细菌分子鉴定
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细菌的分子鉴定
一、染色体DNA提取和纯化(细菌不同,方法略有不同)
1)4ml培养物1000rpm离心5min
2)用等体积0.85% NaCl洗涤,离心
3)用等体积TES缓冲液洗,离心
4)悬浮于0.4mlTE(pH8.0)缓冲液
5)加入50ul新鲜配制的溶菌酶液(2mg/ml in TE),悬浮于30℃处理20min,并且加入RNase,使终浓度为20ug/ml.
6)加入20ul 25%SDS和50ul 5mg/ml蛋白酶K和50ul 5M NaCl 37℃处理1h。悬液黏度增高,表明裂解。
7)加入10%体积的3M pH5.2乙酸钠溶液,轻轻混合。
8)加入等体积酚:氯仿,颠倒离心管慢慢混合15~30min,10,000rpm离心8min。
9)轻轻吸出上层(DNA很粘稠,可将tip剪成较大口),酚:氯仿抽提,直到看不见蛋白层。
10)加入等体积异丙醇沉淀DNA,可见盘曲线状物。
11)将DNA移至一小离心管中离心,用70%乙醇洗两遍;气干或真空干燥,然后用100~200ulTE缓冲液融解。
二、 PCR扩增16S rRNA基因
以227#菌株的总DNA为模板,以F8: 5’-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3’和
R1492: 5’-GGTTACCTTGTTACGACTT-3’为引物扩增其16S rRNA基因。PCR反应在20ul反应体系中进行。同时,以水做阴性对照。
10×缓冲液 2ul
dNTP 2ul
引物F8 2ul
引物R1492 2ul
Taq酶 0.15ul
O 11.75ul
H
2
模板 0.1ul
PCR反应条件:94℃预变性10min;94℃,1min;60℃,1min;72℃,2min;
循环30次;72℃,5min
三、琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物
1)配置用于灌注电泳槽和制备凝胶所需的电泳TAE缓冲液;
2)按体积称取1%(w/v)的琼脂糖,加TAE缓冲液;
3)在微波炉中加热至琼脂糖完全溶解;
4)冷却至60℃左右,加入EB溶液,使之终浓度为0.5ug/ml;
5)将溶液倒入胶膜中,插入胶疏,静置冷却;
6)待凝胶完全凝结后,小心将胶梳取出,将凝胶放入电泳槽中;
7)将样品与缓冲液(Loading Buffer)充分混合后加入样品槽;
8)接通电源,维持电压120V,直到适当时间;
9)切断电源,将凝胶于紫外灯下观察,并用紫外成像仪拍照。
四、 DNA片断的回收纯化
采用TaKaRa Agarose Gel DNA Fragment Recovery Kit回收纯化DNA。
1)DNA样品经琼脂糖凝胶电泳后,将目的DNA片断切出。
2)将含有DNA片断的胶块切碎后放入1.5ml的Microtube中。
3)向装有胶块的Microtube中加入约3倍凝胶量(体积比)的NaI溶液(1mg 凝胶视为1ul),55℃加热使胶块完全融化。
4)按每20ul硅胶树脂结合约1ug DNA的比例加入适量的硅胶树脂,充分混合后,于室温放置20分钟。
注)硅胶树脂使用前,一定要充分混匀。
5)离心(10,000rpm、1分钟)后除去上清液。
注)此上清液在整个回收过程结束后,确认回收率较高时方可废弃。如果回收率较低时,可在此上清液中再次加入硅胶树脂液,重新吸附。
6)在Microtube中加入500ul清洗液,振荡混匀后离心(10,000rpm、1分钟),除去上清液。
7)重复操作第6步。
注)为提高DNA片断的回收效率,此时应尽量除净上清液。
8)加入和硅胶等量(体积比)的TE缓冲液或灭菌蒸馏水后混匀,55℃水浴
中放置10分钟。
9)离心(10,000rpm,1分钟)后吸取上清液,注意尽量不要吸取硅胶树脂。此回收上清液即为DNA回收溶液。
注)为提高回收效率,可再重复一次第8步和第9步的操作。
五、扩增的16S rRNA基因克隆于质粒载体上
扩增的16S rDNA首先在0.8%低熔点琼脂糖胶上纯化,纯化的DNA和质粒pUCm-T Vector在16℃连接16h,然后转化入E.coli DH5α,转化子在含X-gal 和氨苄青霉素的LB平板上筛选。
1连接反应
基本操作按连接酶说明书进行,外源目的DNA片断与载体DNA比例为3:1,O,外源DNA片断,载体DNA,连接缓冲液,T4 DNA连接酶
按比例加入ddH
2
(Promega),16℃连接16hr,用琼脂糖凝胶电泳检测连接效果。
2大肠杆菌感受态的制备和质粒的转化
(1)大量制备感受态细胞
1)从37℃培养12-16h的平板中用无菌牙签挑取一个单菌落,转到含有3ml LB培养基的试管内,37℃振摇过夜。次日取菌液1ml接种至含有100ml LB培养基的500ml烧瓶中,37℃剧烈振荡培养约2-3h(振摇速度为200rpm),待OD600值达到0.3-0.4时将烧瓶取出立即置冰浴10-15min。
2)自该步骤起皆需无菌操作。在无菌条件下将细菌转移到一个灭菌处理过的用冰预冷的50ml离心管中。
3)4℃离心,4000g×10min回收细胞。
4)弃去培养液,将管倒置于滤纸上1min,以使最后残留的培养液流尽。
10ml重悬菌体,置冰浴30min。
5)加用冰预冷的0.1mol CaCl
2
6)4℃离心,4000g×10min,弃去上清液,倒置于滤纸上1min。
重悬菌体。(重悬时操作要轻)。
7)再加4ml用冰预冷的0.1mol CaCl
2
8)置4℃冰箱置12-16h,即可应用于转化。
(2)感受态细胞的冻存
如一次制备出的感受态不能用完,可进行冻存保留。其方法为:将感受态分装成400ul一份,每份加30%体积的甘油保存液。置-70℃冰箱,低温保存可达3