理步骤,获得待测样品。
2. 将待测样品与还原剂在适宜的条件下反应,使谷胱甘肽发生氧化还原反应。
3. 通过测定反应前后还原剂的含量变化,计算谷胱甘肽的含量。
在测定食用菌中谷胱甘肽的含量时,需要注意样品的制备过程,确保提取到的谷胱甘肽是代表样品中真实含量的。
同时,选择合适的测定方法,准确、快速地测定谷胱甘肽含量,有助于评估食用菌的品质和营养价值。
谷胱甘肽(GSH)含量测定
谷胱甘肽(GSH)含量测定一、实验目的1.了解植物组中中抗坏血酸-谷胱甘肽循环代谢过程;2.学习还原型谷胱甘肽含量的测定原理和方法。
二、实验原理谷胱甘肽是有谷氨酸(Glu)、半胱氨酸(Cys)、甘氨酸(Gly)组成的天然三肽,是一种含巯基(—SH)的化合物,广泛存在于动物组织、植物组织、微生物和酵母中。
它作为体内重要的抗氧化剂和自由基清除剂,如与自由基、重金属等结合,从而把机体内有害的毒物转化为无害的物质,排泄出体外。
谷胱甘肽能和2-硝基苯甲酸(DTNB)反应产生2-硝基-5-巯基苯甲酸和谷胱甘肽二硫化物(GSSG),2-硝基-5-巯基苯甲酸为一黄色产物,在波长412nm 处具有最大光吸收。
因此,利用分光光度计法可测定样品中谷胱甘肽的含量。
三、实验材料小麦幼嫩叶片四、实验方法及步骤1.制作标准曲线取7只干净的试管编号,按如下表格加入各试剂,反应20分钟后在412nm 下用分光光度计测其吸光度,制作标准曲线;2.样品测定a、称取小麦叶片0.2g,加入少量5%偏磷酸缓冲液研磨提取,并用5%偏磷酸缓冲液定容至6ml,8000rpm离心10min,取上清液;b、取上述上清液2ml显色,操作同标准曲线。
3.结果计算:GSH含量(ug/Gfw)= (Cx*Vt)/(Fw*Vs)注:Cx---2ml样品中GSH含量(ug),即每管中GSH的含量Vt---样品提取液总体积(ml);Vs----显色时所取样的体积(ml);FW---样品鲜重(g)。
五、实验结果1.标准曲线1.样品测定结果六、注意事项1.使用移液管吸取试剂时,视线要垂直于移液管且与液面凹面水平,不能斜视,以免量取试剂不准确。
2.在提取样品时,最好沉淀出去蛋白质,以防止蛋白质中所含巯基及相关酶对测定结果的影响。
3.在研磨叶片时,为方便研磨,刚开始时加入少量的提取液。
实验五植物组织中谷胱甘肽含量的测定
实验五植物组织中⾕胱⽢肽含量的测定⾕胱⽢肽含量的测定⼀、实验⽬的1、了解⾕胱⽢肽在植物抗逆中作⽤。
2、了解⽬前⾕胱⽢肽含量的测定⽅法。
3、掌握⽐⾊法测定植物体⾕胱⽢肽含量的原理与技术。
⼆、实验原理还原性⾕胱⽢肽(GSH)作为⽣物体内最主要的⾮蛋⽩巯基以及含量最丰富的低分⼦多肽,是植物细胞重要的抗氧化剂之⼀,在植物抗逆过程中直接或间接地参与了许多植物的功能活动,是⼀个良好的表⽰氧化胁迫的指标。
⾕胱⽢肽(GSH)是由⾕氨酸、半胱氨酸和⽢氨酸结合⽽成的三肽,半胱氨酸上的巯基为其活性基团。
在巯基化合物的存在下,⽆⾊的DTNB将被转变成黄⾊的5-巯基-2-硝基苯甲酸。
由于5-巯基-2-硝基苯甲酸在412 nm处具有最⼤吸收,⽽且DTNB的吸收光谱并不造成⼲扰,所以可以⽤分光光度计进⾏测定。
即:GSH和TDBN在pH=7时⽣成黄⾊物质,其颜⾊深浅与GSH的浓度成线性关系。
三、实验材料、试剂与仪器1、实验材料:⼩麦叶⽚2、实验试剂:(1)GSH标准溶液〔0.01mg/ml GSH标准溶液(=亦即10µg/ml)〕:称取50mg 分析纯GSH,溶于蒸馏⽔中,并定容于100ml,即为0.5mg/ml 之标准母液,⽤稀释10倍(0.05mg/ml=亦即50µg/ml GSH)注:⽤时再稀释5倍即为10µg/ml;(2)5%偏磷酸;(3)0.2mol/L 磷酸钾缓冲液,pH7.0;(4)TDNB试剂:称取39.6mg⼆硫代双-⼆硝基苯甲酸(TDNB),⽤0.2mol/L磷酸钾缓冲液溶解并定容于100ml;(5)1mol/L NaOH溶液。
3、实验仪器:V-1000D型可见分光光度计;离⼼机;离⼼管;刻度试管;研钵;吸⽔纸适量;移液管等。
四、⽅法与步骤1、标准曲线的制作取7⽀刻度试管,编号,按表加⼊试剂:试剂(ml)试管号1 2 3 4 5 6 7GSH标准溶液(10µg/ml)0 0.1 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0补蒸馏⽔到2ml 2 1.9 1.8 1.6 1.4 1.2 1.0磷酸缓冲液 4 4 4 4 4 4 4DTNB试剂0.4 0.4 0.4 0.4 0.4 0.4 0.4 GSH浓度(µg/2ml即每管含量)0 1 2 4 6 8 10将上述溶液混合均匀,在室温下显⾊5min。
还原型谷胱甘肽(GSH)与氧化型谷胱甘肽(GSSG)的测定
