核酸的分离纯化及鉴定技术生化分析
核酸的提取与鉴定实验报告
核酸的提取与鉴定实验报告一、实验目的1、掌握从生物样本中提取核酸(DNA 或 RNA)的基本原理和方法。
2、学习使用各种试剂和仪器进行核酸提取的操作步骤。
3、了解核酸鉴定的常用方法及其原理。
4、培养实验操作技能和科学研究的严谨态度。
二、实验原理核酸包括脱氧核糖核酸(DNA)和核糖核酸(RNA),是生物体遗传信息的携带者。
核酸提取的基本原理是利用细胞裂解液将细胞破碎,使核酸释放出来,然后通过一系列的物理和化学方法将核酸与其他细胞成分分离,最后得到纯度较高的核酸样品。
DNA 提取常用的方法有酚氯仿抽提法、盐析法等。
酚氯仿抽提法是利用酚和氯仿的混合液去除蛋白质,然后通过乙醇沉淀得到 DNA。
盐析法是利用高浓度的盐使蛋白质变性沉淀,从而分离出 DNA。
RNA 提取常用的方法有异硫氰酸胍法、Trizol 法等。
Trizol 法是基于异硫氰酸胍和酚的作用,能够有效地裂解细胞并抑制 RNA 酶的活性,从而提取出完整的 RNA。
核酸鉴定的方法主要有紫外分光光度法、琼脂糖凝胶电泳法等。
紫外分光光度法通过测定核酸在 260nm 和 280nm 处的吸光度值(A260 和 A280)来评估核酸的纯度和浓度。
A260/A280 的比值在 18 20 之间表示 DNA 纯度较高,在 19 21 之间表示 RNA 纯度较高。
琼脂糖凝胶电泳法则是根据核酸分子在电场中的迁移率不同来分离和鉴定核酸,DNA 分子在琼脂糖凝胶中迁移距离与分子量大小成反比,RNA 通常会呈现出 28S、18S 和 5S 三条带。
三、实验材料与仪器1、实验材料新鲜的动物组织(如肝脏、肌肉等)或培养的细胞。
大肠杆菌菌液。
2、实验试剂细胞裂解液(含蛋白酶 K)。
酚氯仿混合液(酚:氯仿= 1:1)。
无水乙醇、75%乙醇。
3M 醋酸钠(pH 52)。
Trizol 试剂。
异丙醇。
RNA 酶抑制剂。
琼脂糖。
50×TAE 电泳缓冲液。
核酸染料(如 EB 或 GelRed)。
核酸的分离纯化及鉴定技术生化分析描述
核酸的分离纯化及鉴定技术生化分析描述一、核酸的分离纯化技术1.超声破碎法超声破碎法是一种通过超声波的振动作用破碎细胞膜,释放细胞内的核酸分子的方法。
该方法操作简便,效果较好。
2.酚-氯仿提取法酚-氯仿提取法是一种经典的核酸提取方法,通过酚和氯仿相间重复萃取的方法,将细胞或组织中的核酸分子提取到有机相中,然后用酒精沉淀。
3.离心沉淀法离心沉淀法是利用不同物质在不同离心力下沉降速度的不同,将核酸从其他组分中分离出来的方法。
可通过高速离心使核酸沉淀到底部,将上清液中的其他杂质倒掉,最后用缓冲液重悬核酸。
4.配对离心法配对离心法是利用核酸的碱基配对性质,在特定的条件下使目标DNA 与特异性探针配对,然后通过离心将核酸-探针复合物从其他杂质中分离出来。
这种方法常用于核酸的富集和寡核苷酸修饰位点的分析。
二、核酸的鉴定技术1. 紫外-可见分光光度法(UV-Vis)紫外-可见分光光度法是通过核酸分子在紫外光或可见光波长范围内的吸收特性来确定其存在和浓度的方法。
根据核酸中含有的吸收波长为260 nm处的碱基特征吸光峰,可以判断核酸的纯度和浓度。
2.电泳分析法电泳分析法是通过核酸分子在电场中的迁移速率和特定条件下的尺寸分离效应来分析核酸的方法。
主要包括琼脂糖凝胶电泳和聚丙烯酰胺凝胶电泳两种方法。
核酸经电泳后可以观察到DNA或RNA在凝胶中的特征性带状图案,确定其分子大小、纯度和带电性。
3.PCR(聚合酶链式反应)PCR是一种常用的核酸鉴定技术,通过特定引物和聚合酶的作用,在体外进行核酸的扩增以达到检测目的。
PCR可用于快速检测目标DNA的存在与否,以及定性和定量分析。
4.基因测序技术基因测序技术是指利用测序反应将核酸序列信息转化为比特(通常指二进制),然后通过计算机软件分析的方法对核酸序列进行鉴定。
常用的基因测序技术有dideoxy测序和串联反应测序。
三、应用核酸的分离纯化及鉴定技术广泛应用于生物医学研究、遗传学、分子生物学、基因工程和疾病诊断等领域。
医学课件-核酸的分离与纯化
课程背景
化学组成
核酸是由核苷酸构成的,包括脱氧核糖核酸(DNA)和核糖核酸(RNA)两种。
结构特征
DNA的双螺旋结构以及RNA的单链结构是核酸的典型结构特征。
核酸简介
获得高纯度核酸
提高核酸检测灵敏度
研究和开发需求
分离与纯化的目的
02
核酸的分离
将生物样品处理成匀浆或细胞裂解液,以便释放其中的核酸。
要点一
要点二
自动化和智能化
未来的核酸分离和纯化技术将更加注重自动化和智能化,能够实现自动化操作、减少人为误差和增加批量化生产的能力。
