切片实验技术
植物切片相关实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解植物切片的制作过程及注意事项。
2. 掌握植物组织切片技术在植物学研究中的应用。
3. 通过观察植物切片，了解植物组织的结构特征。
二、实验原理植物切片技术是一种重要的植物学研究方法，通过将植物组织制成薄片，便于在显微镜下观察其结构特征。
本实验采用石蜡切片法，将植物组织固定、脱水、透明、包埋、切片、染色，最后进行封片。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：洋葱鳞片叶、马铃薯块茎、胡萝卜根等。
2. 仪器设备：切片机、显微镜、显微镜载物台、显微镜镜头、载玻片、盖玻片、酒精灯、酒精、二甲苯、甲醛、石蜡、刀片、剪刀、镊子、滴管、烧杯、滤纸等。
四、实验步骤1. 固定：将植物材料放入装有甲醛的烧杯中，浸泡24小时。
2. 脱水：将固定后的植物材料依次放入50%、70%、90%、95%、无水酒精中，每级酒精浸泡30分钟。
3. 透明：将植物材料放入二甲苯中，室温下浸泡，使组织透明。
4. 包埋：将透明后的植物材料放入熔化的石蜡中，使其成为石蜡块。
5. 切片：将石蜡块放入切片机中，切取5-10微米的薄片。
6. 染色：将切片放入染液中，如苏木精-伊红染色液，室温下染色30分钟。
7. 水洗：将染色后的切片用蒸馏水冲洗，去除多余的染液。
8. 封片：将冲洗后的切片用中性树胶封片，制成植物切片。
五、实验结果与分析1. 洋葱鳞片叶切片观察：- 表皮细胞：细胞呈长方形，排列紧密，细胞壁较厚，细胞核较大，染色较深。
- 保卫细胞：位于表皮层，呈肾形，细胞壁较薄，细胞核较小。
- 保卫细胞间隙：保卫细胞之间形成的空隙，有利于气体交换。
- 气孔：保卫细胞之间形成的开口，是气体交换的主要通道。
2. 马铃薯块茎切片观察：- 表皮细胞：细胞呈多边形，排列紧密，细胞壁较厚，细胞核较大。
- 薄壁组织：位于表皮下方，细胞较大，细胞壁较薄，含有丰富的营养物质。
- 维管束：由韧皮部和木质部组成，负责水分和养分的运输。
3. 胡萝卜根切片观察：- 表皮细胞：细胞呈长方形，排列紧密，细胞壁较厚，细胞核较大。
病理切片 实验报告
病理切片实验报告引言病理切片是病理学中的一项重要实验技术，通过对组织或细胞进行取样、固定、染色和切片等处理，然后使用显微镜观察和分析来研究疾病的病理变化。
病理切片实验在临床诊断、疾病研究以及药物治疗等方面具有重要的应用价值。
本实验报告旨在通过对病理切片实验的详细描述，介绍其原理、步骤和应用。
方法1. 组织取样首先，从患者身上取得需要研究的组织样本，可以是活体组织或死者遗体组织。
取样时需要注意选择代表性的病变组织，尽量避免破坏组织结构。
取样后立即将组织放入含有生理盐水或缓冲液的容器中，并迅速送至病理实验室。
2. 组织固定取得组织样本后，需要将其进行固定处理，以保持组织结构和形态的原始状态。
常用的固定方法包括福尔马林固定和乙酰化固定等。
实验中选择福尔马林固定，将组织样本完全浸泡在10%福尔马林溶液中，时间通常为24小时。
3. 组织处理在固定后，需要对组织样本进行处理，以便后续的切片工作。
处理包括去水化、透明化和浸渍等步骤。
首先，将固定好的组织样本置于水中进行去水化，去除其中的福尔马林。
接着，使用透明剂（例如醋酸酯类）使组织透明化，以便后续的染色和观察。
最后，使用浸渍剂（例如石蜡）对组织进行浸泡，使其变得坚硬并易于切片。
4. 组织切片在组织处理完成后，需要将组织样本切成薄片，通常为5-10微米厚度。
切片可以使用手工切片刀或者自动化切片机进行。
切片时需要将组织样本固定在切片刀上，并通过微调装置控制切片的厚度和精确度。
5. 组织染色切片完成后，需要对切片进行染色。
染色是为了增强组织结构的对比度，使得细胞和组织的特征更加清晰可见。
常用的染色方法包括血液学染色、组织学染色和免疫组化染色等。
在本实验中，选择常用的血液学染色方法—苏木精-伊红染色。
6. 组织观察染色完成后，可以使用显微镜对切片进行观察和分析。
显微镜可以放大切片中的细胞和组织结构，以便对其进行病理学评估和研究。
结果与讨论通过对病理切片实验的详细操作，我们成功获得了含有病变组织的切片，并进行了染色和观察。
教学生物切片工艺
教学生物切片工艺教学生物切片工艺介绍在生物学实验室中，切片是一项非常重要的技术，它能够将生物样本切成薄片，以便观察细胞结构和功能。
本文将介绍一些常用的生物切片工艺，帮助学生们更好地掌握这一技术。
准备工作在进行生物切片之前，需要进行一些准备工作：•选择合适的样本：样本应具有较为鲜活的生物组织，如植物的叶片、动物的肌肉等。
•固定样本：将样本浸泡在适当的固定液中，如福尔马林等，以保持细胞形态和结构。
•脱水：将固定的样本经过一系列浓度递增的酒精中脱水，以去除样本中的水分。
切片步骤切片是一个复杂的过程，需要耐心和细心。
以下是常见的生物切片步骤：1.取样本：使用手术刀或镊子等工具，从准备好的样本中取出适当大小的组织。
2.定位样本：将取出的组织在显微镜下定位，确保选取合适的区域进行切片。
3.包埋：将定位好的组织放入包埋剂中，使其在固化过程中形成坚实的组织块。
4.切片：使用切片机或手动切片工具，将包埋好的组织块切成薄片，通常为几微米至几十微米。
5.上片：将切好的薄片浸泡在水中，再用镊子或刮刀等工具将其转移到载玻片上。
6.染色：根据需要，可以选择将切片进行染色，以突出细胞结构或功能。
7.封片：使用显微镜封片机或封片胶等工具，将载玻片上的切片进行密封，以保护切片并提供更好的清晰度。
注意事项进行生物切片时，还需注意以下几点：•安全第一：操作时应戴上手套和安全眼镜，避免对身体造成伤害。
•细心操作：切片过程中要轻柔、细心，避免破坏组织结构。
•保持干燥：切片前后应保持样本和切片工具的干燥，以避免水分带来的影响。
总结生物切片工艺是生物学实验中的重要技术之一。
通过准备工作、切片步骤和注意事项的介绍，希望能够帮助学生们更好地掌握生物切片技术，提高实验的准确性和效果。
请学生们在实践中加强训练，并随时向导师和同学们寻求帮助。
观察切片实验报告
一、实验目的1. 熟悉切片的制作方法，掌握显微镜的使用技巧。
2. 观察不同组织的切片，了解其结构和功能。