还原型谷胱甘肽(GSH)与氧化型谷胱甘肽(GSSG)的测定关键词:还原型谷胱甘肽GSH氧化型谷胱甘肽GSSG测定2009-04-24 00:00 来源:互联网点击次数:6147GSH和GSSG 参照Anderson等(1992)。
取0.5 g样品,加入3 mL冰冷的6%的偏磷酸(含1 mmol•L-1 EDTA ,pH 2.8),冰浴研磨,匀浆液以20,000 g,4 ℃离心15 min,取上清液来马上测定GSH和GSSG的含量或储存在-20 ℃下等待测定。
总的GSH和GSSG含量测定如下:200 μL提取液加 1.2 mL反应液包含400 μL反应液1(110 mmol•L-1 Na2HPO4•7H20,40 mmol•L-1NaH2PO4•H2O,15 mmol•L-1EDTA,0.3 mmol•L-15,5‘-dithiobis-(2-nitrobenzoic acid)DTNB,0.04% BSA)、320 μL反应液2 (1 mmol•L-1 EDTA,50 mmol•L-1 imidazole 咪唑solution and 0.02% BSA)、400 μL反应液3(5% Na2HPO4,pH 7.5的溶液稀释50倍)、80 μL 9.0 mmol•L-1 NADPH。
测定OD412下的吸收值。
GSSG 含量测定如下:200 μL提取液加入1 mL的2-2乙烯嘧啶(稀释50倍)在25°C下水浴1 h再测定OD412下的吸收值。
GSH的含量可以从总的GSH和GSSG含量中减去GSSG含量获得。
GSH测定方法:取样品0.5 g,加入预冷的5%磺基水杨酸2.5 ml和少许石英砂,充分冰预研磨,转入离心管中,于4℃下20,000×g离心20min,将上清液分装,液氮冷冻后于-20℃保存或直接进行抗氧化剂分析。
取50 μL上清液,用5% 磺基水杨酸定容至100 μL (即加入5% 磺基水杨酸50 μL),加入24 μL 1.84 mol•L-1三乙醇胺triethlene diamine以中和样液,加入50 μL 10% 乙烯吡啶Polyvinyl pyridine (用70% 乙醇配制),25℃水浴1 h,以除去GSH,到时加入706 mL 50 mmol•L-1磷酸缓冲液,pH 7.5,内含2.5 mmol•L-1 EDTA,加入20 μL 10 mmol•L-1 NADPH 和80 μL 12.5 mmol•L-1 DTNB(二硫硝基苯甲酸),混匀,25℃保温10 min,到时加入20μL 50 U•mL-1 GR,总体积为1 mL,立即混匀,读出3 min时的OD值。
谷胱甘肽含量测定即制备
生素C可以使氧化型谷胱甘肽转变为还原型谷胱甘肽(GSH ),使机体代谢产生的过氧化氢(H2O2)还原;维生素C还 可保护维生素A、E及某些B族维生素免受氧化。因此,运用 谷胱甘肽时,与维生素C并用,能够提高其功效。
食品
添加谷胱甘肽可起到意想不到的作用 1、加入到面制品中,可起到还原作用。不仅使制造面 包的时间缩短至原来的二分之一或三分之一,劳动 条件大幅度改善,并起到食品营养的强化作用及其 他功能。
mol/L的碘酸钾滴定至溶液由无色变为蓝色为止。 KIO3+5KI+6HPO3 →3I2 +6KPO3 +3H2O
由于实验室条件所限be米试验采用第一种方法:
【提取工艺】干酵母破碎含谷胱甘肽的抽提液离子交换 层析洗脱液中和真空浓缩干燥 1、取5g干酵母,与15ml蒸馏水充分混合后倒入25ml沸 腾的水中。 2、用5ml水洗涤烧杯一并倒入,使混合液保持在95-100℃, 沸腾5min。放置冰水中速冷。
项目三 谷胱甘肽的制备及含量测定(第六组)
谷胱甘肽名片
谷胱甘肽是一种含γ-酰胺键和巯基的三肽,
由谷氨酸、半胱氨酸及甘氨酸组成。存在于
几乎身体的每一个细胞。谷胱甘肽能帮助保 持正常的免疫系统的功能,并具有抗氧化作 用和整合解毒作用,半胱氨酸上的巯基为其 活性基团(故常简写为G-SH),易与某些 药物(如扑热息痛)、毒素(如自由基、碘 乙酸、芥子气,铅、汞、砷等重金属)等结 合,而具有整合解毒作用。
而水溶液在空气中则易被氧化,两分子还原型谷胱甘肽的
活泼巯基氧化缩合为二硫键,即得到氧化型谷胱甘肽。
谷胱甘肽主要来源
谷胱甘肽广泛存在于动、植物中,在生物体内有着重要的
作用。在面包酵母、小麦胚芽和动物肝脏中的含量很高, 达100~1000mg/100g,在人体血液中含26~34mg/100g, 鸡血中含58~73mg/100g,猪血中含10~15mg/100g,在 西红柿、菠萝、黄瓜中含量也较高(12~33mg/100g),而 在甘薯、绿豆芽、洋葱、香菇中含量较低(0.06~0.7mg/ 100g)。故其主要来源是通酵母加20ml 2%偏磷酸,60℃水浴中搅拌抽提15min,
谷胱甘肽标准测定方法
谷胱甘肽标准测定方法
谷胱甘肽的测定方法主要有以下几种:
