兔类实验的基本操作技术
家兔基础实验操作及注意事项总结
家兔基础实验操作及注意事项总结（一）家兔的给药、基本手术及相关仪器的初步使用1、家兔的捉拿【实验方法】先轻轻打开笼门，勿使其受惊，随后手伸入笼内，从头前阻拦其跑动，一只手迅速抓住兔的颈背部的皮毛，慢慢提起家兔，然后用另一只手轻轻托住臀部，尽量使兔处在舒适、放松的状态。
【注意事项】避免抓住耳朵提拿家兔，这样不但会损伤家兔的耳朵，而且易引起家兔的紧张并激起挣扎和反抗。
抓取动物时手法不当，动作过激导致家兔惊吓，产生强烈挣扎而长时间处于激动状态，大脑皮层细胞兴奋阈值增加，肾上腺素的释放，大脑中枢电位频率增高，大脑皮层运动区过度兴奋，导致麻醉效果不佳。
2、家兔的称重与放置【实验方法】兔笼放置在电子秤上，去皮。
将兔子脖子卡住兔笼头端的凹槽，盖上兔笼盖，使兔子呈趴伏状，记录数据。
压住兔笼盖和后座，将兔笼转移到操作台准备实验。
【注意事项】兔笼重量提前去皮；尽量避免头尾不对应；时刻注意压住兔笼盖，避免转移途中兔子挣脱。
3、耳缘静脉麻醉【实验方法】穿刺前准备工作：穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛，轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张，或用酒精棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。
穿刺手法：左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。
若回抽注射器有暗红色血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象，说明针头在血管内。
移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液缓慢注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
l 注：本实验所用麻醉药乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。
【注意事项】1、进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段，若穿刺失败，可向近心端前移一段再进行穿刺；2、可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张，便于操作；3、静脉注射必须缓慢（大概每分钟推送5ml ），同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
在注射麻醉药物时，可先用麻醉药物总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，若已达到预计麻醉效果剩余药液可暂不注射，以避免麻醉过深抑制呼吸中枢导致动物死亡；4、实验动物的固定【实验方法】将动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上，颈部伸直，口腔与气管成一直线，保持气管畅通。
兔的基本操作技能
The exploring联合速尿经兔膀胱内输尿管内口的输尿管插管术 experiment
鸭替代狗、兔生 理实验研究—尿 生成影响因素分 析 大《鼠卫用生于职尿业生教育 成》影20响02因年素10的期 实验研究
《第四军医大学吉林军医学 院学报》 2003年02期
学教学研讨会论文摘要汇编》 2003年
高职机能实验"动脉血 压的调节"的临床拓展
《医学信息(上旬刊)》 2010年12 期
心房提取液对家兔尿量和动脉血压的影响
《四川生理科学杂志》1996年第01期
动脉血压调节实验中设计颈 动脉窦综合症项目浅谈 《卫生职业教育》2010年 第14期
探索性实验 探索性实验
反挑式
（3）钝性分离出气管
（3）钝性分离出气管
（4）甲状软骨下约l-2cm处剪一倒“T” 型切口
（5）插气管插管并固定，注意清除 气管里血液。
（6）检查呼吸道是否通畅
6.颈总动脉插管术 （1）分离两侧颈总动脉。
（2）结扎远心端，动脉夹夹闭近心端。
下穿两线，结扎线与动脉夹间2-3cm
3.插动脉插管。
漏斗口对准输尿管开口 结扎固定，勿扎住输尿管开口 计数：尿的滴数
探索性实验
The exploring experiment
麦饭石对家兔动脉血压、心 电图、心率和呼吸的影响
《南开大学学报(自然科学版)》 1994年第01期
高原环境对动脉血压影响的研究进展。 《医学综述》2014年第06期
“兔动脉血压调节”生理实 验的改进 《中国生理学会第七届全国生理
准备工作 靠近结扎线剪口 向心脏方向插管 结扎固定
7.膀胱插管术 （1）剪去腹部正中的毛。 （2）在耻骨联合上切3-4cm腹部切口。 （3）沿腹白线切开腹壁。 （4）暴露膀胱。
实验十二 家兔手术技术训练实验报告
实验十二家兔手术技术训练一．实验目的1．学习和掌握家兔的常用手术技术和麻醉技术；2．掌握家兔的气管插管术3．实践家兔的腹部手术技术，并找到输尿管4．学习家兔的开颅术。
二．实验原理1．麻醉在慢性实验或急性在体实验中，施行手术之前必须将动物麻醉。
麻醉可使动物在手术或实验过程中减少疼痛，保持安静，保证实验的顺利进行。
麻醉剂的种类繁多，作用原理不尽相同，在应用时需根据动物的种类以及实验或手术的性质慎重加以选择。