3. 提高实验操作能力和观察分析能力。
二、实验原理切片实验是生物学研究的重要手段之一，通过切片技术将生物组织制成薄片，便于在显微镜下观察其结构和功能。
本实验主要观察动物和植物的组织切片，了解其基本结构和功能。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：兔肝脏、鸭肺、洋葱鳞片叶、植物叶片等。
2. 仪器：显微镜、切片机、载玻片、盖玻片、染色液、酒精、蒸馏水等。
四、实验步骤1. 切片制作（1）取实验材料，用手术刀或解剖刀切成薄片。
（2）将切片放入切片机中，调整切片厚度至1-2微米。
（3）将切片取出，用酒精固定。
（4）将固定后的切片放入染色液中染色，染色时间根据染色液种类和浓度而定。
（5）将染色后的切片取出，用蒸馏水清洗。
（6）将清洗后的切片放入载玻片中，滴加适量的封片剂，盖上盖玻片。
2. 显微镜观察（1）将切片置于显微镜载物台上，调整显微镜光圈和焦距，使图像清晰。
（2）观察不同组织的切片，注意其细胞结构、组织层次和功能。
（3）记录观察到的结构和功能特点。
五、实验结果与分析1. 兔肝脏切片观察（1）细胞结构：兔肝脏细胞呈多边形，细胞核较大，染色质丰富。
（2）组织层次：肝脏组织分为肝小叶和肝索，肝小叶由肝细胞、胆管和血管组成。
（3）功能特点：肝脏具有分泌胆汁、代谢物质、解毒等功能。
2. 鸭肺切片观察（1）细胞结构：鸭肺细胞呈多边形，细胞核较大，染色质丰富。
（2）组织层次：肺组织分为肺泡和肺泡壁，肺泡壁由肺泡上皮细胞和毛细血管组成。
（3）功能特点：肺具有气体交换、呼吸等功能。
3. 洋葱鳞片叶切片观察（1）细胞结构：洋葱鳞片叶细胞呈长方形，细胞核较小，染色质较少。
（2）组织层次：洋葱鳞片叶组织分为表皮、叶肉和叶脉。
（3）功能特点：洋葱鳞片叶具有保护植物体、运输物质等功能。
4. 植物叶片切片观察（1）细胞结构：植物叶片细胞呈长方形，细胞核较小，染色质较少。
生物组织切片技术的步骤与显微镜观察注意事项
生物组织切片技术的步骤与显微镜观察注意事项生物组织切片技术是生物学实验中常用的一种技术，它可以使我们更加清晰地观察和研究生物组织的微观结构。
然而，要获得高质量的组织切片和准确地观察细胞结构，需要掌握一些关键步骤和注意事项。
1. 细胞固定和处理：首先，选择适当的生物组织进行研究，并将其固定。
常用的固定剂包括福尔马林、缩醛等。
固定过程中，应注意固定液的浓度、温度和固定时间，以获得最佳的切片结果。
2. 组织切片：固定后的组织需要进行切片以获得薄片。
切片可以使用手动或自动切片机进行。
切片时，要注意刀片的锋利度和切片的厚度，过厚或过薄的切片都会影响观察结果。
此外，在切片过程中需使用切片液体，保持组织的湿润性。
3. 脱水和清洁：切片完成后，需要对切片进行脱水和清洁。
脱水可以使用不同浓度的酒精进行，逐渐将水分从切片中去除。
脱水过程要缓慢进行，以免引起组织变性。
清洁时，可以使用温水和清洗剂将切片浸泡，去除脱水剂和其他残留物质。
4. 上染料及固定：完成脱水和清洁后，可以对切片进行染色。
染色可以增加组织结构的对比度，并使细胞和组织成分更加明确可见。
常用的染料有伊红、吉姆萨和涅瓦脱尔等。
染色后，需要将切片进行固定，以防止染色物质在观察过程中脱落。
5. 显微镜观察：对于观察切片，最关键的工具就是显微镜。
首先，将切片放置在显微镜载物台上，并选择适当的镜头放大倍数。
然后，调节聚焦和光源，确保观察到的细胞结构清晰可见。
同时，调整光源的强度，避免过强的光线造成过度曝光。
在观察细胞结构时，还需注意以下事项：a. 观察角度：切片必须放置在正确的平面上，以便观察到所需的细胞结构。
切片的厚度和切面的角度会对观察结果产生影响，因此要确保选择正确的切面进行观察。
b. 观察时间和条件：观察时应适度控制观察时间，避免过度放大或观察时间过长引起疲劳。
此外，观察时要注意环境条件，避免把显微镜放置在强光下或者有振动的地方，以免干扰观察。
c. 记录和分析：在观察过程中，要及时记录所观察到的细胞结构，并进行分析。
组织标本切片实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握组织切片的基本操作步骤。
2. 了解不同组织切片的制备方法及其应用。
3. 学习显微镜观察技术，观察组织切片的形态结构。
二、实验原理组织切片是生物学和医学研究中常用的技术手段，通过将生物组织切成薄片，便于在显微镜下观察其形态结构和功能。
本实验主要涉及以下原理：1. 组织固定：使用固定剂使组织保持原有形态，便于后续处理。
2. 组织脱水：通过乙醇等溶剂使组织中的水分逐渐被取代，便于切片。
3. 组织透明：使用透明剂使组织中的脂类物质溶解，便于切片。
4. 组织包埋：将组织块包埋在石蜡等介质中，便于切片和保存。
5. 组织切片：将包埋好的组织块切成薄片。
6. HE染色：使用苏木精和伊红染色剂对切片进行染色，便于观察组织结构。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：动物组织（如肝脏、肾脏、肌肉等）、石蜡、乙醇、透明剂、HE染色剂等。
2. 实验仪器：显微镜、切片机、切片刀、载玻片、烤箱、酒精灯、培养皿等。
四、实验步骤1. 组织固定：将动物组织置于4%多聚甲醛溶液中固定24小时。
2. 组织脱水：将固定后的组织依次浸泡于70%、85%、90%、95%、无水乙醇中，每次浸泡时间为1小时。
3. 组织透明：将脱水后的组织浸泡于透明剂中，直至组织完全透明。
4. 组织包埋：将透明后的组织块放入石蜡中，加热使石蜡熔化，待石蜡凝固后取出组织块。
5. 组织切片：将包埋好的组织块置于切片机上，进行切片，片厚约为4微米。
6. 脱蜡：将切片放入二甲苯中脱蜡，每次浸泡时间为30分钟，重复两次。
7. 水化：将脱蜡后的切片依次浸泡于95%、90%、80%、70%乙醇中，每次浸泡时间为10分钟。
8. HE染色：将切片放入苏木精染色液中染色5-10分钟，然后用自来水冲洗，再放入伊红染色液中染色2-3分钟，最后用自来水冲洗。
9. 晾干：将染色后的切片放入烤箱中烤干，然后放入载玻片上，滴加少量中性树胶封片。
五、实验结果与分析1. 观察肝脏切片：在显微镜下观察，可见肝细胞呈多边形，排列整齐，细胞核位于细胞中央，呈圆形或椭圆形，染色较深。