应用领域的拓展
随着生命科学和医学的不断发展和进步,核酸分离和纯化技术的应用领域也将不断拓展,将会有更多的应用场景和用途被发现和应用。
要点三
谢谢您的观看
THANKS
xx年xx月xx日
医学课件-核酸的分离与纯化
CATALOGUE
目录
引言核酸的分离核酸的纯化核酸的鉴定实验方案设计总结与展望
01
引言
核酸是生物体内的重要遗传物质,对于研究基因组、基因表达、基因功能等生物学核心问题具有重要意义。
生物学研究需求
随着生物学和生物技术学的不断发展,不断有新的核酸分离与纯化方法和技术出现,推动了医学和生物医学领域的发展。
步骤
将细胞裂解后,加入酚氯仿混合液,充分混匀,离心,取上清液,再加入氯仿充分混匀,离心,取上清液,最后加入异戊醇沉淀核酸。
实验方案设计一:酚氯仿抽提法
原理
乙醇沉淀法是一种利用乙醇沉淀核酸的方法。
步骤
将细胞裂解后,加入乙醇,充分混匀,离心,弃去上清液,再加入乙醇洗涤沉淀,离心,弃去上清液,最后干燥沉淀得到核酸。
核酸的分离纯化及鉴定
Slution I
50 mmol/L 葡萄糖 25 mmol/L Tris· Cl(PH8)
10 mmol/L EDTA(PH8)
Slution2
0.2 mol/L NaOH(用时用10 mol/L储存液稀释) 1% SDS
Slution3
5 mol/L乙酸钾 冰乙酸 水
置冰箱15 min,离心取水相。 重复一次。 再用等体积的氯仿—异戊醇(24:1)抽提1—2次。 离心取水相。
加入等体积的乙醚抽提1—2次。
向水相加两倍体积95%冷乙醇。 -20℃过夜或-70℃半小时。 离心15000 rpm, 20 min, 沉淀DNA。 75%的乙醇洗涤一次,室温或真空干燥。
104-106 或者更大。DNA分子量1.6×106-2.2×109 。 性状和溶解度:DNA多为白色纤维状固体。RNA为白色 粉末。都微溶于水,他们的钠盐在水中溶解度较大, 都溶于2-甲氧乙醇,但不溶于一般有机溶剂(如:乙 醇、乙醚、氯仿、戊醇和三氯醋酸等)。 吸收光谱:具有共扼双键的嘌呤和嘧啶,故皆具有独 特的紫外吸收光谱。核酸在240-260nm的紫外波段有 强烈的吸收峰。最大吸收值在260nm附近。通过 OD260/OD280 的比值可判断样品的纯度。 纯DNA的OD260/OD280 =1.8, 纯RNA的OD260/OD280 =2.0。 核酸中若含杂蛋白或苯酚则比值明显降低。
(二)DNA的分离纯化 ——质粒DNA提取
质粒是染色体外的DNA分子,大小可为1 kb到200
kb。 大多数来自细菌的质粒是双链、共价闭合环状的分 子,以超螺旋形式存在。它是细菌内的共生型遗传 因子。 其复制和遗传独立于细菌染色体,但复制和转录依 赖于宿主编码的蛋白和酶。 质粒按复制方式分为两种类型: 松弛型质粒和严紧型质粒 大多数基因工程使用松弛型质粒。 质粒的特点使质粒成为携带外源基因进入细菌中扩 增或表达的重要媒介物,这种基因运载工具在基因 工程中具有极广泛的应用价值。
核酸的分离与纯化讲解
• 二.质粒和噬菌体DNA的提取和纯化
• (一)质粒DNA的提取 • 基本步骤 • 1.细菌的培养 • 2.细菌的收集与裂解 • 3.质粒DNA的纯化 • 提取方法
• 煮沸法: • 碱法:最常用的质粒DNA提取方法。 • SDS法:
• (二)噬菌体DNA的提取
• 1.细菌培养 • 2.细菌的感染及裂解 • 3.噬菌体的沉淀及纯化 • 4.噬菌体DNA的提取
• 图1 玻璃砂研磨提取总DNA的电泳结果
• 1-4孔为低pH值法,5-8孔为CTAB法,9-12孔为苯酚法 • 1,2为西洋参;3.鲜品布渣叶;4.干品布渣叶
• 图2 氧化铝研磨提取总DNA的电泳结果
• 1-4孔为低pH值法,5-8孔为CTAB法,9-12孔为苯酚法 • 1,2为西洋参;3.鲜品布渣叶;4.干品布渣叶
一、概述
• 核酸分离提取的原则 • 常用方法及基本原理 • DNA的分离纯化 • RNA的分离纯化
第一节 核酸分离提取的原则
• 一、基本原则
• 1.保证核酸一级结构的完整性。 • 2.排除其它分子的污染。
• 二、注意事项
• 1.简化操作步骤,减少对核酸的破坏。 • 2.避免过酸(碱)等化学因素的影响(pH4~10)。 • 3.减少物理因素对核酸的降解。 • 4.防止核酸的生物降解。
• ③分离浮力密度不同的DNA分子或其他分子颗粒, 如图1。
图1 氯化铯梯度纯化λ噬菌体
噬菌体在1.45g/ml与1.50g/ml氯化铯界面之间形成一肉眼可 见的带。在1.45g/ml与1.50g/ml氯化铯界面之间可看到一个 由噬菌体颗粒形成的浅蓝色带。
