临床微生物检验标本采集与运送
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4.对无症状的患者应连续采集3天晨尿送检。
5.怀疑结核分枝杆菌感染时,患者应停药1-2天后采集晨尿或24h尿的沉渣部分10-15ml送检。 6. 标本采集后应立即送检、及时接种,室温下保存时间不得超过2小时(夏季保存时间应适当缩 短或冷藏保存),冷藏保存标本不得超过24小时,且必须在6小时内进行接种,但冷藏保存的标 本不能用于淋病奈瑟菌培养。
(1)用75%酒精擦拭静脉穿刺部位30秒以上,待干;
(2)然后10%碘伏作用60秒,从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达3cm以上,待干; (3)最后用75%酒精脱碘,待酒精挥发干燥后采血。 新生儿及对碘过敏的患者,只能用75%酒精消毒60秒,待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。 2. 血培养瓶消毒程序: (1)用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞,作用60秒。 (2)用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞表面剩余的酒精,然后注入血液。 要求: 严格无菌操作,不允许在皮肤消毒后用手按压静脉,除非带有无菌手套。 不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头,采用真空采血装置能降低污染率。
自气管镜采集及气管穿刺所获标本,结果比较可靠。
3. 由于口腔和咽部存在大量的革兰阳性和革兰阴性厌氧细菌,而且缺乏可靠的方法区分它们究 竟是致病菌还是定植菌,因此不主张对痰液标本进行厌氧菌培养。 4. 约有1/4~1/2肺部感染患者可能发生菌血症,建议同时做血培养。
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尿液标本采集 与运送
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说明:血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。成人血
培养采血量在2~30ml之间,病原菌检出率与采血量成正比例 增长。每增加1ml的血液,病原菌的检出率增加3.2%。儿童
患者因为血液中病原菌浓度较高,血培养量无需等同于成人。
对血液病患者或者血容量相对较低的患者建议使用儿童瓶来减 少血液的采集量增加病原菌的检出率。
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痰液标本采集与运送
(三)、注意事项
1. 痰标本不能及时送检者,可暂存4℃冰箱。室温下耽搁数小时,定植于口咽部的非致病菌过 度生长而肺炎链球菌、葡萄球菌和流感嗜血杆菌检出率则明显降低。 2. 在临床上咳痰仍是诊断肺部感染最常用的标本,但咳痰也最易被口咽部正常菌群污染。痰液 标本的细菌学检验,必须区分是病原菌还是来自上呼吸道的正常菌群。经过洗涤处理的痰液或
血液标本采集 与运送
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痰液标本采集
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尿液标本采集 与运送
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其它标本采集 与运送
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与运送
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血液标本采集 与运送
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血液标本采集与运送
(一)、血培养检测采血指征
临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者: 1. 发热(≥38℃)或低温(≤36℃) 2. 寒战 3. 白细胞增多(>10×109/L,特别有“核左移”未成熟的或杆状核白细胞增多) 4. 粒细胞减少(成熟的多核白细胞<1×109/L) 、
培养的最佳时机。在不同的时间点采血只有在以下情
况才有必要:疑似感染性心内膜炎或其他血管内(如 导管相关性感染)感染患者的连续性菌血症。
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血液标本采集与运送
(三)血培养标本采集和运送要求
2.采集部位
要求:从两侧上肢静脉采血,“双瓶双侧”采血培养。必要时从
下肢静脉采血做第三套血培养。 说明:不建议采集: (1)动脉血,因其诊断价值没有比静脉血更大; (2)静脉留置导管,因其常伴有高污染率。如果必须从留置导管 内采血(如怀疑导管相关性感染等),也应同时从外周静脉采集另 外一个血培养标本,以帮助阳性结果的判读。
5. 血小板减少
6.皮肤粘膜出血 7.昏迷、休克
8.多器官衰竭
9. CRP升高 在评估可疑新生儿败血症时,除发热或低烧外,很少培养出细菌,应该补充尿液和脑脊液培养。 对入院危重感染患者未进行系统性抗菌药物治疗之前,应及时采集血培养。