重要动物组织切片制作技术
注意组织的新鲜度和 保存方式，避免组织 腐败和自溶。
根据实验需求选择适 当的组织部位，如肝 脏、肾脏、心脏等。
动物组织的固定
01
固定是制作切片的关键步骤，有助于保持组织结构的完整性。
02
选择适当的固定剂，如甲醛、乙醇等，根据组织类型和实验要
求进行固定。
固定时间要适当，不宜过长或过短，以确保组织结构和细胞形
03
态的清晰度。
动物组织的脱水
脱水是去除组织中多余水分的过程，为后续的包 埋做准备。
选择适当的脱水剂，如乙醇、丙酮等，逐步替换 组织中的水分。
注意脱水时间和程度，避免组织过度干燥和结构 破坏。
动物组织的包埋
包埋是将脱水后的组织包裹在包埋剂 中，以便于切片操作。
包埋过程中要保持组织结构的完整性 ，避免产生气泡和裂痕。
选择染色剂
根据观察目的选择适当的染色剂，如苏木精-伊红 染色、银染色等。
染色过程
按照染色剂的要求进行染色，控制染色时间和温 度等参数。
复染
在染色后进行复染，以提高染色效果和对比度。
切片的观察与记录
显微镜观察
使用显微镜观察切片，记 录组织结构和形态等信息 。
图像采集
使用图像采集设备将观察 到的切片图像保存下来。
切片制作技术还可以用于土壤污染监测。通过对土壤中的 动植物组织进行切片制作，可以观察到土壤污染对生物的 影响，为土壤污染治理提供支持。
切片制作技术在法医学中的应用
在法医学中，切片制作技术主要用于 对死因的鉴定和物证分析。通过对死 者的组织和器官进行切片制作，可以 了解死因和死亡方式，为刑事案件的 侦破提供依据。
标准化和规范化
为了提高切片制作技术的准确性和可靠性，标准化和规范化的操作流 程和技术标准正在不断完善和推广。
切片现场操作规程
切片现场操作规程一、引言切片是现代生物学研究中常用的实验技术。
为了保证切片过程的准确性和效果，制定本规程，明确切片现场操作流程和注意事项，确保实验的顺利进行。
二、切片现场操作流程1.准备工作–确保实验室工作区域整洁、干净，有充足的光线和通风。
–检查所使用的切片仪器和设备是否完好，并进行必要的维护和清洁。
–预先准备好所需的试剂和样品。
2.样品处理–调配切片缓冲液，并保证其温度和浓度符合实验要求。
–将待切片的样品放入切片盘中，并添加足够的切片缓冲液，保证样品完全浸没。
–在保持切片盘平衡的情况下，轻轻搅拌样品，使其均匀分布。
3.切片操作–将样品盘安装到切片仪器中，并调整刀片的位置和角度。
–预设切片仪器的切片速度和厚度，根据实验需要进行适当的调整。
–开始切片操作，保持切片仪器的运行平稳。
–周期性检查切片质量，确保切片的均匀厚度和完整性。
4.切片收集–使用取片钳和显微镊子等工具，小心地将切片逐个取出，并放入预先准备好的接片盒中。
–将接片盒密封并进行标记，以便后续的实验操作。
5.清洗和储存–将切片仪器和相关工具进行清洗和消毒，以防止样品交叉污染。
–将切片盘进行清洗，并清除其中的残留物。
–对已取出的切片进行必要的染色、封片等处理，并储存在干燥、阴凉的地方。
三、注意事项1.安全注意事项–实验人员在进行切片操作时，应佩戴适当的个人防护装备，如实验手套、护目镜等。
–确保切片仪器的电源和线路安全可靠，避免发生电气事故。
–避免切片仪器和设备的过热，以防止火灾和烫伤。
2.实验操作注意事项–在切片过程中，保持手部稳定，并避免用力过大，以免影响切片质量。
–根据样品的特性和要求，选择适当的切片速度和厚度。
–注意切片盘中的切片缓冲液，经常检查并及时补充，以保持样品湿润。
3.实验环境注意事项–实验室应保持干净整洁，杂物应及时清理，以确保切片过程中的环境卫生。
–切片操作台面应保持干燥，避免滑动和倾斜，确保操作的稳定性。
–控制室温和湿度，避免对切片质量产生不良影响。
石蜡切片的步骤实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 熟悉石蜡切片的制作流程。
2. 掌握石蜡切片的基本操作步骤。
3. 了解石蜡切片在组织学、病理学等领域的应用。
二、实验器材与试剂1. 实验器材：- 组织切片机- 石蜡切片机- 脱水机- 摊片机- 载玻片- 烤片机- 石蜡- 二甲苯- 无水乙醇- 4%多聚甲醛- 70%、85%、95%、100%乙醇- 75%、85%、90%、95%酒精- 0.1mol/L盐酸- 苏木精- 伊红- 柠檬酸缓冲液- HE染色试剂三、实验步骤1. 取材与固定- 将新鲜组织固定于4%多聚甲醛24小时以上。
- 将组织从固定液中取出，在通风橱内用手术刀将目的部位组织修平整。
- 将修切好的组织和对应的标签放入脱水盒内。
2. 脱水- 将脱水盒放入吊篮里，于脱水机内依次梯度酒精进行脱水。
- 脱水过程：75%酒精1小时，85%酒精1小时，90%酒精1小时，95%酒精1小时，无水乙醇I 30分钟，无水乙醇II 30分钟，醇苯5-10分钟，二甲苯I 5-10分钟，二甲苯II 5-10分钟，蜡I 1小时，蜡II 1小时，蜡III 1小时。
3. 包埋- 将浸好蜡的组织放入包埋机内进行包埋。
- 先将融化的蜡放入包埋框，待蜡凝固之前将组织从脱水盒内取出，按照包埋面的要求放入包埋框并贴上对应的标签。
- 于-20℃冻台冷却，蜡凝固后将蜡块从包埋框中取出并修整蜡块。
4. 切片- 将修整好的蜡块置于石蜡切片机上切片，片厚4微米。
- 切片漂浮于摊片机40℃温水上将组织展平，用载玻片将组织捞起，并放进60℃烤箱内烤片。
- 待水烤干蜡烤化后取出，常温保存备用。
5. 脱蜡至水- 依次将切片放入二甲苯30分钟，二甲苯30分钟，无水乙醇10分钟，无水乙醇10分钟，95%酒精5分钟，90%酒精5分钟，80%酒精5分钟。
- 苏木精染色：将切片放入苏木精染液中染色5-10分钟。
- 水洗：将切片放入清水中清洗。
- 伊红染色：将切片放入伊红染液中染色1-2分钟。
生物解剖学实验中的组织切片技术
生物解剖学实验中的组织切片技术在生物解剖学实验中，组织切片技术是一项重要的技术手段。
通过组织切片，可以将生物体的组织结构进行细致观察和研究。
下面将介绍组织切片技术的步骤和注意事项。
一、材料准备在进行组织切片实验的时候，需要准备以下材料：1. 组织样本：可以是动物组织、植物组织或人体组织。
要确保样本新鲜且保存良好。