麻醉必须适度，过深或过浅均会给手术或实验带来不良影响。
麻醉的深浅可从呼吸，某些反射的消失，肌肉的紧张程度和瞳孔的大小加以判断。
常用刺激角膜以观察角膜反射。
适宜的麻醉状态是呼吸深慢而平稳，角膜反射与运动反应消失，肌肉松弛。
本实验中家兔的麻醉采用耳缘静脉注射法。
兔耳的外缘血管为静脉，中央的血管为动脉。
注射前需在注射部位剪毛，用左手食指和中指夹住耳缘静脉近心端，使其充血（亦可用动脉夹夹住），并用左手拇指和无名指固定兔耳。
用右手持注射器将针头顺血管方向刺入静脉，刺入后再将左手食指和中指移至针头处，协同拇指将针头固定于静脉内，便可缓缓注射。
如注射阻力过大或局部肿胀，说明针头未刺入血管，应拔出重新刺入。
首次注射应从静脉的远心端开始，以便进行反复注射。
2．动物的固定急性在体实验的手术过程中，必须将麻醉动物固定，以限制动物的活动，保证实验或手术的顺利进行。
实验中最常使用的动物固定方法有两种：背位固定法和腹位固定法，其中关键性的固定部位是头部和四肢。
本次家兔的实验使用背部固定法：（1）头部的固定因为无动物头夹，取线绳代替，即将线绳拉紧动物的门齿，固定于手术台前端的直棒上，以达到固定头部的目的。
（2）四肢的固定在头部固定之后，固定四肢。
四肢用绑带固定，先将绑带打结，再进动物前肢的腕关节和后肢踝关节，将绑带收紧，后肢的绑带可直接拉紧分别扎于手术台两侧的木钩上。
除特殊要求外，前肢的固定方法应为：将两前肢平放在胸部的两侧，再把捆绑前肢的两条绑带从动物背部交叉穿过，并压在对侧前肢的前臂上，最后拉紧绑带，固定于手术台两侧的木钩上。
机能兔子实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解兔子生理机能的基本结构和功能。
2. 观察并分析兔子的心脏、肺脏、肝脏等主要器官的生理活动。
3. 掌握兔子生理机能实验的基本操作技能。
二、实验原理兔子作为一种实验动物，其生理机能与人类有许多相似之处。
通过兔子生理机能实验，可以了解兔子各器官系统的生理功能，为医学研究提供实验依据。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：健康成年兔子（体重2-2.5kg）3只。
2. 实验器材：手术器械、解剖显微镜、生理盐水、肝素、乌拉坦、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子等。
3. 实验试剂：20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素、复方氯化铵、谷氨酸钠等。
四、实验方法与步骤1. 家兔称重，并注射20%的乌拉坦进行麻醉。
2. 家兔固定在解剖台上，备皮，消毒。
3. 暴露气管，插管，连接记录系统。
4. 暴露心脏，观察心脏的结构和功能，记录心率、血压等指标。
5. 暴露肺脏，观察肺脏的结构和功能，记录呼吸频率、潮气量等指标。
6. 暴露肝脏，观察肝脏的结构和功能，记录肝功能指标。
7. 暴露十二指肠，基底部荷包缝合，十二指肠插管（朝向肠腔）。
8. 观察家兔正常生理指标，停止吸入麻醉。
9. 分为甲、乙、丙三组，分别进行以下实验：- 甲组：注射复方氯化铵，观察肝性脑病的发生。
- 乙组：注射复方氯化铵，同时耳缘静脉给予谷氨酸钠进行治疗。
- 丙组：不结扎肝脏，观察肝性脑病的发生。
10. 动态观察家兔各项指标的变化，记录实验数据。
五、实验结果与分析1. 心脏：兔子心脏呈椭圆形，分为四个腔室，即左右心房和左右心室。
心脏跳动时，心房先收缩，心室后收缩，从而推动血液在体内循环。
实验中观察到兔子心率约为每分钟120-150次，血压约为100-150mmHg。
2. 肺脏：兔子肺脏呈粉红色，分为左右两个肺叶。
肺脏是呼吸系统的重要组成部分，负责氧气的吸入和二氧化碳的排出。
实验中观察到兔子呼吸频率约为每分钟30-40次，潮气量约为50-60ml。
家兔基础实验操作及注意事项总结
基本技能操作经验总结（一）家兔的给药、基本手术及相关仪器的初步使用1.家兔的捉拿【实验方法】先轻轻打开笼门，勿使其受惊，随后手伸入笼内，从头前阻拦其跑动，一只手迅速抓住兔的颈背部的皮毛，慢慢提起家兔，然后用另一只手轻轻托住臀部，尽量使兔处在舒适、放松的状态。
【注意事项】避免抓住耳朵提拿家兔，这样不但会损伤家兔的耳朵，而且易引起家兔的紧张并激起挣扎和反抗。
抓取动物时手法不当，动作过激导致家兔惊吓，产生强烈挣扎而长时间处于激动状态，大脑皮层细胞兴奋阈值增加，肾上腺素的释放，大脑中枢电位频率增高，大脑皮层运动区过度兴奋，导致麻醉效果不佳。
2.家兔的称重与放置【实验方法】兔笼放置在电子秤上，去皮。
将兔子脖子卡住兔笼头端的凹槽，盖上兔笼盖，使兔子呈趴伏状，记录数据。
压住兔笼盖和后座，将兔笼转移到操作台准备实验。
【注意事项】兔笼重量提前去皮；尽量避免头尾不对应；时刻注意压住兔笼盖，避免转移途中兔子挣脱。
3.耳缘静脉麻醉【实验方法】穿刺前准备工作：穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛，轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张，或用酒精棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。