• ④纯化DNA分子。在中性CsCl溶液中,DNA的 浮力密度为1.7g/ml,RNA为2.0g/ml,蛋白 质的浮力密度为1.3~1.4g/ml。在起始密度 为1.7g/ml的CsCl溶液中进行超速离心,可 以很好地将三者区分开。蛋白质浮在上层液 面,DNA分子在离心管中间形成区带,RNA沉 于管底,从而达到从DNA样品中去除微量RNA 和蛋白质的目的。
核酸分离纯化的技术原理
核酸分离纯化的技术原理核酸提取是核酸检测实验的第一步,也是最关键的一步。
核酸提取的纯度、产量和质量是影响下游实验的关键。
核酸提取主要有两个步骤,分别是裂解和纯化,其中,裂解的目的是通过各种方法裂解细胞,将核酸释放到溶液中,纯化的目的则是将核酸分子从裂解液中特异性地分离出,从而避免裂解液中原有的蛋白分子、脂类、糖类、多肽、其他有机或无机分子对后续核酸检测实验的干扰。
在核酸提取过程中还应遵循以下原则:保证核酸分子一级结构的完整性;去除其他污染分子。
一、液相核酸分离纯化技术(一)胍硫氰酸酚-氯仿提取法盐类通常是核酸样本中最常见的杂质成分,因此,在将核酸样本进行下游处理和分析前,通常需要去除盐类成分。
因此,通常需一或多个分离和(或)纯化步骤来使样本脱盐。
核酸纯化的常规步骤包括细胞裂解,该步骤通过破坏细胞结构而形成细胞裂解液,同时灭活包括DNA酶和RNA酶在内的细胞内源性核酶,并最终从细胞碎片中获得纯净的核酸样本。
有机溶剂-苯酚-氯仿提取法正是基于上述原理最常见的核酸经典提取方法之一。
苯酚-氯仿-异丙醇按照一定比例混合后(即:25∶24∶1)可抵制RNA酶活性,从而克服单用苯酚无法抑制RNA酶活性的不足。
蛋白、脂质、碳水化合物和细胞碎片可通过提取苯酚和氯仿有机试剂混合物的水相而去除。
含有DNA样本的水相可通过加入2∶1或1∶1比例的乙醇或异丙醇沉淀,最后,沉淀下来的DNA用70%乙醇洗涤并最后溶解于TE缓冲液或无菌去离子水中。
异硫氰酸胍(guanidinium isothiocyanate)用于RNA提取的方法最早见于1977年,但是,由于该方法比较繁琐,后来逐步被称之为胍硫氰酸酚-氯仿提取法(guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction)代替,该方法可一步完成RNA提取。
其基本原理是:硫氰酸胍是蛋白质强变性剂,能裂解组织细胞,释放RNA,抑制RNA酶的活性,同时与RNA形成可溶性复合物,经过酚-氯仿抽提,使RNA 与组织中的DNA和蛋白质分离开,达到分离提取总RNA的目的。
核酸分离纯化版
通过荧光强度强弱来判定有无降解 ❖ 基因组DNA如果发生降解,电泳图呈拖尾状
5 核酸的鉴定与保存
DNA的降解
5 核酸的鉴定与保存
③ 完整性鉴定
完整的或降解很少的总RNA电泳图谱中,原核生 物5S、16S、23S3条带;真核生物:5S和5.8S、18S、 28S3条带;而且3条带荧光强度应呈特定的比值 ❖ 沉降系数大,电泳迁移率低,荧光强度高 ❖ 沉降系数小,电泳迁移率高,荧光强度低
核酸的分离纯化技术
概述
✓ 核酸 nucleic acid 是遗传信息的携带者,是基因表达 的物质基础
✓ 无论是进行核酸结构还是功能研究,首先需要对核 酸进行分离和纯化
✓ 核酸样品质量将直接关系到实验的成败
1、核酸分离、纯化原则
1 保持核酸分子1级结构的完整性 1.意义:遗传信息全部储存在1级结构之中,核酸的—
➢TE的pH为8.0时,DNA的脱氨反应减少,pH低7.0时DNA 易变性
➢长期保存样品中可加入1滴氯仿
5 核酸的鉴定与保存
2. 核酸的保存——RNA的保存
➢RNA样品溶于0.3 mol/L NaAc pH5.2 或双蒸灭菌 水中,-70℃保存 ➢长期保存可以沉淀形式贮于乙醇中; ➢在RNA溶液中,加1滴0.2 mol/L VRC 氧钒核糖核苷 复合物 冻贮于-70℃,可保存数年
➢ 注意:此法的比较主要基于目测,是估计水平
EB与DNA的结合
5 核酸的鉴定与保存
②纯度鉴定
紫外分光光度法: 主要通过A260与A280的比值来判定有无蛋白质的
污染 比值升高或降低均提示制备的核酸纯度不佳
5 核酸的鉴定与保存
核酸的分离与纯化
实验室常见样本核酸提取方法
——全血样本核酸提取方法:
1、 酚氯仿法; 纯度好,产量较高,完整性高 2、磁珠法; 纯度好,产量较高,完整性较高 3、 硅胶柱吸附法; 纯度好,产量较低,完整性一般 4、加热煮沸法 纯度差,产量较低,完整性差 前处理:红细胞裂解液or低渗液去除红细胞 应用于:融合基因检测,遗传病检测等