2. 切片刀：选择合适的切片刀能够提高切片的质量。
3. 碘酒：用于消毒和标记切片。
4. 显微镜：用于观察切片的显微结构。
5. 切片贴片：用于固定和保存组织切片。
二、切片步骤1. 样本固定：将组织样本放入含有适当浓度的缓冲液中进行固定。
固定能够保持组织结构的完整性，同时防止样本中的酶活性继续进行。
常用的固定液有福尔马林和氯乙酸。
2. 组织处理：在固定后的组织中，需要去除多余的水分，并使组织透明化。
可以使用甲醛、丙酮等试剂来进行处理。
3. 组织切片：将透明化后的组织放置在切片刀上，用切片刀沿着想要切片的方向进行切割。
要注意刀的角度和切割的速度，以保证切片的质量。
4. 切片贴片：将切好的组织切片用镊子取出，轻轻放在切片贴片上。
要避免切片的叠加和重叠，确保切片的平整和清晰。
5. 切片染色：切片染色是为了增强切片的对比度，使组织结构更加清晰可见。
可使用常见的组织染色剂，如伊红、伊红苏木、溴化乙锐等。
6. 保存和贮存：将染色好的切片放在切片贴片上，用封条封住，放置在保存盒中。
要放置在阴凉干燥的地方，避免阳光直射和湿气的侵蚀。
三、注意事项1. 操作前要熟悉实验步骤，并严格按照操作规程进行。
2. 对于有毒或易燃易爆的试剂，要注意安全操作，避免事故发生。
3. 在操作过程中要保持实验台面的清洁，避免污染样本。
4. 切片刀要保持锋利，切割时可以用适量的甘油润滑刀片。
5. 观察切片时，要调整显微镜的焦距和光线，以获得最佳的观察效果。
通过组织切片技术，可以观察和研究生物体的组织结构，进而了解其功能和生理特征。
这项技术在生物解剖学领域的应用广泛，并且在医学研究、病理诊断等领域也起到了重要的作用。
病理切片制作实验报告
病理切片制作实验报告病理切片制作实验报告病理切片制作是一项重要的实验技术，用于疾病的诊断和研究。
本实验旨在探究病理切片制作的步骤和技术，并评估其在疾病诊断中的应用。
一、实验目的本实验的目的是了解病理切片制作的基本步骤和技术，并探究其在疾病诊断中的应用。
通过实验，我们将学习如何正确取材、固定、包埋、切片和染色，以及如何观察和分析病理切片。
二、实验材料和方法1. 实验材料：- 病理标本- 10% 福尔马林- 蜡块- 切片机- 染色剂（如血液染色剂、组织染色剂等）2. 实验方法：- 取材：将病理标本切割成适当大小的组织块，注意保持组织的完整性。
- 固定：将组织块浸泡在10%福尔马林中，使其固定。
- 包埋：将固定后的组织块置于蜡块中，使其浸泡在熔化的蜡中，蜡块冷却后形成固体蜡块。
- 切片：使用切片机将蜡块切割成薄片，厚度通常为4-6微米。
- 染色：将切片浸泡在染色剂中，使其染色。
- 观察和分析：使用显微镜观察染色后的切片，分析组织结构和病变情况。
三、实验结果通过本实验，我们成功制作了病理切片，并观察到了组织结构和病变情况。
通过染色，我们能够清晰地看到细胞核、细胞质和细胞间质的分布情况，以及病变部位的异常变化。
四、实验讨论病理切片制作是病理学研究和临床诊断中的重要工具。
通过观察病理切片，医生可以判断组织的正常与异常情况，从而诊断疾病。
染色技术的应用可以增强切片的对比度，使细胞和组织结构更加清晰可见。
在实验过程中，我们需要注意取材的准确性和规范性。
取材时应选择代表性的组织块，并保持其完整性，以确保切片的可靠性。
固定和包埋过程中，需要严格控制时间和温度，以避免组织的变性和破坏。
切片时，刀片的锋利度和切割速度也会对切片质量产生影响。
此外，染色选择和染色时间的控制也是关键。
不同的染色剂适用于不同的组织和病变类型，需要根据实际情况进行选择。
染色时间过长或过短都可能导致染色效果不佳，影响切片的观察和分析。
病理切片制作技术的应用不仅限于临床诊断，还可以用于疾病研究和药物开发。
植物切片实验报告
一、实验目的1. 掌握植物切片的制作技术，了解植物组织结构。
2. 通过显微镜观察植物组织的细胞结构，学习植物细胞的基本形态和特征。
3. 熟悉植物组织的分类和功能，加深对植物生理学知识的理解。
二、实验原理植物切片实验是通过将植物组织切成薄片，在显微镜下观察其细胞结构，从而了解植物组织的形态、结构和功能。
实验过程中，需使用切片机将植物组织切成薄片，然后通过染色、封片等步骤，使细胞结构清晰可见。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：植物叶片、茎、根等新鲜或干燥的组织。
2. 实验仪器：切片机、显微镜、染色液、封片剂、载玻片、盖玻片等。
四、实验步骤1. 切片制作a. 将植物组织洗净，切成适宜大小的块状。
b. 将组织块放入切片机中，调整切片厚度（一般为10-20微米）。
c. 将切片取出，用毛刷轻轻扫入盛有清水的培养皿中。
2. 染色a. 将切片用吸水纸吸干水分。
b. 将切片放入染色液中，根据不同组织选择合适的染色液（如苏木精-伊红染色液）。
c. 染色时间根据组织类型和染色液浓度进行调整，一般为5-15分钟。
3. 封片a. 将染色后的切片用吸水纸吸干水分。
b. 将切片放置在载玻片上，用封片剂覆盖，使其与载玻片牢固粘合。
4. 显微镜观察a. 将封片后的载玻片放置在显微镜载物台上，调整焦距，观察植物组织的细胞结构。
b. 观察不同植物组织的细胞结构，如叶片的表皮、叶肉、叶脉；茎的韧皮部、木质部；根的皮层、维管束等。
五、实验结果与分析1. 叶片切片a. 表皮细胞：多为长方形，排列紧密，细胞壁较厚，具有气孔器。
b. 叶肉细胞：分为栅栏组织和海绵组织，栅栏组织细胞排列紧密，海绵组织细胞排列疏松。
c. 叶脉：由维管束构成，包括木质部和韧皮部。
2. 茎切片a. 韧皮部：细胞排列紧密，细胞壁较厚，具有韧性和保护作用。
b. 木质部：细胞排列紧密，细胞壁较厚，具有输送水分和养分的功能。
3. 根切片a. 皮层：细胞排列疏松，具有吸收水分和养分的功能。
超薄切片技术的步骤
超薄切片技术的步骤一、介绍超薄切片技术（Ultra-Thin Sectioning Technique）是一种在生物学和材料学领域中常用的实验技术，用于制备极薄的样品切片，以便于观察样品的微观结构和化学组成。
本文将详细介绍超薄切片技术的步骤和操作要点。
