大肠杆菌菌株感受态制备_电击转化及转化效率检测

大肠杆菌DH10B（Streptomycin resistant）电转化感受态制备

1．从保存的甘油管中取出200 μL菌液到100 mL的LB液体中，37o C，200 rpm培养约13~16小时后（对数期），按2%接种到SOB培养基中；

2．37o C，约2~2.5小时后，OD600约0.5左右，取出，冰上缓慢摇育30 min。

3．预先4o C降温的冷冻离心机离心收集菌体，用预冷的离心管，并时刻保持在冰上，5000 rpm离心5 min；

4．用50~60 mL的冰预冷灭菌超纯水洗菌体两次，用枪吸打时一定要轻柔，并时刻保持在冰上，第二次洗时可以将2管的菌体并到一管，水洗过程离心的转速要高一些，约6000 rpm离心5 min，因为离心得不是很实，离心完后要立即倒掉上清，以免菌体重新悬浮造成损失；

5．用50 mL的冰预冷灭菌10%甘油洗菌体两次，用枪吸打时一定要轻柔，并时刻保持在冰上，离心后立即倒掉上清；

6．最后一次甘油洗涤后立即倒掉上清，视菌体量加入0~x μL的10%冰预冷甘油重新悬浮细胞，75~200 μL/管,分装到预冷的离心管中，电转化或立即放入-80o C冰箱保存，该感受态可以在-80o C保存半年。

SOB培养基（1L）：

20 g Tryptone；5 g Yeast Extract；0.6 g NaCl；0.19 g KCl，8磅灭菌20 min。

注意事项：

种子一定要新鲜，最好是从甘油管中直接液体活化的。

OD600控制在0.5左右，建库用的话千万不要过！过了0.6感受态效率不会太高，做一般克隆和质粒转化的要求可以适当放低。

菌体时刻保持冰上（4 o C以下）！尽量减少离开冰的时间。

最后分装的菌体浓度要浓。

对待菌体要尽量轻柔。

收集菌体用的管和枪头要灭菌，并在超净台操作。

电击转化

1.75 μL的感受态细胞加入TE溶解的质粒和连接产物最好不要超过0.6 μL，不然容易击穿，如果质粒是用纯水溶解的可以适当提高，冰上放置10~30 min；

2.洗干净并烘干的电转杯冰上预冷，快速将上述感受态细胞转到电转杯里，感受态细胞要位于杯子底部；

3.此步骤动作要快：将杯子外壁擦干，2 mm的杯子用电转化程序Ec2，1 mm杯子用电转化程序Ec1，电击后立即加入900~1000 μL37o C预热的SOC（见分子克隆），轻柔吸打，转到2 mL的离心管中，37o C摇床，150 rpm，45~60 min后取适量涂平板。

感受态细胞转化效率检测

1．取已知浓度的pUC19质粒（例如0.1 ng/μL）0.2 μL到制备好的75 μL感受态细胞中，按上述方法转化；

2．转化后取1 μL涂氨苄LB平板，37o C过夜；

3．数平板上的菌落数，转化效率为每微克DNA（即质粒）转化所长出的单菌落数，即cfu/μg。举例说明：平板上长出750个单菌落，则转化效率=750 cfu÷[(0.2 μL×0.1 ng/μL)÷1000]=3.75×1010 cfu/μg 建库用的感受态效率要大于108 cfu/μg DNA。