细胞培养过程中的注意事项及试剂配制
细胞培养过程中的注意事项及试剂配制
细胞培养过程中的注意事项及试剂配制一.常用设备准备室的设备：单蒸馏水蒸馏器、双蒸馏水蒸馏器、酸缸、烤箱、高压锅、储品柜（放置未消毒物品）、储品规（放置消毒过的物品）、包装台。
配液室的设备：扭力天平和电子天平（称量药品）、PH计（测量培养用液PH值）、磁力搅拌器（配置溶液室搅拌溶液）。
培养室的设备：液氮罐、储品柜（存放杂物）、日光灯和紫外灯、空气净化器系统、低温冰箱（-80℃）、空调、二氧化碳缸瓶、边台（书写实验记录）。
必须放在无菌间的设备：离心机（收集细胞）、超净工作台、倒置显微镜、CO孵箱（孵育培养物）、2水浴锅、三氧消毒杀菌机、4℃冰箱（放置serum和培养用液）。
二.无菌操作无菌室的灭菌：1.定期打扫无菌室：每周打扫一次，先用自来水拖地、擦桌子、超净工作台等，然后用3‰来苏尔或者新洁尔灭或者0.5％过氧乙酸擦拭。
2.CO孵箱（培养箱）灭菌：先用3‰新洁尔灭擦拭，然后用75％酒精擦拭或者20.5％过氧乙酸，再用紫外灯照射3.实验前灭菌：打开紫外灯、三氧杀菌机、空气净化器系统各20-30分钟4.实验后灭菌：用75％酒精（3‰新洁尔灭）擦拭超净台、边台、倒置显微镜的载物台。
实验人员的无菌准备：1.肥皂洗手。
2.穿好隔离衣、带好隔离帽、口罩、放好拖鞋3.用75％酒精棉球擦净双手。
无菌操作的演示：1.凡是带入超净工作台内的酒精、PBS、培养基、胰蛋白酶的瓶子均要用75％酒精擦拭瓶子的外表面2.靠近酒精灯火焰操作。
3.器皿使用前必须过火灭菌4.继续使用的器皿（如瓶盖、滴管）要放在高处，使用时仍要过火。
5.各种操作要靠近酒精灯，动作要轻、准确，不能乱碰。
如吸管不能碰到废液缸。
6.吸取两种以上的使用液时要注意更换吸管，防止交叉污染。
三.器械的清洗和消毒玻璃器械洗消：(1)新的玻璃器皿的洗消：1.自来水刷洗，除去灰尘。
2.烘干、泡盐酸：烤箱中烘干，然后再浸入5％稀盐酸中12小时以除去脏物、铅、砷等物。
3.刷洗、烘干：12小时后立即用自来水冲洗，再用洗涤剂刷洗，自来水冲干净后用烤箱烘干。
培养基配制的过程和注意事项
培养基配制的过程和注意事项一、培养基配制的基本步骤1. 材料准备：首先，需要准备培养基所需的各种原料和试剂。
常用的培养基原料包括蛋白胨、葡萄糖、琼脂等。
此外，还需要准备适量的水和试剂的称量工具。
2. 称量试剂：按照配方中的比例，准确地称取所需的试剂。
在称量过程中，应注意保持实验环境的清洁，并使用洁净的称量工具，以避免试剂受到污染。
3. 溶解试剂：将称取好的试剂溶解于适量的水中。
在溶解过程中，可以通过搅拌或加热的方式促进试剂的溶解。
溶解完毕后，应检查溶液的透明度和均匀性，确保试剂充分溶解。
4. 调整pH值：根据具体的培养基配方，使用酸碱溶液调整培养基的pH值。
通过逐滴加入酸碱溶液，并经过搅拌均匀，逐步调整pH 值至所需范围。
在调整pH值的过程中，应注意避免过度调节，以免对培养细胞产生不良影响。
5. 加热消毒：将配制好的培养基加热至沸腾，保持沸腾状态持续5-10分钟，以达到消毒的目的。
在加热过程中，应注意避免溢出和烧焦，同时要保持试剂的充分混合。
6. 灭菌冷却：将消毒完毕的培养基冷却至适宜的温度，通常为45-50摄氏度。
在冷却过程中，应避免引入环境中的微生物污染，可使用无菌工作台或灭菌过滤器进行操作。
7. 分装保存：将冷却好的培养基分装到无菌培养皿或试管中，并密封保存。
在分装过程中，要注意避免试剂接触到外界空气，以防止污染。
二、培养基配制的注意事项1. 实验环境要保持清洁，操作过程要注意无菌操作，以避免试剂受到污染。
2. 在配制过程中，应准确称取试剂的质量，并按照配方中的比例进行配比，以保证培养基的质量和配方的准确性。
3. 在试剂溶解和调整pH值时，应充分搅拌均匀，确保试剂充分溶解和均匀混合。
4. 加热消毒时，应注意控制加热时间和温度，以避免试剂烧焦或溢出。
5. 冷却过程中，要避免污染和细菌的侵入，可使用无菌工作台或灭菌过滤器进行操作。
6. 培养基的分装要在无菌条件下进行，并尽快密封保存，避免试剂受到外界空气和微生物的污染。
细胞培养液配制操作规程
细胞培养液配制操作规程
试剂和器材准备：
1. 用三角瓶装1L 超纯水，放入搅拌子，盖上铝箔纸，121摄氏度高压灭菌30分钟，冷却过夜。
2. 过滤器装好滤膜后用报纸包装好，121摄氏度高压灭菌30分钟。
3. 装培养液的试剂瓶瓶口用铝箔纸包好，140摄氏度烘烤3小时。
配制过程：
1. 将盛有灭菌超纯水的三角瓶放到磁力搅拌器上，搅拌速度以液面恰能产生漩涡为宜。
2. 打开干粉培养液的包装，将干粉慢慢加入容器，边加边搅拌
3. 往包装袋内加入适量的超纯水使残留的培养液粉末溶解并倾倒入三角瓶内，如此清洗数遍
4. 添加NaHCO3。
RPMI1640添加2.0g NaHCO3，DMEM添加3.7g NaHCO3。
5.搅拌约2小时待干粉完全溶解。
6. 用1N NaOH 和1N HCl调节培养液pH在
7.1～7.2，调节好pH后盖紧容器。
7. 加入5 mL 200×的PS双抗，搅拌均匀。
8. 0.22um微孔滤膜过虑除菌，分装到试剂瓶中，盖好瓶盖密封，4摄氏度保存。
使用前添加血清，使血清含量为10％。
未加血清的培养液可在4摄氏度保存8个月，加血清后应在1个月内用完。
9. 检验。
取过滤后的培养液3～5mL，置于无菌的35mm培养皿中，放入培养箱中培养两天，检查是否有长细菌。
注：
1. 过滤完毕后应及时把过滤器和试剂瓶清洗干净。
清洗过程：自来水冲洗，蒸馏水洗3遍，超纯水洗一遍，沥干，烘干
2. 本操作规程以配制1L为例，配制量多时各组分应等比例增加。