穿刺手法：左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。
若回抽注射器有暗红色血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象，说明针头在血管内。
移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液缓慢注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
注：本实验所用麻醉药——乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。
【注意事项】1. 进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段，若穿刺失败，可向近心端前移一段再进行穿刺；2.可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张，便于操作；3.静脉注射必须缓慢（大概每分钟推送5ml ），同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
在注射麻醉药物时，可先用麻醉药物总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，若已达到预计麻醉效果剩余药液可暂不注射，以避免麻醉过深抑制呼吸中枢导致动物死亡；4.实验动物的固定【实验方法】将动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上，颈部伸直，口腔与气管成一直线，保持气管畅通。
家兔基本手术实验报告
一、实验目的1. 熟悉家兔的基本解剖结构和生理特点；2. 掌握家兔手术的基本操作技术；3. 培养动手能力和实验操作规范。
二、实验原理家兔作为实验动物，具有解剖结构和生理特点与人类相似，因此在家兔上进行手术实验可以帮助我们更好地了解人体手术操作。
本实验通过对家兔进行基本手术操作，使学生掌握手术基本技能。
三、实验器材1. 实验动物：家兔一只；2. 手术器械：手术刀、手术剪、眼科剪、组织钳、止血钳、手术镊、玻璃分针、插管、动脉夹、棉线等；3. 麻醉药品：1%普鲁卡因、3%戊巴比妥钠；4. 其他用品：注射器、酒精棉球、生理盐水、消毒液等。
四、实验步骤1. 家兔抓取、固定和麻醉（1）将家兔放在实验台上，用右手抓住家兔的后颈部皮肤，左手抓住兔的双脚，将家兔倒立；（2）用酒精棉球擦拭家兔的耳缘静脉，使血管充盈；（3）用注射器抽取1%普鲁卡因5ml，进行局部麻醉；（4）将家兔放在手术台上，用手术钳固定四肢。
2. 手术切口（1）用手术刀在颈部正中线切开皮肤，长约5-7cm；（2）用手术剪剪开皮肤，暴露肌肉组织；（3）用止血钳钳夹肌肉组织，用手术刀分离肌肉组织。
3. 神经、血管分离（1）用眼科剪剪开颈动脉鞘，暴露颈总动脉；（2）用组织钳夹住颈总动脉，用手术刀分离颈总动脉；（3）用手术镊分离颈外静脉，用手术刀分离颈外静脉。
4. 插管技术（1）将颈总动脉插入动脉夹，用手术剪剪口大小为颈总动脉直径的1/3-1/2；（2）将动脉导管插入颈总动脉，插入长度约1cm；（3）用动脉夹固定动脉导管。
5. 术后处理（1）用消毒液消毒手术切口；（2）用手术线缝合皮肤；（3）观察家兔术后恢复情况。
五、实验结果与分析1. 实验结果通过本次实验，学生掌握了家兔的基本解剖结构和生理特点，熟悉了家兔手术的基本操作技术，包括抓取、固定、麻醉、切口、分离、插管等。
2. 实验分析（1）在手术过程中，应严格遵守无菌操作原则，避免手术感染；（2）在分离神经、血管时，要轻柔操作，避免损伤神经、血管；（3）在插管过程中，要掌握好插管深度，避免插管过深或过浅；（4）术后观察家兔恢复情况，确保手术成功。
兔子解剖病理实验报告
一、实验目的1. 掌握兔子的解剖结构和生理功能。
2. 学习并实践解剖和病理学的基本操作技能。
3. 通过观察兔子的解剖结构和病理变化，加深对哺乳动物生理和病理学知识的理解。
二、实验原理兔子作为实验动物，其解剖结构和生理功能与人类有较高的相似性，因此通过兔子解剖病理实验，可以加深对哺乳动物生理和病理学知识的理解。
实验过程中，通过观察兔子的器官和组织，了解其正常结构和功能，并通过对病理变化的观察，分析疾病的发生和发展过程。
三、实验材料1. 实验动物：健康成年家兔一只。
2. 实验器材：解剖盘、手术刀、剪刀、镊子、解剖针、注射器、生理盐水、酒精棉球、解剖图谱等。
四、实验步骤1. 实验动物准备：将兔子用绳索固定在解剖台上，用酒精棉球擦拭兔子耳部，以便进行静脉注射。
2. 麻醉：向兔子耳缘静脉注射20%的乌拉坦，剂量约为5ml/kg，使其进入麻醉状态。
3. 解剖：- 皮肤解剖：沿兔子背部中线切开皮肤，剪除皮肤，暴露肌肉和骨骼。
- 肌肉解剖：沿肌肉走向切开肌肉，暴露骨骼。
- 骨骼解剖：剪断骨骼，观察骨骼结构和关节。
- 内脏解剖：剪开腹腔，观察内脏器官，包括心脏、肺、肝脏、脾脏、胃、小肠、大肠、肾脏、生殖器官等。
4. 病理观察：- 观察内脏器官的外观，记录异常变化。
- 观察器官切面，记录病变范围和程度。
- 对病变组织进行染色，观察细胞结构和病理变化。
五、实验结果1. 外观观察：- 心脏：心脏呈暗红色，表面光滑，心尖指向左侧。
- 肺：肺呈粉红色，表面有大量细小血管。
- 肝脏：肝脏呈暗红色，质地较软。
