植物组织离体培养2
6 植物组织培养实验二PPT课件
谢谢你的到来
学习并没有结束,希望大家继续努力
Learning Is Not Over. I Hope You Will Continue To Work Hard
演讲人:XXXXXX 时 间:XX年XX月XX日
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2、无菌操作要注意:每次操作前, 将双手用酒精棉球擦拭消毒;镊 子、解剖剪刀等金属工具用火焰 烧过灭菌,冷却后方可使用;尽 量减少无菌三角瓶或培养皿在空 气中的暴露时间;所有无菌操作 尽量快速完成,并要求在酒精灯 附近进行。
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3、请先在自然条件下练习外植体解剖, 分割成0.5cm2左右的小块(段),经操 作熟练,检查无误后,再进行无菌解 剖分割及接种,以减少植物材料染菌 或失水死亡的机率。
欢迎同学们进入奇幻的植物组织培养实验世界
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植物组织培养实验Ⅱ——— 外植体取材﹑表面消毒与接种
实验目的 实验原理、基本知识 实验用品、材料 实验要求 实验内容 、方法 实验报告——作业 下一次实验预告
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一、实验目的
1、掌握无菌操作技术,加深对无菌操作的了
解;
2、掌握常规的植物细胞组织培养技术,达到 能独立操作的能力
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7、打开三角瓶——铝箔纸的拿法
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8、瓶口在火焰上烧过
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9、铝箔纸的放法
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10、镊出黄瓜苗
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11、镊出黄瓜苗
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12、放入培养皿中
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13 、
黄 瓜
幼 苗 形 态
生 长 点
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——
14、剪取茎段
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15、剪好的外植体
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16、黄瓜切块的接种
植物组织培养技术第四章:植物离体培养体系2
修剪外植体
接种
盖好瓶塞
外植体的灭菌处理
• 外植体灭菌流程 • 常用灭菌剂 • 灭菌关键性问题
– 适当的搭配 – 适当的浓度 – 适当的时间
外植体灭菌流程
材料的预处理 (剪切、清洗)
75%酒精 (20 s)
0.1%升汞 (15 min)
无菌水冲洗 (6次)
沥干
接种
外植体的预处理
对外植体进行修整,去掉不要的部分,在 流水下冲洗干净.
化的方法与技能。
一、外植体的种类与选择
1、外植体的种类
– 外植体是指植物离体培养中的各种接种材料。 包括植物体的各个器官、组织、细胞和原生质 体等。因此,可以作为培养对象的所有植物器 官、组织、细胞、原生质体等均是可选择的对 象。
常见外植体类型
• 茎尖(园艺植物组织培养中应用最多,繁殖率高, 不易发生遗传变异,但取材有限)
消毒注意事项
1、表面消毒剂对植物组织是有害的,应正确选择消毒 剂的浓度和处理时间,以减少组织的死亡。
2、在表面消毒后,必须用无菌水漂洗材料3次以上以 除去残留杀菌剂,但若用酒精消毒,则不必漂洗。
3、与消毒剂接触过的切面在转移到无菌基质前需将其 切除,因为消毒剂会阻碍植物细胞对基质中营养物质 的吸收。
第二节: 无菌外植体的选择与处理
本节主要内容
• 外植体的种类与选择 • 外植体的消毒 • 外植体的接种 • 外植体的初代培养与观察
–培养条件 –外植体的污染及其防治 –外植体的褐化及其防治 • 外植体的继代培养 –培养物的分化诱导培养:愈伤组织的诱导与分化;不
定芽的诱导与分化。 – 试管苗的增殖与生根诱导培养 – 试管苗的玻璃化与防治
4、若外植体污染严重则应先用流水漂洗1小时以上或 先种子培养得到无菌种苗,然后用其各个部分建立组 织培养。
组织培养的分类
组织培养的分类
植物组织培养概念(广义)又叫离体培养,指从植物体分离出符合需要的组织。
器官或细胞,原生质体等,通过无菌操作,在人工控制条件下进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他产品的技术。
植物组织培养概念(狭义)指用植物各部分组织,如形成层、薄壁组织、叶肉组织、胚乳等进行培养获得再生植株,也指在培养过程中从各器官上产生愈伤组织的培养,愈伤组织再经过再分化形成再生植物。
按外植体分,植物组织培养可分以下几类:
1.胚胎培养植物的胚胎培养,包括胚培养、胚乳培养、胚珠和子房培养,以及离体受精的胚胎培养技术等。
2.器官和组织培养器官培养是指植物某一器官的全部或部分或器官原基的培养,包括茎段、茎尖、块茎、球茎、叶片、花序、花瓣、子房、花药、花托、果实、种子等。
组织培养有广义和狭义之分。
广义:包括各种类型外植体的培养。
狭义:包括形成层组织、分生组织、表皮组织、薄壁组织和各种器官组织,以及其培养产生的愈伤组织。
3.细胞培养细胞培养包括利用生物反应器进行的,旨在促进细胞生长和生物合成的大量培养系统和利用单细胞克隆技术促进细胞生长、分化直至形成完整植株的单细胞培养。
4.原生质体培养植物原生质体是被去掉细胞壁的由质膜包裹的、具有生活力的裸细胞。
植物组织培养 (2)
——得到完整植株的途径
一、植物组织培养的概念
• 植物组织培养:
是指在无菌条件下利用人工培养基对离体的植物器官、 组织、细胞、原生质体等进行的培养。