1。
细胞培养常用试剂配制
常用试剂配制
PBS溶液配制：用电子天平准确称取NaCl 8.0 g，KCl 0.2 g，KH2P04 0.29 g，Na2HP04—12H20 1.42 g溶于800 mL的超纯水中，用磁场搅拌器搅拌至溶解后调节pH值为7.2～7.4，然后定容至1L。
置于高压灭菌锅中灭菌30min，冷却到室温后分装，于4℃冰箱冷藏备用。
DMEM／12高糖培养液：将袋装的DMEM／12粉末溶于800ml的超纯水中，同时加入3.79碳酸氢钠，66mg青霉素钠和100mg的硫酸链霉素，用磁力搅拌器充分混匀，调节pH值为7.2-7.4，然后定容至1L。
用孔径为0.229μm的滤膜过滤除菌，分装后置于4℃冰箱冷藏备用。
用于培养细胞的培养液为上述DMEM／12高糖溶液中加入10％-20％(体积比)的胎牛血清。
0.25％胰蛋白酶一0.02％EDTA消化液：准确称取0.25g的Trypsin和0.02g的EDTA，用PBS在容量瓶中定容至100ml，调节pH值为7.2-7.4，用孔径为0.22μm的滤膜过滤除菌，用2mL的离心管分装，冻存于-20℃冰箱备用。
双抗：80mL的超纯水中加入80万u的青霉素钠和100万u的硫酸链霉素，0．22μm的滤膜过滤除菌后，用2mL的离心管分装，冻存于-20℃冰箱备用。
二甲亚砜(dimethylsulfoxide，DMSO)冻存液：将DMSO、FBS和DMEM／12按1：3：6的比例混匀，现配现用。
细胞培养注意事项
（3）一次将所有的所需要试剂、工具放入工作台。不要做到半路，又出工作间拿东西，这样增加了污染的机会。
（4）整个操作要快、动作要轻、而且不要干其他的事情。比如手机响了，最好不要接。我一般操作的时候将手机关了，手机声音响起，好烦躁。
细胞培养注意事项
1. 实验进行前，无菌室及无菌操作台(laminar flow) 以紫外灯照射30-60 分钟灭菌，以70 %ethanol 擦拭无菌操作抬面，并开启无菌操作台风扇运转10 分钟后，才开始实验操作。每次操作只处理一株细胞株，且即使培养基相同亦不共享培养基，以避免失误混淆或细胞间污染。实验完毕后，将实验物品带出工作台，以70 % ethanol 擦拭无菌操作抬面。操作间隔应让无菌操作台运转10 分钟以上后，再进行下一个细胞株之操作。2. 无菌操作工作区域应保持清洁及宽敞，必要物品，例如试管架、吸管吸取器或吸管盒等可以暂时放置，其它实验用品用完即应移出，以利于气流之流通。实验用品以70 % ethanol 擦拭后才带入无菌操作台内。实验操作应在抬面之中央无菌区域，勿在边缘之非无菌区域操作。3. 小心取用无菌之实验物品，避免造成污染。勿碰触吸管尖头部或是容器瓶口，亦不要在打开之容器正上方操作实验。容器打开后，以手夹住瓶盖并握住瓶身，倾斜约45° 角取用，尽量勿将瓶盖盖口朝上放置桌面。4. 工作人员应注意自身之安全，须穿戴实验衣及手套后才进行实验。对于来自人类或是病毒感染之细胞株应特别小心操作，并选择适当等级之无菌操作台(至少Class II)。操作过程中，应避免引起aerosol 之产生，小心****，例如DMSO 及TPA 等，并避免尖锐针头之伤害等。5. 定期检测下列项目：5.1. CO2 钢瓶之CO2 压力5.2. CO2 培养箱之CO2 浓度、温度、及水盘是否有污染(水盘的水用无菌水，每周更换)。5.3. 无菌操作台内之airflow 压力，定期更换紫外线灯管及HEPA 过滤膜，预滤网(300小时/预滤网，3000 小时/HEPA)。6. 水槽可添加消毒剂(Zephrin 1:750)，定期更换水槽的水
培养细胞的注意事项是什么
培养细胞的注意事项是什么培养细胞是一项非常重要的技术，在生物学、医学研究以及生物制药等领域起着至关重要的作用。
合理、有效地培养细胞不仅可以促进细胞生长和增殖，还可以帮助我们更好地了解细胞的性质和功能。
在进行细胞培养时，有一些注意事项需要我们遵循，以确保实验结果的准确性和可靠性。
以下是一些培养细胞的注意事项：1. 无菌操作：细胞培养必须在无菌条件下进行，以避免外源菌的污染对培养过程和结果的干扰。
在实验室中，使用无菌环境下的工作台、培养皿和培养液，戴手套，进行灭菌操作等步骤是非常重要的。
2. 细胞的起始材料：细胞培养的起始材料可以是原代细胞或细胞株。
在选择细胞时，要确保其来源可靠，并且具有所需的性质和特征。
细胞株的鉴定也是非常重要的，可以通过遗传学和生物学方法来确认细胞的特异性。
3. 培养基的选择：培养基的选择应根据细胞类型和要求的特定性质而定。
培养基中应包含必需营养物质和生长因子，以支持细胞的正常生长和增殖。
一般来说，培养基应含有适量的能量源如葡萄糖，并且要经过平衡和调整，在pH、渗透压和离子浓度等方面符合细胞生长的要求。
4. 细胞的传代：细胞培养过程中，细胞的传代是必不可少的。
细胞传代过程中，要注意细胞密度的控制，以避免细胞过度密集导致的营养物质和氧气不足，或者产生细胞毒性的代谢产物。
同时，要保证细胞传代后的纯度和稳定性。
5. 操作技术：进行细胞培养时，需要掌握一系列的操作技术。
包括细胞的各类传代方法、细胞分离和冻存技术、细胞培养皿的接种和交换、培养液的更换和添加等。
操作技术的正确与否，直接影响到细胞的生存和繁殖。
6. 培养条件的控制：细胞的培养过程中，温度、湿度、CO2浓度等环境因素对细胞的生存和生长有着重要的影响。
通常情况下，细胞培养室内的温度应该保持在37左右，湿度应维持在90%以上，CO2浓度视培养细胞类型而变化，一般在5%到10%之间。
7. 污染的预防和处理：细胞培养中的污染对实验结果有很大的影响。
细胞培养过程中的注意事项及试剂配制