——盐析法-NaAC
1、细胞裂解同前述;并加入蛋白酶K消化 2、加入1/10体积的3mol/L的NaAC,与1体积的细胞裂解液混合,震 荡混匀,-20℃孵育 ~15 min;台式离心机最大速度离心15— 20min; 3、小心转移上清,同前步骤用乙醇沉淀法进一步纯化。
核酸提取方法——分离与纯化
——盐析法
产量较低,但方法简单,比较酚氯仿方法无化学危害;
同样不适合大规模自动化提取。
提取好的DNA用蛋白酶处理纯度会提高。
核酸提取方法——分离与纯化
——硅胶吸附法
1、细胞裂解和酶处理同前述;
2、处理好的裂解液转入硅胶离心柱,高速离心,利用硅胶可以吸附核酸 而不能与其它物质如蛋白质,脂类等结合的特点,洗脱这类杂质;
一般需要0.2-1ml的血清进行核酸提取。
实验室常见样本核酸提取方法
——血清样本核酸提取方法:
血清中微生物来源DNA提取方法: 1、 加热煮沸法; A、 高速离心富集病原体颗粒; B、弃上清,加入表面活性剂等,95-100℃10分钟; C、高速离心,DNA游离于上清,蛋白质等杂质位于管底。 纯度极差,但成本很低,手工操作重复性在临床可接受范围。 2、磁珠法; 成本较高
——酚氯仿法
◦ 酚的准备 重蒸酚(去除可引起磷酸二酯键的断裂及导致RNA和DNA 的交联的醌类氧化物); 加入8一羟基喹咛,以防止酚氧化,(酚氧化发黄,而 氧化的酚可引起核酸链中磷酸二酯键断裂或使核酸链交 联); 水饱和酚、平衡PH(大于7.8)(不饱和的酚能与15%其 提及的水互溶,从而降低水相中核酸产量)
核酸分离鉴定_实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握核酸分离与鉴定的原理和方法。
2. 了解核酸的组成和结构。
3. 学会使用实验仪器和试剂,进行核酸的分离与鉴定。
二、实验原理核酸是生物体内重要的生物大分子,包括DNA和RNA。
DNA主要存在于细胞核中,负责遗传信息的存储和传递;RNA主要存在于细胞质中,参与蛋白质的合成和调控。
核酸的分离与鉴定是分子生物学研究的基础。
核酸分离与鉴定主要包括以下步骤:1. 核酸提取:利用细胞破碎技术,将细胞内的核酸释放出来。
2. 核酸纯化:去除杂质,得到纯净的核酸。
3. 核酸鉴定:通过物理、化学或生物学方法,鉴定核酸的种类和结构。
本实验以酵母细胞为实验材料,采用碱法提取RNA,并通过紫外分光光度法、琼脂糖凝胶电泳法进行鉴定。
三、实验材料与试剂1. 实验材料:酵母细胞2. 试剂:0.04mol/L NaOH溶液、酸性乙醇溶液、琼脂糖凝胶、缓冲液、核酸染料、DNA/RNA Marker等四、实验步骤1. 核酸提取(1)称取1g干酵母细胞,加入2ml 0.04mol/L NaOH溶液,研磨至匀浆状。
(2)加入4ml 0.04mol/L NaOH溶液,混匀,转移至离心管中。
(3)沸水浴加热30min,冷却后离心(2000r/min,15min)。
(4)取上清液,加入等体积的酸性乙醇溶液,混匀,静置2h。
(5)离心(2000r/min,15min),弃去上清液。
(6)加入70%乙醇洗涤沉淀,离心(2000r/min,15min),弃去上清液。
2. 核酸鉴定(1)紫外分光光度法:取适量RNA溶液,在260nm和280nm波长下测定吸光度值,计算RNA浓度。
(2)琼脂糖凝胶电泳:将提取的RNA与DNA/RNA Marker混合,加样至琼脂糖凝胶孔中,电泳(100V,30min)。
观察电泳结果,判断RNA的纯度和完整性。
五、实验结果与分析1. 紫外分光光度法测定结果显示,RNA浓度为0.5mg/ml。
2. 琼脂糖凝胶电泳结果显示,RNA条带清晰,无杂质带,表明RNA纯度和完整性良好。
核酸的分讲义离纯化及鉴定技术生化分析详解
核酸的分讲义离纯化及鉴定技术生化分析详解核酸的分离纯化及鉴定技术在生化分析领域具有重要的应用价值。
核酸是生物体内重要的生物大分子,它们具有保存、传递和表达遗传信息的功能。
为了研究核酸的结构和功能,需要对其进行分离、纯化和鉴定。
本文将详细介绍核酸的分离纯化和鉴定技术的生物化学分析。
1.核酸的提取与分离核酸提取是获得核酸样品的第一步,通过破碎细胞膜和细胞壁来释放核酸。
核酸的提取方法主要包括酸性酚/氯仿提取法、盐酸酚/氯仿提取法以及商业化的核酸提取试剂盒等。
2.核酸的纯化核酸提取后,常常需要对核酸进行纯化。
纯化目的是去除杂质,使核酸得到高纯度、高浓度、完整和可靠的分离。
核酸纯化方法主要有:凝胶柱层析、离心柱层析、沉淀、电泳、凝胶电泳纯化、离心纯化、溶液法纯化等。
3.核酸的鉴定核酸的鉴定一般包括酶切鉴定、PCR扩增鉴定和测序鉴定等。
