细菌培养标本的正确采集1
尿细菌培养标本采集方法
尿细菌培养标本采集方法
尿细菌培养是一种常用的检测尿道、膀胱、肾脏等泌尿系统感染的方法。
在进行尿细菌培养前，必须正确采集标本，否则可能会在样本中引入假阳性或假阴性结果。
标本采集方法：
1. 洗手：在采集标本前，需先洗手并用消毒液清洗外阴区，避免污染尿液。
2. 选择合适的容器：通常使用无菌的尿采集器或尿杯，避免污染外来细菌。
3. 采集样本：女性应将外阴用手指轻轻分开，让尿液顺自然流出；男性应将包皮拉回，露出尿道口，将尿液顺自然流出。
4. 收集途中不得打断排尿过程，最好采集中段尿，避免采集初尿和末尿，因为这些尿液含有大量细菌和其他污染物。
5. 采集完毕后，将尿液尽量倒入尿采集器或尿杯中，避免触碰到周围物体。
6. 将标本送到实验室进行培养。
除了正确的标本采集方法外，还需注意以下几点：
1. 尿样需要在采集后尽快送到实验室进行检测，避免细菌过度增殖或死亡。
2. 如果需要进行多次采集，应在两次采集之间间隔至少24小时，否则可能引起误诊。
3. 采集前不要进行口腔、外阴或肛门的清洁，以免污染尿液。
通过正确的标本采集方法，可获得准确可靠的尿细菌培养结果，为治疗泌尿系统感染提供重要的依据。
常见细菌培养标本的采集方法及注意事项
常见细菌培养标本的采集方法及注意事项所有标本应在未使用抗生素之前,或在抗生素停药三天后留取，留取标本后应记录留取时间,保证在留取标本后1小时内送至检验科。
粪便标本：自然排便后，取有脓血、粘液、组织碎片部分的粪便一小勺。
液体粪便则取絮状物,一般取1～3ml，直接装入粪便容器中送检。
清洁中段尿标本：应保证尿液在膀胱内至少停留4h以上。
最好留取早晨清洁中段尿标本。
注意：容器内是无菌的,所以打开容器盖后，应拿在手中，不要随意乱放。
留取方法：(1)患者睡前少饮水;(2）清晨起床后先用肥皂水清洗会阴部，女性应用手分开大阴唇，男性应翻上包皮,仔细清洗，再用清水冲洗尿道口周围；(3）开始排尿,将前段尿排出，弃去，不要停顿,直接将中段尿约5ml直接排入专用的无菌容器中，立即送检。
自然咳痰标本：患者清晨起床后，用清水或冷开水反复漱口去除过量的口腔细菌,有假牙者应取下假牙。
先轻咳，咳出口腔中的痰液弃去，再用力深咳，从气管咳出呼吸道深部的痰，直接吐入清洁、无菌的容器中。
常见细菌培养标本的采集方法及注意事项所有标本应在未使用抗生素之前，或在抗生素停药三天后留取，留取标本后应记录留取时间，保证在留取标本后1小时内送至检验科。
粪便标本:自然排便后，取有脓血、粘液、组织碎片部分的粪便一小勺。
液体粪便则取絮状物，一般取1~3ml,直接装入粪便容器中送检。
清洁中段尿标本:应保证尿液在膀胱内至少停留4h以上。
最好留取早晨清洁中段尿标本。
注意：容器内是无菌的，所以打开容器盖后，应拿在手中，不要随意乱放。
留取方法:（1）患者睡前少饮水；（2）清晨起床后先用肥皂水清洗会阴部,女性应用手分开大阴唇，男性应翻上包皮，仔细清洗,再用清水冲洗尿道口周围;(3）开始排尿，将前段尿排出，弃去，不要停顿，直接将中段尿约5ml直接排入专用的无菌容器中,立即送检。
自然咳痰标本：患者清晨起床后，用清水或冷开水反复漱口去除过量的口腔细菌,有假牙者应取下假牙.先轻咳,咳出口腔中的痰液弃去，再用力深咳,从气管咳出呼吸道深部的痰,直接吐入清洁、无菌的容器中。
微生物标本的正确采集
微生物标本的正确采集正确采集微生物标本是进行病原学检查的关键步骤，因为只有采集到合适的标本，才能够准确、客观地检测出病原菌，为诊断和治疗提供科学依据。
以下是一些采集微生物标本的正确方法：一、注意清洁和消毒在采集标本前，必须对手部进行清洁和消毒，以减少污染的可能性。
使用肥皂和水清洁手部，或者使用酒精消毒剂消毒手部。
同时，还需要对采集标本所使用的器械进行消毒，确保无菌操作。
二、选择正确的标本类型不同的微生物感染会有不同的症状和体征，因此需要根据患者的具体情况选择正确的标本类型。
