小白鼠的捉拿与给药方法教学设计
实验一实验动物的捉拿和给药方法
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➢ 肌内注射法 部位：小鼠臀部外侧肌肉。
➢ 皮下注射法 部位：背部皮下 方法：轻轻拉起背部皮肤,将注射针头刺入皮下,
稍稍摆动针头,若容易摆动则表明针尖的位置确定在皮下, 拔针时,轻捏针刺部位片刻,以防药液逸出。
➢ 尾静脉注射法
1010只只组组方法方法小白鼠的捉拿及给药方法小白鼠的捉拿及给药方法兔子的捉拿及给药方法兔子的捉拿及给药方法捉住小白鼠的尾巴提起转几圈捉住小白鼠的尾巴提起转几圈放在鼠笼盖铁纱网上放在鼠笼盖铁纱网上轻轻向后拉鼠尾然后用左手的拇指与食指沿其背部向前抓轻向后拉鼠尾然后用左手的拇指与食指沿其背部向前抓住其颈部皮肤住其颈部皮肤使腹部朝上左手的无名指及小指压住鼠尾使腹部朝上左手的无名指及小指压住鼠尾使小白鼠完全固定
表面消毒药
75%为体积/体积比
C1V1= C2V2 95%乙醇 ：70ml 蒸馏水：25ml
95%*70=70%*95
实验二、常用药物制剂的配制
5%（g/ml）碘酊的配制
表面消毒药 5%为质量/体积比
碘片
5.0g （ 5%(g/ml) ）
碘化钾 2.0g （ 2%(g/ml) ）
蒸馏水 20mL
95%乙醇加至 100mL
助扩散。
实验动物处理
➢ 小鼠处死（防鼠患）：
一手按头，一手拉尾，咔嚓一声。
➢ 家兔处死： 空气针
试验后安排
➢ 班长安排人将动物尸体送兽医院焚烧池 ➢ 各小组清理自己的台面 ➢ 班长安排人打扫卫生
讨论（作业）
实验动物的捉拿和给药方法 操作过程中的注意事项。
实验二、常用药物制剂的配制
75%乙醇溶液的配制
实验动物的捉拿和给药方法
实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】结合实验内容逐步学会实验常用动物的捉拿和给药方法。
【内容】(一)小自鼠的捉拿和给药方法1．捉拿法用右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起．置于鼠笼上面或其他粗糙面上，向后拉轻鼠尾，迅速用左手拇指和示指挥住其两耳及头部皮肤，翻转鼠体，使腹部朝上，然后以无名指及小指压往鼠尾，使小鼠完全固定(实验图1)．实验图1 小白鼠的捉拿法2．给药方法(1)灌胃将小白鼠固定后，使口部向上，将颈部拉直，右手持灌胃器自口角插入口腔，沿上颚轻轻进入食管，如动物安静，呼吸元异常、口唇无紫绀现象，即可注入药液(实验图2)．灌胃器0．1一O.25ml/10g。
实验图2 小白鼠灌胃器(左)和灌胃法(布)(2)腹腔注射将小白鼠固定后，右手持注射器自下膜一侧向头部方向以30~45度刺入腹腔(角度太小易刺入皮下)。
针头刺入不宜太深或太近上腹部，以免刺伤内脏，注射量一般为0．1~O．2 ml/10g 。
(3)皮下注射捉鼠方法同前，右手持注射器，将计头刺人背部皮下注人药液。
注射量一般不超过0.25 ml/10g。
(4)肌内注射由两人合作，一人固定小白鼠后，另一入持注射器，将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液，注射量为每腿不超过0.lml。
(二)螗蜍或蛙的捉拿和给药方法1．捉拿法通常用左手握蛙,食指和中指夹住蛙的两上肢，无名指和小指夹住蛙的两下肢，将蛙固定于手中。
2．给药方法(淋巴囊注射) 蛙皮下淋巴囊分布见实验图3。
多采用腹囊给药。
由于蛙的皮肤弹性差，被针头刺破后，针眼不易闭合会便药波外溢，故注射针头必须通过一层隔膜，再进人皮下淋巴囊。
如腹囊绐药时，针头应自大腿上端刺人，经过大腿肌层入腹壁肌层．再浅出进人腹壁皮下入腹囊。
注射量每只可达0.25—1．Oml.(三)家免的捉拿和给药方法1．捉拿祛用左手抓住颈背部皮肤将兔提起，以右手托住其臀部，使兔呈坐位姿势。
2.给药方法(1)灌胃两人合作，由一人固定兔身，另一人用兔开口器(实验图4)将兔口张开，并将兔舌压在开曰器下边横放于兔口中。
药理实验