(1)酶切鉴定酶切鉴定是通过限制性内切酶作用分析核酸的序列和结构。
通过将样品与不同酶切加入,并经过酶切电泳后,观察电泳图的特征带,可以推测样品的核酸类型和纯度。
(2)PCR扩增鉴定PCR扩增鉴定是通过聚合酶链式反应(PCR)扩增特定片段的核酸。
通过选择特异的引物,可以扩增出目标核酸片段,从而确定核酸的存在和纯度。
(3)测序鉴定测序鉴定是通过测序技术研究核酸的序列。
常见的测序技术包括Sanger测序、下一代测序(NGS)和单分子测序等。
通过测序,可以确定核酸的准确序列,从而判断核酸的类型和功能。
整体而言,核酸的分离纯化及鉴定技术是生化分析中核心的内容。
通过这些技术,可以获得高纯度、高质量的核酸样品,并准确地鉴定核酸的存在和序列信息。
这些技术的应用广泛,包括基因组学、生物信息学、分子生物学、疾病诊断和药物研发等领域。
随着生化分析技术的不断发展,核酸的分离纯化及鉴定技术将越来越重要,为科学研究和生物医学领域的发展提供强有力的支持。
生化提取核酸实验报告
一、实验目的1. 学习并掌握动物组织中DNA和RNA的提取方法。
2. 了解核酸提取过程中的注意事项,提高实验操作的准确性和安全性。
3. 掌握核酸鉴定方法,分析实验结果。
二、实验原理核酸是生物体内重要的生物大分子,包括脱氧核糖核酸(DNA)和核糖核酸(RNA)。
DNA主要存在于细胞核中,负责遗传信息的存储和传递;RNA则参与蛋白质合成等生命活动。
本实验通过提取动物组织中的DNA和RNA,并对提取的核酸进行鉴定,以了解核酸的提取方法及其在生物学研究中的应用。
三、实验材料与试剂1. 实验材料:动物组织(如肝组织、肌肉组织等)。
2. 试剂:SDS、蛋白酶K、RNA酶、氯仿、异戊醇、乙醇、DEPC、TE缓冲液、NaCl、NaOH、HCl、琼脂糖、电泳缓冲液、DNA marker、DNA/RNA电泳试剂盒等。
四、实验方法1. DNA提取(1)将动物组织样品加入适量的TE缓冲液,用匀浆器充分匀浆。
(2)加入10%的SDS和蛋白酶K,混匀,置于60℃水浴中孵育1小时,以降解蛋白质。
(3)加入氯仿和异戊醇,混匀,静置5分钟,使蛋白质变性并分层。
(4)取上层水相,加入等体积的95%乙醇,混匀,静置10分钟,使DNA沉淀。
(5)弃去乙醇,用DEPC处理的水溶解DNA沉淀,即为提取的DNA。
2. RNA提取(1)将动物组织样品加入适量的DEPC处理的水,用匀浆器充分匀浆。
(2)加入RNA酶和蛋白酶K,混匀,置于60℃水浴中孵育1小时,以降解蛋白质和RNA。
(3)加入氯仿和异戊醇,混匀,静置5分钟,使蛋白质变性并分层。
(4)取上层水相,加入等体积的95%乙醇,混匀,静置10分钟,使RNA沉淀。
(5)弃去乙醇,用DEPC处理的水溶解RNA沉淀,即为提取的RNA。
3. 核酸鉴定(1)DNA鉴定:将提取的DNA与DNA marker在同一琼脂糖凝胶上电泳,观察DNA 条带与marker条带的大小关系,判断DNA提取是否成功。
(2)RNA鉴定:将提取的RNA与RNA ladder在同一琼脂糖凝胶上电泳,观察RNA 条带与ladder条带的大小关系,判断RNA提取是否成功。
核酸的分离与识别实验报告
核酸的分离与识别一、实验原理分离提纯核酸的主要过程,一般先要经过以下几个步骤:①细胞组织的破碎;②解聚核蛋白并使蛋白质变性;③除去蛋白质和多糖等杂质;④抽提和沉淀核酸等。
破碎细胞的方法有物理法(如超声波、匀浆和组织捣碎等)、化学和生化的方法(如去污剂、蛋白质变性剂和溶菌酶等)。
本实验采用组织捣碎的方法,捣碎之前加入柠檬酸钠抑制DNA降解酶的作用。
在细胞核内,核酸通常是与某些组织蛋白质结合成复合物——核糖核蛋白(RNP)和脱氧核糖核蛋白(DNP)形式存在的,利用在0.14mol/L盐溶液中RNP溶解而DNP溶解度最小的性质将两者分开。
另外,DNP能溶于水和高浓度盐溶液。
在核酸提纯的过程中,除去蛋白质是很关键的一步。
要除去蛋白质首先是使核蛋白解聚和蛋白质变性,常用的方法有:浓盐法(10%NaCI)、去污剂和有机溶剂法等。
本实验中,1.71mol/L的NaCl使蛋白质变性,而后用氯仿抽提除去蛋白质。
利用氯仿-异戊醇解聚分离蛋白质,从而分离DNA和蛋白质。
经上述分离纯化处理后的核酸盐溶液,再利用其不溶于有机溶剂的性质,使其在适当浓度的亲水有机溶剂(如乙醇)中成絮状沉淀析出。
二、仪器试剂(1)主要仪器电动组织捣碎机、大容量离心机、冰箱、具塞磨口玻璃锥形瓶、真空干燥器、烧杯等。
