鱼类细胞原代培养及其Giemsa形态、MTT增殖分析、细胞计数

血细胞原代培养及其形态、增殖分析

1材料

1.1试剂、药品

培养基配制：血清使用时临时添加，培养基为DMEM培养基添加双抗。双抗(青霉素、链霉素)终浓度均为100μg/ml。血清为临时添加，终浓度为20%。

巯基乙醇：根据换算0.1mM的1L溶液须0.7ul巯基乙醇。换言之，以巯基乙醇与双蒸水按70ul：930ul比例配置为母液，每100ml培养基仅需1ul

双抗：先各取0.5g溶于50ml无菌双蒸水中，此时其浓度为0.1mg/ml= 10,000μg/ml,分装入250ulEP管中，此部切记EP管架。使用时每1ml加10μL即100μg/mL。剩余-4°冻存。

鉴于各组分均为使用时添加，故不进行单独过滤除菌。

培养基分装于250mL试剂瓶，血清分装于50mL试剂瓶。

PBS：NaCl:8g；KCl:2g; Na2HPO4·7H2O:1.15g（如果是12水合则为1.44g）; KH2PO4:0.2g 加水定容至1L，高压灭菌。

操作中使用一次性10ml滴定管，移液器1mL，100μL。

胰酶：以PBS添加0.25%胰酶配制。过滤除菌，此步须注射一次性过滤器0.2微米。

肝素钠：取肝素钠100mg溶于10mL生理盐水中（0.9%NaCl），以10ml离心管盛装，过滤除菌。

麻醉剂：5ml丁香酚与5ml无水乙醇混溶，

冻存液：无色甘油或DMSO加入含20%FBS培养基中，终浓度为10%

MTT：取MTT 0.5克，溶于100 ml的磷酸缓冲液（PBS），用0.22μm滤膜过滤以除去溶液里的细菌，放4℃避光保存即可

Wright-Giemsa：取两样各0.5g，甲醇500ml，配成染液

台盼蓝染色液：4%台盼蓝母液，取4g台盼蓝，加少量蒸馏水研磨，加双蒸水至100ml滤纸过滤，4°保存。使用时用PBS稀释至0.4%。

1.2器材

离心机1、15、50ml

离心管1.5、15、50ml

脱脂棉、纱布、锡箔纸

血细胞计数板、细胞计数器

培养容器：96孔、24孔板，一次性细胞培养瓶、一次性培养皿30、60mm、载玻片、盖玻片

倒置显微镜（可拍照）

细胞培养箱

酒精喷壶

5ml、15ml一次性注射器

1000、500、250ml、100、50ml试剂瓶

一次性针头过滤灭菌器0.22um

2方法

2.1细胞培养：

此步需要1ml、100ul移液枪，无菌蓝枪头1ml，无菌黄枪头100ul，2ml灭菌EP管，EP管架，5ml注射器，封口膜，无菌纱布，酒精棉球，酒精灯，打火机，酒精喷壶，一次性培养瓶，塑料餐盒。

试剂为肝素钠抗凝剂、DMEM培养基、血清、双抗（自配10,000ug/ml）、0.01%高锰酸钾、丁香酚（丁香酚：无水乙醇=1：1）

2.1.1麻醉取血鱼体用0. 01%高锰酸钾溶液浸泡消毒0. 5 h，滴入适量麻醉剂使其麻醉，取出喷75%酒精以无菌纱布擦拭体表，移至超净台内，以5mL注射器吸取0.1mL肝素钠抗凝剂，而后垂直由腹端插入臀鳍腋下直至血管进行取血。每尾取血2ml左右，装于无菌2ml EP管中。加入20ul甘油或DMSO，血液冻存于-4°冰箱。