例如，对于呼吸道感染，可以使用鼻咽拭子、痰液等；对于胃肠道感染，可以使用大便标本等。
三、正确采集标本1.采集前准备：了解患者的病史和症状，确定需要采集的标本类型，准备好采集所需的器械和消毒用品。
2.采集方法：根据不同的标本类型，采用正确的采集方法。
例如，对于痰液标本，需要让患者用力咳嗽，将痰液咳出并放入收集器中；对于大便标本，需要让患者取适量的大便放入收集器中。
3.采集量：采集的标本量应该足够，以便进行实验室检测和分析。
一般来说，采集的标本量应该不少于检测所需量的两倍。
4.采集时间：采集标本的时间也有讲究。
例如，对于呼吸道病毒的检测，最好在患者发病的早期采集标本；对于肠道病毒的检测，最好在患者发病后一周内采集标本。
5.保存方式：采集完标本后，需要妥善保存。
一般来说，应该将标本保存在适当的介质中，如保存液或培养基中，以保持标本的活性和完整性。
同时，还需要注意温度和湿度等环境因素对标本的影响。
四、避免污染和交叉感染在采集标本的过程中，必须严格遵守无菌操作原则，避免污染和交叉感染。
例如，在采集痰液标本时，应该让患者先用清水漱口，再用无菌棉签擦拭咽部，以减少口腔和咽部的细菌污染。
同时，还需要注意实验室内的清洁卫生和消毒工作，确保实验室内的空气和环境符合要求。
五、及时送检采集完标本后，需要及时送检。
一般来说，应该将标本尽快送到实验室进行检测和分析。
细菌标本的采集及注意事项
• 2 巴氏腺、尿道旁腺：清洗或局部消毒，然后压迫腺体， 使分泌物溢出。
• 3 阴道分泌物：用窥器扩张阴道，先用拭子清除阴道表面 分泌物，弃去拭子，用灭菌女性拭子采取阴道口内4cm内 侧壁或后穹隆处分泌物培养。如果未成年幼女怀疑患性传 播疾病时,不应使用扩阴器,应以无菌拭子在阴道口处采取 分泌物送检。
脓液和创伤分泌物标本的采集
• １．采集方法 • （１）开放性脓肿： 用无菌生理盐水擦洗病灶表面后，用蘸
有无菌生理盐水的灭菌棉拭子采取脓液和病灶深部的分泌物， 置无菌试管内送检。注意尽量采取化脓组织与正常组织交界 处的脓汁。临床有时提出疑问，明明患者有感染的指征也有 大量的炎性渗出，但为什么细菌培养常常阴性呢？这可能与 标本采集的部位有关，如果单纯采集脓液是不行的，因为脓 汁经过我们涂片显微镜观察证实为脓细胞、细菌碎片及粘液 组织的混合物，经常无完整的活的细菌形态，所以这样培养 的结果常常无菌的。而交接处的活菌较多，会提高阳性率。
（咳）痰及呼吸道标本的采集
• 1采集时间：以晨痰为好；支气管扩张症病人，清 晨起床后进行体位引流，可采集大量痰标本。
• 2自然咳痰法：在留取痰之前，用清水反复漱口 （漱口液不能含抗菌物质）；应从气管深部咳出 痰，吐入无菌容器内。
• 3气管穿刺法： • 在环甲膜下穿刺抽取痰液，收集标本，适用于厌
氧菌培养。 • 4气管镜下采集法：在病灶附近用导管或用支气管
生殖道标本的采集
• 1 尿道分泌物 ①男性：清洗尿道口，用灭菌纱布或棉球擦拭，采取从尿道 口溢出的脓性分泌物或用无菌男性拭子插入尿道内2～4cm 轻轻旋转后取出分泌物。如无脓液溢出，可从阴茎的腹面向 龟头方向按摩，促使分泌物溢出。 ②女性：清洗尿道口，用灭菌棉球擦拭，然后从阴道内诊压 迫尿道，或从尿道的后面向前按摩，使分泌物溢出。无肉眼 可见的脓液，可用灭菌拭子轻轻深入前尿道内，旋转拭子， 采集标本。
细菌标本采集规范
临床微生物学标本采取和处理的规范化要求正确的采取、处理与运送用于细菌培养的标本是临床细菌检验成功的关键.标本采取与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础；而标本采取与处理不当将严重影响检验结果,给临床以误导，延误对患者的正确治疗。
为此，我们提出初步的参考意见，并希望在实践中不断完善。
一、血液细菌培养标本的采集和处理临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者,需做血液细菌培养以明确病原。