实验一常用动物的捉拿与给药方法【实验目的】1、了解小鼠的饲养方法2、练习并掌握小鼠的捉拿与给药方法【实验材料】1、器材：鼠笼、饮水瓶、大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签2、药品：生理盐水、苦味酸溶液、75%酒精3、动物：小白鼠，20～30g【实验方法】1、捉拿与固定：用右手捉住鼠尾，将其提起置于鼠笼或者粗糙平面上，向后轻拉鼠尾，用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳及颈背部皮肤，将小鼠置于左手掌心，以小指夹住小鼠尾巴即可。
2、给药法⑴灌胃：将小鼠固定，口朝上，颈部拉直，右手持灌胃针，先从口角处插入口腔，再沿上颚轻轻插入食管。
一般给药剂量。
⑵腹腔注射：将小鼠固定，右手持注射器自下腹部一侧刺入皮下后，再刺入腹腔，缓慢注入药物。
一般给药剂量。
⑶皮下注射：两人合作，一人左手抓住小鼠头部，右手拉住小鼠尾巴固定小鼠，另外一人用左手提起皮肤，右手持注射器刺入皮下注入药物。
一般给药剂量为肌肉注射：最好两人合作，一人固定小鼠，另外一人将针头迅速垂直刺入后肢外侧肌肉，回抽无回血即可注入药物，一侧给药剂量为。
⑸静脉注射：一般采用尾静脉注射。
将小鼠固定，使尾巴露出来，在50℃热水中浸泡或者用75%酒精擦拭尾巴，使血管扩张，左手拉住鼠尾，右手持注射器，从鼠尾巴末梢开始进针，注入药液。
一般给药剂量为【心得体会】实验二不同给药途径对药物作用的影响【实验目的】观察不同给药途径对药物作用的影响【实验材料】4、器材：大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签少许5、药品：10%硫酸镁溶液、5%氯化钙溶液、苦味酸溶液6、动物：小鼠，18～22g【实验方法】1、取小鼠3只，称重编号，分别放入大烧杯中，观察小鼠的正常活动，记录半个小时内活动、呼吸、粪便情况。
2、给药：一号小鼠灌胃10%硫酸镁溶液10g二号小鼠肌肉注射10%硫酸镁溶液10g三号小鼠静脉注射10%硫酸镁溶液10g3、观察小鼠的反应及活动，记录半小时内小鼠活动、呼吸及粪便变化。
4、当第三只小鼠出现垂头，俯卧时，立即静脉缓慢注射5%氯化钙溶液，直至恢复站立。
实验动物的捉拿和给药方法
实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】结合实验内容逐步学会实验常用动物的捉拿和给药方法。
【内容】(一)小自鼠的捉拿和给药方法1．捉拿法用右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起．置于鼠笼上面或其他粗糙面上，向后拉轻鼠尾，迅速用左手拇指和示指挥住其两耳及头部皮肤，翻转鼠体，使腹部朝上，然后以无名指及小指压往鼠尾，使小鼠完全固定(实验图1)．实验图1 小白鼠的捉拿法2．给药方法(1)灌胃将小白鼠固定后，使口部向上，将颈部拉直，右手持灌胃器自口角插入口腔，沿上颚轻轻进入食管，如动物安静，呼吸元异常、口唇无紫绀现象，即可注入药液(实验图2)．灌胃器0．1一O.25ml/10g。
实验图2 小白鼠灌胃器(左)和灌胃法(布)(2)腹腔注射将小白鼠固定后，右手持注射器自下膜一侧向头部方向以30~45度刺入腹腔(角度太小易刺入皮下)。
针头刺入不宜太深或太近上腹部，以免刺伤内脏，注射量一般为0．1~O．2 ml/10g 。
(3)皮下注射捉鼠方法同前，右手持注射器，将计头刺人背部皮下注人药液。
注射量一般不超过0.25 ml/10g。
(4)肌内注射由两人合作，一人固定小白鼠后，另一入持注射器，将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液，注射量为每腿不超过0.lml。
(二)螗蜍或蛙的捉拿和给药方法1．捉拿法通常用左手握蛙,食指和中指夹住蛙的两上肢，无名指和小指夹住蛙的两下肢，将蛙固定于手中。
2．给药方法(淋巴囊注射) 蛙皮下淋巴囊分布见实验图3。
多采用腹囊给药。
由于蛙的皮肤弹性差，被针头刺破后，针眼不易闭合会便药波外溢，故注射针头必须通过一层隔膜，再进人皮下淋巴囊。
如腹囊绐药时，针头应自大腿上端刺人，经过大腿肌层入腹壁肌层．再浅出进人腹壁皮下入腹囊。
注射量每只可达0.25—1．Oml.(三)家免的捉拿和给药方法1．捉拿祛用左手抓住颈背部皮肤将兔提起，以右手托住其臀部，使兔呈坐位姿势。
2.给药方法(1)灌胃两人合作，由一人固定兔身，另一人用兔开口器(实验图4)将兔口张开，并将兔舌压在开曰器下边横放于兔口中。