- 脾脏：脾脏呈暗红色，质地较软。
- 胃：胃呈暗红色，内有食物残渣。
- 小肠：小肠呈粉红色，表面有大量细小血管。
- 大肠：大肠呈暗红色，表面有大量细小血管。
- 肾脏：肾脏呈红褐色，质地较硬。
- 生殖器官：雄性兔子的生殖器官包括睾丸和阴茎，雌性兔子的生殖器官包括卵巢和子宫。
2. 病理观察：- 心脏：无明显病变。
- 肺：无明显病变。
兔实验技术操作
一、兔的抓取及保定1.准备的物品、器械：固定器2.简要：（1）徒手抓取（2）保定3.解说操作：3.1徒手抓取用一只手将颈部的被毛和皮肤一起抓住提起，另一只手托住臀部。
（如图1）。
也可一手抓住兔肩胛部的皮肤，另一手托住其臀部并将兔的头部放置于臂弯中，再用前臂支撑兔体。
3.2 保定3.2.1将兔放在操作台上，用一只手抓住颈背部皮肤（包括兔耳），另一只手压住腰部（或后肢）加以保定，可用于肌肉注射、灌胃等操作。
3.2.2 将兔放在操作台上，用左手抓住颈背部皮肤，使兔下半身固定在操作者左臂下方，用右手环抱兔前肢，适用于孕兔灌胃等操作。
如图2。
3.2.3盒式保定法：将兔放入兔保定盒内，盖上盖，使兔头露在盒外，便可进行采血或注射给药等操作。
3.2.4保定板保定：将兔仰卧或俯卧在保定板上，用布带保定，四肢和头部也用布带保定，即可进行心电图检查、注射给药、采血等操作。
4.注意事项4.1 盖兔盒时必须要轻，不能用力压，否则兔脊椎骨很容易骨折，造成下肢瘫痪。
4.2 将家兔放回兔笼时，先将臀部及后肢放入笼内。
4.3 抓取时禁止抓提兔耳。
4.4 抓取要稳、准、柔、快，不可过分用力抓捏腰腹部。
二、兔的采血方法1.准备的物品、器械：注射器、采血管、止血带、酒精棉球、干棉球、保定架等2.简要：耳静脉采血、耳动脉采血、后肢静脉采血、心脏采血3.解说操作3.1耳缘静脉或耳动脉采血3.1.1 将兔保定于保定器内，用酒精棉球擦拭消毒。
3.1.2助手固定兔耳，并压迫耳缘静脉根部，使血管充盈；操作者手持注射器，针头沿耳缘静脉平行刺入血管，慢慢抽取血液。
3.1.3 助手固定兔耳，操作者手持注射器，在耳中央动脉末端，使针头沿血管平行方向刺入动脉，血液即可流入注射器内。
3.1.4 采血完毕后立即用消毒干棉球压迫止血。
3.2后肢静脉采血3.2.1 兔固定于兔保定架上，剪去胫部被毛，股部扎上止血带，使胫外侧皮下静脉充盈。
3.2.2 固定静脉，用左手两指固定好静脉，右手取带有针头的注射器内皮下静脉平行方向刺入血管，抽一下针栓，如血进入注射器，表示针头已刺入血管，即可取血。
家兔基础实验操作及注意事项总结教学总结
家兔基础实验操作及注意事项总结基本技能操作经验总结（一）家兔的给药、基本手术及相关仪器的初步使用1.家兔的捉拿【实验方法】先轻轻打开笼门，勿使其受惊，随后手伸入笼内，从头前阻拦其跑动，一只手迅速抓住兔的颈背部的皮毛，慢慢提起家兔，然后用另一只手轻轻托住臀部，尽量使兔处在舒适、放松的状态。
【注意事项】避免抓住耳朵提拿家兔，这样不但会损伤家兔的耳朵，而且易引起家兔的紧张并激起挣扎和反抗。
抓取动物时手法不当，动作过激导致家兔惊吓，产生强烈挣扎而长时间处于激动状态，大脑皮层细胞兴奋阈值增加，肾上腺素的释放，大脑中枢电位频率增高，大脑皮层运动区过度兴奋，导致麻醉效果不佳。
2.家兔的称重与放置【实验方法】兔笼放置在电子秤上，去皮。
将兔子脖子卡住兔笼头端的凹槽，盖上兔笼盖，使兔子呈趴伏状，记录数据。
压住兔笼盖和后座，将兔笼转移到操作台准备实验。
【注意事项】兔笼重量提前去皮；尽量避免头尾不对应；时刻注意压住兔笼盖，避免转移途中兔子挣脱。
3.耳缘静脉麻醉【实验方法】穿刺前准备工作：穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛，轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张，或用酒精棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。
穿刺手法：左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。
若回抽注射器有暗红色血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象，说明针头在血管内。
移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液缓慢注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
注：本实验所用麻醉药——乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。
【注意事项】1. 进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段，若穿刺失败，可向近心端前移一段再进行穿刺；2.可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张，便于操作；3.静脉注射必须缓慢（大概每分钟推送5ml ），同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
实验动物的一般操作技术(兔,豚鼠)
实验动物的标记方法：实验动物常需要编号标记以示区别。
编号的方法很多，根据动物的种类、数量和观察时间长短等因素来选择合适的标记方法。