2.1.2 细胞培养

采用0.01mM 2-巯基乙醇作为培养基添加因子，另外加入20%FBS。

染色须用30mm培养皿+入盖玻片，每个1.5ml培养基+60ul血液，共设置4组，每组3个进行Wright- Giemsa染色，观察细胞形态进行细胞分类的鉴定。

剩余2组进行台盼蓝染色，测定细胞存活率。（此步盖玻片须用强酸泡洗）

MTT采用2个96孔板，每孔100ul，细胞浓度理论上为104-105/ml.设置：置0组，对照组，LPS组，ConA组，PHA组终浓度均为0.3mg/ml。

另外采用培养瓶培养每组3个共12个，以备实验用。

0.4ml血液+10ml培养基。每瓶加入3ml培养基，随后加入35ul双抗，0.75ml血清。培养瓶装入餐盒后置于烘箱内室温培养。0.3mg/ml的PHA和0.3mg/ml的ConA做刺激源，0.1mM 的2-巯基乙醇

接种时另取一EP管，加入2ml PBS，80ul血液，细胞计数。

2.1.3细胞检测：染色检测（Wright与Giemsa染色）可检测细胞类型；MTT检测、细胞计数检测可检测细胞增殖

2.1.

3.1Wright- Giemsa混合染色

取两样各0.5g，甲醇500ml，配成混合染液，

将盖玻片浸入95%酒精固定15min，

PBS洗两次，每次1min，

盖玻片浸入含染液的培养皿中，静置1min，

取出浸入染色液与ddH2O按1:2体积的培养皿中，静置15min，

自来水冲洗经70%、80%、90%酒精各一次，95%2次，100%3次，每次1min

二甲苯透明3次，每次1min，

低价中性树胶，封片

2.1.

3.2 MTT检测

1: 收集血细胞，调整细胞悬液浓度，每孔加入100ul,铺板使待测细胞调密度1000-

10000 孔，（边缘孔用无菌PBS填充）。

2: 5%CO2，37℃孵育，至细胞单层铺满孔底（96孔平底板）,加入浓度梯度的药物,原则上，细胞贴壁后即可加药，或两小时，或半天时间。在前一天下午铺板，次日上午

加药.一般5-7个梯度,每孔100ul,设3-5个复孔.建议设5个，否则难以反应真实情况

3: 5%CO2，37℃孵育16-48小时，倒置显微镜下观察。

4: 每孔加入20ulMTT溶液（5mg/ml，即0.5%MTT），继续培养4h。若药物与MTT能够反应，

可先离心后弃去培养液，小心用PBS冲2-3遍后，再加入含MTT的培养液。

5: 终止培养，小心吸去孔内培养液。

6: 每孔加入150ul二甲基亚砜，置摇床上低速振荡10min，使结晶物充分溶解。在酶联免疫检测仪OD490nm处测量各孔的吸光值。

7: 同时设置调零孔（培养基、MTT、二甲基亚砜），对照孔（细胞、相同浓度的药物溶解介质、培养液、MTT、二甲基亚砜）。

2.1.

3.3细胞计数

1.盖好盖玻片：取一套血球计数板，将特制的盖玻片盖在血球计数槽上。

2.制备计数用的细胞悬液：用吸管吸5滴细胞悬液到一离心管中，加入5滴台盼蓝染液（0.4％）或苯胺黑，活细胞不会被染色，加入染液后就可以在显微镜下区别活细胞和死细胞。

3.将细胞悬液滴入计数板：将待测细胞悬液吹均匀，然后吸取少量悬液沿盖片边缘缓缓滴入，要保证盖片下充满悬液，注意盖片下不要有气泡，也不能让悬液流入旁边槽中。

4.统计四个大格的细胞数：将血球计数板放于显微镜的低倍镜下观察，并移动计数板，当看到镜中出现计数方格后，数出四角的四个大格（每个大格含有16个中格）中没有被染液染上色的细胞数目。

5.计算原细胞悬液的细胞数L：按照下面公式计算细胞密度：

（细胞悬液的细胞数）/ml＝（四个大格子细胞数/4)×2×104

说明：公式中除以4因为计数了4个大格的细胞数。

公式中乘以2因为细胞悬液与染液是1：1稀释。

公式中乘以104因为计数板中每一个大格的体积为1.0mm（长）×1.0mm（宽）×0.1mm（高）＝0.1mm3而1ml＝1000mm3。

3结果

细胞玻片混合染色那一步经固定染色封片以后可以进行形态学观察以及鉴定。另外可以进行光镜100倍随机视野下的统计细胞数，进行一些统计学的分析。