小鼠捉拿灌胃实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握小鼠的基本捉拿和固定方法。
2. 熟悉小鼠灌胃操作流程，确保给药准确、安全。
3. 了解灌胃过程中可能遇到的问题及应对措施。
二、实验材料1. 实验动物：昆明小鼠10只，体重18-22g。
2. 实验仪器：灌胃针、注射器、生理盐水、酒精棉球、小鼠固定器。
3. 实验药品：实验药物（如生理盐水、特定药物等）。
三、实验方法1. 小鼠捉拿和固定- 将小鼠放在实验台上，用右手轻轻抓住小鼠的尾巴，使其尾部翘起。
- 用左手轻轻握住小鼠的耳朵和颈部皮肤，将小鼠固定在手中。
- 保持小鼠腹部朝上，颈部拉直，方便进行灌胃操作。
2. 灌胃操作- 将灌胃针套在注射器上，抽取实验所需的药物或生理盐水。
- 将注射器排尽空气，将灌胃针头拧紧。
- 将灌胃针插入小鼠口腔，与身体长轴保持平行，针头膨大处位于小鼠两肘部连线与长轴正中线的交点处。
- 慢慢将灌胃针插入小鼠口腔，当针头到达咽喉部时略有抵抗感，这时将针头稍向腹侧移动即可进入食道。
- 当感觉有落空感时，表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射器活塞，感觉有负压，此时可将药物缓慢注入胃内。
- 注射完毕后，轻轻取出灌胃针，用酒精棉球擦拭小鼠口腔。
1. 所有小鼠均成功完成灌胃操作，未出现呼吸困难、挣扎等不良反应。
2. 灌胃过程中，部分小鼠出现短暂的挣扎，但均能迅速稳定。
五、实验讨论1. 小鼠捉拿和固定是实验操作的重要环节，正确的方法可以保证实验的顺利进行，避免对小鼠造成伤害。
2. 灌胃操作过程中，要注意针头的插入深度和方向，避免误入气管或食管。
3. 灌胃药物的选择和剂量要严格按照实验要求进行，确保实验结果的准确性。
4. 在实验过程中，要注意观察小鼠的反应，如出现呼吸困难、挣扎等不良反应，应立即停止操作，并进行相应的处理。
六、实验结论1. 本实验成功掌握了小鼠捉拿和固定方法，以及灌胃操作流程。
2. 灌胃操作过程中，注意针头的插入深度和方向，确保药物准确进入胃内。
3. 通过本实验，提高了实验操作技能，为后续实验奠定了基础。
药理实验
一、实验目的：1、比较同一种药物不同剂量对小白鼠作用的差异。
2、掌握实验动物的捉拿及腹腔注射方法二、实验原理：在一定范围内，剂量与作用的强度成正比关系，即作用强度随剂量增大而增强，称为剂量-效应关系。
但是药物剂量过小，药物作用不明显，剂量过大，则可能出现不良反应，甚至毒性反应。
三、实验材料器材：电子秤、1ml注射器、5号针头、玻璃钟罩药品：实验动物：小白鼠（18~22g）四、实验方法1、取体重相近的三只小白鼠，编号1. 2. 3，称重并观察正常活动。
2、三只小鼠分别腹腔注射0.2%、0.4%、0.8%戊巴比妥钠溶液（0.1ml/10g）3、给药后继续观察，比较各鼠的活动变化，记录翻正反射消失与恢复时间，以次计算作用的潜伏期和持续期。
即：潜伏期(min)=翻正反射消失时间-给药时间；持续期（min）=翻正反射恢复时间-翻正反射消失时间。
翻正反射（righting reflex）：正常小鼠轻轻用手将其侧卧或仰卧会立即恢复正常姿势即翻正反射。
翻正反射消失是小鼠产生睡眠作用的客观指标，具体操作过程：用手将小鼠轻轻侧卧或仰卧超过1分钟以上即为翻正反射消失。
捉拿法：以右手抓住小白鼠的尾巴将小鼠提起，放置于鼠笼边缘或其他易于攀抓处，轻轻向后拉尾巴，趁其不备，用左手拇指和食指捏住其两耳及头颈部皮肤使其腹部上屈曲，左手中指使鼠背靠在上面，然后以无名指及小指压住尾巴，使小鼠完全固定。
腹腔注射的操作：左手固定小鼠，头低腹高，右手45度在左侧或右侧下腹部进针，针尖刺入腹腔时有落空感，然后略抽回枕头2mm，贴着腹腔壁轻轻推液。
注射结束后，不宜太快抽回针头，否则漏液影响实验结果。
五、实验结果记录六、注意事项1、给药前仔细观察小鼠的活动情况及翻正反射，给药后也要仔细观察小鼠的活动情况及翻正反射，并记录给药时间、翻正反射消失时间、恢复时间。
2、药物必须准确注射到腹腔，给药量要准。
切勿进针过深损伤小鼠内脏，影响实验进行。
3、捉拿小鼠时应严格按操作进行，以免被咬伤。
药理学实验——精选推荐