细胞培养过程中的注意事项及试剂配制细胞培养过程中的注意事项及试剂配制一.常用设备准备室的设备：单蒸馏水蒸馏器、双蒸馏水蒸馏器、酸缸、烤箱、高压锅、储品柜（放置未消毒物品）、储品规（放置消毒过的物品）、包装台。
配液室的设备：扭力天平和电子天平（称量药品）、PH计（测量培养用液PH值）、磁力搅拌器（配置溶液室搅拌溶液）。
培养室的设备：液氮罐、储品柜（存放杂物）、日光灯和紫外灯、空气净化器系统、低温冰箱（-80℃）、空调、二氧化碳缸瓶、边台（书写实验记录）。
必须放在无菌间的设备：离心机（收集细胞）、超净工作台、倒置显微镜、CO2孵箱（孵育培养物）、水浴锅、三氧消毒杀菌机、4℃冰箱（放置serum和培养用液）。
二.无菌操作无菌室的灭菌：1.定期打扫无菌室：每周打扫一次，先用自来水拖地、擦桌子、超净工作台等，然后用3‰来苏尔或者新洁尔灭或者0.5％过氧乙酸擦拭。
2.CO2孵箱（培养箱）灭菌：先用3‰新洁尔灭擦拭，然后用75％酒精擦拭或者0.5％过氧乙酸，再用紫外灯照射3.实验前灭菌：打开紫外灯、三氧杀菌机、空气净化器系统各20-30分钟4.实验后灭菌：用75％酒精（3‰新洁尔灭）擦拭超净台、边台、倒置显微镜的载物台。
实验人员的无菌准备：1.肥皂洗手。
2.穿好隔离衣、带好隔离帽、口罩、放好拖鞋3.用75％酒精棉球擦净双手。
无菌操作的演示：1.凡是带入超净工作台内的酒精、PBS、培养基、胰蛋白酶的瓶子均要用75％酒精擦拭瓶子的外表面2.靠近酒精灯火焰操作。
3.器皿使用前必须过火灭菌4.继续使用的器皿（如瓶盖、滴管）要放在高处，使用时仍要过火。
5.各种操作要靠近酒精灯，动作要轻、准确，不能乱碰。
如吸管不能碰到废液缸。
6.吸取两种以上的使用液时要注意更换吸管，防止交叉污染。
三.器械的清洗和消毒玻璃器械洗消：(1)新的玻璃器皿的洗消：1.自来水刷洗，除去灰尘。
2.烘干、泡盐酸：烤箱中烘干，然后再浸入5％稀盐酸中12小时以除去脏物、铅、砷等物。
细胞培养的注意事项
相关疾病:每天对待细胞比孝敬爹妈还用心,那真就是捧在手里怕碎了,含在嘴里怕化了,瞧在眼里怕丢1、严格了,培养细胞时有哪些惨痛经验教训可以分享呢?ﻫﻫ早走早脱身,从此专注黑生物ﻫﻫ无菌操作,多喷喷酒精,要就是对灭菌的东西不放心,自己包自己送自己烘干。
2. 不要与别人共用试剂耗材,自己准备一套。
ﻫ３、有可能的话在拿到新细胞的时候做好支原体衣原体检测。
4、水浴锅很脏,生化培养箱要就是得手动加湿的话盘里的水也会很脏,勤换(灭菌水加进去)。
５、晚上离开的时候最好给细胞房照紫外,超净台就是用完就开。
ﻫ６、最好的就是同一时间就您一个人在用细胞房在养细胞。
非科班出身经验分享ﻫ 1. 别怕浪费。
枪头什么的只要有可能污染就换,如果用酒精灯就什么都稍微烤一下,别直接放到火上,离一段距离。
ﻫﻫ2、动作要既轻柔又有力。
动作太重会有一堆一堆的气泡,动作太轻就吹不下来、、.刚开始的时候吹细胞太痛苦了,稍微一下就起泡。
后来就就是吹的时候枪里的培养基不要一次全都压出来,留一点,枪的最头部尽量深的在液面以下。
3、离开过操作台的东西再进操作台之前一定要用酒精喷一遍,包括一切实验耗材、仪器、以及您带着手套的手。
ﻫ4、实验结束后对实验台的消毒。
紫外什么的,用前用后都照个30分钟。
ﻫ５、身体的各个部分尽量的少接触不需要接触的地方的地方。
比如实验台,又比如培养箱内部。
ﻫﻫ 6. 细胞的密度根据细胞的性质、传代的时间以及自己的心情来定。
培养基的话最多最多不要超过2 天就要换一次。
细胞可以不传代,但就是培养基就是一定要换的。
大概就就是,不该碰的地方不碰,有影响的地方少碰;该使劲的时候绝对不含糊,不该使劲的地方一定忍住。
如果就是比较简陋的操作台就一定要摆个酒精灯,所有操作紧密围绕在酒精灯周围进行。
如果就是高级台子就多用酒精喷喷。
感觉生物的实验,心疼钱就还就是不要做了。
最后一点点绝对非科班的经验。
癌细胞真就是坚挺。
有一次实在就是不想传了,放了５天吧,感觉都长了几层出来,培养基都黄了。
细胞培养操作及其注意事项
六、操作完处理
• 1.试剂瓶瓶口喷酒精，用封口膜封住后，拿回冰箱应该放置的位置。 • 2. 清理工作台面，并用酒精消毒。下拉门，开紫外照射一般30分钟。 • 3. 垃圾袋封口，拿出高压蒸气灭菌（如果有感染试剂）。 • 4. 关掉37℃水浴箱的电源，细胞培养箱CO2浓度恢复至5%后，关掉
次解冻。10%浓度配制冻存液。 • 3. 由于DMSO稀释时会放出大量热量，故不可将DMSO直接加入细胞液中，
必须使用前先行配制完成。 • 4. adherent tumor lines: 5-7 x 106，依细胞种类而异。Adenocarcinoma 解
冻后须较高之浓度，而HeLa 只需1-3 x 106 cells/ml。other suspensions: 510 x 106 cells/ml, human lymphocyte 须至少5 x 106cells/ml。 • 5. 回收动物细胞，其离心速率一般为300×g(约1,000rpm），过高的转速， 将照成细胞死亡。
• 3. 无菌操作工作区域应保持清洁及宽敞，必要物品，例如移液器和枪头盒等可以暂时 放置，其它实验用品用完即应移出，以利于气流之流通。实验用品以酒精擦拭后才带 入无菌操作台内。实验操作应在台面之中央无菌区域，勿在边缘之非无菌区域操作。
• 4. 操作人员应注意自身的安全，须穿戴实验衣及手套Байду номын сангаас才进行实验。用酒精擦拭手套 后才可进行操作。
• 5. 实验服应该定期灭菌和更换。进出细胞间时，不要同时打开相邻两个房间的门。
二、贴壁细胞的换液及传代