兔：挂牌法刺纹法剪毛法染色法豚鼠：挂牌法刺纹法染色法剪耳法挂牌法：该法适用于狗等大型动物。
打号法：该法适用于耳朵比较大的兔、狗等动物。
用刺数钳(又称耳号钳)将号码打在动物耳朵上。
刺纹法：该法适用于大小鼠、豚鼠等。
用7号或者8号针头蘸碳素墨水在动物耳朵、前后肢、尾巴等部位刺入皮下，留下黑色标记，在实验动物数量少的情况下，也可用于兔、狗等动物。
剪毛法：该法适用于大、中型动物，如狗、兔等。
此法编号清楚可靠，但只适于短期观察。
剪耳法：此种方法常在饲养大量动物时作为终身号采用。
化学药品涂染动物被毛法（染色法）：常用的染料：苦味酸酒精饱合溶液（黄色）；5%中性红或品红溶液（红色）；小鼠和大鼠用得多。
实验动物随机分组方法：各组非处理因素齐同，防止非处理因素干扰处理因素的效应。
1.将动物按性别，用感应量为0.1g的天平称重，编号，按体重从大到小排序。
2.按实验设计要求进行分组。
常见的实验设计方案是配伍设计、完全随机分组设计和随机区组设计。
随机方法有：随机数字表和随机分组表。
常用“Z”字型分组法。
3.各组之间尽量齐同，同组、同性别动物体重变异系数小于10%。
不同组间同性别动物体重变异系数小于5%。
4.如对性别无特殊要求，宜选用雌雄动物各半，单独分组后雌雄合并。
（常采用每组20只，雌雄各10只）实验动物染毒途径和方法：根据实验目的/实验动物种类，最关键是要参照人接触受试物途径。
例：经口药品、保健品、食品————采用经口染毒静脉药品——————————采用静脉、腹腔染毒农药、化妆品————————经皮染毒易挥发物质—————————经呼吸道染毒1. 经口染毒：喂饲:将受试物掺入动物饲料或饮水中供实验动物自行摄入。
优点：符合人类接触受试物的实际情况；但缺点多：适口性差的受试物，实验动物拒食；易挥发和水解的受试物不适用。
兔实验技术操作
.一、兔的抓取及1.准备的物品、器械：固定器2.简要：（1）徒手抓取（2）3.解说操作：3.1徒手抓取用一只手将颈部的被毛和皮肤一起抓住提起，另一只手托住臀部。
（如图1）。
也可一手抓住兔肩胛部的皮肤，另一手托住其臀部并将兔的头部放置于臂弯中，再用前臂支撑兔体。
3.23.2.1将兔放在操作台上，用一只手抓住颈背部皮肤（包括兔耳），另一只手压住腰部（或后肢）加以，可用于肌肉注射、灌胃等操作。
3.2.2 将兔放在操作台上，用左手抓住颈背部皮肤，使兔下半身固定在操作者左臂下方，用右手环抱兔前肢，适用于孕兔灌胃等操作。
如图2。
3.2.3盒式法：将兔放入兔盒，盖上盖，使兔头露在盒外，便可进行采血或注射给药等操作。
3.2.4板：将兔仰卧或俯卧在板上，用布带，四肢和头部也用布带，即可进行心电图检查、注射给药、采血等操作。
4.注意事项4.1 盖兔盒时必须要轻，不能用力压，否则兔脊椎骨很容易骨折，造成下肢瘫痪。
4.2 将家兔放回兔笼时，先将臀部及后肢放入笼。
4.3 抓取时禁止抓提兔耳。
4.4 抓取要稳、准、柔、快，不可过分用力抓捏腰腹部。
二、兔的采血方法1.准备的物品、器械：注射器、采血管、止血带、酒精棉球、干棉球、架等2.简要：耳静脉采血、耳动脉采血、后肢静脉采血、心脏采血3.解说操作3.1耳缘静脉或耳动脉采血3.1.1 将兔于器，用酒精棉球擦拭消毒。
3.1.2助手固定兔耳，并压迫耳缘静脉根部，使血管充盈；操作者手持注射器，针头沿耳缘静脉平行刺入血管，慢慢抽取血液。
3.1.3 助手固定兔耳，操作者手持注射器，在耳中央动脉末端，使针头沿血管平行方向刺入动脉，血液即可流入注射器。
3.1.4 采血完毕后立即用消毒干棉球压迫止血。
3.2后肢静脉采血3.2.1 兔固定于兔架上，剪去胫部被毛，股部扎上止血带，使胫外侧皮下静脉充盈。
3.2.2 固定静脉，用左手两指固定好静脉，右手取带有针头的注射器皮下静脉平行方向刺入血管，抽一下针栓，如血进入注射器，表示针头已刺入血管，即可取血。
机能上实验内容
实验一家兔手术基本操作一、动物基本操作技术1.切口与止血用哺乳动物进行实验时，在做皮肤切口之前，应先将预定部位及其周围的长毛剪去（备皮），然后选好确切的切口部位和范围，必要时做出标志。
切口的大小要适当，既要便于实验操作，也不可过大。
术者先用左手拇指和另外四指将预定切口上端两侧的皮肤绷紧固定，右手持手术刀，以适当的力量，一次全线切开皮肤和皮下组织，直到肌层表面。
在手术过程中，必须及时注意止血。
微血管渗血，用温热盐水纱布轻压即可止血。
干纱布只用于吸血，不可用以揩擦组织，以防组织损伤和血凝块脱落。
较大血管出血，需先用止血钳将出血点及其周围的少许部分组织一并夹住，然后用线结扎。
大动脉破裂出血时，切不可用有齿的镊子或血管钳直接夹住管壁，而应先用纱布压住出血部位，吸干血后，小心打开纱布，观察出血点位置，迅速用手指捏住动脉破裂处，用动脉夹夹住血管近心端，再作进一步处理。
在实验间歇期间，应将创口暂闭合，或用温盐水纱布盖好，以防组织干燥和体内热量散失。
2.肌肉、神经与血管的分离分离肌肉时，应该用止血钳在整块肌肉与其他组织之间，顺着肌纤维方向，将肌肉一块块地分离。
决不能在一块肌肉的肌纤维间任意穿插。
如果在肌肉纤维间操作，不仅容易损伤肌纤维而引起出血，并且也很难将肌肉分离。
若必须将肌肉切断，应先用两把止血钳夹住肌肉(小块或薄片肌肉也可用两道丝线结扎)，然后在两止血钳间切断肌肉。
神经和血管都是比较娇嫩的组织，因此在剥离过程中要耐心、仔细、动作轻柔。
切不可用带齿的镊子进行剥离，也不许用止血钳或镊子夹持，以免其结构或机能受损。