1. 埃尔曼(Ellman)法:这是最常用的谷胱甘肽测定方法,其原理是谷胱甘肽在DTNB(二硝基苯磺酸)的作用下,生成具有黄色的DTNB-SH,通过测定其吸光度来定量谷胱甘肽的含量。
2. 弗斯特(Foster)法:这种方法是通过测定谷胱甘肽在酸性环境下的还原能力,即测定其对2-硝基-5-苯甲酸的还原能力,通过测定其产物2-氨基-5-苯甲酸的吸光度来定量谷胱甘肽的含量。
3. 比色法:这种方法是通过测定谷胱甘肽在酸性环境下的还原能力,即测定其对2,4-二硝基苯酚的还原能力,通过测定其产物2,4-二氨基苯酚的吸光度来定量谷胱甘肽的含量。
4. 高效液相色谱法(HPLC):这种方法是通过分离、定量样品中的谷胱甘肽,通过比较其峰面积与已知浓度的谷胱甘肽峰面积来定量谷胱甘肽的含量。
5. 荧光光谱法:这种方法是通过测量谷胱甘肽的荧光光谱,通过比较其荧光强度与已知浓度的谷胱甘肽荧光强度来定量谷胱甘肽的含量。
以上方法都有其优点和缺点,选择哪种方法主要取决
于实验的目的和条件。
谷胱甘肽的简便测定法
谷胱甘肽的简便测定法药物分析杂志 2000年第1期第20卷研究简报作者:赵旭东魏东芝万群俞俊棠单位:赵旭东魏东芝万群俞俊棠(华东理工大学生物反应器工程国家重点实验室上海200237)关键词:谷胱甘肽、甲醛、半胱氨酸、DTNB 摘要:目的:建立一种快速简便测定谷胱甘肽的新方法。
方法:样品1式2份,pH 8.0条件下分别和甲醛反应2 min和60 min,各取1 mL加入5 mL DTNB溶液,25 ℃反应5 min后分别测定在波长412 nm的吸光度,算出2者的差值ΔA,代入标准曲线计算得出谷胱甘肽含量。
结果:谷胱甘肽浓度在0.19~0.95 g·L-1之间线性关系良好,回归方程为:Y=0.715 4X-0.000 4,r=0.999 9,最大误差不超过6%。
结论:方法成本低廉,简单易行,特别适合于有干扰物质存在时还原型谷胱甘肽浓度的分析。
A Simple Method for Rapid Determination of ReducedGlutathioneZhao Xudong Wei Dongzhi Wan Qun Yu Juntang (State Key Laboratory of Bioreactor Engineering, Institute of Biochemistry,East China University of Science and Technology, Shanghai 200237)Abstract:Objective:A new simple method for rapid determination of reduced glutathione in the presence of other thiols is developed based on the reactions of formaldehyde with glutathione and interefering substances.Method:After each aliquot of two same samples reacts with formaldehyde for 2 and 60 min respectively, 1 mL of each solution is added to 5 mL DTNB and reacts for 5 min at 25 ℃. The absorbance is measured immediately at wavelength 412 nm. The difference between two absorbance(ΔA=A2 min-A60 min)is calculated, concentration of glutathione can be obtained from standard curve.Result:There is a good linearity between 0.19 to 0.95 g·L-1 glutathione. Regression equation:Y=0.715 4X-0.000 4,r=0.999 9,maximum deviation is less than 6%.Conclusion:The method is cheap, simple, practicable and is applicable to assay of reduced glutathione in the presence of other interefering substances.Key words:glutathione, formaldehyde, cysteine, DTNB▲谷胱甘肽(GSH)是由谷氨酸、半胱氨酸(Cys)和甘氨酸组成的天然三肽,用途广泛。
谷胱甘肽含量实验报告结果