1．采集方法:静脉采血，以无菌操作方法抽取血液后,直接注入血培养瓶中，轻轻颠倒混匀，以防血液凝固.如果同时作需氧和厌氧培养，应先将标本接种到厌氧瓶中,再注入需氧瓶，严格防止将空气注入厌氧瓶中。
2。
采血时间以及血培养份数:在患者发热期间越早越好,最好在抗菌治疗前，用药前24小时内采集2～3次血液标本,可使细菌检出率高达99％.对间歇性寒战或发热的患者,应在寒战或体温高峰到来之前0。
5～1小时采血，亦可在寒战或发热后1小时采集血液标本。
特殊感染患者采血培养时应遵循以下原则：（1）可疑急性发热性菌血症、败血症患者：应在使用抗菌药物之前，在24小时内从不同部位采集2~3份血液标本培养.(2)可疑细菌性心内膜炎患者、感染性心内膜炎患者：在1～2小时内采集3份血标本培养,如果24小时后阴性,再采集两份血标本培养。
(3）不明原因发热患者：先采集2～3份血标本，抽血间隔60 min，24~36小时后体温升高之前，再采集2份血标本进行培养。
因为1次血培养不足以说明问题,可能会遗漏阳性结果。
（4）可疑菌血症但血培养持续阴性时;应改变血培养方法,以获得罕见或苛养的微生物。
（5）在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎,需马上做抗菌治疗;或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者,应立即从两臂分别取2份标本.3。
采血部位:采血部位通常为肘静脉。
疑为亚急性心内膜炎的患者，以肘动脉或股动脉采血为宜。
疑为细菌性骨髓炎或伤寒患者，在病灶或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓。
细菌培养标本采集
细菌培养标本采集1、标本采集时间（1）一般原则应在寒战或高温高峰到来之前采集，因为细菌进入血流与寒战发作通常间隔1小时。
无论何时采集，原则上应选择在抗生素应用前，对已用抗生素而无法停药的病人，应在下次用药前采集。
（2）不明原因发热可于发热周期内多次采血作培养，如果24小时培养结果为阳性，应继续采血2～3份或更多血标本进行培养。
（3）心内膜炎急性心内膜炎：治疗前1～2小时内分别在3个不同部位抽血样，分别进行培养。
炎急性内膜炎：除在发热期采血外，应多次采血，第1天做3次培养，如果24小时培养阴性，应继续抽血3份或更多次进行培养。
（4）肺炎链球菌感染最佳时机是在寒冷、高热休克时，此时采集的标本阳性率较高。
2、标本送检时间采集好的血液培养瓶要及时送检。
如应某种原因不能及时送检，应将已采集好的血液培养瓶放在室温，切勿放在冰箱内，否则使阳性率降低送检要保温，并在化验单上标明采集血液标本的准确时间。
3、血液标本采集的量成人采血量一般为10mL，婴幼儿1～2Ml,儿童4～5Ml,在无法确定病人感染何种微生物时，应同时做多种生物培养，如需氧培养、厌氧培养和真菌培。
如病人应用抗生素时间较长，则应和检验科联系调整血液标本和培养基比例，一般血液标本和培养比例为1：10，如使用抗生素达10～15日以上，比例则为1：20或>1:20，儿童血液培养必须使用相应的儿童血液培养瓶。
4、标本采集部位和次数细菌培养阳性率与标本的采集部位和次数关系很大，而且一般成人菌血症感染率是非常低的，因此要多部位、多次采集血液标本进行培养，以提高阳性率。
通常从肘正中或股静脉抽取，不可从静脉注导管处抽血。
5、采集好的血液标本应更换针头，用酒精消毒培养瓶瓶盖后再将血液注入培养瓶。
细菌培养标本采集及注意事项
细菌培养标本采集及注意事项细菌培养标本采集是临床微生物学检验中的重要环节，它对于细菌的分离、鉴定和药敏试验具有重要意义。
正确的标本采集能够提高细菌培养的准确性和药敏试验的可靠性，从而对临床诊断和治疗提供准确的依据。
