植物组培快繁程序ppt课件
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(4)外植体放入超净工作台内,置 70-75%酒精中5-60 秒,0.1%氯化汞610分钟,或10%的漂白粉上清液中10-15 分钟,然后用无菌水冲洗3-5次。灭菌 时需进行搅动。
18
常用灭菌药剂的使用和效果
灭菌剂
使用浓度(%) 清除的难易 消毒时间 效 果
次氯酸钠 次氯酸钙 漂白粉 氯化汞 酒精 过氧化氢 溴水 硝酸银 抗菌素
某些多年生植物或特殊材料,必须取 自自然生长的植物,就需要尽可能避免 使用那些生长过于潮湿和不洁净环境中 的植物。对于培养过程中可能出现内生 菌污染的材料,应尽量取生长旺盛期的 生长点部位作为起始培养的材料。
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2、供体植株的管理 取自室外的外植体材料,供体植株 的管理十分重要,这与外植体培养时的 污染率密切相关。植株管理中应注意: ⑴避免昆虫危害 许多昆虫如蚜虫、 螨类和飞虱是许多植物病虫害的传播媒 介,会引起植物组织的潜在感染。
料的方法。是现在最常用的方法。 (2)液体培养法
即用不加固化剂的液体培养基培养 植物材料的方法。
23
3、培养步骤
培养步骤
初代培养 继代培养 生根培养
24
(1)初代培养
目 的:获得无菌材料和无性繁殖系。
无性繁殖系:是指由一个外植体继代增殖,繁殖出 的具有相同遗传物质的植株群体。包括:芽丛、不 定芽、胚状体、原球茎等。
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9—10 2
饱和浓度 0.1—1 70—75 10—12
1—2 1
4—50mg/L
易 易 易 较难 易 最易 易 较难 中
5—30 5—30 5—30 2—10 0.2—2 5—15 2—10 5—30 30—60
很好 很好 很好 最好 好 好 很好 好 较好
3、外植体的接种
(1)材料吸干后,一手拿镊子,一手拿剪子或 解剖刀,对材料进行适当的切割。如叶片切成 0.5cm见方的小块;茎切成含有一个节的小段。 微茎尖要剥成只含l—2片幼叶的茎尖大小等。在 接种过程中要经常灼烧接种器械,防止交叉污染。
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2、表面灭菌
(1)操作人员穿戴灭过菌的工作服、 口罩。进入接种室前双手用洗涤剂清 洗干净,操作前再用70%酒精或消毒 剂擦洗双手。
(2)操作期间双手和台面常用70% 酒精或消毒剂擦拭。超净工作台使用 前必须用紫外灯照射杀菌,然后开启 风机。
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(3)接种用工具(解剖刀、剪刀、镊 子)可放入70-75%酒精中,使用时需 火焰灼烧灭菌,冷却后使用。
(2)解开包口纸,将培养瓶口几乎水平拿着, 避免灰尘落入瓶中。使瓶囗靠近酒精灯火焰,并 将瓶口在火焰上方转动,使管口里外灼烧数秒钟。
20
(3)迅速用镊子夹取切割分离下的所需组织、 细胞、器官,送入培养容器内,轻轻插入培养基。 若是叶片直接附在培养基上,以放1—3块为宜。接 完种后,将管口在火焰上再灼烧数秒钟。然后及时 盖上瓶盖或封口。
第三章 植物组培快繁程序
植物快速繁殖就 是应用组织培养技术, 快速繁殖名优特新品 物,使其在较短时间 内繁衍较多的植株。 快繁是当前植物细胞 组织培养中应用最广 泛,又最有效的方法 之一。
1
主要内容
一、供体植株的培养与取材 二、外植体的灭菌与接种 三、培养 四、驯化移栽 五、组培快繁计划安排与实施
4
自 然 环 境 生 长 植 株
5
温室控制条件下生长植株
6
已离体培养植株
7
在多数情况下,应尽量使用温室或 人工气候室控制培养的植物材料作为 外植体来源,减少培养过程中的微生 物感染概率。同时,生长在控制条件 下的植物可以保持培养材料间的一致 性,提高实验的可重复性,也便于培 养技术的规范。
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⑵注意防病 尤其是真菌和细菌病害 的侵染,取自感病植株的外植体,在 培养中的污染率远远高于来自健康植 株的外植体,必要时需使用化学药剂 防治病害。
⑶控制湿度 给供体植株浇水时应从 根部给水,避免从上部浇水,以免上 部形成易于病原侵染的湿度环境;尽 可能降低温室湿度;取材前尽可能保 持植株干爽。
培养基:诱导或分化培养基。
培养基中CTK多,IAA少。
类 型(根据发育方向):
丛生芽增殖型
器官发生型
胚状体发生型
原球茎发生型
25
外植体成苗途径
★
根、芽
外 愈伤பைடு நூலகம்织
芽根
试
植
根
芽
管
体 胚状体
苗
原球茎
根、芽
根、芽
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类型 丛生芽增殖型
器官发生型 胚状体发生型
原球茎型 球茎芽型
块茎型 鳞茎型 孢子型 根茎型
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3、材料取材