二、材料与设备准备2.1 材料准备•要制备切片的样品•乙醇、醋酸酯等有机溶剂•样品固定剂•样品染色剂•样品固化剂2.2 设备准备•切片机（可手动或电动）•金刀（可单刀或多刀）•玻璃刀片•玻璃载玻片•组织处理设备（真空冷冻干燥机、离心机等）三、样品处理步骤3.1 固定样品1.将要制备切片的样品进行固定。
不同的样品可能需要不同的固定方法，例如生物标本可以使用福尔马林进行固定，材料样品可以使用特定的固定剂。
3.2 染色样品1.如果需要观察样品的细胞结构或化学组成，可以在固定后对样品进行染色。
选择合适数量和类型的染色剂，根据样品的特性进行处理。
3.3 样品预处理1.将固定并染色的样品转移到过渡性有机溶剂中，逐渐脱水。
通常使用乙醇、醋酸酯等溶剂进行脱水处理。
3.4 样品浸透1.将样品转移到浸透剂中，溶剂与浸透剂逐渐混合。
常用的浸透剂有环氧树脂和丙烯酸树脂等。
浸透剂的选择应根据样品特性和实验需求。
3.5 样品固化1.将浸透后的样品转移到切片模具中，加入切片树脂，使其充分固化。
固化过程中通常需要一定的温度和时间。
3.6 去除玻璃刀片1.使用特定工具将固化后的切片和玻璃刀片分离，得到单独的样品切片。
四、超薄切片操作步骤4.1 切片机准备1.启动切片机，并确保刀片固定好且处于适当位置。
2.调整刀片的角度和位置，以适应样品的形状和大小。
4.2 切片操作1.将待切片的样品放置在切片机上，并固定好。
2.调整切片机的切割参数，包括切割速度、切割厚度等。
3.使用切片机进行切割操作，得到超薄的样品切片。
4.3 切片校正1.检查切片的质量和厚度。
可以使用显微镜观察切片的表面和边缘，确保切割到理想的厚度。
冷冻切片技术实验及冷冻切片机的基本操作
冷冻切片技术实验及冷冻切片机的基本操作冷冻切片技术是一种常用的生物学实验技术，通过将生物组织或细胞样本在非常低的温度下快速冷冻并切割成薄片，以保持样本的原始结构和化学组成，从而观察细胞或组织的形态结构和功能。
冷冻切片技术广泛应用于组织学、细胞学、免疫学等领域的研究和临床诊断。
冷冻切片机是冷冻切片技术的关键设备，用于将冷冻后的样本切割成薄片。
下面将介绍冷冻切片技术实验的步骤及冷冻切片机的基本操作。
1.样本处理：将待切割的生物组织或细胞样本进行处理，如固定、染色等。
这些步骤可以根据实验需求进行选择，以保持样本的形态和结构。
2.冷冻固化：将处理好的样本通过冷冻剂（如液氮或液氮混合物）迅速冷冻固化。
冷冻速度越快，冰晶越小，样本的结构损伤越小。
3.取样本：将固化好的样本从冷冻剂中取出。
在取样本之前，需注意将取样本的器具和工作台等一同冷冻至与样本相同的温度，以避免样本融化。
4.进样盒固定：将样本放置在迅速冻结剂（如液氮）预冷的进样盒内，并用冷冻剂浸泡样本。
进样盒的固定有助于保持样本的形状和组织结构。
5.冷冻切片：将装有样本的进样盒置于冷冻切片机的切片台上，调节刀片与样本的切割厚度。
通常，切割厚度可根据需要调节，一般在5-100微米之间。
6.切片收集：将切割好的样本切片收集到载玻片中，通常使用水平移动的玻片支托架来收集切片。
收集时需保持切片的顺序，并用特定的液体介质（如生理盐水）浸润切片，以防止切片变形或干燥。
7.染色和显微观察：将切片进行染色处理，如组织染色、免疫染色等，以显示出组织的细胞结构和化学成分。
然后，可以使用显微镜观察和拍摄切片的形态结构和细胞组织分类。
冷冻切片机的基本操作如下：1.准备：打开冷冻切片机电源，确保刀片已经安装，并根据需要调整切割厚度。
检查是否有足够的液氮或其他冷冻剂供应。
2.进样：将待切割的样本放置在切片台上的进样盒中，使用夹具或夹具系统将其固定在进样盒上。
确保样本与刀片的切割平面垂直，并浸泡在冷冻剂中。
切片实验报告心得体会
一、实验背景切片实验是生物学实验中常见的一种技术，通过对生物样本进行切片，以便于观察和研究其内部结构和组织。
本次实验旨在通过切片技术，了解植物细胞的结构和功能，以及动物组织切片的制备过程。
二、实验目的1. 掌握植物细胞和动物组织切片的制备方法。
2. 观察植物细胞和动物组织的显微结构，了解其功能。
3. 培养实验操作技能和观察分析能力。
三、实验过程1. 植物细胞切片制备（1）选取新鲜的植物叶片，用剪刀剪成小块。
（2）将剪好的叶片放入装有酒精的试管中，浸泡30分钟。
（3）取出叶片，用刀片将叶片切成薄片。
（4）将切片放入装有甘油和醋酸的混合液中，浸泡10分钟。
（5）取出切片，用滤纸吸去多余液体，放入载玻片中。
（6）用显微镜观察植物细胞结构。
2. 动物组织切片制备（1）选取新鲜的小鼠肝脏，用剪刀剪成小块。
（2）将剪好的肝脏放入装有酒精的试管中，浸泡30分钟。
（3）取出肝脏，用刀片将肝脏切成薄片。
（4）将切片放入装有甘油和醋酸的混合液中，浸泡10分钟。
（5）取出切片，用滤纸吸去多余液体，放入载玻片中。
（6）用显微镜观察动物组织结构。
四、实验结果与分析1. 植物细胞切片观察结果通过显微镜观察，发现植物细胞具有细胞壁、细胞膜、细胞质、细胞核、液泡等结构。
细胞壁位于细胞的最外层，具有保护和支持细胞的作用；细胞膜是细胞内外物质交换的通道；细胞质是细胞内部的结构和功能区域；细胞核是细胞的控制中心，负责细胞的遗传信息传递；液泡是细胞内储存物质的地方。
2. 动物组织切片观察结果通过显微镜观察，发现动物组织具有细胞、血管、神经等结构。
细胞是组织的基本单位，具有多种功能；血管负责输送氧气和营养物质，以及带走代谢废物；神经负责传递信息，调节身体的各种生理活动。
五、心得体会1. 实验操作的重要性本次实验让我深刻认识到实验操作的重要性。
在实验过程中，要严格按照操作步骤进行，避免人为误差。
同时，要注重实验操作的规范性和安全性，确保实验顺利进行。
石蜡切片实验报告
石蜡切片实验报告石蜡切片实验报告石蜡切片是一种常见的实验技术，广泛应用于生物学、医学和材料科学等领域。
本实验旨在探索石蜡切片的制备方法、切片技术以及应用领域。
一、石蜡切片的制备方法石蜡切片的制备方法主要包括固定、脱水、浸渗和包埋四个步骤。
首先，需要将待切割的样本进行固定处理，常用的方法有福尔马林固定和乙醛固定等。
固定处理的目的是保持样本的形态结构和化学组成，以便后续的处理。
接下来，进行脱水处理，将固定的样本逐渐置于浓度递增的酒精溶液中，以去除样本中的水分。
然后，进行浸渗处理，将脱水后的样本逐渐浸渗于石蜡中，以增加样本的硬度和刚性。