在剥离粗大的神经、血管时，应先用蚊式止血钳将神经或血管周围的结缔组织稍加分离，然后用大小适宜的止血钳将其从其周围的结缔组织中游离出来。
游离段的长短，视需要而定。
在剥离细小的神经或血管时，要特别注意保持局部的自然解剖位置，不要把结构关系弄乱，同时需要用眼科小镊子或玻璃针轻轻地进行分离。
剥离完毕后，在神经或血管的下方穿以浸透生理盐水的缚线(根据需要穿一根或两根)，以备刺激时提起或结扎之用。
兔实验技术操作范文
兔实验技术操作范文兔实验是一种常见的动物实验方法，用于研究和测试各种药物、疾病和生理功能。
兔实验通常涉及到一系列技术操作，下面将详细介绍与兔实验相关的常见技术操作。
1.兔的选择和准备在进行兔实验之前，需要从健康、年龄相近的群体中选择合适的兔子。
通常选择体重在2-5千克之间的成年兔子。
选择前要确保兔子没有明显的疾病或病史。
2.麻醉和镇痛为了进行各种操作，需要先给兔子进行麻醉。
常见的麻醉方法包括静脉注射麻醉剂或通过鼻腔给予麻醉气体。
麻醉后需要给兔子提供适当的镇痛措施，以减轻术后疼痛和不适。
3.手术操作根据实验的需求，可能需要进行不同类型的手术操作。
常见的手术操作包括心脏手术、神经外科手术和腹腔手术等。
手术过程中需要注意操作的精细性和无菌操作，以防止感染和并发症。
4.体液采集在实验的不同阶段，可能需要采集兔子的血液、尿液或其他体液样品。
血液采集可以通过耳静脉抽血或心脏穿刺等方法进行。
尿液采集可以通过膀胱刺穿或膀胱导管等方法进行。
在进行体液采集前，需要采取适当的准备措施和无菌操作。
5.药物给药在兔实验中，常常需要通过不同途径给予药物。
常用的给药途径包括静脉注射、皮下注射、肌肉注射和口服给药等。
给药前需要准确计量药物剂量，并在给药后观察兔子的反应和药效。
6.观察和数据记录在实验进行过程中，需要及时记录和观察兔子的生理指标和行为变化。
比如体温、心率、呼吸等生理指标的监测，以及食欲、活动能力和行为反应的观察。
这些数据的记录对于实验结果的分析和解读非常重要。
7.实验结束和人道处置实验结束后，需要进行人道处置以减少兔子的痛苦和疾病传播。
常见的处理方式包括使用麻醉药物进行安乐死，避免引起痛苦；或将兔子交给专业的动物福利机构，进行后续的照顾和饲养。
总结起来，兔实验涉及到兔的选择和准备、麻醉和镇痛、手术操作、体液采集、药物给药、观察和数据记录以及实验结束和人道处置等一系列技术操作。
在进行兔实验时，应始终注重动物福利和伦理原则，确保操作的准确性和可靠性，以取得有意义的实验结果。
畜牧兽医基础实验报告
一、实验目的1. 掌握畜牧兽医基本实验操作技能，包括实验动物的抓取、保定、给药等。
2. 了解常用兽医医疗器械的使用方法。
3. 学习并掌握动物生理、病理的基本检测方法。
4. 培养实验操作规范、严谨的科学态度。
二、实验时间2023年X月X日三、实验地点XX大学畜牧兽医实验室四、实验材料1. 实验动物：家兔一只2. 实验器械：注射器、针头、剪刀、镊子、解剖刀、解剖盘、酒精棉球、生理盐水、消毒液等3. 实验药品：青霉素、链霉素、阿莫西林等五、实验步骤1. 实验动物的抓取与保定（1）将家兔放在实验台上，用左手抓住兔颈后部皮肤，右手抓住兔两耳，将兔头拉向前方。
（2）用右手握住兔两后肢，将兔体翻转，使其呈仰卧位，便于后续操作。
2. 给药实验（1）用注射器抽取适量青霉素，进行兔耳静脉注射。
（2）观察兔子的反应，如有异常，及时处理。
3. 解剖操作（1）在兔耳根部用剪刀剪一小口，将兔耳向后翻，露出耳静脉。
（2）用镊子将兔耳静脉提起，用注射器抽取适量血液。
（3）用解剖刀在兔腹部正中切开皮肤，暴露腹壁肌肉。
（4）用剪刀剪开腹壁肌肉，暴露腹腔内脏器官。
4. 生理指标检测（1）用体温计测量兔子的体温。
（2）用血压计测量兔子的血压。
（3）用呼吸频率计测量兔子的呼吸频率。
5. 病理指标检测（1）观察兔子的皮肤、毛发、眼、鼻、口腔等部位是否有异常。
（2）检查兔子的内脏器官是否有病变。
六、实验结果1. 兔子体温：38.5℃2. 兔子血压：120/80mmHg3. 兔子呼吸频率：30次/分钟4. 兔子皮肤、毛发、眼、鼻、口腔等部位无明显异常。
5. 兔子内脏器官无明显病变。
七、实验讨论1. 本次实验中，我们掌握了家兔的抓取、保定、给药等基本操作技能，为今后的实验研究奠定了基础。
2. 通过实验，我们了解了常用兽医医疗器械的使用方法，为今后临床实践积累了经验。
3. 在实验过程中，我们学习了动物生理、病理的基本检测方法，提高了自己的实践能力。
外科兔综合实验报告
一、实验目的1. 掌握无菌术的基本原则和操作方法。
2. 熟悉外科基本操作技术，如消毒、铺无菌单、切开、止血、结扎、缝合等。
3. 学习动物实验的基本技能，包括动物麻醉、手术操作和术后护理。
4. 培养医学生的无菌观念和手术操作的规范性与准确性。
二、实验时间2023年10月15日三、实验地点动物实验室四、实验材料1. 兔子1只2. 无菌手术包3. 麻醉药品4. 手术器械（手术刀、镊子、剪刀、止血钳、缝合针等）5. 无菌敷料6. 实验记录表五、实验方法1. 麻醉：首先对兔子进行麻醉，确保手术过程中兔子处于无痛苦状态。
2. 消毒：对实验区域进行严格消毒，包括手术台、器械、兔子皮肤等。
3. 铺无菌单：在手术台上铺好无菌单，以防止手术区域污染。
4. 手术操作：- 切开：使用手术刀沿预定路径切开兔子皮肤，暴露深层组织。
- 止血：使用止血钳夹住出血点，用棉球压迫止血。