以下是一些细菌培养标本采集的注意事项：1.选择合适的标本：根据临床症状和病情，选择合适的标本进行采集。
例如，咽部感染可以采集口咽拭子、咳痰、深喉拭子等标本进行细菌培养。
2.采集前洗手：采集标本前，采集者应进行手部消毒或洗手，以减少细菌的污染。
同时，佩戴清洁的手套也是必要的。
3.标本容器的选择：根据需要进行细菌培养的部位和类型选择合适的标本容器。
通常情况下，采用无菌的容器，且应有足够的容量满足后续操作的需要。
4.采集技术和操作：采集者应具备相应的技术和操作能力，以保证标本的质量和准确性。
遵循无菌操作，避免污染。
不同部位的采集有不同的技术要求，需要注意不同部位的解剖和生理特点。
5.采集适量的标本：采集者应确保要采集的标本量足够，以满足后续的分离和鉴定操作。
对于多种标本的采集，应遵循采集优先级和适宜量，以减少不必要的浪费和重复采样。
6.保护标本：标本采集后，应及时处理和保存，以防止标本的污染和失活。
保持标本的完整性，尽量避免液体标本的泄漏和固体标本的破碎。
7.标本的迅速送检：标本采集后应及时送到实验室进行处理，以保持标本的新鲜和避免细菌生长过多或失活。
不同类型的标本有不同的送检要求，应注意标本是否需要特殊的保存和运输条件。
8.注意个别特殊情况：有些特殊类型的标本采集有特殊的要求，如液体标本的胫前组织穿刺、关节穿刺液等，需要专业医师操作，且操作过程更加复杂和精细。
此外，对于病程较长、曾接受治疗的患者，应注意标本的采集时机和对抗生素的处理。
9.记录标本信息：在标本采集过程中，应及时、准确地记录标本的相关信息，如采集日期、患者姓名、住院号、标本类型、采集部位等。
这些信息对于后续的结果解读和结果报告都具有重要的作用。
细菌培养标本采集及注意事项
注意事项
⑴标本采集应在患者用药之前或停止用药 12天后进行；
⑵疑为淋病性关节炎患者的关节液，采集后立
即送检。
⑶不能用棉拭子浸蘸标本送检。
⑷注明标本名称：如、胸水或腹水、关节液等 等。
e.每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提
高阳性率和区分感染菌与污染菌。
f.采血，周围静脉为宜。
g. 严格执行三步消毒后采血。注入血液时不能 将注射器内的空气加入血瓶内。绝对不能超出10 ml。
二、呼吸道标本培养
人体的上呼吸道有常居菌群，下呼吸 道是无菌，但下呼吸道分泌物经上呼吸 道排出时通常受到正常菌群的污染，故 要正确采集标本，并结合临床表现是否 有该细菌引起的感染。
全自动细菌测定系统
7、送检标本：血液、各种无菌体液
（脑脊液、骨髓、胆汁、胸水、腹水、 心包穿刺液等等。）
注意事项
a. 怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（ 38.5 ℃）采 血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。
b. 对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在
下次用药前采血。 c . 切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本， 也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 d.血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。
黑、黑或紫罗兰色，烧伤边缘水肿。患者发烧>38℃或
低体温<36℃，合并低血压。 ②用无菌生理盐水冲洗伤口创面。③由于创面部 位不同，细菌种类也不尽相同，要用灭菌棉拭子采集 多个部位的炎症区送检。
胃肠道标本培养
正常人的肠道栖居大量的不同种类的微
生物（细菌），具有维护健康的重要作用。疾
病时致腹泻。
1、粪便培养检查的送检指征： a、粪便涂片镜检白细胞＞5／HP.
b.重症腹泻.