谷胱甘肽含量实验报告结果1. 实验目的本实验旨在测定不同样本中谷胱甘肽的含量,探究谷胱甘肽在不同条件下的生成和消耗情况。
2. 实验方法2.1 实验材料- 谷胱甘肽标准品- 待测样本- 0.1mol/L磷酸缓冲液(pH=6.8)- 10%三氯乙酸- 1%二硫苏糖- 75mmol/L硝酸钠- 50mmol/L亚硫酸钠2.2 实验步骤1. 取不同浓度的谷胱甘肽标准品,分别加入磷酸缓冲液。
2. 将标准品和待测样本加入10%三氯乙酸中,振荡离心。
3. 取上清液稀释一半,加入1%二硫苏糖,室温放置15分钟。
4. 加入75mmol/L硝酸钠,室温放置5分钟。
5. 加入1ml 50mmol/L亚硫酸钠。
6. 在紫外-可见分光光度计上读取吸光度,得到吸光度与浓度的标准曲线。
7. 测定待测样本的吸光度,并根据标准曲线计算谷胱甘肽的含量。
3. 实验结果3.1 谷胱甘肽标准曲线谷胱甘肽浓度(µmol/L)吸光度:: ::0 0.00010 0.25020 0.48030 0.72040 0.9603.2 待测样本的吸光度和含量计算结果样本编号吸光度谷胱甘肽浓度(µmol/L):: :: ::1 0.380 15.22 0.630 25.23 0.285 11.44 0.520 20.85 0.740 29.64. 结果分析根据谷胱甘肽标准曲线,可以计算出待测样本中谷胱甘肽的含量。
根据实验结果可知,样本1中谷胱甘肽的含量为15.2µmol/L,样本2为25.2µmol/L,样本3为11.4µmol/L,样本4为20.8µmol/L,样本5为29.6µmol/L。
从结果可以看出,不同样本中谷胱甘肽含量有所差异。
这可能是因为样本来源的不同,谷胱甘肽生成和消耗速率的差异等原因导致的。
5. 实验总结本实验通过测定不同样本中谷胱甘肽的含量,初步了解了谷胱甘肽的生成和消耗情况。
谷胱甘肽检测方法
谷胱甘肽定义描述L-r谷氨酰基-L-半胱氨酰基甘氨酸含量:按干燥品计算,98.0%-101.0%性状外观性状:白色或几乎白色结晶性粉末或无色的结晶。
溶解度:易溶于水,微溶于96%乙醇及二氯甲烷。
鉴别A 比旋度符合特定的光学旋转测定(见测定项)。
B 红外吸收光谱检测(2.2.24)对比:谷胱甘肽CRS.测定溶液S:取该品5.0g,蒸馏水R溶解并稀释至50ml。
溶液澄清度溶液S澄清(2.2.1),无色(2.2.2,Method II) 比旋度(2.2.7)-15.5~-17.5(干品物质)取该品1.0g,蒸馏水R溶解并稀释至25.0ml。
有关物质采用毛细管电泳法(2.2.47)溶液应临用前新鲜配制毛细管-材料:石英(未涂层)-尺寸:有效长度0.5m,总长:0.6m,内径75 μm温度:25℃电解质溶液:取无水磷酸二氢钠R1.50g,加水R230.0ml,用磷酸R调节PH值为1.80。
加水R稀释至150.0ml,检测PH值,如有必要,用磷酸R或氢氧化钠溶液R调节PH值。
检测:采用分光光度计在200 nm处检测新毛细管的预处理:在首次进样前在压力138Kpa下用0.1mol/L盐酸溶液前冲洗毛细管20min,138Kpa压力下用水R冲洗10分钟已达到全平衡状态,用电解质溶液在350kpa 条件下冲洗40min,在电压20kv条件下保持60min。
预处理的毛细管:138 kPa压力下,用电解质溶液冲洗毛细管40min;批间冲洗:138 kPa压力下,依次用水R冲洗毛细管1min,0.1mol/L氢氧化钠溶液冲洗2min;水R冲洗1min,0.1mol/L盐酸溶液冲洗3min,最后用电解质溶液冲洗10min;进样:3.45 kPa压力下维持5s;注入电解质溶液(空白溶液),对照溶液(b)、(c)和供试溶液a、b迁移:电压为20KV运行时间:45min相对迁移率:相对于内标物质(约14min)杂质A=约0.77杂质B=约1.04;杂质E=约1.2杂质C=约1.26;杂质D=约1.3系统适用性分辨率:内标物质产生的峰与对照溶液C中那个杂质B产生的峰之间最低为1.5,如有必要,使用稀氢氧化钠溶液上调PH值峰-谷比:最低位2.5.其中:HP=杂质D产生的基线峰以上的高度HV=对照溶液中谷胱甘肽产生的峰的分离曲线的最低点以上的高度如有必要采用磷酸下调PH。
谷胱甘肽
谷胱甘肽的制备及含量测定一、实验目的1.了解谷胱甘肽的理化性质,作用,制备工艺2.掌握谷胱甘肽的含量检测的方法二、实验原理谷胱甘肽广泛存在于动、植物中,在生物体内有着重要的作用。
在面包酵母、小麦胚芽和动物肝脏中的含量很高,达100~1000mg/100g,在人体血液中含26~34mg/100g,鸡血中含58~73mg/100g,猪血中含10~15mg/100g,在西红柿、菠萝、黄瓜中含量也较高(12~33mg/100g),而在甘薯、绿豆芽、洋葱、香菇中含量较低(0.06~0.7mg/100g)。
谷胱甘肽的含量测定本实验采用亚硝基铁氰化钠法。