• 1. 换液 • 当培养基中有较多漂浮的死细胞或者培养基颜色变黄，而细胞密度未
细胞培养操作步骤及注意事项
细胞培养操作步骤及注意事项细胞培养操作步骤1. 准备培养基和培养器具：选择适合细胞生长的培养基，如DMEM（Dulbecco's Modified Eagle Medium），RPMI 1640（Roswell Park Memorial Institute 1640）等。
准备培养器具，如细胞培养瓶、组织培养皿、离心管等。
2. 培养器具的消毒：将培养器具放入70%的乙醇或漂白水中浸泡约15-30分钟，然后用无菌PBS（磷酸盐缓冲液）清洗3次。
将培养器具在100摄氏度的烘箱中高温烘干或使用紫外线灯照射15-30分钟。
3. 细胞传代：将细胞从旧的培养瓶中移至新的培养瓶中，以防止细胞过度增殖和细胞衰老。
首先将培养瓶中的培养基抽吸掉，然后用PBS洗涤细胞2次，最后加入适量的胰酶消化细胞，使其与培养基充分接触，放置一段时间，观察细胞的离培情况，离心沉积细胞，弃去上清液，加入新的培养基。
4. 细胞培养条件控制：维持培养环境的适宜条件，包括温度、湿度、CO2浓度和培养基的pH值等。
通常细胞在37摄氏度、5%的CO2和95%湿度下生长。
定期检查培养器的培养基水平，保持培养基的适当量。
5. 细胞观察和记录：使用显微镜观察细胞的形态和数量，记录细胞培养的过程和实验结果。
注意控制细胞的密度，防止过度密集或过度稀疏。
6. 细胞分化和实验处理：根据需要，可以进行细胞的分化处理或实验处理，如加入药物、生化试剂等。
在处理时要注意药物的浓度、处理时间和处理温度等。
7. 细胞冻存：当需要长期保留细胞时，可以进行细胞冻存。
将细胞与冻存液混合，分装入冻存管中，置于液氮中冻存，以备将来使用。
细胞培养注意事项- 细胞培养实验应在无菌条件下进行，避免污染。
- 培养器具应事先消毒处理，防止细菌、真菌和病毒的污染。
- 培养基的配制要准确无误，严格按照操作手册或厂家提供的方法进行。
- 培养过程中要保持培养器的密闭性，以确保适宜的气体交换和温度控制。
MTT配制原理操作步骤结果分析注意事项
MTT配制原理操作步骤结果分析注意事项MTT（3-(4,5-二苯基-2-噻唑基)-2,5-二苯基-2H-四唑）是一种常用的细胞增殖试验试剂，用于评估化合物对细胞生长和代谢的影响。
本文将详细介绍MTT配制、原理、操作步骤、结果分析以及注意事项。
一、MTT配制MTT的化学名称为3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide，是一种黄色的晶体粉末。
配制MTT试剂的步骤如下：1.称取适量的MTT粉末，并通过过滤器将其溶解于生理盐水或无菌培养基中。
溶液应均匀搅拌，直至溶解完全。
2.过滤清洁，并将溶液分装至无菌试管中。
可以根据实验需要制备不同浓度的MTT溶液。
3.将试管密封，并在4°C保存。
二、MTT原理MTT试验是通过测定细胞内线粒体的还原能力来评估细胞代谢和活力。
MTT溶液可以被细胞内的还原酶（如线粒体呼吸链酶）还原为紫色的形式中间产物，称为甲基紫（formazan）。
甲基紫是水不溶性的，需要使用溶解剂（如二甲基亚砜）将其溶解后，通过分光光度计测量吸光度来反映细胞数量和代谢活力。
三、MTT操作步骤MTT实验的主要操作步骤如下：1.细胞培养：将需要进行实验的细胞培养至对数生长期，保证细胞状态良好。
2.细胞处理：将细胞按照需要的实验条件进行处理，例如不同浓度的化合物处理、不同时间的处理等。
3. MTT加入：将细胞处理完后，向培养基中加入适量的MTT溶液，使其终浓度为0.5mg/mL。
将培养皿放入细胞培养箱，继续培养一段时间（一般为3-4小时）。
4.MTT溶解：MTT溶液和培养基混合后形成甲基紫，需要加入适量的溶解剂（如二甲基亚砜）进行溶解，使甲基紫完全溶解。
5. 吸光度测定：使用分光光度计在570nm波长下测量甲基紫的吸光度。
吸光度值越高，表示细胞生长和代谢活力越强。
四、MTT结果分析MTT实验的结果分析主要根据细胞的吸光度值来评估细胞的代谢和增殖能力。
细胞培养注意事项
细胞培养注意事项（from Internet）1）无菌操作：a.实验进行前，无菌操作台一紫外灯照射30～60min灭菌，以70%酒精擦拭无菌操作台面，实验完毕后，将实验物品带出工作台，以70%酒精擦拭无菌操作台面。
b.实验用品以70%酒精擦拭后才带入无菌操作台内，实验操作应在台面中央无菌区域，勿在边缘非无菌区域操作。
各种操作动作要轻、准确，不能乱碰。
吸取两种以上的使用液时，要注意更换吸管。
c.小心去用无菌实验物品，避免造成污染。
勿碰触吸管尖头部或是容器瓶口，亦不要在打开容器正上方操作实验。
容器打开后，以手夹住瓶身并握住瓶身，倾斜45O角取用，将瓶盖改口朝上放置桌面。
d.操作过程当中，应小心毒性物品，例如DMSO等，避免尖锐针头伤害等。
e.定期检测CO2钢瓶的压力，培养箱的CO2浓度、温度、水盘收否有污染（本实验室使用的为蓝盖瓶装无菌水，应每周更换。
f.定期打扫细胞房：每周打扫一次，先用自来水拖地、擦桌子，然后用3‰新洁尔灭or0.5%过氧乙酸擦拭g.CO2培养箱灭菌：先用3‰新洁尔灭擦拭，然后用75%酒精擦拭or0.5%过氧乙酸，可以的话再用紫外灯照射2）实验用品（均为无菌）a.培养基&胰酶细胞培养基通常需添加10%血清，1%双抗（penicillin/streptomycin，P/S）。
血清中若出现凝絮物，普遍原因是血清中的脂蛋白变性及解冻后，血清中存在血纤维蛋白造成，这些凝絮沉淀物不会影响血清本身的品质。
一旦您在新鲜培养基中添加了血清和抗生素时，您应该在两到三周内使用它。
因为一些抗生素和血清中的基本成分在解冻后就开始降解。