⑴材料选择 培养材料应选择有代表性的主要植 物、选择性状优良的种质或特殊的基因 型。 快速繁殖时应在植株生长的最适时 期取材,如花药培养应在花粉发育到单 核期取材。
12
13
14
⑵取材 从生长健壮的无病虫害的植株上选取
发育正常的器官和组织。最好采用茎尖 ,后代性状较稳定,携带细菌较少。
选取材料的大小一般在0.5-1.0cm之间 。胚胎培养或脱毒在0.5cm以下。材料 太大易污染,材料太小难于成活。
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二、外植体的灭菌与接种
1、预处理 先对植物材料进行修剪整理,去
掉不需要部分,将准备使用的植物材 料(外植体)在流水中冲洗20-60分 钟,备用。如特别不洁的外植体,可 先用加有洗涤剂的水清洗10-15分钟 ,再用流水冲洗干净。
注意: 所有操作均应严格保持瓶口在操作区以内,
且不远离酒精灯;工具用后应及时灭菌,避免交 叉污染;工作人员操作时禁止不必要的谈话。
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三、培养
1、培养含义
指把离体植物材料放在培养室(有光照、温度条件) 里,使之生长,分裂和分化形成愈伤组织或进一步分化 成再生植株的过程。
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2、培养方法
(1)固体培养法 即用琼脂固化培养基来培养植物材
2
一、供体植株的培养与取材
一般来说,无论何种类型的细胞组 织培养技术,起始阶段均涉及外植体取 材、灭菌与接种培养等基本过程。
外植体来源的环境以及外植体的类型 ,均会影响将来培养的效果,而灭菌、 接种和培养条件的选择与控制,也与外 植体的来源和类型有关。
3
1、外植体的来源
-生长在自然环境下的植物 -有目的地培育在温室控制条件下生长的 植物 -无菌环境下已经过离体培养的植物 自然环境中生长的植株,一般带有微生 物,甚至与某些微生物具有寄生关系,使植 株具有内生菌。取自这些植物的外植体,在 培养过程中会有微生物滋生,从而影响培养 效果。
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常用灭菌药剂的使用和效果
灭菌剂
使用浓度(%) 清除的难易 消毒时间 效 果
次氯酸钠 次氯酸钙 漂白粉 氯化汞 酒精 过氧化氢 溴水 硝酸银 抗菌素
某些多年生植物或特殊材料,必须取 自自然生长的植物,就需要尽可能避免 使用那些生长过于潮湿和不洁净环境中 的植物。对于培养过程中可能出现内生 菌污染的材料,应尽量取生长旺盛期的 生长点部位作为起始培养的材料。
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2、供体植株的管理 取自室外的外植体材料,供体植株 的管理十分重要,这与外植体培养时的 污染率密切相关。植株管理中应注意: ⑴避免昆虫危害 许多昆虫如蚜虫、 螨类和飞虱是许多植物病虫害的传播媒 介,会引起植物组织的潜在感染。
料的方法。是现在最常用的方法。 (2)液体培养法
即用不加固化剂的液体培养基培养 植物材料的方法。
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3、培养步骤
培养步骤
初代培养 继代培养 生根培养
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(1)初代培养
目 的:获得无菌材料和无性繁殖系。
无性繁殖系:是指由一个外植体继代增殖,繁殖出 的具有相同遗传物质的植株群体。包括:芽丛、不 定芽、胚状体、原球茎等。
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9—10 2
饱和浓度 0.1—1 70—75 10—12
1—2 1
4—50mg/L
易 易 易 较难 易 最易 易 较难 中
5—30 5—30 5—30 2—10 0.2—2 5—15 2—10 5—30 30—60
很好 很好 很好 最好 好 好 很好 好 较好
3、外植体的接种
(1)材料吸干后,一手拿镊子,一手拿剪子或 解剖刀,对材料进行适当的切割。如叶片切成 0.5cm见方的小块;茎切成含有一个节的小段。 微茎尖要剥成只含l—2片幼叶的茎尖大小等。在 接种过程中要经常灼烧接种器械,防止交叉污染。
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2、表面灭菌
(1)操作人员穿戴灭过菌的工作服、 口罩。进入接种室前双手用洗涤剂清 洗干净,操作前再用70%酒精或消毒 剂擦洗双手。
(2)操作期间双手和台面常用70% 酒精或消毒剂擦拭。超净工作台使用 前必须用紫外灯照射杀菌,然后开启 风机。
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(3)接种用工具(解剖刀、剪刀、镊 子)可放入70-75%酒精中,使用时需 火焰灼烧灭菌,冷却后使用。