实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】逐步学会常用实验动物的捉拿和给药方法【内容】（一）小白鼠的捉拿和给药方法1．捉拿法以右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起，放置于鼠笼边缘或其他易攀抓处，轻轻向后拉鼠尾，用左手拇指和食指捏住其两耳及头部皮肤，使其腹部朝上，屈曲左手中指使鼠背靠在上面，然后以无名指及小指压住鼠尾，使小鼠完全固定（见实验图-1）。
2．给药方法⑴灌胃：小白鼠固定后，使其口部朝上，将颈部拉直，右手持灌胃器自口角插入口腔，沿上颚轻轻地进入食管，如动物安静、呼吸无异常、口唇无紫绀现象，即可注入药液（见实验图-2）。
灌胃量为0.1～0.25ml∕10g。
⑵腹腔注射：小白鼠固定后，右手持注射器自下腹一侧向头部方向以45°刺入腹腔（角度太小易刺入皮下）。
针头刺入不宜太深或太近上腹部，以免刺伤内脏。
注射量一般为0.1～0.2ml∕10g。
⑶皮下注射：固定小鼠后，右手持注射器，将针头刺入其背部皮下注入药液。
注射量一般不超过0.25ml。
⑷肌内注射：由两人合作，一人固定小白鼠后，另一人持注射器，将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液。
注射量一般每腿不超过0.1ml。
（二）蟾蜍或蛙的捉拿和给药方法1．捉拿法一般由左手握蛙，用食指和中指夹住蛙的两上肢，无名指和小指夹住蛙的两下肢，将蛙固定于手中。
2．给药方法多采用淋巴囊注射。
蛙的皮下有许多淋巴囊（见实验图-3），注入药液易吸收。
一般采用腹囊给药。
注射量每只可达0.25～1.0ml。
（三）家兔的捉拿和给药方法⒈捉拿法用左手抓住兔的颈背部皮肤将其提起，以右手托住其臀部，使兔呈坐位姿势。
⒉给药方法⑴灌胃：由两人合作，一人固定兔身（或用固定器将兔固定），另一人用开口器（见实验图-4）将兔口撑开，并将兔舌压在开口器下面横放于兔口中。
取适当的橡胶管涂以液体石蜡，从开口器的中央孔插入，沿上颚实验图-3 蟾蜍的给药部位实验图-4 家兔的灌胃法实验图-5 家兔的耳缘静脉注射后壁缓缓送入食管约15cm左右，即可进入胃内。
《小白鼠的捉拿法与给药途径》
2.分组及腹腔给药： 甲组－A药 0.1ml/10g 乙组－B药 0.1ml/10g
3.观察:30min后用相同的电流、电压再刺
激，观察有何变化
4.结果处理:用直接概率法
No
惊厥数
未惊厥数
合计
A药
a=0
b=10
(a+b)10
B药 合计
c=10 (a+c)10
d=0 (b+d)10
(c+d)10
n=(a+b+c+d) 20
1、药物半数致死量（LD50）测定及安全性评价 2、抗癫痫药的辨别与药效测定 3、氯丙嗪对小白鼠激怒反应的影响
【小白鼠捉拿法】
双手捉拿法 单手捉拿法
小白鼠的捉拿法与给药途径
【小白鼠的处死】
颈椎脱臼法： 左手三个指头按住头部(其中食指按 住颈部脊椎)，右手拉尾巴
普鲁卡因半数致死量(LD50)的测定
【目的】 理解LD50的概念，掌握LD50的测定方法及计算
【LD50的意义】 LD50反映药物的毒性大小
安全性：治疗指数＝LD50/ED50 比值大安全 性大
安全范围：当药物的治疗效应与致死效应曲 线不平行时，要看ED95和LD5的距 离，距离越大越安全
测定LD50的方法很多
本实验用的是简化机率单位法
频率(HZ):1 波宽(ms):0.6×500 反面:插上交流输出插头(另一端夹住激怒箱)
电压开关、电压表、电压旋钮置于
90V 左右
【方法】
▸筛选:挑选一对在一定的时间内（10s-3min） 能产生咬斗的小鼠
▸用药:甲乙两鼠分别腹腔注入1％氯丙嗪 0.1ml/10g
▸观察:30min后用同样的电压再刺激，观察 两鼠产生咬斗的时间是否延长 (观察240秒)
药理学实验
实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】逐步学会常用实验动物的捉拿和给药方法【内容】（一）小白鼠的捉拿和给药方法1．捉拿法以右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起，放置于鼠笼边缘或其他易攀抓处，轻轻向后拉鼠尾，用左手拇指和食指捏住其两耳及头部皮肤，使其腹部朝上，屈曲左手中指使鼠背靠在上面，然后以无名指及小指压住鼠尾，使小鼠完全固定（见实验图-1）。