在溶解的一周内使用贮存在4℃冰箱中的液体胰蛋白酶溶液。
胰蛋白酶在4℃就可能开始降解，如果在室温下放置超过30分钟，就会变得不稳定。
培养基使用前应从冰箱中取出预热。
b.（使用过的玻璃器皿要先泡入来苏尔/洗涤剂溶液中，刷洗干净，用清水洗净，水分稍凉干后再泡酸液）玻璃瓶用酸液浸泡12h后，用自来水冲洗15+次，最后用双蒸水过3+次，先烘干，再用，铝箔纸包覆瓶盖，高温高压蒸汽灭菌，放在烘箱中烘干，使用之前，在超净台上用紫外照射30min后，可使用。
医学实验中细胞培养的基本操作教程
医学实验中细胞培养的基本操作教程细胞培养是医学实验中常用的技术手段，可以通过培养细胞体外研究细胞结构、功能、代谢以及疾病的发病机制。
本文将介绍医学实验中细胞培养的基本操作教程，包括无菌操作、细胞传代和细胞培养基的制备。
一、无菌操作1. 器具准备：将工作区域和培养器具用70%乙醇喷雾消毒，将所需器具放入无菌工作台，待干燥后再进行后续操作。
2. 细胞培养基准备：将所需的细胞培养基放入无菌环境中，根据实验需求添加适量的血清、抗生素等。
3. 细胞取样：取出培养物中所需的细胞，使用吸管或移液器将细胞转移到无菌的培养基中。
4. 细胞传播：将细胞和培养基混合均匀后，转移到培养皿或培养瓶中，注意避免皿壁的污染。
5. 无菌操作结束：将使用过的培养器具进行无菌处理，清理工作区域并进行必要的消毒。
二、细胞传代1. 始代细胞收获：当细胞在培养器中达到一定密度后，使用细胞解离液将细胞从底物上解离下来。
2. 离心：将解离的细胞转移到离心管中，以适当的转速离心沉淀细胞。
3. 上清液去除：倒掉离心管中上清液，注意尽量不要干扰到细胞沉淀。
4. 细胞悬浮液制备：使用无菌PBS洗涤离心沉淀的细胞，再添加适量的细胞培养基将其悬浮均匀。
5. 细胞传代操作：将悬浮细胞转移到新的培养器具中，注意避免气泡的产生，并将培养基置于CO2孵化箱中培养。
三、细胞培养基的制备1. 培养基组成：根据实验需求，制备含有特定成分的培养基，如DMEM、RPMI 1640等。
2. 液体消毒：将容器进行高温高压灭菌，确保培养基的无菌。
3. 配方调整：按照实验需求向培养基中添加适量的血清、抗生素、谷氨酸等。
4. 混合均匀：使用无菌器具将添加好成分的培养基搅拌均匀，确保各成分充分溶解。
5. 培养基保存：将制备好的培养基用无菌器具装入培养瓶中，标明日期和成分，存放于4℃的冰箱中，避免阳光直射。
以上就是医学实验中细胞培养的基本操作教程，从无菌操作、细胞传代到培养基的制备，这些基本技术对于医学实验中的细胞研究至关重要。
细胞培养PBS配方
细胞培养PBS配方
所需试剂和设备:
-NaCl(氯化钠)
-KCl(氯化钾)
-Na2HPO4(磷酸氢二钠)
-KH2PO4(磷酸二氢钾)
-无菌水
-电子天平
-烧杯和量筒
-反应管和磨研器
步骤:
1.称取所需试剂。
根据下述配方，称取正确比例的NaCl、KCl、
Na2HPO4和KH2PO4、确保所有试剂都是无菌的，并在称取时保持清洁卫生。
2.备制1L的PBS溶液。
将称取的试剂添加到烧杯中，并用无菌水稀
释至1L。
3.搅拌混合。
使用一个电子磨研器或类似的设备，将溶液进行彻底的
混合以确保所有试剂充分溶解。
尽可能避免气泡的形成。
4.pH调节。
使用pH计来测定溶液的pH值。
根据需要，使用NaOH或HCl溶液调节pH值。
PBS的理想pH值为7.4左右。
5.灭菌。
将溶液装入无菌试管中，并将其密封。
以121°C的温度下，在高压蒸汽灭菌器中处理溶液。
处理时间为15-20分钟。
注意事项:
-在制备PBS时务必保持实验室的环境无菌，因为这种溶液广泛应用
于细菌和真菌的生长培养中。
-要使用新鲜的试剂来制备PBS，以避免试剂的老化和变质。
-处理溶液时要小心，避免对溶液的污染。
使用无菌操作来减少污染
的风险。
-在制备PBS溶液之前，请先确保相关设备（如烧杯、磨研器等）已
经过彻底清洁和消毒处理。
细胞培养-Protocol
细胞培养是一项常用的生物技术，其原理是基于细胞在适当的培养条件下能够维持存活和增殖的能力。
通过细胞培养，可以获得大量的细胞样本，用于研究、药物筛选、疾病治疗等应用。
以下是细胞培养的原理、所需试剂和耗材、实验仪器、准备工作、实验方法、注意事项、常见问题及解决方法。
一、原理细胞培养的基本原理是模拟细胞在生物体内的生长环境，提供细胞生存和增殖所需的基本条件。
这些条件包括适当的温度、湿度、营养物质（如氨基酸、葡萄糖、脂肪酸等）和气体环境（如氧气、二氧化碳等）。
通过提供这些适宜的条件，细胞可以在体外环境中维持生存和增殖。
细胞培养中涉及的关键生物学过程包括细胞的贴壁、增殖和传代。
细胞的贴壁是指细胞在培养瓶内附着于瓶壁上的过程，这通常发生在细胞悬液加入培养液之后。
细胞贴壁后，会开始进行有丝分裂，进行增殖生长。
当细胞数量增加到一定程度时，需要将培养瓶中的细胞传代到新的培养瓶中，以维持细胞的适宜生长密度。
二、所需试剂和耗材细胞培养所需的主要试剂和耗材包括：1.培养基：为细胞提供基本的营养物质，如胎牛血清、氨基酸、葡萄糖等。
2.添加剂：包括抗生素、抗真菌药物等，用于防止培养过程中的污染。
3.培养瓶：用于细胞的培养，有不同的规格和形状。
4.移液器：用于吸取和转移细胞悬液和培养液。
5.离心管：用于离心收集细胞。
6.过滤器：用于过滤培养液中的杂质和颗粒。
7.DEPC水：用于制备无RNA酶的水。
8.无菌操作台：用于进行无菌操作，防止污染。
三、实验仪器细胞培养常用的实验仪器包括：1.细胞计数器：用于细胞计数和细胞密度测量。
2.显微镜：观察细胞的生长情况和形态变化。
3.CO2培养箱：为细胞提供适宜的生长温度和气体环境。