- 结扎：使用缝合线对血管进行结扎，防止术后出血。
- 缝合：使用缝合针和缝合线对切开部位进行缝合，确保伤口愈合。
5. 术后护理：缝合完成后，对兔子进行术后护理，包括观察伤口愈合情况、给予适当的抗生素预防感染等。
六、实验结果1. 手术过程：手术过程中，操作规范，无菌观念较强，手术过程顺利。
2. 术后恢复：术后兔子恢复良好，伤口愈合整齐，无感染迹象。
七、实验讨论1. 无菌术的重要性：无菌术是外科手术中的基本原则，可以有效预防术后感染，保证手术效果。
2. 手术操作的规范性：手术操作的规范性直接影响手术效果和患者预后，需要医学生在实践中不断学习和提高。
3. 术后护理：术后护理是手术成功的关键环节，需要医学生掌握正确的护理方法，确保患者顺利康复。
八、实验总结本次外科兔综合实验，使我们对无菌术、外科基本操作技术、动物实验等有了更深入的了解。
通过实践操作，我们提高了手术操作的规范性和准确性，为今后从事临床工作打下了良好的基础。
九、实验反思1. 在实验过程中，由于操作不够熟练，导致部分时间浪费在寻找器械和调整手术器械上。
急性动物实验基本操作技术
健康家兔，体重2kg左右，雌雄不拘。
[实验药品及器材]
25%氨基甲酸乙脂（乌拉坦） 0.9%NaCl溶液 哺乳类动物手术器械1套
哺乳类手术器械
用于切开皮肤和脏器。常用手术刀由刀片和刀柄组成。 根据手术的部位与性质，可以选用大小、形态不同的手术 刀片。
哺乳类手术器械
哺乳类手术器械
三、实验内容
➢ （一）称重、麻醉 ➢ （二）固定、剪毛 ➢ （三）颈部手术
[实验步骤]
1、家兔的捉拿及称重。
×
××
✓
✓
2、家兔的麻醉
（1）麻醉药的选择 25%氨基甲酸乙脂(乌拉坦)，4ml/kg。
（2）麻醉的方法及部位：耳缘静脉注射
耳缘静脉（厚） 动脉
⊙ 耳缘静脉（薄）
麻醉效果的观察：指导P67页 （1）呼吸：呼吸变慢且均匀 （2）反射活动：角膜反射迟钝 （3）肌张力：全身肌肉松驰 （4）皮肤夹捏反应：消失
最粗 最细
分离神经和血管
神经分离示意图
神经分离示意图-示迷走神经
（6）颈总动脉插管
动脉插管：
先在远心端结扎左侧颈 总动脉，再用动脉夹在 近心端将其夹闭。用眼 科剪将动脉剪开一斜口， 将注满肝素生理盐水的 插管向心脏方向插入动 脉，结扎固定。
颈总动脉
动脉插管
6、家兔股部的手术
（1）用手触摸股动脉搏动，辨明动脉走向 （2）在皮肤上切3~5cm长的切口 （3）分离皮下组织及筋膜 （4）辨别神经血管
①在胸壁上造成1cm2的创口，使胸膜腔与 大气相通
②观察：胸内压的变化 呼吸的变化 肺组织的萎缩
8、处死动物 （1）空气栓塞 （2）大量放血
股神经（白色） 股动脉（粉红色） 外→内 股静脉（蓝色） （5）股动脉插管：方法同颈总动脉插管
兔实验技术操作
一、兔的抓取及保定1。
准备的物品、器械：固定器2。
简要:(1）徒手抓取（2）保定3。
解说操作:3.1徒手抓取用一只手将颈部的被毛和皮肤一起抓住提起,另一只手托住臀部。
（如图1）.也可一手抓住兔肩胛部的皮肤,另一手托住其臀部并将兔的头部放置于臂弯中，再用前臂支撑兔体.3.2 保定3.2.1将兔放在操作台上,用一只手抓住颈背部皮肤(包括兔耳）,另一只手压住腰部（或后肢)加以保定，可用于肌肉注射、灌胃等操作.3.2。
2 将兔放在操作台上，用左手抓住颈背部皮肤，使兔下半身固定在操作者左臂下方，用右手环抱兔前肢，适用于孕兔灌胃等操作.如图2.3.2.3盒式保定法:将兔放入兔保定盒内，盖上盖，使兔头露在盒外，便可进行采血或注射给药等操作。
3。
2。
4保定板保定：将兔仰卧或俯卧在保定板上，用布带保定，四肢和头部也用布带保定，即可进行心电图检查、注射给药、采血等操作。
4。
注意事项4.1 盖兔盒时必须要轻,不能用力压，否则兔脊椎骨很容易骨折，造成下肢瘫痪.4。
2 将家兔放回兔笼时，先将臀部及后肢放入笼内。
4.3 抓取时禁止抓提兔耳。
4。
4 抓取要稳、准、柔、快,不可过分用力抓捏腰腹部。
二、兔的采血方法1。
准备的物品、器械：注射器、采血管、止血带、酒精棉球、干棉球、保定架等2。
简要:耳静脉采血、耳动脉采血、后肢静脉采血、心脏采血3。
解说操作3.1耳缘静脉或耳动脉采血3.1.1 将兔保定于保定器内，用酒精棉球擦拭消毒。
3。
1.2助手固定兔耳，并压迫耳缘静脉根部,使血管充盈；操作者手持注射器，针头沿耳缘静脉平行刺入血管,慢慢抽取血液.3.1.3 助手固定兔耳，操作者手持注射器,在耳中央动脉末端,使针头沿血管平行方向刺入动脉,血液即可流入注射器内.3.1.4 采血完毕后立即用消毒干棉球压迫止血。
3。
2后肢静脉采血3。
2.1 兔固定于兔保定架上，剪去胫部被毛，股部扎上止血带，使胫外侧皮下静脉充盈。
3。
2.2 固定静脉，用左手两指固定好静脉,右手取带有针头的注射器内皮下静脉平行方向刺入血管，抽一下针栓，如血进入注射器，表示针头已刺入血管，即可取血。
兔的灌胃实验报告
一、实验目的1. 掌握兔的灌胃操作技术。
2. 熟悉兔的生理特点，提高实验操作技能。
3. 验证灌胃给药方法的正确性。
二、实验材料1. 实验动物：成年兔1只2. 实验仪器：开口器、导尿管、注射器、剪刀、酒精棉球、生理盐水、药物等3. 实验环境：安静、明亮、温度适宜的实验室三、实验方法1. 将兔固定在实验台上，左手握住兔的头颈部，用拇指和食指压迫其口角部使口张开。
2. 将开口器置于兔的上、下腭齿之间，并固定。