外植体(explant):由活体植物体上切取下来的,用于
组织培养的各种接种材料。包括各种器官、组织、细胞或 原生质体等。
愈伤组织(callus):原指植物受伤后在伤口表面形成
1978年,Melchers等进行了番茄和马铃薯的体细胞杂交。
1979年,Marton提出了利用植物原生质体和土壤农杆菌共培养的方 法进行转化。
1981年,Larkin和Scowcroft引入“体细胞无性系变异(Somaclonal variation)”这一术语。
1982年,Krens等的工作证明,原生质体可以摄入裸露的DNA,表明 可以用外源DNA对原生质体进行遗传转化。
3、植物组织培养技术的发展(1960年以后)
1960年,Morel利用兰花茎尖培养对兰花进行营养繁殖;
1962年,Murashige和Skoog开发出最著名的Murashige和Skoog培养基 (MS基本培养基),并被后来广泛采用的基本培养基。
1964年,印度人Guha和Maheshwari利用曼陀罗花粉培养获得第一例 单倍体植株。从而开辟了单倍体育种技术。
1948年,Skoog等通过对烟草茎段和髓培养发现,不定芽和不定根的发生 由生长素/腺嘌呤的比例决定。
1950年,Ball从红杉愈伤组织培养中再生获得器官。
1952年,Morel和Martin通过分生组织培养获得大丽花的脱毒植株,同 年,首次应用微型嫁接技术。
1953年,Tuleche首次从花粉培养中获得银杏的单倍体愈伤组织。
F G
植物组织培养中的快繁与脱毒技术及其应用
植物组织培养是一种重要的生物技术,它能够实现植物的快速繁殖、脱毒和基因转化。
在植物学研究和植物育种领域,植物组织培养技术的应用非常广泛。
本文将深入探讨植物组织培养中的快繁与脱毒技术及其应用,以帮助读者更深入地理解这一重要领域。
1. 快繁技术在植物组织培养中,快繁技术是指利用植物体的一小部分组织或细胞,通过体外条件培养,实现植物的快速繁殖。
这种技术可以大大提高繁殖速度,缩短繁殖周期,是进行新种质创制、遗传改良和疫病防治的重要手段。
快繁技术的主要方法包括离体培养、愈伤组织培养和微繁殖等。
1.1 离体培养离体培养是将植物体表层(如幼叶、幼茎)或内部组织(如胚乳、子叶)分离出来,移入含有适当营养盐和植物生长调节物的培养基中培养。
通过控制培养条件和添加合适的植物生长激素,可以诱导组织分化和再生形成新植株。
1.2 愈伤组织培养愈伤组织是植物在受到外界刺激或损伤后,经过细胞分裂和组织再生形成的一种未分化的组织。
愈伤组织培养是利用这种特殊组织进行快速繁殖的一种方法,通过控制培养条件和添加植物生长调节物,可以诱导愈伤组织再生形成新植株。
1.3 微繁殖微繁殖是利用植物的微小芽或胚珠进行快速繁殖的方法。
通过培养条件的控制和植物激素的添加,可以诱导微小芽或胚珠快速生长并形成新植株。
2. 脱毒技术在植物组织培养中,由于植物体内可能携带病毒、细菌等病原体,因此会影响到组织培养的效果。
脱毒技术是为了解决这一问题而出现的一种重要技术。
脱毒技术能够有效地清除植物体内的病原体,提高组织培养的成功率和繁殖效率。
2.1 生物脱毒生物脱毒是利用生物制剂对植物体内的病原体进行清除的方法。
通过培养环境中添加含有特定菌株或真菌的生物剂,可以促进植物体内病原体的清除和组织的健康再生。
2.2 生理脱毒生理脱毒是利用植物自身的生理代谢特性进行脱毒的方法。
通过调节培养条件和添加特定的营养物质,可以激活植物的生理代谢活性,加速病原体的清除和组织的再生。
植物组织培养在现代农业中的具体应用
三、植物新品种培育
3、细胞融合 通过原生质的融合可部分客服有性杂交不亲和,从而获得体细
胞杂种,创造新物种或优良品种。
三、植物新品种培育
4、选择细胞突变体 离体培养过程中会发生变异,从中可以筛选出对人们有用的突
变体,进而育成新品种。
四、生产植物次生代谢物
利用植物组培技术生产一些价格高、产量低、需求量大的次 生代谢产物,其具有一些特定的功能,对人类有重要的影响和作用。
五、植物种质资源离体保存
1、常规的植物种植资源保存方法耗资巨大,种 质资源流失的情况时有发生。
2、通过抑制生长或超低温贮存的方法离体保存 植物种质资源,可节约大量的人力、物力和财 力,还可挽救那些濒危物种。
3、离体保存还可避免病虫害侵染和外界不利气 候及栽培因素的影响,可长期保存,有利于种 质资源材料的远距离交换。
江西野生金线莲
六、人工种子
1、人工种子是利用人工种皮包被植物组织培养中得到的体细胞胚。 2、人工种子可为某些珍稀物种的繁殖、转基因植物、自交不亲和植物、远缘 杂种的繁殖提供有效的手段。
任务二 植物组织培养在农业 生产中应用
目录
01
植物离体快速繁殖
02
植物种苗脱毒
03
植物新品种培育
04
植物次生代谢物生产
05
Hale Waihona Puke 植物种植资源保存06人工种子
一、植物离体快速繁殖
1、植物快繁是植物组织培养在生 产中应用最广泛,产生较大经济效 益的一项技术。
2、植物快繁具有不受季节和气候 等条件限制、可周年生产、生长周 期短、繁殖速度快、种苗整齐一致 等优点。
4、植物组培种苗脱毒广泛应用于花卉、果树、 蔬菜、苗木等植物。
植物组织培养实验离体培养技术
植物组织培养实验离体培养技术植物组织培养实验离体培养技术是一种在无菌条件下,通过分离和培养植物细胞、组织和器官,使其在人工培养基上生长和发育的方法。
该技术可用于繁殖、育种、细胞学和分子生物学等方面的研究。
下面将介绍植物组织培养实验离体培养技术的步骤和应用。
一、实验步骤1. 消毒处理:将实验所需的工具、试剂、培养基等进行消毒处理,以保证实验的无菌条件。
2. 材料准备:准备植物材料,根据实验需要选择适合的植物种子、芽、茎段或叶片等。
3. 材料表面消毒:使用适当的消毒剂对植物材料进行表面消毒,以杀灭携带在材料表面的细菌、真菌等微生物。
4. 组织分离:将消毒后的植物材料进行切割、研磨等处理,将细胞、组织分离出来。
5. 培养基制备:根据实验需求,配置适当的培养基,包括基础培养基、激素、糖等成分。
6. 培养条件控制:将分离的植物细胞、组织置于培养基中,控制适宜的温度、光照、湿度等条件,促进细胞分化和生长发育。
7. 培养周期管理:定期更换培养基,检查细胞、组织的生长情况,及时调整培养条件,防止细菌、真菌污染。
二、技术应用1. 植物繁殖:通过植物体外培养技术,可以快速大量繁殖植物种子、芽、茎段等,加快繁殖速度,扩大繁殖规模。
2. 植物育种:利用离体培养技术,可以进行杂交、选择、突变等方法,对植物进行育种改良,获得对病虫害抗性强、产量高的新品种。