最后，进行包埋处理，将浸渗后的样本置于石蜡中，使其完全包裹。
制备好的石蜡块可以进行切片处理。
二、石蜡切片的切片技术石蜡切片的切片技术主要包括石蜡块修整、切片机操作和切片收集三个步骤。
首先，需要对石蜡块进行修整，将其切割成适当大小的块，以便放置于切片机中。
修整过程需要注意保持切片块的平整和规整，以确保切片的质量。
接下来，进行切片机操作，将石蜡块固定在切片机上，并设置好切片机的切割参数，如切片厚度和切割速度等。
切片机通常使用旋转刀片进行切割，通过旋转刀片与石蜡块的接触，将石蜡块切割成薄片。
最后，进行切片收集，将切割好的石蜡切片收集起来，可以用于后续的染色、观察和分析。
三、石蜡切片的应用领域石蜡切片在生物学、医学和材料科学等领域有着广泛的应用。
在生物学研究中，石蜡切片可以用于组织学研究，通过切割和染色石蜡切片，可以观察和分析生物组织的形态结构和细胞组织的分布情况，从而揭示生物组织的功能和病理变化。
在医学诊断中，石蜡切片可以用于病理学检查，通过切割和染色石蜡切片，可以观察和分析患者组织样本中的异常变化，为医生提供诊断依据。
在材料科学研究中，石蜡切片可以用于材料分析，通过切割和染色石蜡切片，可以观察和分析材料的微观结构和组分分布，从而揭示材料的性质和特性。
总结起来，石蜡切片是一种重要的实验技术，具有广泛的应用领域。
植物细胞切片实验报告
一、实验目的1. 学习制作植物细胞切片的基本方法。
2. 观察植物细胞的结构特点。
3. 认识植物细胞的主要组成部分。
二、实验原理植物细胞切片实验是利用切片技术将植物细胞切割成薄片，然后在显微镜下观察细胞的结构。
通过观察细胞的结构，可以了解植物细胞的基本组成和功能。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：洋葱鳞片叶、菠菜叶片、显微镜、切片机、载玻片、盖玻片、染色液（如伊红、苏木精等）、酒精、蒸馏水、盐酸、剪刀、镊子、解剖针、擦镜纸等。
2. 实验仪器：切片机、显微镜、显微镜载物台、显微镜光源、显微镜物镜、显微镜目镜、显微镜调焦旋钮等。
四、实验步骤1. 制备切片材料：取洋葱鳞片叶和菠菜叶片，用剪刀将叶片剪成适当大小的块状，用解剖针挑出叶片中的叶脉和主脉，以便观察细胞结构。
2. 涂片：将剪好的叶片块状物放在载玻片上，用解剖针轻轻涂抹，使叶片均匀分布在载玻片上。
3. 固定：将涂抹好的载玻片放入固定液（如盐酸）中浸泡5-10分钟，以固定细胞结构。
4. 切片：将固定好的载玻片放入切片机中，调整切片厚度（约10-20微米），进行切片。
5. 染色：将切片放入染色液中，染色时间为30-60秒，根据不同染色剂进行调整。
6. 清洗：将染色后的切片用蒸馏水冲洗，去除多余的染色剂。
7. 复盖：将清洗后的切片用盖玻片覆盖，确保切片与盖玻片紧密贴合。
8. 观察与记录：将载玻片放在显微镜下，调节物镜和目镜，观察细胞结构并记录。
五、实验结果与分析1. 洋葱鳞片叶切片：观察洋葱鳞片叶切片，可见细胞壁、细胞核、细胞质、液泡、叶绿体等结构。
细胞壁位于细胞的最外层，呈厚薄不均的环状；细胞核位于细胞中央，呈圆形或椭圆形；细胞质位于细胞核周围，含有大量细胞器；液泡位于细胞质内，呈球形或椭圆形；叶绿体位于细胞质内，呈扁平的椭球形。
2. 菠菜叶片切片：观察菠菜叶片切片，可见细胞壁、细胞核、细胞质、液泡、叶绿体等结构。
与洋葱鳞片叶切片相比，菠菜叶片切片中的叶绿体更为明显，且叶绿体呈盘状。
冰冻切片制备 实验步骤
冰冻切片制备实验步骤冰冻切片制备是一种常用的实验技术，用于制备生物样品的切片，以便进行显微镜观察和分析。
下面将按照实验步骤的顺序进行详细介绍。
1. 样品的准备选择合适的样品进行制备。
样品可以是细胞、组织或生物体的一部分。
根据实验的需要，样品可以是新鲜的或者固定的。
2. 样品的固定如果选择的样品是新鲜的，需要先进行固定以保持其形态和结构。
常用的固定剂有福尔马林、戊二醛等。
将样品放入固定剂中，根据样品的大小和种类，固定的时间可以从几分钟到几小时不等。
3. 样品的冰冻将固定后的样品进行冷冻以减少切片时的变形。
可以使用液氮或冰冻机将样品迅速冷冻至零下20摄氏度以下。
冷冻的时间要尽量短，避免冰晶的形成对样品造成损伤。
4. 切片仪的准备将切片仪调整到适当的工作状态。
切片仪的刀片需要保持锋利，切片盒需要清洁干净。
5. 样品的切片将冷冻的样品取出，迅速放入切片盒中。
使用切片仪将样品切片，切割的速度和厚度根据需要进行调整。
切片时要保持手稳定，避免切出的切片变形或损坏。
6. 切片的收集将切下的样品片收集到盛有PBS（磷酸盐缓冲液）的培养皿中。
这样可以避免切片的干燥和变形。
7. 样品的染色根据实验需要，可以对切片进行染色以便于观察。
常用的染色方法有荧光染色、组织学染色等。
染色后的切片需要进行洗涤以去除多余的染料。
8. 切片的保存将染色后的切片放入玻片盒中，用透明胶带密封。
存放在适当的温度和湿度条件下，避免切片的变形和腐败。
通过以上步骤，我们可以得到冰冻切片制备的样品，以供显微镜观察和分析。
冰冻切片制备技术可以用于各种生物学研究，如细胞生物学、组织学和病理学等领域。
它可以帮助我们观察样品的细节结构，了解其功能和病理变化，为科学研究和临床诊断提供重要的依据。
芯片切片实验流程
芯片切片实验流程一、引言芯片切片实验是一项常见的实验技术，用于研究芯片的内部结构和功能。
本文将详细介绍芯片切片实验的流程，帮助读者了解该实验的步骤和注意事项。
二、实验前的准备工作1. 准备实验所需的芯片样品。
根据实验目的选择合适的芯片，确保芯片的质量和完整性。
2. 清洁工作台和实验仪器。
保持实验环境的清洁和整洁，避免杂质对实验结果的影响。
3. 检查实验仪器的工作状态。
确保实验仪器正常运行，并进行必要的校准和调试。
三、芯片切片的步骤1. 将芯片固定在切片架上。
使用专用夹具将芯片固定在切片架上，确保芯片表面平整且不受损。
2. 选择切片工具和切片液。
根据芯片的材料和硬度选择合适的切片工具，并配合切片液进行切割。
3. 调整切片机的参数。
根据芯片的特性和需要，调整切片机的切割速度、切割深度等参数。
4. 开始切割。
将切片工具放置在芯片表面，根据需要进行切割，逐渐获得所需厚度的芯片切片。
5. 切片后的处理。
将切片取出，进行必要的处理，如清洗、染色等，以便后续的观察和分析。