其原理是:谷胱甘肽在氨水存在下,与亚硝基铁氰化钠发生巯基反应,生成红色化合物。
测定中加入硫酸铵可以增加颜色反应的强度。
三实验器材1 .器材:50ml量筒一个100ml烧杯一个1ml,5ml移液管各一支50ml容量瓶一个,100ml容量瓶一个732阳离子交换吸附柱紫外分光度计比色皿3个试管若干收集器,蠕动泵电磁炉冰块若干离心机离心管PH试纸2.试剂:干酵母5g 0.25mol/LNaOH(1g NaOH 配置成100ml) 亚硝基氰化钠50%H2SO4(25ml,) 硫酸铵粉末1g 亚硝基铁氰化钠,氨水(班上一起配,)四、实验步骤提取工艺1、取5g干酵母,与15ml蒸馏水充分混合后倒入25ml沸腾的水中。
2、用5ml水洗涤烧杯一并倒入,使混合液保持在95-100℃,沸腾5min。
放置冰水中速冷。
3、在2000rpm速度下离心10min,取上清液,即谷胱甘肽抽提液。
4、谷胱甘肽抽提液,调pH至3.0。
5、上处理好的732阳离子交换吸附柱吸附。
6、用0.25mol/L的NaOH溶液洗脱,洗脱流速10ml/min。
收集洗脱液,洗脱终点用亚硝基氰化钠检测。
7、中和洗脱液至pH6.5。
8、真空浓缩,干燥,得还原性谷胱甘肽粗品谷胱甘肽的含量测定1、在试管中加入1.0g硫酸铵粉末,以使体系中硫酸铵达到过饱和;1ml待测的谷胱甘肽溶液,3ml硫酸铵饱和溶液,摇匀。
谷胱甘肽
药品 基本信息 谷胱甘肽 谷胱甘肽:还原型谷胱甘肽、阿拓莫兰、古拉定 CAS号:70-18-8 EINECS200-725-4 [1] 分子式:C10H17N3O6S 分子量:307.32348 熔点:为189~193°C,晶体呈无色透明细长拉状,等电点为 5.93。 药理作用:本品可促进糖、脂肪及蛋白质代谢,加速自由基排泄, 保护肝脏的合成、解毒、灭活激素等功能。
谷胱甘肽不仅能消除人体自由基,还可以提高人体免疫力。谷胱甘肽维护 健康,抗衰老,在老人迟缓化的细胞上所发挥的功效比年轻人大。 谷胱甘肽还可以保护血红蛋白不受过氧化氢氧化、自由基等氧化从而 使它持续正常发挥运输氧的能力。红细胞中部分血红蛋白在过氧化氢等氧 化剂的作用下,其中二价铁氧化为三价铁,使血红蛋白转变为高铁血红蛋 白,从而失去了带氧能力。还原型谷胱甘肽既能直接与过氧化氢等氧化剂 结合,生成水和氧化型谷胱甘肽,也能够将高铁血红蛋白还原为血红蛋白。 人体红细胞中谷胱甘肽的含量很多,这对保护红细胞膜上蛋白质的巯基处 于还原状态,防止溶血具有重要意义。 谷胱甘肽保护酶分子中-SH基,有利于酶活性的发挥,并且能恢复已被 破坏的酶分子中-SH基的活性功能,使酶重新恢复活性。谷胱甘肽还可以抑 制乙醇侵害肝脏所产生的脂肪肝。 谷胱甘肽对于放射线、放射性药物所引起的白细胞减少等症状,有强 有力的保护作用。谷胱甘肽能与进入人体的有毒化合物、重金属离子或致 癌物质等相结合,并促进其排出体外,起到中和解毒作用。
生理作用或功能 谷胱甘肽广泛存在于动、植物中,在生物体内有着重要的作用。在面包酵 母、小麦胚芽和动物肝脏中的含量很高,达100~1000mg/100g,在人体血液中 含26~34mg/100g,鸡血中含58~73mg/100g,猪血中含10~15mg/100g,在西 红柿、菠萝、黄瓜中含量也较高(12~33mg/100g),而在甘薯、绿豆芽、洋葱、 香菇中含量较低(0.06~0.7mg/100g)。 机体新陈代代谢产生的过多自由基会损伤生物膜,侵袭生命大分子,加快 机体衰老,并诱发肿瘤或动脉粥样硬化的产生。谷胱甘肽在人体内的生化防御 体系起重要作用,具有多方面的生理功能。它的主要生理作用是能够清除掉人 体内的自由基,做为体内一种重要的抗氧化剂,保护许多蛋白质和酶等分子中 的巯基。GSH的结构中含有一个活泼的巯基-SH,易被氧化脱氢,这一特异结 构使其成为体内主要的自由基清除剂。例如当细胞内生成少量H2O2时,GSH在 谷胱甘肽过氧化物酶的作用下,把H2O2还原成H2O,其自身被氧化为GSSG, GSSG由存在于肝脏和红细胞中的谷胱甘肽还原酶作用下,接受H还原成GSH, 使体内自由基的清除反应能够持续进行。
谷胱甘肽的测定实验报告
一、实验目的1. 了解谷胱甘肽在生物体内的作用和重要性。
2. 掌握谷胱甘肽含量的测定原理和方法。
3. 通过实验,提高实验室操作技能和数据分析能力。
二、实验原理谷胱甘肽(GSH)是一种由谷氨酸、半胱氨酸和甘氨酸组成的天然三肽,具有强大的抗氧化作用。
在生物体内,谷胱甘肽参与多种生物化学反应,包括抗氧化、解毒、细胞信号传导等。
本实验采用比色法测定植物组织中谷胱甘肽的含量。
比色法测定谷胱甘肽含量的原理如下:1. 在一定条件下,还原型谷胱甘肽(GSH)与5,5'-二硫代双(2-硝基苯甲酸)(DTNB)反应,生成黄色的2-硝基5-巯基苯甲酸(TNB)。
2. 通过测定TNB在特定波长下的吸光度,可以计算出样品中谷胱甘肽的含量。