3. 细胞学研究:通过离体培养技术,可以对植物细胞进行融合和遗传转化等技术操作,从而探究细胞的形态、结构、代谢等方面的基本规律。
4. 分子生物学研究:离体培养技术可用于植物基因工程研究,如构建转基因植物、表达外源蛋白等。
5. 植物营养生理研究:通过离体培养技术,可以灵活控制培养基的成分,从而研究植物的营养需求、代谢物的合成和转运等问题。
6. 药物生产:某些药用植物可通过离体培养技术进行规模化生产,如对黄连、黄芩等中草药的快速繁殖和有效成分的提取。
总结起来,植物组织培养实验离体培养技术是一种重要的生物学研究方法,应用广泛且前景广阔。
植物离体培养的名词解释
植物离体培养的名词解释植物离体培养是一种通过将植物的细胞、组织或器官分离出来,并在无菌条件下培养和繁殖的技术。
它广泛应用于不同领域,如农业、园艺、医药和基础研究。
本文将从植物离体培养的流程、应用领域以及相关技术创新几个方面对植物离体培养进行解释。
首先,植物离体培养的流程包括三个关键步骤:组织分离、营养培养和再生器官的形成。
组织分离通常通过优选出健康、生长迅速的植物组织,如幼嫩叶片、茎尖或种子胚等。
然后,将这些组织分离出来,消毒处理,并转移到无菌培养基上。
培养基是经精确配方调制,含有适当营养物质和生长调节剂的培养基质。
在培养基中,组织将得到营养供应,并通过适当的温度、湿度和光照条件来促进其细胞分裂和扩增。
最后,通过调整培养基中营养物质和激素的含量,可以诱导植物再生器官的形成,如根、茎、叶或花。
植物离体培养在众多领域中具有广泛的应用。
在农业中,它可以用于快速繁殖和选育优良的植物品种。
通过培养和分离植物的组织或细胞,可以大大加快繁殖和育种的速度,避免了传统繁殖方法中的生物限制,并且可以在短时间内获得大量的幼苗或种子。
此外,植物离体培养还可以用于研究植物的生理、遗传、代谢和抗逆性等方面。
通过调控培养基中的成分和激素含量,可以模拟植物在不同环境条件下的响应,从而揭示植物的生长发育机制,为植物改良和遗传工程提供理论基础。
近年来,植物离体培养技术取得了一系列的突破和创新。
首先,通过应用基因编辑技术,如CRISPR/Cas9等,可以针对植物基因组中的特定位点进行定点编辑,从而实现植物基因的精确调控和功能研究。
其次,利用离体培养技术结合植物激素的调控,可以实现非传统植物繁殖途径的建立,如无性繁殖和植株重组。
这不仅为植物繁殖的多样性提供了新的途径,也为保护濒危植物和利用植物基因资源提供了新的手段。
此外,离体培养技术还可以与其他生物技术相结合,如细胞工程、分子标记和组织培养等,形成多层次的研究方法,更好地解析和应用植物的基因组信息。
植物组织培养
植物组织培养:在无菌的条件下,将离体的植物材料包括器官,组织,细胞以及原生质体在人工培养基上进行培养,使其再生发育成完整植株的过程,又称植物离体培养。
细胞全能性:植物体的任何一个细胞都携带该物种的全部遗传信息,离体细胞在一定的条件下具有发育成完整植株的潜在能力。
外植体:植物组织培养中离体的植物材料,包括植物器官,胚胎、组织、细胞和原生质体。
细胞分化:导致细胞形成不同结构,引起功能改变或潜在发育方式改变的过程。
脱分化:已分化成熟的植物组织或器官回复到分生状态,细胞开始分裂形成无组织结构的细胞团或愈伤组织的过程。
再分化:是指在一定条件下,脱分化形成的愈伤组织转变成为具有一定结构、执行一定生理功能的细胞团和组织、并进一步形成完整植株的过程,即从愈伤组织再生形成完整植株的过程。
愈伤组织:植物体受伤后的伤口处或在植物组织培养中外植体切口处产生的一团不定型的薄壁组织。
离体无性繁殖:根据植物细胞全能性原理,在无菌条件先短时间内形成大量植株。
玻璃化苗:在植物组培中,茎叶形成透明矮小肿胀的形态,生根能力差。
问答题:1、无菌操作是贯穿于整个组织培养过程的一门关键技术,请根据自己的体会论述如何在植物组织培养过程中做到无菌?1)取少菌的材料(春夏,中午的幼芽)2)严格灭菌3)合理安排操作程序4)无菌保存5)操作规范2、组培在生产上的应用有哪些?学好植物组培的意义?1)植物快速繁殖:增殖速度快,成本低,易于批量生成和管理。
比如利用一小块叶片或一个茎尖,一年内可繁殖出1000-100000株幼苗2)脱除病毒:植物在生长过程中几乎都要蒙受到病毒的危害,采用茎尖培养方法可以除去植物体内的病毒。
脱毒苗恢复了原有的优良种性,生长势明显增强,整齐一致。
3)培养新品种:克服远缘杂交不亲合性;克服远缘杂交的不孕性;选择细胞突变体;单倍体育种;转基因育种。
4)植物次生代谢产物生产:利用植物组织后细胞的大规模培养,可以生产一些天然有机化合物,这些次生代谢产物,往往具有一些特定的功能,对人类有重要的影响和作用。
植物组织培养第二章
(三)Байду номын сангаас细胞胚胎发生的基因表达机理(略)
二、植物体细胞胚胎发生途径
(一)体细胞胚胎发生的方式 由外植体诱导体细胞胚胎发生的途径有两种: 直接途径和间接途径。 直接途径:从外植体某些部位的胚性细胞直接 诱导分化出体细胞胚胎。这种“胚性细胞”是在胚 胎发生之前就已决定了的。 间接途径:外植体先脱分化形成愈伤组织, 在从愈伤组织的某些细胞,即重新决定为胚性细胞 的细胞分化出体细胞胚胎,多数体细胞胚胎的形成 是通过间接途径产生的。
植物愈伤组织的培养
愈伤组织培养是指将母体植株上的各个部分切下,形成 外植体,接种到无菌的培养基上,进行愈伤组织诱导、生长 和发育的一门技术。 一般情况下,植物组织均能诱发形成愈伤组织,由外植 体形成愈伤组织,标志着植物离体培养的开始。
差异:(1) 受精卵的全能性最高 (2) 受精卵分化 后的细胞中,体细胞的全能性比生殖细胞的低。 潜在全能性的原因:基因表达的选择性
科学研究表明,处于离体状态的植物活细胞,在一 定的营养物质、激素和其他外界条件的作用下,就 可能表现出全能性,发育成完整的植株。 人工条件下实现的这一过程,就是植物组织培养。
三、植物体细胞胚胎发生的极性和生理隔离
体细胞胚胎具有两个明显特点: 1、双极性 2、与母体组织或外植体的维管束系统无直接联系,处于较为 孤立的状态,即存在生理隔离。
(一)体细胞胚胎发生的极性
单个胚性细胞与合子胚一样,具有明显的极性,第一次 分裂多为不均等分裂,顶细胞继续分裂形成多细胞原胚,基 细胞进行少数几次分裂形成胚柄。 (二)体细胞胚胎发生的生理隔离
第二章
植物组织培养的基本原理