(2)解开包口纸,将培养瓶口几乎水平拿着, 避免灰尘落入瓶中。使瓶囗靠近酒精灯火焰,并 将瓶口在火焰上方转动,使管口里外灼烧数秒钟。
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(3)迅速用镊子夹取切割分离下的所需组织、 细胞、器官,送入培养容器内,轻轻插入培养基。 若是叶片直接附在培养基上,以放1—3块为宜。接 完种后,将管口在火焰上再灼烧数秒钟。然后及时 盖上瓶盖或封口。
第三章 植物组培快繁程序
植物快速繁殖就 是应用组织培养技术, 快速繁殖名优特新品 物,使其在较短时间 内繁衍较多的植株。 快繁是当前植物细胞 组织培养中应用最广 泛,又最有效的方法 之一。
1
主要内容
一、供体植株的培养与取材 二、外植体的灭菌与接种 三、培养 四、驯化移栽 五、组培快繁计划安排与实施
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自 然 环 境 生 长 植 株
5
温室控制条件下生长植株
6
已离体培养植株
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在多数情况下,应尽量使用温室或 人工气候室控制培养的植物材料作为 外植体来源,减少培养过程中的微生 物感染概率。同时,生长在控制条件 下的植物可以保持培养材料间的一致 性,提高实验的可重复性,也便于培 养技术的规范。
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⑵注意防病 尤其是真菌和细菌病害 的侵染,取自感病植株的外植体,在 培养中的污染率远远高于来自健康植 株的外植体,必要时需使用化学药剂 防治病害。
⑶控制湿度 给供体植株浇水时应从 根部给水,避免从上部浇水,以免上 部形成易于病原侵染的湿度环境;尽 可能降低温室湿度;取材前尽可能保 持植株干爽。
培养基:诱导或分化培养基。
培养基中CTK多,IAA少。
类 型(根据发育方向):
丛生芽增殖型
器官发生型
胚状体发生型
原球茎发生型
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外植体成苗途径
★
根、芽
外 愈伤பைடு நூலகம்织
芽根
试
植
根
芽
管
体 胚状体
苗
原球茎
根、芽
根、芽
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类型 丛生芽增殖型
器官发生型 胚状体发生型
原球茎型 球茎芽型
块茎型 鳞茎型 孢子型 根茎型
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3、材料取材
⑴材料选择 培养材料应选择有代表性的主要植 物、选择性状优良的种质或特殊的基因 型。 快速繁殖时应在植株生长的最适时 期取材,如花药培养应在花粉发育到单 核期取材。
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⑵取材 从生长健壮的无病虫害的植株上选取
发育正常的器官和组织。最好采用茎尖 ,后代性状较稳定,携带细菌较少。
选取材料的大小一般在0.5-1.0cm之间 。胚胎培养或脱毒在0.5cm以下。材料 太大易污染,材料太小难于成活。
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二、外植体的灭菌与接种
1、预处理 先对植物材料进行修剪整理,去
掉不需要部分,将准备使用的植物材 料(外植体)在流水中冲洗20-60分 钟,备用。如特别不洁的外植体,可 先用加有洗涤剂的水清洗10-15分钟 ,再用流水冲洗干净。
注意: 所有操作均应严格保持瓶口在操作区以内,
且不远离酒精灯;工具用后应及时灭菌,避免交 叉污染;工作人员操作时禁止不必要的谈话。
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三、培养
1、培养含义
指把离体植物材料放在培养室(有光照、温度条件) 里,使之生长,分裂和分化形成愈伤组织或进一步分化 成再生植株的过程。
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2、培养方法
(1)固体培养法 即用琼脂固化培养基来培养植物材
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一、供体植株的培养与取材
一般来说,无论何种类型的细胞组 织培养技术,起始阶段均涉及外植体取 材、灭菌与接种培养等基本过程。
外植体来源的环境以及外植体的类型 ,均会影响将来培养的效果,而灭菌、 接种和培养条件的选择与控制,也与外 植体的来源和类型有关。
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1、外植体的来源
-生长在自然环境下的植物 -有目的地培育在温室控制条件下生长的 植物 -无菌环境下已经过离体培养的植物 自然环境中生长的植株,一般带有微生 物,甚至与某些微生物具有寄生关系,使植 株具有内生菌。取自这些植物的外植体,在 培养过程中会有微生物滋生,从而影响培养 效果。