四、实验注意事项1. 切片过程中要小心操作，避免损坏芯片或受伤。
2. 切片液和切片工具要正确选择和使用，避免对芯片造成损害。
3. 切片后的处理要细致，确保切片的质量和可观察性。
4. 实验环境要保持干净和安静，避免外部干扰对实验结果的影响。
5. 实验过程中要注意实验仪器的安全使用，避免发生意外事故。
五、实验结果的分析和评估1. 观察切片的形态和结构。
使用显微镜等观察设备，观察切片的形态、内部结构和特征。
2. 分析切片的功能和性能。
根据观察结果，分析芯片的功能和性能，评估芯片的质量和可靠性。
3. 记录和整理实验数据。
将实验结果进行记录和整理，便于后续的研究和分析。
六、结论芯片切片实验是一项重要的实验技术，通过切片和观察芯片的内部结构，可以深入了解芯片的功能和性能。
本文介绍了芯片切片实验的流程和注意事项，希望对读者有所帮助。
在进行芯片切片实验时，要注意实验的准备工作、操作步骤和实验结果的分析，以确保实验的准确性和可靠性。
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Cross section experiment introduction Cross section experiment introductionECSM QE departmentIssue date:Sep. 2006Preface-----金相切片分析方法特點n破壞性方法n試樣製備週期長（1d以上，最好3d）n試樣製備要求高n可直觀地獲取材料內部大量資訊n對操作和分析人員要求較高內容一. 切片前焊接性評估二. 切片的目的和意義三. 名詞解釋四. 設備及材料介紹五.操作步驟.六. 相關標准七. 不良圖片分析八. 注意事項X光檢驗(X-ray inspection)(1) 檢驗零件重點：BGAEvaluation components: BGA(2) 檢驗錫洞、錫橋以及大小錫球Inspect for voids or bridges, large/small balls4.4.3.3 切片檢驗Crossing sectioning:(1) 檢驗零件重點：BGA, IC, PTH connector,Via hole, RLC.Evaluation components: BGA, IC, PTH connector, Via hole, RLC (2) 著重在檢驗焊錫外觀、錫裂、錫洞及PTH連接器零件腳的吃錫狀況。
Inspection for solder joint structure, crack, void, solder fill condition of PTH connector.二. 微切片的目的和意義為了滿足客戶的需求和進行產品元件焊點情況分析,用切片試驗來驗証,分析產品焊錫效果,為產品性能可靠性提供確認結果或為制程品質異常提供分析依據（如確認元件吃錫狀況是否良好,中間是否出現錫裂,短路,空洞等異常現象）微切片的使用時機隨檢測目的不同而不同，為追蹤製程狀況而做的切片一般都會在製程完成後即刻執行，但如果是為了確認信賴度測試結果而做的切片，則會在信賴度測試(如：熱衝擊或加濕)後，進行電性及微切片檢查。
一般微切片的檢查項目:對於鑽孔孔徑、鍍層分佈、內層偏移、孔壁缺點、膠渣殘留、回蝕程度、釘頭、鍍層空洞、孔緣龜裂、壓板空隙、層間剝離、焊錫厚度、金鎳鍍層厚度、樹脂厚度等，微切片檢查都是不錯的觀察方式。
微切片檢查的方法斷面檢查(Micro-Cross section)可以用來觀察電路板的結構狀態，從其中獲得許多與製程及產品表現的資訊。
一般觀察的方式是用顯微鏡查看某個電路板的斷面，從斷面所呈現的影像來取得資訊。
雖然這樣的手段可獲得各種不同的資料，但試片的製作卻很難自動化，尤其是位置的選定、確切的切割、良好的固定、精細的研磨，這些都需要以人工方式進行。
切片與檢視的程序如下:a) 決定檢視位置、取樣方向，如:垂直、水平或斜切，進行取樣。
b) 將要測定的孔或樣本進行灌膠。
(選定的測定位置，要便於研磨作業。
為了可以一次研磨多個試片，位置要互相配合並有效率地一次填入多個樣本。
)c) 研磨出測定的位置，先用粗研磨再用細研磨。
研磨是一面加水一面進行的濕式法。
研磨面必須保持不傾斜，及早進入細研磨以免過度的研磨讓檢視部分消失不見。
d) 最後以拋光粉打磨樣本至細緻易於觀察的狀態。
e) 研磨完畢將樣本洗淨，經過微蝕的程序進行顯微鏡觀察。
f) 最后進行圖片的采集，分析，報告整理三.名詞解釋1. Cross Section: 切片2. Resin Powder: 壓克力粉3. Hardener: 固化劑4. Sandpaper: 砂紙5. Micro-crack: 微裂6. Micro-void: 微洞取樣鑲嵌切片拋磨微蝕觀察方法與步驟依據：IPC －TM －650 2.1.1金相切片分析金相切片製作過程：鑲嵌－切片－磨拋－觀測切片實驗室全景固定卷(fixer)脫模劑(脂類）固(硬)化劑(Hardener)壓克力粉(Resin Powder)拋光粉实验耗材150目沙紙600目沙紙1200目沙紙2000目沙紙3000目沙紙5000目沙紙注：沙紙目數的數值越小表示沙紙表面越粗糙當實驗對象過大，或只需針對一大個體的一小部份做實驗時，可通過切割（多用於PCBA 、使用切割機）將對象加工至適當大小以利鑄模及縮短研磨時間。
須注意，在切割，應在須研磨的樣本的周圍至少保留2mm ，以避免人為作業損傷樣本。
切割時盡量使用切割面與待研磨表面保持平行，以免制樣造成原來失效現場破壞，產生新的失效。
以方便之後的研磨作業。
對BGA 焊錫性進行驗證時，應避免對BGA 本體進行切割，而應在其本體外圍進行。
五.金相切片過程－取樣2.切片樣本制作2.1在模子底部及四周塗抹上脫模劑，以利樣本固化後從模子內取出2.2使用固定卷固定樣本(使待研磨表面垂直於水平面)2.3先後將壓克力粉與硬化劑按1:1的體積比例倒入一容器,之後用調棒徹底攪拌均勻。
攪拌時間不宜過長,應在1分鐘左右完成，以避免在攪拌時混合物已開始固化.而無法順利將其注入到模子內（需根據模子大小不同及樣本的高度不同，估計用量，避免浪費）2.4將混合物液體倒入已放置好樣本的模子內，倒入時應控制混合液流量，避免倒入之沖擊力將樣本沖偏離位置或沖翻。