2．给药方法⑴灌胃：小白鼠固定后，使其口部朝上，将颈部拉直，右手持灌胃器自口角插入口腔，沿上颚轻轻地进入食管，如动物安静、呼吸无异常、口唇无紫绀现象，即可注入药液（见实验图-2）。
灌胃量为0.1～0.25ml∕10g。
⑵腹腔注射：小白鼠固定后，右手持注射器自下腹一侧向头部方向以45°刺入腹腔（角度太小易刺入皮下）。
针头刺入不宜太深或太近上腹部，以免刺伤内脏。
注射量一般为0.1～0.2ml∕10g。
⑶皮下注射：固定小鼠后，右手持注射器，将针头刺入其背部皮下注入药液。
注射量一般不超过0.25ml。
⑷肌内注射：由两人合作，一人固定小白鼠后，另一人持注射器，将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液。
注射量一般每腿不超过0.1ml。
（二）蟾蜍或蛙的捉拿和给药方法1．捉拿法一般由左手握蛙，用食指和中指夹住蛙的两上肢，无名指和小指夹住蛙的两下肢，将蛙固定于手中。
2．给药方法多采用淋巴囊注射。
蛙的皮下有许多淋巴囊（见实验图-3），注入药液易吸收。
一般采用腹囊给药。
注射量每只可达0.25～1.0ml。
（三）家兔的捉拿和给药方法⒈捉拿法用左手抓住兔的颈背部皮肤将其提起，以右手托住其臀部，使兔呈坐位姿势。
⒉给药方法⑴灌胃：由两人合作，一人固定兔身（或用固定器将兔固定），另一人用开口器（见实验图-4）将兔口撑开，并将兔舌压在开口器下面横放于兔口中。
取适当的橡胶管涂以液体石蜡，从开口器的中央孔插入，沿上颚实验图-3 蟾蜍的给药部位实验图-4 家兔的灌胃法实验图-5 家兔的耳缘静脉注射后壁缓缓送入食管约15cm左右，即可进入胃内。
小鼠抓取以及给药的正确姿势
小鼠抓取以及给药的正确姿势
小鼠抓取
单手抓取：
1.提起小鼠的尾巴底部，将其放在笼盖、铁丝笼顶或类似粗糙的表面上。
2.将尾巴的底部塞进中指和无名指之间，同时轻轻地向后拉尾巴。
这将使小鼠的爪子紧紧抓住表面，并向前拉。
3.接下来，用食指和拇指在靠近头部底部的地方抓握，然后通过合并中指和无名指将抓握向下延伸到小鼠背部。
双手抓取：
1.提起小鼠的尾巴底部，放在笼盖、铁丝棒盖或粗糙的表面上。
2.轻轻地向后拉尾巴，小鼠就会用四只爪子抓住表面，然后向前拉。
3.接下来，用另一只手迅速且稳定地抓住老鼠的颈背（颈背抓握方式同单手）。
4.一只手抓着尾巴，另一只手抓着颈背，提起小鼠，把尾巴的底部塞进手掌与中指或手掌与无名指之间。
兽医药理学实验
兽医药理学实验实验报告书写题目目的原理材料：实验动物、器材、药品方法：用自己的语言简单扼要描述出来结果：要求真实清楚讨论，将实验结果比较分析，实验中有哪些不足之处，结果异常或失败的原因结论：将实验结果归纳总结实验一：实验动物的捉拿及给药方法一、小白鼠的捉拿和给药方法1、捉拿法：以右手捉住小鼠的尾巴将鼠提起，放置于鼠笼边缘或其他易攀爬处，轻轻向后拉鼠尾，趁其不备，用左手拇指和食指捏住其两耳及头部皮肤，使其腹部朝上，屈曲左手中指靠在鼠背上，然后以无名指压住鼠尾，小指压住其左下肢，使小鼠完全固定。
2、给药方法：1）灌胃：以左手固定小鼠后，使其腹部朝上，颈部伸直，右手持配有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，再从舌面沿上颚壁轻轻进入食管，当推进2～3cm时，灌胃器的前端到达膈肌水平，此时可稍感有抵触。
一般在此位置推注药液即可。
灌胃量为每10g体重0.1～0.3ml 。
2）腹腔注射：将小鼠固定后，使其呈头低臀高位，右手持注射器自下腹一侧向头部方向以45°刺入腹腔，进针部位不宜太高，刺入不宜太深，以免伤及内脏。
注射量一般为每10g 体重0.1～0.3ml 。
3）皮下注射：左手固定小鼠，右手持注射器，将针头刺入背部皮下注入药液。
注射量一般为每每10g体重0.05～0.2ml 。
4）肌肉注射：小鼠因肌肉较少，很少采取肌肉注射，若需要，则由两人合作，一人固定小鼠后，另一人持注射器，将针头刺入小鼠后肢外侧肌肉内注入药液。
注射量每条腿不超过0.1ml。
5）尾静脉注射：将小鼠固定，使鼠尾露出。
用酒精棉球涂搽尾部，使血管扩张。
用左手拉住尾尖，从左右两侧尾静脉中选择一条扩张最明显的，右手持注射器（选用4号针头），将针头由尾端向心刺入血管，用左手拇指与食指固定针头和血管，推入药液。