三、实验材料与仪器1. 材料:植物组织(如芦笋、花椰菜等)、DTNB溶液、EDTA-Na2溶液、Na2HPO4溶液、NaH2PO4溶液、蒸馏水等。
2. 仪器:可见光分光光度计、低温高速离心机、匀浆器、恒温水浴锅、微量加样器等。
四、实验步骤1. 样品制备:取一定量的植物组织,加入适量的蒸馏水,用匀浆器充分匀浆,制成匀浆液。
在低温高速离心机中以3000 r/min离心10分钟,取上清液作为待测样品。
2. 标准曲线绘制:分别配制不同浓度的GSH标准溶液,按照实验方法测定其吸光度。
以GSH浓度为横坐标,吸光度为纵坐标,绘制标准曲线。
3. 样品测定:取一定量的待测样品,按照实验方法测定其吸光度。
根据标准曲线,计算出样品中谷胱甘肽的含量。
4. 数据处理:将实验数据输入计算机,进行统计分析,得出实验结果。
五、实验结果与分析1. 标准曲线:根据实验数据绘制标准曲线,得到线性方程:y = 0.046x + 0.0058,相关系数R2 = 0.9986。
2. 样品测定:取一定量的芦笋匀浆液,按照实验方法测定其吸光度,计算得到谷胱甘肽含量为0.023 mg/g。
3. 数据分析:通过实验结果可以看出,植物组织中谷胱甘肽含量较高,说明植物具有较好的抗氧化能力。
谷胱甘肽的生理意义及其各种测定方法比较_评价
的发展和完善。下面对目前常用的几种主要的测定 方法做一介绍、比较和评价。 谷胱甘肽测定方法 酶循环法。其测定原理为 氧 化 ! 还 原 反 应 : "#$ 被 7DEF ( 242G ! H@IJ@+K@= ! ! !
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摘要
谷胱甘肽是一种非常特殊的氨基酸衍生物,广泛存在于动、植物细胞,在生物体内有许多重要的生理
作 用 。 人 类 组 织 中 ()* 的 浓 度 的 研 究 还 不 广 泛 。 谷 胱 甘 肽 的 测 定 有 许 多 方 法 , 目 前 还 没 有 一 种 既 快 速 、 稳 定 、 特 异,又十分灵敏、经济的测定方法。本文对谷胱甘肽的生理意义及其各种测定方法作一综述。 关键词 谷胱甘肽 生理意义 测定方法 中图分类号 文献标识码 文章编号
" 中 国 医 学 科 学 院 中 国 协 和 医 科 大 学 基 础 医 学 研 究 所 医 学 分 子 生 物 学 国 家 重 点 实 验 室 ; ! 通 信 作 者 住 院 医 师 , 电 话 : %$% ! 1,0Z1%02 , 传 真 : %$% ! 1,$2%1Z/ , 电 子 邮 件 : P>9H:;8Na$1’RL-=FQ
及 EM7;$ ( 还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸)反 应 , 还 原 生 成 "#$ 。 在 EM7;$ 与 "##" 还 原 酶 维 持
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谷胱甘肽的简便测定法药物分析杂志 2000年第1期第20卷研究简报作者:赵旭东魏东芝万群俞俊棠单位:赵旭东魏东芝万群俞俊棠(华东理工大学生物反应器工程国家重点实验室上海200237)关键词:谷胱甘肽、甲醛、半胱氨酸、DTNB 摘要:目的:建立一种快速简便测定谷胱甘肽的新方法。
方法:样品1式2份,pH 8.0条件下分别和甲醛反应2 min和60 min,各取1 mL加入5 mL DTNB溶液,25 ℃反应5 min后分别测定在波长412 nm的吸光度,算出2者的差值ΔA,代入标准曲线计算得出谷胱甘肽含量。
结果:谷胱甘肽浓度在0.19~0.95 g·L-1之间线性关系良好,回归方程为:Y=0.715 4X-0.000 4,r=0.999 9,最大误差不超过6%。
结论:方法成本低廉,简单易行,特别适合于有干扰物质存在时还原型谷胱甘肽浓度的分析。
A Simple Method for Rapid Determination of ReducedGlutathioneZhao Xudong Wei Dongzhi Wan Qun Yu Juntang (State Key Laboratory of Bioreactor Engineering, Institute of Biochemistry,East China University of Science and Technology, Shanghai 200237)Abstract:Objective:A new simple method for rapid determination of reduced glutathione in the presence of other thiols is developed based on the reactions of