2.5讓混合物在模子內自然冷卻30分鐘左右，至其完全固化。
（可用手觸摸模子或混合物表面，若其溫度至室溫表示其已固化，未固化其溫度將偏高）2.6取出樣本3.4如實驗目的是對焊錫性的驗證，在完成3.3項作業後即可執行第五項放大鏡觀察作業，不需也不可進行拋光作業，以免破壞表面不利觀察，如有需要可使用2000目~4000目的細沙紙再次研磨之後再觀察；而對零件本體進行驗證時，如PCB 是否斷線等, 應進行拋光作業。
3.研磨3.1將100~150目沙紙放於研磨轉盤上，並用防水保護蓋固定，而後啟動研磨機，進行第一步研磨3.2當樣本磨至距待觀察表面約0.5mm 時，換600目的沙紙進行第二次研磨。
3.3當磨至接近待觀察表面時，換1200目的沙紙進行第三次研磨。
拋光劑拋光4. 拋光在待觀察表面已較平整時，需對其進行拋光處理將拋光粉兌適量清水合成拋光劑，之後在拋光轉盤上滴注少許,拋光劑，打開水龍頭，開啟研磨機拋光轉盤開始轉動，輕壓樣本於轉盤表面拋光約1~2分鐘，之後用清水將樣本清洗干淨。
BGA Capacitor5.放大鏡觀察a.完成拋光作業後，將樣本用25x-500X 電子放大鏡觀察有無異常。
若有則將不良圖片拍攝下留証。
若無異常，可重復第3.3至5之對應步驟至實驗結束。
b. Cross section result pictureBGA pictureCapacitor picture六. 相關標准IPC-7095A Design and Assembly Process Implementation for BGAsIPC-A-610D Acceptability of Electronic AssembliesDefect-class 1.2.3*Visual or X-ray evidence of solderbridge*A “waist ”in the solder connectionindicating that the solder ball and theattaching solder paste did not flowtogether*Incomplete wetting to the land*BGA solder ball terminations haveincomplete reflow of the solder paste*Fractured solder connectionSurface Mount Area Array-solder connectionsCross section describes the five different void typesMicrovoids Pin Hole Voids Microvia VoidsMacrovoids Macrovoids Shrinkage Voids Microvoids Pin Hole Voids Microvia Voids Macrovoidsmeets product reliability requirementsTarget-Class 1.2.3*Placement of the BGA solder ball that is centered and shows no offset Of the ball to land centers:Defect-Class 1.2.3*Solder ball offset violates minimum electrical clearanceAcceptance-class 1.2.3*Overall height (H) of the component does not exceed maximum specifiedDefect-Class 1.2.3* Overall height of the component exceeds maximum specifiedThere is100% fillMinimum 75% fill, Amaximum of 25% totaldepression including bothsecondary and primarysides is permittedIPC-A-610D Standard requirementAs an exception the fill requirement ,a50% vertical of PTH is permitted forthe products provided followingConditions are met:•The PTH is connected to thermal orconduct planes that act as thermalheat sinks*The component lead is discemible inthe Side B solder connection*The solder fillet on Side B of theFigure has wetted 3600of the PTHbarrel and 3600Of the leadNote: Less than 100% solder fill may not be acceptance in some applications. e.g. thermal shock. The user is responsible for identifying these situations to the manufacturer.Micro void (可以接受)正常六. 切片分析Acceptable-class 1.2.325% or less voiding of the ball X-ray image areaDefect-class 1.2.3More than 25% in the ball X-ray image areaSolder Joint failure due to CTE mismatchPCBSubstrate Deformed Solder jointdue to warpingPCB 焊盘与Sn-0.7Cu 焊后发生Lift-off凝固收缩冷却时由于基板温度高，焊点先凝固收缩，基板焊盘界面处残留液相，基板越厚，基板内部储存的热量越多，越容易发生焊点剥离。