注射量为每10g体重0.1～0.2ml二、家兔的捉拿和给药方法：1、捉持法：用左手抓住颈背部皮肤将家兔提起，右手托住其臀部，使家兔呈坐位姿势。
小白鼠系列实验
教研室主任（签字）课程负责人（签字）
2010年11月23日2010年11月24日
新乡医学院实验课教案
课程名称：普通生物学授课教师姓名及职称：高启禹讲师
基本内容
一、实验目的
1学习小型哺乳动物的外部测量法、采血方法、鼠类腹腔注射和皮下注射方法，进一步掌握哺乳动物一般解剖方法。
新乡医学院实验课教案首页
课程名称：普通生物学授课教师姓名及职称：高启禹讲师
一、授课题目
小白鼠系列实验
二、授课对象
09级生物技术专业及三全
三、实验教学目标与课时分配
1.学会实验动物小白鼠的抓取、固定和性别鉴定
2.初步掌握小鼠的给药途径和方法
3.初步学会小鼠常规的几种采血方法
4.熟悉小鼠的组织结构
四、授课重点
2了解小脑对躯体运动的调节机能。
3.了解小鼠呼吸系统、消化系统、泄殖系统的组成结构及特点。
二、实验内容
1、小白鼠的抓取固定、外部测量、性别鉴定、灌胃、注射和采血。
(1)抓取固定:用右手提起尾部，放在实验台上，在其向前爬行时，用左手抓住两耳及头部皮肤，再置小白鼠于左手心，拉直四肢并用手指夹住肢体固定，右手可进行注射或其他操作。
肌肉注射:小鼠和大鼠肌肉较小，肌肉注射不常用，如需肌肉注射，也可注入股部肌肉。注射量每腿一般不超过0.2 ml。
尾静脉注射:将小白鼠固定在一铁丝笼或特别的筒内，使尾露在外面。用体积分数为70%的乙醇涂擦尾巴或浸在45℃热水中，使尾部静脉充血。用连有4号针头的注射器自鼠尾根部1/3处两侧以约～角(几乎平行)刺入尾静脉，若针头已插入血管则针芯很易推动，且尾部皮肤不肿胀或不冒水滴，静脉成一条白线。否则说明针并未插入静脉血管(。注射量：(0.01～0.02) ml/g。
实验一 小白鼠和家兔的捉持与给药方法(doc)
实验一小白鼠和家兔的捉持与给药方法(doc)实验动物的捕持和给药是实验操作中非常关键的步骤。
本文主要介绍小白鼠和家兔的捉持和给药方法。
1. 捕持方法小白鼠较为敏感，需要小心捉持。
可以采用直接手抓或使用器械相结合的方法。
① 直接手抓：用左手握住小白鼠的尾巴，将其抬离地面，右手用力抓住身体。
捉持的位置应该落在肩胛骨的后面。
捉持后，将小白鼠稳定住，不要摇晃。
② 使用器械：可以使用长柄刷子、网兜、特殊夹具等工具将小白鼠从底部壁上向上推，然后在手掌捉持。
2. 给药方法对于小鼠的给药方法，有多种选择。
下面分别介绍常见的口服给药和腹腔注射。
① 口服给药：使用灌胃针或切口方法。
前者通常用于液体或悬浮物，后者通常用于固体或片剂。
灌胃针方法：将灌胃针插入小鼠口中，直到其到达胃部。
然后缓慢注入待给药物。
给药完毕后，针头要缓慢拔出。
切口方法：用手或器械拓宽小鼠口腔，将给药物放在其舌根处。
然后轻轻地按住小鼠的颈部，使其吞咽。
② 腹腔注射：使用注射器在小鼠腹部注射待给药物。
首先选择注射部位，一般建议在小鼠的下腹部。
然后用适量的酒精消毒注射部位。
将注射器插入腹部，确保局麻针穿过腹膜。
缓慢注射待给药物后，注射针要慢慢拔出。
二、家兔的捕持和给药方法① 直接手抓：用两只手同时抓住家兔颈部和臀部。
抓住后，将家兔稳定住，不要晃动。
② 使用器械：可以使用外科手套或草绳将家兔绑定在固定位置上。
需要特别注意的是，草绳不要绑定得太紧，以免影响家兔的呼吸。
总的来说，实验动物的捉持和给药方法需要谨慎操作，以保证实验的成功和动物的健康。
在进行操作前，需要进行必要的训练，熟悉其生理特征，了解其习性，确保操作更加顺利。
同时，在实验过程中，也要注意动物的福利和健康，确保其得到最好的关怀和保障。
(医疗药品)实验一小白鼠和家兔的捉持与给药方法
实验一小白鼠和家兔的捉持与给药方法1、小白鼠和家兔的捉持与给药方法[目的]学习小白鼠的捉持和各种给药法。
[材料]小白鼠3-4只鼠笼天平注射器灌胃针头生理盐水小鼠尾静脉注射用固定筒[方法]1.1、捉持法以右手提鼠尾，将小鼠放于粗糙面上，将鼠尾轻轻向后拉，以左手的拇指及其食指捏双耳及头部皮肤，无名指、小指及掌心夹其背部皮肤及其尾部，便可将小鼠固定。
1.2、灌胃左手持小鼠，使腹部朝上，颈部拉直，右手拿灌胃器子口交插入口腔，从舌面紧沿上颚进入食道。