4.高压灭菌器：用于消毒处理实验器材和试剂。
5.超净工作台：用于进行无菌操作。
6.分光光度计：用于测量细胞生长的生化指标，如蛋白质含量等。
四、准备工作在进行细胞培养前，需要进行以下准备工作：1.选择适当的细胞：根据实验需求选择适合的细胞，了解其特性、来源和培养条件。
细胞培养注意事项(入门级)
细胞培养注意事项（入门级）总的原则：无菌操作、保证细胞培养环境的稳定性按时间顺序整理1、细胞房和生物安全柜（或超净工作台）先开紫外照射30min。
作用：对环境灭菌（空气）。
（备注：如果着急，至少也要开15分钟）在做实验之前考虑好需要哪些物品。
开始照射之前，将所需要用到的物品都放到生物安全柜（或超净工作台）里面。
常用移液枪或电动移液器等，需要在工作台上放置一套专用设备。
细胞培养箱一般都已经调整好。
定期留意一下二氧化碳是否足够。
不够及时更换。
2、显微镜需要定期消毒酒精擦拭。
注意：显微镜一般都放在细胞房。
3、进入实验之前，首先给自己带上拖鞋、头套，口罩，实验服，手套（手套带双层）。
注意：手套要将袖口套进去。
实验服、拖鞋最好是细胞房专用。
4、开始操作之前先观察细胞。
首先观察细胞培养液的颜色。
现在的细胞培养液通常都放有酸碱指示剂（绝大部分是酚红）。
细胞在培养生长过程中，不断在培养液上清中累积酸性物质，时间长了，培养液变为黄色（同时培养液中营养物质耗尽）。
其次镜下观察细胞的生长状态是否良好，是否需要传代。
如果生长状态不好，需要对培养液进行调整（一般是加大血清浓度）。
过于密集出现大片融合或太密集而导致细胞脱落，则进行传代。
如果长势良好，且细胞培养液颜色未发生变化，可以酌情进行1/2、1/3、1/4换液，也可以全换液。
总之，视细胞生长情况而定。
5、细胞培养预准备：首先是准备各种溶液。
第一是配制溶液过程中要用到的水。
水用纯水，高压灭菌之后，再去内毒素。
去内毒素方法很多，最简单可以放在烘箱180度3小时。
或者过去内毒素的柱子后，高压灭菌。
第二，各种溶液灭菌：抗生素用去内毒素水配制后，直接过滤除菌（过0.22u滤头）。
可以用一次性无菌注射器过一次性0.22u滤头。
现在用的培养液，如果是商业化液体培养基，不用处理。
如果是粉末，需要用去内毒素水在生物安全柜（或超净工作台）进行配制，再过滤除菌。
可以先配浓缩液（如10×），过滤除菌后。
简述配制培养基的基本步骤及注意事项
简述配制培养基的基本步骤及注意事项配制培养基是在实验室中进行细胞培养和微生物培养的重要步骤。
正确的配制培养基对于细胞和微生物的生长和繁殖至关重要。
下面将简述配制培养基的基本步骤及注意事项。
一、准备培养基所需的原料和试剂配制培养基所需的原料和试剂包括蛋白胨、酵母提取物、葡萄糖、盐酸、硝酸钠等。
在备用的容器中准备好这些原料和试剂，确保其纯度和质量。
二、称量原料和试剂按照所需的培养基配方，准确称量所需的原料和试剂。
注意要使用准确的称量工具，并遵循准确的称量方法，以确保配制的培养基的准确性和一致性。
三、溶解原料和试剂将称量好的原料和试剂逐一加入适量的蒸馏水中，并充分搅拌溶解。
溶解过程中要注意控制溶解温度和时间，避免结晶或沉淀的产生。
四、调节pH值根据培养基配方的要求，使用盐酸或硝酸钠等酸碱溶液逐渐调节培养基的pH值。
调节过程中要注意使用准确的pH计，并逐渐添加酸碱溶液，以避免pH值过大或过小。
五、加入其他添加物根据具体需要，可以添加抗生素、染料或其他添加物来增强培养基的特定功能。
添加时要注意添加的量不能过多，以避免对细胞或微生物的生长产生不良影响。
六、灭菌配制好的培养基需要进行灭菌处理，以杀死其中可能存在的细菌、真菌或其他微生物。
常用的灭菌方法有高温高压灭菌和过滤灭菌。
要选择适合的灭菌方法，并严格按照操作规程进行灭菌处理。
七、保存和使用灭菌后的培养基应尽快冷却并储存在无菌条件下。
使用时要注意避免污染，使用无菌的培养皿或试管，并采取无菌操作，以确保培养基的纯净度。
在配制培养基的过程中，我们需要注意以下几点：1. 严格按照培养基配方的要求进行操作，避免原料和试剂的误用或误量。
2. 使用纯净的蒸馏水和高质量的原料和试剂，以确保培养基的质量和纯度。
3. 在配制过程中要注意溶解的充分和均匀，避免结晶或沉淀的产生。
4. 调节pH值时要小心操作，逐渐添加酸碱溶液，以避免pH值的剧烈变化。
5. 添加其他添加物时要谨慎，避免添加过多或添加不当。
细胞培养实验的技巧与注意事项
细胞培养实验的技巧与注意事项细胞培养实验是生物学和医学研究中常用的一种实验方法，用于研究细胞的生长、分化和功能等。
良好的细胞培养实验技巧和适当的注意事项对于实验结果的准确性和可重复性至关重要。
本文将介绍一些常用的细胞培养实验技巧和注意事项。
1. 无菌操作在进行细胞培养实验前，必须确保操作环境和实验材料的无菌。
操作前需使用酒精和紫外灯对操作台面、培养器皿和工具进行消毒。
在实验室中穿戴无菌手套，注意不要触碰任何非无菌物品，以防止细菌、真菌等的污染。
操作时要注意使用一次性材料和无菌技术，尽量减少细菌和真菌的感染。
2. 细胞培养基和培养条件的选择选择适合细胞类型的培养基非常重要。
常见的培养基包括DMEM、RPMI 1640等。
培养基中常添加血清、生长因子和抗生素等物质来提供细胞所需的营养物质和生长环境。
同时，温度、湿度和二氧化碳浓度等也是细胞培养条件的重要因素。
通常情况下，细胞培养温度为37摄氏度，湿度保持在95%以上，CO2浓度维持在5-10%左右。
3. 细胞传代的技巧细胞在培养中会不断增殖，超过一定密度后就需要传代。
细胞传代的技巧非常重要，可以避免细胞的老化和突变。
传代前需用无菌PBS缓冲液冲洗细胞，用胰酶或胰酶-EDTA溶液将细胞从培养器皿中脱落。