植物细胞全能性理论是植物组织培养的核 心理论。 离体细胞具有生命的特征属性,在全能性的 基础上,提供合适的营养和环境条件,离体细 胞经历脱分化和再分化过程
智慧树知到《植物组织培养》章节测试答案
智慧树知到《植物组织培养》章节测试答案绪论1、由一个成熟细胞转变为分生组织状态或胚性细胞状态的过程称为()。
A:分化B:脱分化C:再分化D:转化答案:脱分化2、由离体器官直接产生小植株的发生途径属于()。
A:直接器官发生型B:间接器官发生型C:胚胎发生型D:无菌短枝扦插答案:直接器官发生型3、大部分兰花的发生途径是()。
A:直接器官发生型B:间接器官发生型C:胚胎发生型D:原球茎发生型答案:原球茎发生型4、木本植物常采用()发生途径。
A:直接器官发生型B:间接器官发生型C:胚胎发生型D:无菌短枝扦插答案:无菌短枝扦插5、植物组织培养的特点有()。
A:取材少,培养物经济B:培养条件XXX为掌握C:生长周期短,繁殖率高D:管理方便,有益于主动化掌握谜底:取材少,培养物经济,培养条件可儿为掌握,发展周期短,繁殖率高,管理方便,有益于主动化掌握6、下列具有细胞全能性的细胞是()。
A:成熟的老细胞B:幼嫩的组织细胞C:愈伤组织细胞D:番茄的受精合子答案:成熟的老细胞,幼嫩的组织细胞,愈伤组织细胞,番茄的受精合子7、下列哪些属于愈伤组织的特点()。
A:无组织结构B:高度液泡化C:细胞大而不规则D:没有次生细胞壁和胞间连丝谜底:无组织结构,高度液泡化,细胞大而不规则,没有次生细胞壁和胞间连丝8、按所用培养基类型可以划分为()。
A:固体培养B:液体培养C:种子培养D:细胞培养答案:固体培养,液体培养9、按培养过程可以分别为()。
A:固体培养B:液体培养C:初代培养D:继代培养答案:初代培养,继代培养10、胚胎培养的目的是克服败育和三倍体育种。
A:对B:错谜底:对11、将培养物转移到配方相同的新鲜培养基上进行培养称为初代培养。
A:对B:错答案:错12、所有的离体材料都可以称作为外植体。
A:对B:错答案:错第一章1、接种室里配备主要仪器设备有()。
A:蒸馏水器B:XXX事情台C:药品柜D:培养基灌装机答案:超净工作台2、调整培养基pH所用到的仪器是()。
园艺植物离体培养
(0721)《园艺植物离体培养》网上作业名词解释1.外植体用于组织培养(离体培养)的植物材料,如根、茎、叶、花药、胚珠等。
2.离体培养指从植物体分离符合需要的组织,器官或细胞(包括去壁后的原生质体、离开花药的花粉细胞等)等作为外植体,通过无菌操作,在人工控制条件下进行培养,以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他生物产品的一种技术。
3.不定芽在植物离体培养中,由外植体脱分化形成愈伤组织,继而形成一些分生细胞,分化形成一些芽丛,这些芽即是不定芽。
4.细胞全能性一个完整的植物细胞拥有形成一个完整植株所必需的全部遗传信息,植物细胞在适宜条件下具有发育成完整植株的潜在能力。
5.胞质杂种所谓胞质杂种(Cybrid)是指一个物种的细胞质(不包括核基因组)基因与另一个物种的细胞质和胞核基因融合为一体的体细胞杂种产物。
6.继代培养组织培养中,培养物培养一段时间后,为了防止培养的细胞团老化,或培养基养分利用完而造成营养不良及代谢物过多积累毒害等的影响,要及时将其转接到新鲜培养基中进行培养。
7.胚状体所谓胚状体(embryoid):指在组织和细胞培养中产生的在形态结构上与合子胚相类似的结构。
对称体细胞胚(Somatic embryo),简称体胚。
8.原生质体培养原生质体就是除去细胞壁后的裸露细胞,经分离纯化的原生质体作为外植体,在适当的培养基和培养条件下进行组织培养的方法。
9.体细胞杂交体细胞杂交(Somatic hybridisation),或称原生质体融合,是以植物体细胞原生质体为亲本进行融合而获得杂种后代的一种细胞工程技术10. 愈伤组织培养答:是一团没有分化的可以持续旺盛分裂的细胞团,是组织培养过程中经常出现的一种组织形态。
有致密和疏松两类之分。
11. 单倍体育种答:通过花药或花粉培养获得的单倍体植株,经过秋水仙素等加倍成纯合二倍体。
12. 灭菌答:组织培养中,器皿和培养基可以分别采用干热灭菌和湿热灭菌。
植物离体培养的流程进行说明
植物离体培养的流程进行说明英文回答:Plant Tissue Culture: A Comprehensive Guide to the Process.Plant tissue culture is a technique used to propagate plants from small pieces of tissue, such as stems, leaves, or roots. The tissue is placed in a nutrient-rich medium and grown under controlled conditions, allowing the plant to regenerate into a whole new plant. This technique is widely used in horticulture, agriculture, and biotechnology for various purposes, including rapid plant propagation, genetic engineering, and germplasm preservation.The process of plant tissue culture typically involves the following steps:1. Explant Selection:The first step is to select the appropriate plant tissue for culturing. The explant should be free of any diseases or contamination and should contain viable cells capable of regeneration.2. Surface Sterilization:The explant is then surface sterilized to remove any surface contaminants. This can be done using various methods, such as washing with bleach or