(2)主要试剂NaCI(0.1mol/L)、pH=7.0柠檬酸钠混合盐溶液(0.05mol/L)、NaCI溶液(1.71mol/L)、氯仿-异戊醇溶液(体积比为24:1)、95%乙醇、无水乙醇等。
三、实验步骤、现象与结果实验操作实验目的实验现象(1)猪脾细胞核的提取取猪肝40克,冰浴迅速剪成小块。
加80mL0.1mol/L NaCl和0.05mol/L、pH=7.0的柠檬酸钠混合液,在组织捣碎机内,用慢档捣碎3次,每次5s,间隔30s。
上述匀浆液以转速300/mim离心20min,收集沉淀(含细胞核),弃去上清液。
冰浴猪肝或猪脾可以起到防止变质的作用,搅拌捣碎起到破坏细胞组织,使DNP释放出来。
《核酸分离纯化》课件
《核酸分离纯化》课件一、课件概述核酸分离纯化是分子生物学和生物技术领域中的一项基本技术,其目的是从复杂的生物样品中提取和纯化出高质量的核酸,以便进行后续的分析和应用。
本课件将介绍核酸分离纯化的基本原理、方法和步骤,帮助学生掌握这一技术。
二、课件内容1. 核酸分离纯化的意义核酸是生物体内重要的遗传物质,其分离纯化对于研究基因表达、基因调控、基因突变等方面具有重要意义。
核酸分离纯化是进行基因克隆、基因测序、PCR等实验的基础步骤。
2. 核酸分离纯化的基本原理核酸的物理化学性质:核酸具有一定的溶解度、吸附性、变性温度等。
核酸与蛋白质、RNA、DNA等分子的差异:通过特定条件下对不同分子的相互作用进行分离。
利用核酸的特异性:通过特定酶的作用,实现对核酸的分离纯化。
3. 核酸分离纯化的方法盐析法:利用核酸在高盐浓度下的溶解度降低,将核酸与其他物质分离。
有机溶剂沉淀法:利用有机溶剂(如酚、氯仿等)与水相不相溶的性质,将核酸与其他物质分离。
吸附法:利用特定吸附剂(如硅胶、纤维素等)对核酸的选择性吸附,将核酸与其他物质分离。
透析法:利用透析袋的选择性透过性,将核酸与其他大分子物质分离。
酶法:利用特定酶(如DNA酶、RNA酶等)对核酸的降解作用,实现对核酸的分离纯化。
4. 核酸分离纯化的步骤样品处理:取适量生物样品,加入适量裂解液,进行充分搅拌,使细胞破碎并释放核酸。
核酸提取:将样品转移至离心管中,进行高速离心,将核酸沉淀与其他物质分离。
核酸纯化:根据核酸的物理化学性质,选择适当的分离方法(如盐析、有机溶剂沉淀等),将核酸与其他物质分离。
核酸洗涤:用适量的洗涤液对核酸沉淀进行洗涤,去除残留的杂质。
核酸重悬:加入适量的溶解液,将核酸沉淀重悬,以便进行后续分析或应用。
5. 实验操作注意事项实验操作应在生物安全柜中进行,避免交叉污染。
实验过程中应使用无RNA酶、无DNA酶的试剂和工具。
实验操作过程中应注意个人防护,避免接触核酸样品。
核酸分离纯化技术
有机溶剂处理以去除蛋白质的次数视蛋白质的含量和制剂纯度要求而定,一般要处理到中间变性蛋白质层消失为止。
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破细胞时所用的SDS等阴离子去污剂除了可以溶解膜蛋白和脂肪外,还可解聚核蛋白。
表面活性剂法
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用蛋白酶水解去除蛋白质的方法比较温和,可避免剪 切力的破坏。
蛋白酶水解法
02
核酸的沉淀
沉淀的目的:改变核酸溶解缓冲液;调整核酸浓度;去除部分杂质及某些盐离子。
正丁醇抽提浓缩法:利用部分水分子可分配于有机溶液中,使溶液的体积减少,有机溶剂则不吸取溶液中的DNA和其盐类分子。
分离提取到的核酸制品在保存过程中要防止变性和降解。因此,溶解核酸的溶液必须含有螯合剂以抑制DNA酶,溶液的pH为7~8,防止酸碱变性,同时该溶液要有一定的盐浓度,因为在纯水中核酸双链(或双链区)的两条链上磷酸根负离子互相排斥,使双链分开而变性,Na+等正离子可中和磷酸根的电负性,保持双链结构。现在较普遍是将DNA溶于TE溶液(10 mmol/L Tris, 1 mmol/L EDTA, pH 8.0),
弃去乙醇,在室温下挥发干剩余乙醇,加入10mmol/l的TE溶液50ul。溶解乙醇。
-20 ℃保存。
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离心机 水浴锅 EP管 微量移液器
仪器用具
第三节 碱裂解法抽提质粒DNA
主要试剂及作用: ˉ STE 用于洗涤细胞。配制方法: 0.1mol/L NaC1 10mmol/L Tris-C1(pH8.0) 1 mmol/L EDTA 溶液Ⅰ 维持溶液pH值,抑制DNA酶。配制方法: 50mmol/L葡萄糖 25 mmol/L Tris-C1(pH8.0) 10 mmol/L EDTA