注意在传代过程中避免剪伤细胞群，以防止细胞群内的DNA、RNA和蛋白质的损失。
传代后，新的细胞培养基和培养条件应与原来一致，以保持细胞的正常生长和功能。
4. 细胞冻存与解冻技巧细胞冻存是为了长期保存和共享细胞系，同时也是培养细胞的一种常用方法。
在细胞冻存前，需要选择适合的冻存液，一般为含10%-20%细胞培养基和10%-20% DMSO的液体。
将细胞和冻存液混合后，采用慢速冷冻的方法冷冻细胞。
解冻时，需要快速将细胞转移到预先加热的培养基中，尽量避免细胞因冻存和解冻过程中的应激而死亡。
5. 细胞实验中的质控与记录在进行细胞培养实验过程中，质量控制和详细的记录非常重要。
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20ug/ml内皮生长因子，
注意事项：
1.配制溶液时必须用新鲜的蒸馏水。
2.安装蔡式滤器时通常使用孔径0.45微米和0.22微米滤膜各一张，放置位置为0.45的位于0.22微米的滤膜上方，并且要特别注意滤膜光面朝上。
4.实验后灭菌：用75％酒精（3‰新洁尔灭）擦拭超净台、边台、倒置显微镜的载物台。
实验人员的无菌准备：
1.肥皂洗手。
2.穿好隔离衣、带好隔离帽、口罩、放好拖鞋
3.用75％酒精棉球擦净双手。
无菌操作的演示：
1.凡是带入超净工作台内的酒精、PBS、培养基、胰蛋白酶的瓶子均要用75％酒精擦拭瓶子的外表面
2.靠近酒精灯火焰操作。
5.烘干、包装：洗干净后先烘干，然后用牛皮纸（油光纸）包装。
6.高压消毒：包装好的器皿装入高压锅内盖好盖子，打开开关和安全阀，当蒸气成直线上升时，关闭安全阀，当指针指向15磅时，维持20-30分钟。
7.高压消毒后烘干
(2)旧的玻璃器皿的洗消：
1．刷洗、烘干：使用过的玻璃器皿可直接泡入来苏尔液或洗涤剂溶液中，泡过来苏尔溶液（洗涤剂）的器皿要用清水刷洗干净，然后烘干。
一般培养液中谷氨酰胺的含量为1～4mmol/L。可以配制200mmol/L谷氨酰胺液贮存，用时加入培养液。配制方法为，谷氨酰胺2.922g溶于三蒸水加至100ml即配成200mmol/L的溶液，充分搅拌溶解后，过滤除菌，分装小瓶，-20℃保存，使用时可向100ml培养液中加入1ml谷氨酰胺溶液。
(9).肝素溶液的配制：
0.1％Ⅰ型胶原酶溶液同胰蛋白酶一样配制和消毒灭菌。注意：因为Ⅰ型胶原酶分子颗粒比胰酶大，不容易过滤，因此可以用蔡式滤器过滤除菌。分装入10ml小瓶-20℃保存。
(11).明胶溶液：
因为明胶难于过滤，所以配制0.1％明胶溶液必须用无菌的PBS配制。所以制备过程中必须要注意无菌操作。首要的问题是如何无菌准确称量0.1克（配成100ml溶液）—即解决无菌分装药品的问题。其次要注意即使是01.的溶液，明胶也难溶，因此要充分摇匀，过夜放置，然后无菌分装入50ml小瓶中，4℃保存。
3.器皿使用前必须过火灭菌
4.继续使用的器皿（如瓶盖、滴管）要放在高处，使用时仍要过火。
5.各种操作要靠近酒精灯，动作要轻、准确，不能乱碰。如吸管不能碰到废液缸。
6.吸取两种以上的使用液时要注意更换吸管，防止交叉污染。
三.器械的清洗和消毒
玻璃器械洗消：
(1)新的玻璃器皿的洗消：
1.自来水刷洗，除去灰尘。
2.安装蔡式滤器：安装时先装好支架，按规定放好滤膜，用螺丝将不锈钢滤器和支架连接好。然后卸下支架腿分别用布包好待消毒。
3.抽滤：配制好的培养液通常用滤器过滤除菌。通常用蔡式滤器在超净工作台内过滤。
4.分装：将过滤好的培养液分装入小瓶内置于4℃冰箱内待用。
5.使用前要向100ml培养液中加入1ml谷氨酰胺溶液（4℃时两周有效）。
(8)谷氨酰胺：
合成培养基中都含有较大量的谷氨酰胺，其作用非常重要，细胞需要谷氨酰胺合成核酸和蛋白质，谷氨酰胺缺乏要导致细胞生长不良甚至死亡。在配制各种培养液中都应该补加一定量的谷氨酰胺。由于谷氨酰胺在溶液中很不稳定，4℃下放置1周可分解50％，故应单独配制，置于-20℃冰箱中保存，用前加入培养液。加有谷氨酰胺的培养液在4℃冰箱中储存2周以上时，应重新加入原来的谷氨酰胺。
2.烘干、泡盐酸：烤箱中烘干，然后再浸入5％稀盐酸中12小时以除去脏物、铅、砷等物。
3.刷洗、烘干：12小时后立即用自来水冲洗，再用洗涤剂刷洗，自来水冲干净后用烤箱烘干。
4.泡酸、清洗：用清洁液（重铬酸钾120g：浓硫酸200ml：蒸馏水1000ml）浸泡12小时，然后从酸缸内捞出器皿用自来水冲洗15次，最后蒸馏水冲洗3-5次和用双蒸水过3次。
2.安装滤膜时注意光面朝上：注意滤膜光滑一面是正面，要朝上，否则起不到过滤的作用。
3.注意人体的防护和器皿的完全浸泡：A.泡酸时要戴耐酸手套，防止酸液溅起伤害人体。B.从酸缸内捞取器皿时防止酸液溅到地面，会腐蚀地面。C.器皿浸入酸液中要完全，不能留有气泡，以防止泡酸不彻底。
四.细胞培养用液的配制与消毒
5.烘干备用：因为高压消毒后器皿会被蒸气打湿，所以要放入烤箱内烘干备用。
金属器械洗消：
金属器皿不能泡酸，洗消时可先用洗涤剂刷洗，后用自来水冲干净，然后用75％酒精擦拭，再用自来水，然后用蒸馏水冲洗，再烘干或空气中晾干。放入铝制盒内包装好在高压锅内15磅高压（30分钟）消毒，再烘干备用。
橡胶和塑料：
橡胶和制品通常处理方法是：先用洗涤剂洗刷干净，再分别用自来水和蒸馏水冲干净，再用烤箱烘干，然后根据不同品质进行如下的处理程序：
器材与试剂：
干粉型培养基、胰蛋白酶，青霉素、链霉素. 纯净水系统、电子天平、PH计、磁力搅拌器。
具体步骤：
(1)水的制备：
细胞培养用水必须非常纯净，不含有离子和其他的杂质。需要用新鲜的双蒸水、三蒸水或纯净水.