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血液标本采集与运送
(二)、血培养检测消毒程序
1. 皮肤消毒程序:严格执行三步法(防止皮肤寄生菌污染)
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痰液标本采集 与运送
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痰液标本采集与运送
(一)、痰液检测采集指征
1. 凡是发热、咳嗽和咳痰,痰呈脓性、粘稠或血性,并伴有胸痛、气急, 肺部闻及湿罗音,外周白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高,X线检查 提示肺部有炎性浸润或胸腔积液,甚至出现感染性休克和呼吸衰竭等患 者,应采集痰液或下呼吸道标本。 2.对可疑烈性呼吸道传染病(如SARS、肺炭疽、肺鼠疫等)患者采集检 验标本时必须注意生物安全防护。
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√ 标本采集后1~2h内必须立即进行实验室处理;
√ 取标本前应摘去牙托,清洁口腔如刷牙和漱口; √ 深咳,采集标本过程中要有专业的医务人员指导; √ 对于细菌性肺炎,痰标本送检每天1次,连续2~3天;不建议24小时内多次 采集,除非痰液外观性状改变; √ 怀疑分枝杆菌感染者,应连续收集3天清晨痰液送检。
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痰液标本采集与运送
(二)、采集方法
1. 自然咳痰法 以清晨第一口痰为好。用清水反复漱口后,用力咳出呼吸道深部的痰(或可 轻拍背部),直接置于无菌容器中(采集量≥1ml),尽快送检。痰量极少或痰 浓不易咳出者者可用45℃10%氯化钠液雾化吸入导痰。不能及时送检的标本, 室温保存≤2小时。要求采到肺深部的痰液,切勿混入唾液及鼻咽分泌物。 √ 在抗生素应用前采集痰标本;
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其它标本采集 与运送
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其它标本采集与运送
一、脑脊液标本采集与运送
1. 采集时间 怀疑为脑膜炎的病人,在使用抗生素前应立即采集脑脊液进行培养。 2. 采集方法 病人应先禁食,由临床医师采用腰椎穿刺术无菌采集:用碘伏对穿刺部位(成人为第3、 4腰椎间隙,小儿为第4、5腰椎间隙)进行局部皮肤消毒,插入带有管芯针的空针,进针至蛛网膜间 隙,拔去管芯针,收集脑脊液置于无菌螺旋盖管中送检。 3. 采集量 细菌培养≥1ml,真菌培养≥2ml,抗酸杆菌 培养≥2ml。 4. 注意事项 ⑴ 标本采集后应在常温下立即送检(15分钟内),以 防细菌死亡。 ⑵ 疑似脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌等苛养菌时,应 注意保温(35℃),切勿置于冰箱保存。
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痰液标本采集与运送
2. 小儿取痰法 用弯压舌板向后压舌,用棉拭子深入咽部,小
(二)、采集方法
儿经压舌刺激咳嗽时,可喷出肺部和气管分泌物,
粘在棉拭子上送检。幼儿还可用手指轻叩胸骨柄 上方,以诱发咳痰。 3. 支气管镜采集法 –-经支气管镜直接吸引 –-支气管肺泡灌洗 –-防污染样本毛刷
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说明:无论采用何种采血方法,血培养可接受的污染率通常是≤3%。
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血液标本采集与运送
(三)血培养标本采集和运送要求
1.采集时间 要求:对怀疑菌血症、真菌血症的患者,在考虑使用 抗菌药物之前,应立即采集血培养标本。必须同时或 间隔短时间内采集2套以上血培养标本。 说明:实验数据表明细菌入血后约1小时,寒战和发烧 开始出现2小时内,此时为采集血培养标本进行病原菌
临床微生物检验标本采集与运送
徐州市第六人民医院检验科 许峰
“正确的微生物学检验始于正确的标 本采集。临床医师、护士及检验技师
都必须通晓其要领。”
——著名的临床微生物检验专著《Manual of
Clinical Microbiology 》主编 Patrick Murray
目录
DIRECTORY
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所谓“双瓶双侧”,是指从一个部位采血接种一套培养瓶,再从
另一部位采血接种另一套培养瓶。(通常是双臂) 一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单个血培养。
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血液标本采集与运送
(三)血培养标本采集和运送要求
3. 采血量 要求: 成年患者推荐的采血量为每瓶8-10ml,儿童患者推荐 的采血量为每瓶1-5ml,新生儿0.5ml,但不应超过患儿总血 量的1%。