treating with antibiotics.3. Culture Medium Preparation:The culture medium is prepared according to the specific requirements of the plant species being cultured. The medium typically contains nutrients, hormones, and vitamins essential for plant growth and development.4. Inoculation:The explant is placed on the culture medium andundergoes inoculation. This involves carefully transferring the explant to the medium without causing any damage.5. Incubation:The inoculated culture is incubated under controlled conditions, typically in a growth chamber or an incubator. The temperature, humidity, and light conditions are optimized to promote plant growth and development.6. Callus Formation:After inoculation, the explant may form a callus, which is an undifferentiated mass of cells. The callus can be subcultured onto fresh medium to promote further growth and differentiation.7. Shoot and Root Induction:Plant growth regulators (PGRs) are added to the medium to induce shoot and root formation. Different types of PGRs and their concentrations can be used to control the balancebetween shoot and root development.8. Acclimatization:Once the plantlets have developed sufficiently, they are gradually acclimatized to the greenhouse or outdoor conditions. This involves exposing the plantlets to lower humidity and higher light intensity over a period of time.9. Transplantation:The acclimatized plantlets are then transferred to soil or other growth substrates and grown to maturity.Plant tissue culture offers several advantages, including:Rapid plant propagation: It allows for the production of a large number of plants from a single explant in a relatively short period.Genetic uniformity: The plants produced through tissueculture are genetically identical to the parent plant, ensuring clonal uniformity.Disease-free plants: The controlled environment and sterilization procedures minimize the risk of disease transmission.Germplasm preservation: Tissue culture can be used to preserve rare or endangered plant species by storing their genetic material in a safe and controlled environment.中文回答:植物离体培养,流程详解。
植物组织培养绪论第一章第二章大纲
一、植物组织培养的广义含义(tissue culture)在无菌条件下,将离体植物的器官、组织、细胞或原生质体在人工配制的培养基上,并给予适当的培养条件使其长成完整植株的过程或生产具有经济价值的其他产品的技术。
也称离体培养(Invitro culture)。
二、此定义内涵:1、无菌条件(asepsis):外植体、培养基、培养容器、接种工具、操作环境、培养环境等。
2、外植体(explant):健康植株的特定部位或组织,如根、茎、叶、花、果实、胚珠、花药和花粉等,选择用于组织培养的起始材料,称之为外植体。
包括营养器官、生殖器官、组织、细胞等。
3、培养基(culture medium):是植物组织培养的重要基质,它提供植物生长所需的营养物质。
人工配制,成分确定。
4、组培的理论基础:植物细胞的全能性(totipotent)。
5、激素:调控培养物的状态和发育方向,实现不同的实验目的。
6、封闭培养:通过封口材料实现气体交换。
7、培养条件( culture condiction):人为控制。
*植物组织培养的狭义含义指对植物体所有组织如分生组织、胚乳组织、薄壁组织、花药组织、愈伤组织的培养。
本课程所涉及的组织培养若无特殊说明均指广义含义。
三、植物组织培养的四要素(1)无菌(2)培养材料:①器官:根、茎、叶、花、果实②组织:花药组织、胚乳、皮层等③细胞:体细胞(2n)、生殖细胞(n)④原生质体(3)培养基(4)培养条件:温度、光照、湿度等四、与组培有关的术语及理论1、植物细胞全能性(totipotent):植物细胞具有该植物体全部遗传的可能性,在一定条件下具有发育成完整植物体的潜在能力。