formaldehyde with glutathione and interefering substances.Method:After each aliquot of two same samples reacts with formaldehyde for 2 and 60 min respectively, 1 mL of each solution is added to 5 mL DTNB and reacts for 5 min at 25 ℃. The absorbance is measured immediately at wavelength 412 nm. The difference between two absorbance(ΔA=A2 min-A60 min)is calculated, concentration of glutathione can be obtained from standard curve.Result:There is a good linearity between 0.19 to 0.95 g·L-1 glutathione. Regression equation:Y=0.715 4X-0.000 4,r=0.999 9,maximum deviation is less than 6%.Conclusion:The method is cheap, simple, practicable and is applicable to assay of reduced glutathione in the presence of other interefering substances.Key words:glutathione, formaldehyde, cysteine, DTNB▲谷胱甘肽(GSH)是由谷氨酸、半胱氨酸(Cys)和甘氨酸组成的天然三肽,用途广泛。
利用基因工程微生物生物合成方法是生产谷胱甘肽的主要方式。
作为前体之一,半胱氨酸的浓度较高,对谷胱甘肽的测定有干扰。
已有几种方法用于半胱氨酸存在时谷胱甘肽的测定:酶分析方法[1,2]可测高达1 000倍半胱氨酸存在时谷胱甘肽的含量,结果较准确,但需价格昂贵的辅酶Ⅱ和谷胱甘肽还原酶,并且后者活力变化严重影响测量结果;色谱法[3,4]冗长费时;Jocelyn[5]采用将样品在硫酸中煮沸1 h的方法,不太安全;Wronski[6,7]方法效果较好,但需用对羟基汞苯甲酸和萤光黄;荧光法[8]容易受干扰,误差较大;乙二醛酶法[9]需要复杂的技术和设备。
针对上述方法的不足,本文在研究甲醛同谷胱甘肽和常见含巯基物质反应特点的基础上结合巯基的测定方法[10,11]提出一种简单,快速的新方法,应用于生物合成反应溶液中谷胱甘肽含量的分析取得满意结果。
1 仪器和试剂752紫外光栅分光光度计(上海第三分析仪器厂),恒温水浴槽(上海医疗器械五厂)。
GSH,Gys,为生化试剂;3%甲醛溶液由分析纯试剂加水配制,用NaOH调节pH为8.0;0.25 mol·L-1 pH 8.0的Tris-HCl缓冲液由生化试剂配制;0.01 mol·L-1DTNB[5,5’-二硫代双(2-硝基苯甲酸)]溶液由生化试剂加0.05 mol·L-1 pH 7.0的磷酸缓冲液配制,存于棕色瓶中,放于低温暗处备用;DTNB分析溶液由1体积0.01 mol·L-1DTNB 溶液加100体积0.25 mol·L-1 pH 8.0的Tris-HCl缓冲液配制而成,现用现配;其它试剂为分析纯;所用水为去离子水。
2 分析方法待分析样品(Cys含量不大于20 mmol·L-1,GSH浓度小于0.9 g·L-1)1 mL 2份,每份加入0.25 mol·L-1 pH 8.0的Tris-HCl缓冲液3 mL,摇匀,再加入3%甲醛1 mL,摇匀,室温下分别准确静置2 min 和60 min后,立刻取1 mL加入预先恒温于25 ℃水浴中的DTNB分析溶液5 mL,摇匀,准确静置5 min后,立刻在波长412 nm处测定吸光度A,算出2者的A值之差ΔA,代入回归方程计算相应谷胱甘肽浓度,最大误差不超过6%。
3 结果3.1 显色溶液的稳定性准确称取GSH溶于pH 6.5去离子水配成0.48 g·L-1的标准溶液,取1 mL按上述方法分析,已知室温为26 ℃,5 mL DTNB溶液预先恒温于25 ℃水浴中,分别加入已与甲醛反应2 min 和60 min的样品溶液1 mL后迅速摇匀,以此刻作为反应开始,于不同时间测定吸光度,见表1。
可知反应开始1.5 min到10 min之间显色溶液保持稳定,考虑到因季节不同,与甲醛反应后的样品溶液温度变化,1 mL该溶液加入5 mL预先恒温于25 ℃水浴中的DTNB溶液后需1~3 min才能恢复到25 ℃,选择5 min为反应时间。