9. 抗生素停药后,感染症状再次出现。
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尿液标本采集与运送
(二)、采集方法
标本采集应在使用抗生素之前,避免消毒剂污染标本。 1.清洁中段尿 留取清晨清洁中段尿标本,先用肥 皂水仔细清洗会阴部及尿道口周围,再用清水冲洗; 将前段尿弃去,留取中段尿10ml左右于无菌容器内, 立即加盖送检,2h内接种。该方法简单、易行,是 最常用的尿标本收集方法。 2. 直接导尿 按常规方法对会阴局部进行消毒后,用导尿管直接经尿道插入膀胱,获取膀胱尿液, 可减少尿液标本污染,准确地反映膀胱感染情况。但有可能下尿道细菌进入膀胱,导致继发感染,
一般不提倡使用。
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尿液标本采集与运送
(二)、采集方法
3.耻骨上膀胱穿刺 无菌操作,无菌取尿,使用无菌注射器直接从耻骨上经
皮肤消毒穿入膀胱吸取尿液,是评估膀胱内细菌感染的“金标准”方法,主
要用于厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿尿标本的采集。 4.小儿收集包 无自控能力的小儿可用收集包收集尿液,这种装置由于很难 避免会阴部菌群污染产生假阳性,所以只有在检验结果为阴性时才有意义。 如果检验结果为阳性,应结合临床进行分析,必要时可使用膀胱上穿刺或导 尿法留取标本进行复检。 5.留置导尿管收集尿液 用导尿管导取10-15ml尿液置灭菌容器内送检。长 期留置导尿管者,应在更换新导尿管后留取尿标本。留置导尿患者应消毒导 尿管外部及尿管口,采取无菌操作方法,用注射器通过导尿管吸取尿液。注 意防止混入消毒剂,不能从尿液收集袋中采集尿液。
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尿液标本采集与运送
(一)、尿培养标本送检指征
1. 有典型的尿路感染症状;
2. 有肉眼脓尿或血尿; 3. 尿常规检查白细胞或亚硝酸盐阳性; 4. 有不明原因的发热,无其他局部症状; 5. 留置导尿管的患者出现发热; 6. 膀胱排空功能受损; 7. 泌尿系统疾病手术前;
8. 有尿路感染症状者,前次培养结果阴性或抗菌治疗48h后仍持续发热。
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其它标本采集与运送
三、化脓和创伤标本采集与运送
1. 采集时间 使用抗生素前,停止用药1-2天或以后,或下次用药前,或选择血药浓度较 低时抽取。
2. 采集方法
⑴ 用无菌生理盐水或75%乙醇擦拭病灶表面去除表面渗出物,组织或液体优于拭子;若必须使用拭 子,应采集两份,一份用于培养,一份用于革兰染色。 ⑵ 开放性脓肿:尽可能抽取脓液置于无菌试管内,或将拭子深入伤口,紧贴伤口前沿取样,从脓肿底 部或脓肿壁取样,效果最好。 ⑶ 封闭性脓肿:无菌操作,局部消毒后用针及注射器抽取脓液≥1ml,将脓液置于无菌试管内送检。 3. 注意事项 标本采集后应在常温下2小时内送检,保存≤24小时。
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尿液标本采集与运送
(三)、采集时间和标本运送
1.应选择在抗菌药物应用前或停用抗菌药物5天后采集尿液。 2.通常采集清晨第1次尿液送检,确保尿液在膀胱内停留4小时以上,使细菌有足够时间繁殖,可 以降低培养结果的假阴性率。嘱患者睡前少饮水,以免尿液稀释导致尿菌计数偏低。 3.怀疑沙门菌感染时应在发病2周左右采集尿液培养。
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血液标本采集与运送
(三)血培养标本采集和运送要求
4. 采集次数 要求:对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者,推荐同时采集2~3套(不同部位)血培养标 本。(即双瓶双臂同时采集血培养标本)。
婴幼儿患者,推荐同时采集2次(不同部位)血培养标本。
说明:在采集血培养后的2-5天内,无需重复采集血培养。只有在怀疑感染性心内膜炎或 其它血管内感染(如导管相关性感染)时,才有必要间隔多次采集血培养。 5. 运送要求 要求:(1)采集后的血培养瓶应立即送往实验室,室温放置不要超过2小时。 (2)血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏和冷冻。 说明:血培养瓶冷藏或冷冻会将一些微生物杀灭,将装着液体的容器冰冻也会使容器破裂。
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其它标本采集与运送
二、体液(穿刺液)标本采集与运送
1. 采集时间 使用抗生素前,停止用药1-2天或以后,或下次用药 前,或选择血药浓度较低时抽取。 2. 采集方法 用碘伏充分消毒皮肤,无菌操作用注射器以外科手术 方法抽取或引流体内可疑感染部位的液体(胸水、腹水、胆汁、心 包液、关节液、鞘膜液等),将取得的穿刺液以无菌操作直接注入 血培养瓶内或无菌螺旋管中送检。 3. 采集量 细菌培养≥1ml,真菌培养≥10ml,抗酸杆菌培养≥10ml。 4. 注意事项 ⑴ 标本采集后应在常温下立即送检(15分钟内),4℃下保存≤24小时。 ⑵ 尽量以标本的原始状态送检,不要用拭子送检,也不要将拭子浸入液 体标本中运送。