(2)PBS的制备与消毒(也可用于其它BSS，如：Hanks，D-Hanks液的配制)：
1.溶解定容：将药品（NaCl 8.0g，KCl 0.2g，Na2HPO4·H2O 1.56g，KH2PO4 0. 2g ）倒入盛有双蒸水的烧杯中，玻璃棒搅动，充分溶解，然后把溶液倒入容量瓶中准确定容至1000ml，摇匀即成新配制的PBS溶液。
(6)血清的灭活：
细胞培养常用的是小牛血清，新买来的血清要在56℃水浴中灭火30分钟后，再经过抽滤方可加入培养基中使用。
(7)HEPES溶液：
HEPES的化学全称位羟乙基呱嗪乙硫磺酸（N’-a-hydroxythylpiperazine-N’- ethanesulfanic acid）。对细胞无毒性作用。它是一种氢离子缓冲剂，能较长时间控制恒定的pH范围。使用终浓度为10-50mmol/L，一般培养液内含20mmol/LHEPES即可达到缓冲能力。
包装好的器皿装入高压锅内盖好盖子打开开关和安全阀随着温度的上升安全阀冒出蒸气当蒸气成直线冒出35分钟后关闭安全阀气压表指数随之上升当指针指向15磅时调节电开关维持2030分钟即可
细胞培养过程中的注意事项及试剂配制
细胞培养过程中的注意事项及试剂配制
一.常用设备
准备室的设备：
单蒸馏水蒸馏器、双蒸馏水蒸馏器、酸缸、烤箱、高压锅、储品柜（放置未消毒物品）、储品规（放置消毒过的物品）、包装台。
1 . 针式滤器帽不能泡酸液,用NaOH泡6-12小时,或者煮沸20分钟,在包装之前要装好滤膜两张，安装滤膜时注意光面朝上(凹向上)，然后将螺旋稍微拧松一些，放入铝盒中在高压锅内15磅30分钟消毒，再烘干备用。注意在超净台内取出使用时应该立即将螺旋旋紧。
2. 胶塞烘干后用2％氢氧化钠溶液煮沸30分钟（用过的胶塞只要用沸水处理30分钟），自来水洗净，烘干。然后再泡入盐酸液30分钟，再用自来水，蒸馏水，三蒸水洗净，烘干。最后装入铝盒内高压消毒，烘干备用。
(4)青、链霉素溶液的配制于消毒
1. 所用纯净水（双蒸水）需要15磅高压20分钟灭菌。
2.具体操作均在超净台内完成。青霉素是80万单位/瓶，用注射器加4ml灭菌双蒸水。链霉素是100万单位/瓶，加5ml灭菌双蒸水，即每毫升各为20万单位。
3.使用时溶入培养液中，使青链霉素的浓度最终为100单位/ml。1单位＝1微克？
(5).RPMI1640的制备与消毒：
1.溶解、调PH值、定容：先将培养基粉剂加入培养液体积2/3的双蒸水中,并用双蒸水冲洗包装袋2-3次(冲洗液一并加入培养基中),充分搅拌至粉剂全部溶解,并按照包装说明添加一定的药品.然后用注射器向培养基中加入配制好的青链霉素液各0.5ml,使青链霉素的浓度最终各为100单位/ml。然后用一个当量的盐酸和NaOH调PH到7.2左右。最后定容至1000ml，摇匀。
1mol/L HEPE缓冲液配制方法如下：
准确称取HEPTS 238.3g，加入新鲜三蒸水定容至1L。过滤除菌，分装后4℃保存。
注意：因为现在市售HEPES为约10g包装的小瓶，所以可根据实际情况灵活配制，但是要保证培养液内HEPES的终浓度仍然为20m mol/L。如：称取4.766克HEPES溶于20ml三蒸水中，过滤除菌后可完全（20ml）加入1L培养液中，或者每100ml培养液中加入2ml即可。
2.移入溶液瓶内待消毒：将PBS倒入溶液瓶（大的吊针瓶）内，盖上胶帽，并插上针头放入高压锅内8磅消毒20分钟。注意高压消毒后要用灭菌蒸馏水补充蒸发掉的水份。
(3) 胰蛋白酶溶液的配制与消毒：
胰蛋白酶的作用是使细胞间的蛋白质水解从而使细胞离散。不同的组织或者细胞对胰酶的作用反应不一样。胰酶分散细胞的活性还与其浓度、温度和作用时间有关，在pH为8.0、温度为37℃时，胰酶溶液的作用能力最强。使用胰酶时，应把握好浓度、温度和时间，以免消化过度造成细胞损伤。因Ca2 、Mg2 和血清、蛋白质克降低胰酶的活性，所以配制胰酶溶液时应选用不含Ca2 、Mg2 的BSS，如：D-Hanks液。终止消化时，可用含有血清培养液或者胰酶抑制剂终止胰酶对细胞的作用。
配液室的设备：
扭力天平和电子天平（称量药品）、PH计（测量培养用液PH值）、磁力搅拌器（配置溶液室搅拌溶液）。
培养室的设备：
液氮罐、储品柜（存放杂物）、日光灯和紫外灯、空气净化器系统、低温冰箱（-80℃）、空调、二氧化碳缸瓶、边台（书写实验记录）。必须放在无菌间的设备：离心机（收集细胞）、超净工作台、倒置显微镜、CO2孵箱（孵育培养物）、水浴锅、三氧消毒杀菌机、4℃冰箱（放置serum和培养用液）。
3. 胶帽，离心管帽烘干后只能在2％氢氧化钠溶液中浸泡6-12小时（切记时间不能过长），自来水洗净，烘干。然后再泡入盐酸液30分钟，再用自来水，蒸馏水，三蒸水洗净，烘干。最后装入铝盒内高压消毒，烘干备用。
4. 胶头可用75％酒精浸泡5分钟，然后紫外照射后使用即可。