若遇阻力，应退出后再插。
1.3、皮下注射一人抓小白鼠头部皮肤，右手拉鼠尾，另一人左手捏背部皮肤，右手持注射器刺入背部皮肤。
1.4、腹腔注射左手抓小白鼠，右手持注射器。
取30º将针头从下腹部刺入腹腔。
1.5、尾静脉注射将小白鼠置于固定筒内或倒置的大漏斗下，使鼠尾露出在外。
用酒精棉球擦鼠尾，使血管扩张。
左手拉住尾尖，选一条扩张最明显的尾静脉将针头刺入血管，推药。
若有阻力，且局部变白，则需从新刺入血管。
2、家兔的捉持与给药方法[目的]学习家兔的捉持和各种给药法。
[材料]家兔1-2只兔开口器注射器导尿管生理盐水磅秤兔固定箱[方法]1.1、捉持法一手抓家兔颈背部皮肤，将兔提起。
另一手托起臀部，使兔成坐位姿势。
1.2灌胃需由两人合作进行。
一人取坐位，用两腿夹持兔身，左手握家兔双耳，右手抓住两前肢。
另一人将木制开口器横插家兔口内，压住舌头，并固定之。
取8号导尿管从开口器中小口插入食道。
插管时易误入气管。
区别之法主要在于谨慎观察插管后动物的反应。
插入器官是可引起剧烈挣扎和呼吸困难。
也可将导尿管的外段进入水中，如有气泡吹出，表示插在气管内，此时应该把管重插。
于判明导尿管确实插在食道内以后，取注射器接在导尿管上，将药液推入。
再推注少量空气，是导尿管中不致有药液残留，慢慢抽出导尿管，取出开口器。
家兔灌胃给药时的药液量一般为5~20ml\kg.试以生理盐水进行练习。
1.3皮下、肌内及腹腔注射给药方法基本上同小白鼠，为针头可稍大（选用6号或7号针头），给药量可稍多（皮下与肌内0.5~1.0ml\kg，腹腔1.0~5.0ml\kg）1.4静脉注射将家兔置固定箱内，把去耳壳外缘的毛，选择一条比较明显的耳缘静脉，用酒精棉球涂擦皮肤，使血管显露。
药物应用基础 实验操作步骤及知识点
实验1.2 小鼠的捉持和给药法[目的] 学习小鼠的捉持和各种给药法。
[材料] 小鼠3 4 ∽只；鼠笼、天平、注射器、针头、灌胃针头、小鼠尾静脉注射用固定筒、生理盐水。
[方法] １.捉持法以右手提鼠尾，将小鼠放于鼠笼或其它粗糙面上，将鼠尾向后轻拉，使小鼠固定在粗糙面上，以左手的拇指及屈成“V”状的食指捏其双耳及头颈部皮肤，无名指、小指和掌心夹其背部皮肤和尾部，这样便可将小鼠完全固定，并可保持头颈部平直。
2. 灌胃法以左手捉持小鼠，使其头部朝上，颈部拉直。
右手持配有灌胃针头（以16号输血针头磨去针尖后制成）的注射器，自口角插入口腔，再从舌面紧沿上腭进入食道。
如手法正确，不难成功。
若遇阻力，应退出后再插，不能用力强插，以免刺破食道或误入气管，使动物致死。
灌胃的药液量一般为0.1 0.3ml/10g ∽。
试以生理盐水作灌胃练习。
3.皮下注射可由两人合作。
一人左手抓住小鼠头部皮肤，右手拉住鼠尾。
另一人左手捏起背部皮肤，右手持注射器（5 号或 6 号针头），将针头刺入背部皮下。
如由一人操作，可按前法捉持小鼠，右手持注射器，针尖从右侧肋缘上穿入皮下，向前推至右前肢腋下部位，将药液推入即可。
小鼠皮下注射的药液量一般为0.05 0.2ml/10g ∽。
试以生理盐水进行练习。
4．肌内注射可由两人合作。
一人左手抓住小鼠头部皮肤，右手拉住鼠尾。
另一人持注射器（4 号或 5 号针头），将针头刺入后肢外侧部肌肉。
如一人单独操作，以左手拇指和食指抓住小鼠头部皮肤，小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢，右手持注射器刺入后肢肌肉给药。
注射器每腿不宜超过0.1ml。
试以生理盐水进行练习。
5．腹腔注射以左手抓住小鼠，使腹部在上面，头部下倾，右手持注射器（5 号或6 号针头），取30 度角将针头从一侧下腹部向头端刺入腹腔。
进针部位不宜太高，刺入不能太深，以免伤及内脏。
注射量一般为0.1 0.2ml/10g ∽。
试以生理盐水进行练习。
6．尾静脉注射将小鼠置特制的固定筒内（或倒置的大漏斗、乳钵下），使鼠尾露出在外。
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小白鼠的捉拿与给药方法教学设计
单位：黑龙江农业职业技术学院
主讲：杨晶
职称：讲师
小白鼠的捉拿与给药方法教学设计
小白鼠的捉拿与给药方法教学设计
【所属学科】药学
【所属课程】药理学
【所属专业】生物制药