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• 异硫氰酸胍属于解偶剂,是一类强力的蛋白质变性剂,可溶 解蛋白质并使蛋白质二级结构消失,导致细胞结构降解,核 蛋白迅速与核酸分离。
• β-巯基乙醇的主要作用是破坏RNase蛋白质中的二硫键。
注意:Trizol是强腐蚀性物质,小心存放于4℃
主要核酸类药物及用途
名称 聚肌胞苷酸(聚肌胞)
腺苷三磷酸(ATP)
核酸-氨基酸混合物 辅酶A(CoA) 脱氧核苷酸钠 腺苷一磷酸(AMP) 鸟苷三磷酸(GTP) 辅酶Ⅰ(NDA) 辅酶Ⅱ(NADP)
治疗范围
干扰素诱导物,具有广普抗病毒作用;用化学合 成、酶促合成方法生产
用于心力衰竭、心肌炎、心肌梗死、脑动脉和冠 状动脉硬化、急性脊髓灰质炎、肌肉萎缩、慢性 肝炎等
氯仿:氯仿比重大,能加速有机相与水相分层,减少残留在 水相中的酚,还能去除植物色素和蔗糖。
异戊醇:减少蛋白质变性操作过程中产生的气泡。异戊醇可
以降低表面张力,从而减少气泡产生。另外,异戊醇有助于 分相,使离心后的上层含DNA的水相、中间的变性蛋白相、 下层有机溶剂相维持稳定。
无水乙醇沉淀DNA:与核酸不发生任何化学反应;对盐类沉 淀少,沉淀中所含微量乙醇易挥发除去。
选择原则
根据具体生物材料的性质与起始量、待分离核酸的 性质与用途而采取不同的方案。
无论采取何种方法,都应遵循总的原则: 保证核酸一级结构的完整性, 尽量排除其它分子的污染,保证核酸样品的纯度。
核酸制备时应注意的事项:
①尽量简化操作步骤,缩短提取过程。 ②减少化学因素对核酸的降解(pH4-10) ③减少物理因素对核酸的降解,如机械剪 切力和高温 ④防止核酸的生物降解。
主要核酸类药物及用途
名称
治疗范围
核糖核酸(RNA) 脱氧核糖核酸(DNA) 免疫核糖核酸(iRNA) 转移因子(TF)
口服用于精神迟缓、记忆衰退、动脉硬化性痴呆 治疗;静脉注射用于刺激造血和促进白细胞生成, 治疗慢性肝炎、肝硬化初期癌症
有抗放射作用,能改善机体虚弱疲劳;与细胞毒 药物合用,能提高细胞毒药物对癌细胞的选择性 作用;与红霉素合用,能降低其毒性,提高抗癌 疗效
RNA酶抑制剂:
1. 皂土:带负电荷,能吸附RNase,使其失活。
2. DEPC(焦碳酸二乙酯 ):通过和RNA酶的活性基团组氨酸
的咪唑环结合使蛋白质变性,从而抑制酶的活性。
(二) 核酸的分离与纯化
利用核酸与其它物质在一个或多个性质 上的差异设计有效方案,才能使核酸得以分 离。核酸与其它物质的差异包括细胞定位与 组织分布上的差异、物理化学性质上的不同 以及各自独特的生物学特性。
DNA酶抑制剂:
1. 金属离子螯合剂:DNA酶需要金属二价离子Mg2+、Ca2+的 激活,因此使用金属二价离子螯合剂,可抑制DNA酶活性。 如:EDTA
2. 阴离子表面活性剂:如SDS。该试剂除对核酸酶有抑制作 用外,还能使蛋白质变性,并与变性蛋白结合成带负电荷 的复合物,该复合物在高盐溶液中沉淀。
三 鉴定与保存
(一)核酸的鉴定 分离纯化后的核酸质量如何,是否
达到后继实验研究与应用的要求,可以 通过相关的方法来鉴定其浓度、纯度及 完整性。
1.浓度鉴定
(1)紫外分光光度法:紫外分光光度法是基于核酸分 子成分中的碱基均具有一定的紫外线吸收特性,其 最大吸收波长在250 ~ 270 nm 之间。 在波长260nm紫外光下,1 OD值得吸光度相当于双 链DNA浓度为50 µg/ml;单链DNA和RNA为40 µg/ml;寡核苷酸为35 µg/ml。 OD值范围应该在0.1~0.99之间,否则不符合上述线 性关系。
2.纯度鉴定
(1)紫外分光光度法:紫外分光光度法主 要通过A260与A280的比值来判定有无蛋白 质的污染。在TE缓冲液中,纯DNA的A260 /A280比值为1.8 ,纯RNA的A260/A280比 值为2.0。比值升高与降低均表示不纯。
(2)荧光光度法:用溴化乙锭等荧光染料示踪 的核酸电泳结果可用于判定核酸的纯度。由于 DNA分子比RNA大许多,电泳迁移率低。通过分 析以溴化乙锭为示踪染料的核酸凝胶电泳结果, 可以鉴定DNA制品中有无RNA的干扰,亦可鉴定 在RNA制品中有无DNA的污染。
(2) 荧光光度法
• 核酸的荧光染料溴化乙锭(ethidium bromide,EB) 嵌入碱基平面后,使本身无荧光的核酸在紫外线 激发下发出橙红色的荧光,且荧光强度积分与核 酸含量呈正比。该法灵敏度可达1-5ng,适合低浓 度核酸溶液的定量分析。