表1 显色溶液在不同反应时间的吸光度反应时间/min 反应2 min的样品反应60 min的样品0.5 0.672 0.0111.5 0.680 0.0132.5 0.680 0.0135.0 0.680 0.01310 0.680 0.01315 0.678 0.01220 0.678 0.01230 0.670 0.01160 0.649 0.0063.2 标准曲线的制作谷胱甘肽含有疏基,按照疏基的测定方法[11,12]可求出GSH的含量。
准确称取GSH溶于pH 6.5去离子水配成0.95 g·L-1的标准溶液,分别取该溶液0.2,0.4,0.6,0.8,1.0 mL,相应加入0.8,0.6,0.4,0.2,0 mL pH 6.5的去离子水,用水代替甲醛作为对照。
按分析方法与甲醛反应2 min和60 min后测定结果见表2。
以Y为纵坐标,表示GSH(g·L-1)浓度,以X为横坐标,表示ΔA,用最小二乘法计算得回归方程和相关系数为:Y=0.715 4X-0.000 4 r=0.999 9说明线性关系良好。
表2 GSH浓度(g·L-1)与ΔA之间的关系GSH加入量/ A2 min A60 minΔA g·L-1A2 min-A60 min0.00 0.000 0.000 0.0000.19 0.272 0.013 0.2590.38 0.553 0.017 0.5360.57 0.830 0.027 0.8030.76 1.101 0.030 1.0710.95 1.352 0.034 1.3183.3 甲醛同Cys和GSH的反应速度配制浓度为0.95 g·L-1的GSH标准溶液和2.6 g·L-1的Cys标准溶液,按分析方法分别与甲醛反应不同时间后测量A值,用水代替甲醛作为对照。
结果表明(表3):室温下pH 8.0时,和甲醛反应2 min后,98.94%的Cys被掩蔽,而GSH只有3.08%;反应1 h后,97.56%的GSH也被掩蔽,由此可知,甲醛同半胱氨酸的反应更快。
利用这种反应速度的差异,可以分别测定Cys和GSH的浓度;由此启发研究其他含疏基物质与甲醛的反应特性。
表3 甲醛同Cys和GSH的反应速度与甲醛反应时间/minGys GSH A A0 2.159(对照) 1.395(对照)1 0.240 11.22 1.384 99.212 0.023 1.06 1.352 96.923 0.019 0.88 1.329 95.2730 0.019 0.88 0.335 24.0160 0.018 0.88 0.034 2.443.4 多种含疏基物质共存时GSH含量分析生物合成GSH溶液中含有细胞泄漏物如辅酶A、蛋白质等含疏基物质,提取时还用到疏基乙醇和NaHSO3还原氧化型GSH这些物质干扰GSH的分析。
进一步研究甲醛同这些物质的反应性质如表4所示。
表4 各种含疏基物质同甲醛的反应性质及对GSH测定的影响编号样品A2 min A60 minA2 min-A60min对GSH测定的影响1 0.2 mL GSH(0.95 g·L-1) 0.272 0.013 0.2592 0.2 mL Cys(2.6 g·L-1) 0.005 0.002 0.003 小3 0.2 mL巯基乙醇(31.67%) 0.499 0.494 0.005 小41 mL二硫苏糖醇(0.21g·L-1)c0.683 0.117 0.556 很大5 1 mL NaHSO3(1.08 g·L-1) 0.119 0.121 -0.002 小61 mL木瓜蛋白酶(2.7g·L-1)a0.072 0.071 0.001 小71 mLβ-半乳糖苷酶(3g·L-1)a0.187 0.187 0.000 没有8 0.8 mL酵母细胞裂解液0.170 0.115 0.055 大(蛋白质浓度53 mg·L-1)b90.5 mL E.coli细胞裂解液0.045 0.032 0.013 大(蛋白质浓度39 mg·L-1)ba.这2种酶含有巯基,用来说明甲醛同蛋白质巯基的反应性质b.生物合成GSH的反应系统含有固定化酵母和E.coli细胞,溶液中有这2种细胞的泄漏物如蛋白质、辅酶等含巯基物质,分析这2个样品是为了检验这些含巯基物质对GSH测定的影响c.二硫苏糖醇与巯基乙醇和NaHSO3不同,因为和甲醛反应使它的A值减小许多,给分析带来麻烦;还原反应溶液中的氧化型GSH时只采用巯基乙醇和NaHSO3表4结果表明,除二硫苏糖醇外,与甲醛反应的常见含巯基物质基本上可分为4种,第1种和甲醛反应2 min 后,几乎完全被掩蔽,如半胱氨酸;第2种和甲醛反应的时间越长,被掩蔽的越多,以致最后被掩蔽,如谷胱甘肽、酵母和E.coli细胞裂解液中的未知成分;第3种与甲醛的反应在2 min时就已完成,部分被掩蔽,2 min和60 min时的A值几乎一样,如NaHSO3和木瓜蛋白酶;第4种是基本上不与甲醛反应,如巯基乙醇和半乳糖苷酶。