【使用对象】生物制药技术、医药营销、药品质量检测技术专业学生
【教学设计】
一、教学背景：
药理学是一门综合实验性学科，药理学实验课是药理学教学的重要组成部分，其目的在于通过实验，不仅仅是验证药理学中的重要基本理论，牢固地掌握药理学的基本概念，以便正确地应用于临床；更重要的是加强智能培养，即了解获得药理学知识的科学途径，使学生掌握进行药理学实验的基本方法和技能，培养与提高自学、独立思考、独立工作、科学思维、实验设计与统计的能力，初步具备对事物进行客观的观察、比较、分析、综合和解决实际问题的能力。
同时，通过实验培养学生对科学工作的严肃态度、严格的要求、严密的工作方法和实事求是的作风。
二、教学目标：
1、知识目标：掌握小白鼠的捉拿和给药方法，从而保证实验顺利进行。
2、能力目标：能准确完成小白鼠的捉拿和给药。
3、态度目标：培养学生珍惜生命、爱护动物的精神。
三、教学重点：
小白鼠的捉拿与给药方法的操作过程
四、教学难点：
小白鼠的给药方法的规范操作
五、教学准备：
多媒体课件、实验动物、实验器材的准备
六、教学方法与设计：
（一）教学方法
1、自然导入，创设情境
通过药理学实验的目的和意义导入本次课程的设计理念。
2、教师示范法
教师演示小白鼠的抓取和给药的标准操作步骤及每项操作过程中的注意事项。
3、问题导入法
创建问题情境，激发学生的学习兴趣，活跃课堂气氛，充分发挥学生的主体意识。
（二）教学设计
1、小鼠的捉持方法
用右手提起尾部，放置在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后上方轻拉，此时小鼠前肢紧紧抓住粗糙表面，迅速用左手拇指和食指捏住小鼠颈背部皮肤，用小指和手掌尺侧夹持小鼠尾根部，将其固定于手中。
2、小白鼠的给药方法有以下几种：
灌胃给药、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射和静脉注射。
我们先来看一下第一种操作方法：
（1）灌胃给药
器材：小鼠灌胃针头，长4-5cm，直径1mm，装在1ml注射器上使用
左手捉持小鼠，腹部朝向操作者，右手持灌胃针头，经口角插入口腔，用灌胃针头顶住小鼠上颚，使小鼠口腔与食管成一直线，将灌胃针头沿上腭壁缓慢插入食管2cm~3cm，如动物无抵抗，即可将药液注入。
如遇阻力应抽出灌胃针头重新插入，若将药液误注气管，动物立即死亡，注药后轻轻抽出针头。
操作中需要注意以下几点：1、操作应轻柔，防止损伤食管。
2、操作中要使小鼠口腔与食管保持同一直线，方便针头退入。
3、防止药液误入气管导致动物死亡。
（2）腹腔注射
左手固定小鼠，成头低位，腹部朝上，右手持注射器在下腹左侧或右侧（避开膀胱）向头端穿刺，针头与皮肤呈30°,刺入腹腔后有落空感，注入药液剂量为0.2-0.4ml。
注意：针头不要刺入太深，太靠上，以免伤及内脏。
（3）皮下注射
小鼠皮下注射部位选择在颈背部皮肤或后肢外侧皮肤
将小鼠放在粗糙的平面上，左手拇指和食指捏起背部皮肤，右手持注射器将针头刺入皮下，稍稍摆动针头，若容易摆动，则表明针尖确实位于皮下，此时注入药液剂量为0.2-0.4ml。
注意：拔针时，左手捏住针刺部位，以防止药液逸出。
（4）肌肉注射
肌肉注射需两人合作，一人左手捏小鼠头部皮肤，右手固定鼠尾；另一人左手以左手拇指和食指固定小鼠一侧后肢，右手持注射器，将针头刺入外侧肌肉内。
注意：小鼠肌肉较少，肌内注射不常用。
（5）静脉注射
通常将小鼠固定在铁丝笼或特制筒内，使鼠尾露在外面。
用75%乙醇溶液擦拭尾巴，使尾静脉充血。
注射时，左手拇指和食指捏持鼠尾，右手持注射器，选择两侧静脉，使针头与鼠尾平行，选择离尾根部远端，进行静脉穿刺。
如推注药液无阻力，局部皮肤发白则表明针头未刺入血管，退出针头重新操作，注意静脉穿刺时应从远端（近尾尖）开始，不仅容易穿刺，而且还可向近端多次穿刺。
注射完毕，用棉球按压穿刺口止血。
操作中需要注意以下几点：1、注射前要用75%乙醇涂抹尾巴，使尾静脉充血，便于后面注射给药；2、注射完毕后要用酒精棉球按压注射部位以免出血。
（三）总结提升
通过上面的学习，我们了解了小白鼠的捉拿和给药方法，希望同学们规范操作，不要被实验动物咬伤，并且课下多做练习。
六、复习思考题：
小白鼠在捉拿过程中怎样迅速固定？小白鼠在给药过程中需要注意哪些问题？
黑龙江农业职业技术学院杨晶。