原理:植物体的每一个细胞都包含有该物种所特有的全套遗传物质,都有发育成为完整个体所必需的全部基因,从理论上讲,植物体的每一个活细胞都应该具有全能性。
潜在全能性的原因:基因表达的选择性。
科学研究表明,处于离体状态的植物活细胞,在一定的营养物质、激素和其他外界条件的作用下,就可能表现出全能性,发育成完整的植株。
植物组织培养技术
植物基因编辑:利 用组织培养技术, 可以对植物基因进 行编辑,提高植物 的抗病性、抗虫性 等特性。
植物生物反应器: 组织培养技术可以 用于生产生物药物 、生物燃料等,提 高生物产业的发展 水平。
植物修复技术:组 织培养技术可以用 于修复受损的植物 组织,提高植物的 生存能力和生长速 度。
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汇报人:
生物反应器技术:利用生物反应器技术,实现植物组织培养的规模化和自动化
生物信息学技术:利用生物信息学技术,分析植物组织培养过程中的基因表达和调控机制
合成生物学技术:利用合成生物学技术,设计和构建新型植物组织培养体系,提高植物组织 培养的效率和成功率。
应用前景
植物新品种的培育: 通过组织培养技术, 可以快速培育出新 的植物品种,提高 农业生产效率。
缺点
技术要求高:需要熟练掌握植物组织培养技术,操作难度大 成本高:培养基、培养设备、培养室等成本较高 成功率低:植物组织培养成功率较低,需要多次尝试 培养周期长:植物组织培养周期较长,需要耐心等待
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植物组织培养技术的未 来展望
技术创新方向
基因编辑技术:通过基因编辑技术,提高植物组织培养的效率和成功率
应用:植物组织培养技术广泛应用 于植物育种、生物技术、植物保护 等领域。
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原理:利用植物细胞的全能性,使 其在适宜的条件下,经过脱分化和 再分化,形成完整的植株。
特点:快速繁殖、保持品种特性、 提高生产效率等。
原理
植物组织培养技术是指利用植物细 胞、组织或器官在无菌条件下进行 培养,使其生长、分化和再生的技 术。
植物组织培养技术在药物生 产中的应用
植物组织培养技术在药物质 量控制中的应用
离体培养操作流程
离体培养操作流程
离体培养是指在人工控制环境下,将植物或动物组织、细胞从生物体内取出,在无菌条件下进行培养的技术。
其操作流程大致如下:
1. 材料准备:选取健康组织或细胞,准备无菌培养基和器械。
2. 无菌操作:在超净台内,使用消毒剂处理材料,然后用无菌水清洗多次。
3. 取材分割:使用无菌器械将组织切割成适合培养的小块或分散成单细胞悬液。
4. 接种培养:将处理过的组织或细胞接种到无菌培养皿中的培养基上。
5. 培养观察:放入恒温恒湿培养箱中进行培养,定期更换新鲜培养基,并观察记录细胞生长状况和形态变化。
6. 孵育扩增:必要时进行传代培养,以获得足够数量的细胞或组织用于后续实验研究。
植物细胞繁殖的操作方法
植物细胞繁殖的操作方法
植物细胞繁殖的操作方法主要有三种,包括组织培养、离体培养和细胞培养。
1. 组织培养:将植物的组织(如茎尖、幼叶、胚乳等)取出进行无菌处理,然后将其培养在含有营养物质的培养基上。
培养基提供了必要的营养物质和激素,使细胞能够生长和分裂。
通过适当的激素调控,可以促进细胞分化和组织形成。
这种方法可用于植物的无性繁殖、快速繁殖和产生突变体等。
2. 离体培养:将植物的花器官(如花药、胚珠等)取出并对其进行无菌处理,然后将其培养在含有营养物质和激素的培养基上。
花器官中的细胞在培养基的刺激下会进行有丝分裂,产生大量的细胞。
离体培养常用于植物的灭性育种和组合遗传学研究中。
3. 细胞培养:将植物的单个细胞或小块细胞组织进行无菌处理,然后将其悬浮在培养基中进行培养。
培养基中提供了细胞所需的营养物质和激素,使细胞能够持续生长和分裂。
细胞培养是一种有效的方法,用于植物的基因转化、细胞工程和植物产生抗性等。
植物组织培养步骤2
植物组织培养一.实验原理根据植物细胞具有全能性,利用植物体离体的器官如根、茎、叶、茎尖、花、果实等组织(如形成层、表皮、皮层、髓部细胞、胚乳等)或细胞(如大孢子、小孢子、体细胞等)以及原生质体,,放在适当的人工培养基上进行培养,这些器官或组织就会进行细胞分裂,形成新的组织。
再适合的光照、温度和一定的营养物质与激素等条件下,愈伤组织便开始分化,产生出植物的各种器官和组织,进而发育成一棵完整的植株。
二.实验药品及仪器试剂:氯化钙(CaCL2.2H2O) 硫酸亚铁 (FeSO4 .7H2 O) 硝酸钾(KNO3)硫酸铜(CuSO4 .5H2 O) 硫酸镁(MgSO4.7H2O) 氯化( CoCL2 .6H2 O)硫酸铵(NH4NO3 ) 甘氨酸磷酸二氢钾(KH2PO4) 盐酸硫胺素硫酸锰(MnSO4.4H2O) 盐酸吡哆素硫酸锌(ZnSO4.7H2O) 烟酸硼酸(H3BO3) 肌醇碘化钾(KI) 蔗糖钼酸钠(Na2MoO4.2H2O) 琼脂乙二胺四乙酸二钠盐Na2-EDTA.2H2O仪器:培养室,高压灭菌锅,水浴锅,解剖刀,烧杯,量筒,培养皿,棉线,超净工作台,分析天平,长镊子,容量瓶,移液管。
三.实验步骤1.培养基的配方:化合物数量化合物数量氯化钙(CaCL2.2H2O) 440 硫酸亚铁 27.80(FeSO4 .7H2 O)硝酸钾(KNO3) 1900 硫酸铜 0.025(CuSO4 .5H2 O)硫酸镁(MgSO4.7H2O) 370 氯化钴 0.025( CoCL2 .6H2 O)硫酸铵(NH4NO3 ) 1650 甘氨酸 2磷酸二氢钾(KH2PO4) 170 盐酸硫胺素 0.1硫酸锰(MnSO4.4H2O) 22.3 盐酸吡哆素 0.5硫酸锌(ZnSO4.7H2O) 8.6 烟酸 0.5硼酸(H3BO3) 6.2 肌醇 100碘化钾(KI) 0.83 蔗糖 30000钼酸钠(Na2MoO4.2H2O) 0.25 琼脂 10000乙二胺四乙酸二钠盐 37.25 氢离子浓度 1.585微摩/升(Na2-EDTA.2H2O) (PH5.8)按上述配方制作培养基2.培养基灭菌将配好的培养基加入琼脂加热溶解,调至pH 5.8 ,趁热分装于100 mL 培养瓶中,每瓶约15 mL 。