• 另外,SYBR Gold作为一种新的超灵敏荧光染料, 可以从琼脂糖凝胶中检出低于20pg的双链DNA。
一、 材料与方法的选择
➢ 核酸存在于各种生物中。临床常见的样品 有血液、尿液、唾液、头发、组织及培养 细胞等。
➢ 核酸分离与纯化的方法非常多。如何选择 合适的分离与纯化方法是一个首要的问题。 因为不同的研究目的对核酸的完整性、产 量、纯度和浓度有不同的要求。
➢ 近年来,试剂盒(Kit)的开发与自动化仪器 的使用大大提高了分离与纯化的效率。
➢ DNA与RNA性质上的差异决定了两者的最适分离与纯 化的条件是不同的。
DNA :主要存在于细胞核的染色体中。核外也有少 量DNA,如线粒体DNA(mtDNA),叶绿体DNA (cpDNA),质粒DNA。
RNA:主要存在于细胞质中,如mRNA,rRNA, tRNA,miRNA等。
除上述DNA,RNA外,还有非细胞形式存在的病毒和 噬菌体,其或只含DNA,或只含有RNA。
EDTA:破坏细胞膜,螯合Mg2+、Ca2+,使DNase 失活;
SDS:可破坏细胞膜、抑制核酸酶,还可使核酸从 蛋白质上游离下来;
蛋白酶K:非特异性蛋白酶,可将蛋白质消化成氨 基酸;
65℃:高温下裂解细胞,使染色体离析,蛋白变性, 释放出核酸;
冰浴:降低温度使蛋白质及多糖杂质沉淀;
水饱和苯酚:由于蛋白与DNA连结键已断裂,蛋白分子表面 又含有很多极性基团与苯酚相似相溶。蛋白分子溶于酚相, DNA溶于水相。苯酚使蛋白质变性,并抑制了DNase的降解 作用。
DEPC:焦碳酸二乙酯,是一种强烈但并不彻底的RNA酶抑 制剂,通过和RNA酶中His结合使蛋白质变性,抑制RNA酶活 性。
利用乙醇的易挥发性洗掉异丙醇,氯仿; 溶解一些沉淀中可能的有机物杂质
会极大降低RNA的可溶性
(三) 核酸的浓缩
随着核酸提取试剂的逐步加入,以及去除污染物 过程中核酸分子不可避免的丢失,样品中核酸的浓度 会遂渐下降,当不能满足后继研究与应用的需要时, 应对核酸进行浓缩。沉淀是核酸浓缩最常用的方法。 优点:核酸沉淀后,可以很容易地改变溶解缓冲液和调 整核酸溶液至所需浓度;另外,核酸沉淀还能去除部 分杂质与某些盐离子,有一定的纯化作用。
汇报结束
谢谢大家! 请各位批评指正
2. RNA分离纯化----Trizol一步法
• TRIzol是一种新型总RNA抽提试剂,可以直接从细胞或组织 中提取总RNA。TRIzol的主要成分是苯酚。苯酚的主要作用 是裂解细胞,使细胞中的蛋白,核酸物质解聚得到释放。苯 酚虽可有效地变性蛋白质,但不能完全抑制RNA酶活性,因 此TRIzol中还加入了8-羟基喹啉、异硫氰酸胍、β-巯基乙 醇等来抑制内源和外源RNase(RNA酶)。
1. DNA分离纯化过程
破碎细胞 + DNA抽提液(EDTA、去污剂、蛋白酶K) 65℃温
育20’
冰浴冷却 离心去细胞碎片 上清液
用水饱和苯酚抽提2~3次 上层液相用氯仿抽至界面无蛋白变性
物 上层液相用两倍体积冷乙醇沉淀 沉淀物用70%冷乙醇
洗涤,干燥 溶于缓冲液 加入RNase处理除去RNA
苯酚氯仿抽提 沉淀干燥
推动正常RNA分子在基因水平上通过对癌细胞 DNA分子进行诱导,或通过反转录酶系统促使癌 细胞发生逆分化,如:可用于肝炎治疗的抗乙肝 iRNA,治疗肺癌的抗肺癌iRNA
相对分子质量较小,含有多核苷酸、多肽化合物, Mr<10000;它只传递细胞免疫信息,无体液免 疫作用,不致促进肿瘤生长,治疗恶性肿瘤比较 安全;亦可用于治疗肝炎等
用于气管炎、神经衰弱等
用于动脉硬化,白细胞、血小板减少,肝、肾病
用于放疗、化疗引起的急性白细胞减少症
有周围血管扩张作用、减压作用;用于静脉曲张 性溃疡等
用于慢性肝炎、进行性肌肉萎缩等症
用于白细胞减少及冠状动脉硬化
促进体内物质的生物氧化
➢ 细胞内的核酸具有复杂的结构,均与蛋白质结合成核蛋 白。
➢ 分子的总长度在不同生物间差异很大,一般随生物的 进化程度而增长。
二 技术路线的设计 核酸制备的步骤:
放
正常情况下,无论是DNA还是RNA均位 于细胞内,因此核酸分离与纯化的第一步就 是破碎细胞、释放核酸。
破碎细胞 微生物:溶菌酶、SDS裂解。 高等植物:捣碎器破碎、液氮研磨。
动物:液氮处理后用匀浆器破碎。
细胞器DNA,首先纯化细胞器。 以上处理时均要同时加入核酸酶抑制剂
所有的组织中均存在RNA酶,人的皮肤、手指、试剂、容 器等均可能被污染,因此全部实验过程中均需戴手套操作并 经常更换(使用一次性手套)。所用的玻璃器皿需置于干燥 烘箱中200℃烘烤2小时以上。凡是不能用高温烘烤的材料如 塑料容器等皆可用0.1%的焦碳酸二乙酯(DEPC)水溶液处理, 再用蒸馏水冲净。