3. 右手持导尿管，由开口器的小圆孔，沿咽后慢慢进入食道插入胃中。
4. 观察兔子是否自动吞服，如位置插入正确，则兔子会自动吞服；如位置不正确，则兔子会乱动，此时应立即拔出，重新插入。
5. 为防止插入气管内，可将导尿管外端放入盛水的小烧杯中，若不冒气泡则说明导管插入胃中，反之则要重插。
6. 将药物注入导尿管，待药物注完后，以少量清水冲洗残留管内药液。
7. 慢慢抽出导尿管，用酒精棉球擦拭兔子的口腔和皮肤。
四、实验结果1. 实验兔经口灌胃给药成功，兔子能够自动吞服药物。
2. 导流管插入胃中，导流管外端放入盛水的小烧杯中不冒气泡。
五、实验分析1. 实验兔灌胃给药成功的关键技术：（1）固定实验用兔的头部，使兔口张开；（2）正确插入导流管，避免插入气管；（3）观察兔子是否自动吞服药物；（4）掌握药物注入和冲洗技巧。
2. 实验兔灌胃给药成功的判断标准：（1）兔子能够自动吞服药物；（2）导流管插入胃中，导流管外端放入盛水的小烧杯中不冒气泡。
六、实验结论本次实验成功完成了兔的灌胃操作，掌握了兔的灌胃关键技术，为后续实验操作奠定了基础。
在实验过程中，需要注意以下几点：1. 操作前应充分了解兔的生理特点，确保实验操作的正确性；2. 操作过程中要保持耐心和细心，避免对实验兔造成伤害；3. 严格掌握药物注入和冲洗技巧，确保实验结果的准确性。
七、实验心得通过本次实验，我对兔的灌胃操作技术有了更深入的了解，提高了自己的实验操作技能。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
仰卧位
备皮
剪毛法：从下颌至胸骨柄，使用弯剪，勿用手将 毛提起，以免剪破皮肤，兔毛放入水中
剪皮
两手拉紧气管两侧的皮肤，用直剪刀剪一口， 再向上剪至下颌、向下至胸骨柄处。
家兔的手术操作
分离气管 分离颈总动脉
分离迷走神经、交感神经、喉返神经和减压神经
分离气管
分离颈总动脉、迷走、交 感、喉返和减压神经
推注后2/3时，观察家兔状态，四肢松软，角 膜反射迟钝时，即可停止麻醉 ※注意事项：尽可能先从耳缘静脉远心端注射， 随时观察动物情况
拔毛
耳缘静脉注射
检查麻醉深度——角膜反射
兔台固定
固定四肢：以四条1cm宽的布带做成活的圈套，前 肢系在腕关节以上，后肢系在踝关节以 上，前、后肢分别拉直固定于兔台上。 固定头部：将家兔头部用兔头固定器或用棉线钩住 门齿，固定于兔台头端的铁杆。 固定体位：仰卧位（兔背部贴于兔台） 俯卧位（兔腹部贴于兔台）
家兔的给药方法
耳缘静脉注射
灌胃给药
耳缘静脉注射
家兔的麻醉
腹腔给药：
3%戊巴比妥1ml/kg体重。 在左下腹位置，避开肝、脾。
耳缘静脉注射：5ml/kg（20%氨基甲酸乙脂）+2ml
耳缘静脉麻醉
家兔称重后除去耳缘静脉上被毛，用20ml注 射器缓慢推注乌拉坦麻醉
推注过程中，前1/3要快速推注，其余的在 3~5min内推注完。
实验流程
家兔的捉拿固定
家兔的给药方法 家兔的麻醉 家兔的手术操作（分离动脉、神经） 家兔的心脏采血
家兔的处死
认识家兔的脏器
家兔的捉拿固定
右手抓其背部将家兔提起
左手托住兔臀部，使兔呈坐位姿态
将兔放在磅称上称重
兔的固定
兔盒固定 ห้องสมุดไป่ตู้兔台固定
兔盒固定
将兔放入兔盒固定器内，使头部、双 耳伸出兔盒前壁凹形口，关上兔盒顶盖
将线穿在每种组织下面，拉起观察
腹股沟手术
备皮 剪皮：手指按搏动处
剥离：用手顺纹理拉开肌肉，出现一条索状 团块（股动脉、股神经、股静脉） 股动脉：粉红色，较颈总动脉细 股神经：白色 股静脉：暗蓝色
心脏穿刺采血
• 家兔仰卧位固定，剪去心前区被毛，消毒皮肤。 • 在胸骨左缘第三肋间或在心跳搏动最显著部位， 用7号针头的注射器，刺入心脏，刺入心脏后血 液一般可自动流入注射器，或者边刺入边抽吸， 直至抽出血液。抽血后迅速拔出针头。 • 心脏取血可获得较大量的血样。 • 采血后，冲洗针头。
• 空气量，猫和兔为20~50ml，10ml即可。
结束实验
• 取下器械，抓住两腿，放入盆中。
• 擦洗解剖台，放回原位。 • 擦洗器械、桌子，交还器械。
注意事项
掌握麻醉深度，避免家兔死亡。
分离血管、神经动作轻柔。
• 顺气管方向剥离2~3cm，暴露出现颈总动脉、 迷走、交感、喉返、减压神经 • 用止血钳钝性剥离，筋膜层、肌肉层逐层进行， 不要使用手术刀、剪刀，避免损伤血管、神经
组织特点
颈总动脉：粗、分红色 迷走神经：最粗，白色 交感神经：第二粗，白色 减压神经：较细，白色 喉返神经：最细，白色
机能实验室
Welcome !
动物实验的基本操作 (兔类)
针灸推拿学科 基础医学院 王培育 杜彩霞
实验目的
掌握捉拿固定、家兔给药方法、麻醉、脱 毛、颈部、腹部解剖结构。 了解家兔心脏采血方法、处死方法、脏器 形态特征。
实验对象——家兔
实验器材
手术刀、剪子镊子、止血钳、注射器、 兔手术台、注射器、棉花、纱布、烧 杯 20％氨基甲酸乙酯溶液（乌拉坦）、 生理盐水
观察脏器
胸腔脏器：心脏（跳动） 肺（萎缩）
腹腔脏器：肝、胆、胃、脾、胰（脂肪 样组织）、大、小肠、盲肠 （黑色，最大）
观察脏器
盲肠蚓部（红色，新鲜，长约12cm）
膀胱（耻骨联合上方）
子宫（双子宫）、卵巢、睾丸
处死——空气栓塞法
• 适用处死兔、猫、犬。 • 向实验动物静脉（耳缘静脉）内注入空气，形 成肺动脉或冠状动脉空气栓塞，或导致心腔内 充满气泡，心脏收缩时气泡变小，心脏舒张时 气泡变大，从而影响回心血液量和心输出量， 引起循环障碍、休克、死亡。