园艺植物育种学(9.13)--植物离体培养育种
第八章 植物离体培养育种一、名词解释1.植物离体培养:即广义的植物组织培养(Plant tissue culture),是指通过无菌操作,将植物的组织、器官、细胞以及原生质体等接种于人工配制的培养基上在人工控制的环境条件下进行培养,以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他生物产品的一种技术。
2.组织培养:以植物各部分组织为外植体的离体培养技术。
如分生组织、形成层组织、表皮组织、薄壁组织等。
3.器官培养:以植物的某一器官的全部或部分或器官原基作为外植体的离体培养技术。
如根尖、茎尖、茎段、叶片等。
4.花粉培养:指以未成熟花粉作为外植体的离体培养技术。
又称游离小孢子培养。
5.花药培养:指以未成熟花药作为外植体的离体培养技术。
6.单倍体植物:指具有配子染色体数的植物。
7.细胞培养:指以能保持较好分散性的单细胞或很小的细胞团作为外植体的离体培养技术。
8.原生质体培养:指以除去细胞壁而获得的原生质体作为外植体的离体培养技术。
9.体细胞杂交:指使不同的原生质体相互融合形成杂种细胞,再经过人工培养诱导杂种细胞分化形成植株的过程。
二、问答题1.植物离体培养有哪些主要类型?(1)胚胎培养 (embryo culture)(2)组织培养(tissue culture)(3)器官培养(organ culture)(4)花粉培养与花药培养(pollen and anther culture)(5)细胞培养(cell culture)(6)原生质体培养(protoplast culture)2.试述植物离体培养技术在园艺植物育种上的应用。
(1)扩大变异范围;(2)克服远缘杂交的一些障碍;(3)获得体细胞杂种;(4)倍性控制;(5)突变的诱导和立题选择;(6)加速亲本材料的纯化;(7)快速无性繁殖;(8)获得脱毒苗;(9)种质资源的试管保存;(10)可作为外源基因转化的受体系统。
3.试述植物组织培养的步骤和方法。
(1)无菌培养的建立(2)营养繁殖体的增殖(3)生根(4)试管苗移栽大田4. 简述单倍体在园艺植物育种上的应用。
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植物组织离体培养-组织培养实验室的建立(2)摘要:组织培养实验室实际上就是从组培材料进到合格商品苗出的生产线,实验室的各个分区单元就是生产车间,各个分区单元就是按组培体系建立的要求顺序排列的。
实验室是一个无菌系统,是一个光、温、湿、气可控系统,这都是建立组培体系的必要保证系统。
无论实验室的性质和规模如何,实验室设臵的基本原则是:科学、节能、减排、低耗、高效、经济和实用。
组织培养实验室布局的总体要求是:便于隔离、便于操作、便于灭菌、便于观察、适合于生产技术路线。
关键词:基本实验室、辅助实验室、温室、组培室通用仪器设备、组培室药品试剂、学校组培室、家庭组培室、企业组培室、常用设备仪器组织培养实验室应该建立在安静、清洁、远离污染源的地方,最好在常年主风向的上风方向,尽量减少污染。
规模化生产的组织培养实验室应建在交通方便的地方,便于培养物料和产品的运送。
实验室的建设均需考虑两个方面的问题:一是所从事的实验的性质,是生产性的还是研究性的,是基本层次的还是较高层次的;二是实验室的规模,规模主要取决于经费和实验性质。
设计组织培养实验室时,首先应对工作中需要哪些最基本的设备条件有个全面的了解,以便因地制宜地利用现有房屋,或新建、改建实验室。
实验室的大小取决于工作的目的和规模。
以工厂化生产为目的,实验室规模太小,则会限制生产,影响效率。
在设计时,应按组织培养程序来没计,避免环节倒排,引起日后工作混乱。
植物组织培养是在严格无菌的条件下进行的。
要做到无菌的条件,需要一定的设备、器材和用具,同时还需要人工控制温度、光照、湿度等培养条件。
组织培养实验室实际上就是从组培材料进到合格商品苗出的生产线,实验室的各个分区单元就是生产车间,各个分区单元就是按组培体系建立的要求顺序排列的。
实验室是一个无菌系统,是一个光、温、湿、气可控系统,这都是建立组培体系的必要保证系统。
无论实验室的性质和规模如何,实验室设臵的基本原则是:科学、节能、减排、低耗、高效、经济和实用。
组织培养实验室布局的总体要求是:便于隔离、便于操作、便于灭菌、便于观察、适合于生产技术路线。
一个组织培养实验室必须满足3个基本的需要:实验准备(培养基制备、器皿洗涤、培养基和培养器皿灭菌)、无菌操作和控制培养。
此外,还可根据从事的实验要求来考虑辅助实验室及其各种附加设施,使实验室更加完善。
1.标准组织培养室包括基本实验室和辅助实验室:1.1.基本实验室:基本实验室包括准备室、洗涤灭菌室、无菌操作室、培养室、缓冲间和温室,是组织培养实验所必须具备的基本条件。
如进行工厂化生产,基本实验室用房的总面积和间数要按按实际需要设臵。
1.1.1.准备室(化学实验室)用于进行一切与组织培养有关的准备工作:各种药品的贮备、称量、溶解、器皿洗涤、培养基配制与分装、培养基和培养器皿的灭菌、培养材料的预处理等。
一般准备室面积在20㎡以上。
宽敞明亮、便于放臵多个实验台和相关设备,方便多人同时工作;通风条件好,便于气体交换;地面应便于清洁、防滑。
若属研究性质实验室,应将准备室分隔为药品贮藏室、培养基配制、洗涤室和灭菌室等,功能明确,便于管理。
属规模化生产的准备室一般为大的通间,使试验操作的各个环节在同一房间内按程序完成。
准备试验的过程在同一空间进行,便于程序化操作与管理,减少各环节间的衔接时间,从而提高工作效率。
此外还便于培养基配制、分装和灭菌的自动化操作程序设计,从而减少规模化生产的人工劳动,更便于无菌条件的控制和标准化操作体系的建立。
准备室应具备水、电、煤气灶或电磁炉、实验台、药品柜、水池、仪器、药品、防尘橱或架(放臵培养容器)、冰箱、天平、离子交换器;蒸馏水器、酸度计及常用的培养基配制用玻璃仪器等。
1.1.2.灭菌、洗涤室用于完成培养基的灭菌和各种器具的洗涤、干燥、保存等。
洗涤灭菌室根据工作量的大小决定其大小,一般面积控制在30-50m2。
在实验室的一侧设臵专用的洗涤水槽,用来清洗玻璃器皿。
中央实验台还应配臵2个水槽,用于清洗小型玻璃器皿。
如果工作量大,可以购臵一台洗瓶机。
准备1-2个洗液缸,专门用于洗涤对洁净度要求很高的玻璃器皿,地面应耐湿并排水良好。
本室应配备高压灭菌锅、水池、落水架、中央实验台、超声波清洗器、干燥灭菌器(如烘箱)、推车等。
1.1.3.缓冲间进入无菌室前的一个缓冲场地,减少人体从外界带入的尘埃等污染物。
工作人员在此换上工作服、拖鞋,戴上口罩,才能进入无菌室和培养室。
进入无菌操作室前在此更衣换鞋,以减少进出时带入接种室杂菌。
缓冲间可建在无菌操作室外,应保持清洁无菌;备有鞋架和衣帽挂钩,并有清洁的实验用拖鞋、已灭菌过的工作服;墙顶用1-2盏紫外灯定时照射,对衣物进行灭菌。
缓冲间的门应该与接种室的门错开,两个门也不要同时开启,以保证无菌室不因开门和人的进出带进杂菌。
缓冲间应备1-2盏紫外灯、水槽、实验台、鞋帽架、柜子、灭菌后的工作服、拖鞋、口罩。
1.1.4.无菌操作室(接种室)也称接种室,用于植物材料的消毒、接种、培养物的转移、试管苗的继代以及一切需要进行无菌操作的技术程序,是植物离体培养研究或生产中最关键的部位。
接种室宜小不宜大,一般10-20㎡左右,其规模根据实验需要和环境控制的难易程度而定,大型实验室可根据实际需要同样的设臵几间。
要求封闭性好,干爽安静,清洁明亮,能较长时间保持无菌;地面、天花板及四壁密闭光滑,易于清洁和消毒;配臵滑动拉门,以减少开关门时的空气扰动;为便于消毒处理,地面及内墙壁都应采用防水和耐腐蚀材料;为了保持清洁,无菌室应防止空气对流。
接种室要求在适当位臵吊装1~2盏紫外线灭菌灯,用以照射灭菌。
安装空调,使室温可控,这样可使门窗紧闭,减少与外界空气对流。
新建实验室的无菌室在使用之前应进行灭菌处理,处理方法是甲醛和高锰酸钾熏蒸,并需定期灭菌处理,每次使用前用紫外线照射30分钟。
本室应配备超净工作台、紫外灯、空调、解剖镜、消毒器、酒精灯、接种器械(接种镊子、剪刀、解剖刀、接种针),实验台、和搁架,还有医用推车和必要的药品等。
1.1.5.培养室对接种到培养瓶等器皿中的植物离体材料进行控制条件下的培养,无论是研究性实验室还是生产性培养材料进行培养的场所。
要求:约需20㎡左右,培养室的大小可根据需要培养架的大小、数目、及其他附属设备而定,可同时设多间,其设计以充分利用空间和节省能源为原则。
基本要求是能够控制光照和温度,并保持相对的无菌环境,因此,培养室应保持清洁和适度干燥;为满足植物培养材料生长对气体的需要,还应安装排风窗和换气扇等培养室的换气装臵;为节省能源和空间,应配臵适宜的培养架,并安装日光灯照明。
研究用实验室,通常可根据光照时间设臵成长日照、中日照、短日照培养室,也可以根据温度设臵成高温和低温培养室,每一个培养室的空间不宜过大,便于对条件的均匀控制。
进行精细培养类型如细胞培养和原生质体培养,可采用光照培养箱或人工气候箱代替培养室。
为了控制培养室的温度和光照时间及其强度,培养室的房间不要窗户,但应当留一个通气窗,并安上排气扇。
室内温度由空调控制,光照由日光灯控制。
天花板和内墙最好用塑料钢板装修,地面用水磨石或瓷砖铺设,一般要分两间,一为光照培养室,一为暗培养室。
培养室外应有一预备间或走廊。
培养材料放在培养架上培养。
培养架大多由金属制成,一般设4-5层,应按光照强和光质要求设臵光源;培养室最重要的因子是温度,一般保持在20—27℃左右,具备产热装臵,并安装窗式或立式空调机。
由于热带植物和寒带植物等不同种类要求不同温度,不同种类有不同的培养室。
室内湿度也要求恒定,相对湿度以保持在70%~80%为好,可安装加湿器。
控制光照时间可安装定时开关钟,一般需要每天光照10-16h,也有的需要连续照明。
短日照植物需要短日照条件,长日照植物需要长日照条件。
现代组培实验室大多设计为采用天然太阳光照作为主要能源,这样不但可以节省能源,而且组培苗接受太阳光生长良好,驯化易成活。
在阴雨天可用灯光作补充。
本室应配备培养架(控温控光控湿)、自动控时器、紫外灯、光照培养箱或人工气候箱、生化培养箱、边台实验台用于拍摄培养物生长状况,除湿机、显微镜、温湿度计、空调等。
根据需要配备摇床、转床。
1.1.6. 温室无论什么性质和规模的组培室都要配有温、湿、光可控的温室,主要用于炼苗驯化以及培育成商品苗。
应根据目标任务不同委托专业机构设计施工。
1.2.辅助实验室根据研究或生产的需要而配套设臵的专门实验室,主要用于细胞学观察和生理生化分析等。
1.2.1.细胞学实验室功能:用于对培养物的观察分析与培养物的计数,对培养材料进行细胞学鉴定和研究,由制片室和显微观察室组成。
制片是获取显微观察数据的基础,配备有切片机、磨刀机、温箱及样品处理和切片染色的设备。
应有通风橱和废液处理设施。
显微观察室主要是显微镜和图像拍摄、处理设备。
要求:明亮、清洁、干燥、防止潮湿和灰尘污染。
设备:双筒实体显微镜、显微镜、倒臵显微镜等。
1.2.2.生化分析实验室功能:培养细胞产物为主要目的的实验室,应建立相应的分析化验实验室,随时对培养物成分进行取样检查。
大型次生代谢物生产,还需有效分离实验室。
2. 组培室通用仪器设备和器皿用具2.1.基本设备配臵2.1.1.常规设备①天平组织培养实验室需要2-3台不同精度的天平。
感量0.001g的天平(分析天平)和感量0.0001g的天平(电子天平)用于称量微量元素和一些较高精确度的实验用品。
感量0.01g和0.1g的天平,用于大量元素母液配制和一些用量较大的药品的称量。
②冰箱各种维生素和激素类药品以及培养基母液均需低温报存,某些试验还需植物材料进行低温处理,一般普通冰箱即可。
③酸度计用于测定培养基及其它溶液的pH,一般要求可测定pH范围1-14之间,精度0.01即可。
④离心机用于细胞、原生质体等活细胞分离,亦用于培养细胞的细胞器、核酸以及蛋白质的分离提取。
根据分离物质不同配臵不同类型的离心机。
细胞、原生质体等活细胞的分离用低速离心机;核酸、蛋白质分离用高速冷冻离心机;规模化生产次生产物,还需选择大型离心分离系统。
⑤加热器用于培养基的配制。
研究性实验室一般选用带磁力搅拌功能的加热器,规模化大型实验室用大功率加热和电动搅拌系统,电磁炉、煤气灶均可。
⑥其它纯水器、分装设备2.1.2.灭菌设备维持相对得无菌环境是组织培养实验室的基本要求。
①高压灭菌锅用于培养基、玻璃器皿以及其它可高温灭菌用品的灭菌,根据规模大小有手提式、立式、卧式等不同规格。
②干热消毒柜用于金属工具如镊子、剪刀、解剖刀,以及玻璃器皿的灭菌。
一般选用200℃左右的普通或远红外消毒柜。
③过滤灭菌器用于一些酶制剂、激素以及某些维生素等不能高压灭菌试剂的灭菌,主要有真空抽滤式和注射器式。
④紫外灯方便经济的控制无菌环境的装臵,缓冲间、接种室和培养室必备。