细菌培养标本的_采集、运送与处理
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血液和无菌体液的处理
血液或无菌体液抽取后应立即放入血培养瓶,立即送检 或室温保存,不能放冰箱!
实验室接到标本应立即放入血培养仪。中夜班收到标 本放置室温,不用放置35℃温箱 。
对急诊室送来或室温久置的标本，应先检查瓶底有无 变化，如变黄，应先涂片并盲传，以防漏检。
导尿管导尿
无菌操作进行导尿可减少尿道污染。 对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用联空针筒的
细针斜穿管壁抽吸尿液；或拔去闭式引流的集尿袋，弃去导尿管前 段尿液，留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。 不可从集尿袋的下端管口留取标本。 长期留置导尿管者，应在更换新导尿管后留取尿标本 。
21
隔不少于60分钟。
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采血方法
采血部位的局部皮肤应严格消毒。将采集的血 液注入血培养瓶前，应更换针头或过火消毒针 头。
血培养瓶口也要消毒，并待酒精挥发后（建议 用酒精灯烧灼瓶口）再注入血样, 。
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采血量
每次采血量成人5～10ml，婴幼儿1～2ml， 培养基与血液之比以10：1为宜，以稀释血液 中的抗生素。
在安全性问题的容器内。
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标本转运的原则
所有标本必须立即送交实验室，最好不要超过 2小时，如标本处理不得不延迟，应在合适的 条件下储存，但不超过24小时。
对环境敏感的微生物包括志贺氏菌（应立即处 理）、淋球菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌 （对低温敏感）。脑脊液、生殖器、眼或内耳 标本不要冷冻。
及时、准确地从患者血液中分离出病原菌，才 能正确实施有效地抗菌治疗，从而有助于提高 治愈率和降低医疗费用。
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采血时机
细菌培养标本采集方法
细菌培养标本采集方法
血液及骨髓培养
1、适应症：血培养主要用于检测菌血症、真菌血症患者血液中的微生物，健
康人血液中是无菌的。
骨髓培养主要使适用于骨髓炎者。
2、标本采集：应在病人发热初期1-2天内（治疗前）无菌采集，采集量约为
培养液的1/10，通常5-6ml，已用过抗生素的患者，在48小时内取6个标本，每次均在使用抗生素前采集。
以上操作均采用无菌技术采集标本，诸如培养瓶后送实验室。
呼吸道标本培养
痰培养
1、适应症：适用于气管炎、支气管炎及肺部感染的患者。
2、标本采集：一般以清晨第一次痰液为佳，支气管扩张或支气管相通的空洞
者，清晨起床后进行体位引流，可采集大量痰液。
3、咽拭子：在留取标本前要用清水反复漱口，以减少正常菌群的污染，应在
采集部位（咽喉壁或悬雍垂后侧）反复涂抹数次，单咽拭子药避免接触皮肤粘膜。
4、自然咯痰法：以清晨第一次痰液为宜，采集前漱口。
脓液及创伤感染分泌物培养
1、适应症：适用于术后感染或局部感染的患者。
2、标本采集：用无菌棉拭子取脓液及病灶分泌物送检，也可以以无菌手续取
组织碎片送检。
尿液培养
1、标本采集：以清晨第一次中段尿为佳，女性要清洗外阴部位，男性清洗尿
道口，取中段尿约10ml。
夏季不超过一个小时，冬季不超过2小时。
2、适应症：适用于泌尿系感染的患者。
大便标本培养
1、适应症：适用于肠道感染的患者。
2、标本采集：多采用自然排便或结肠拭子采集法，应采集发病初期用药前的
新鲜的、脓血或粘液便。
杞县人民医院护理部
2011年8月10日。
最新细菌培养标本的_采集、运送与处理
抗凝剂
0.025-0.05%聚茴香脑磺酸钠(sodium polyanethol sulfonate, SPS) 。
SPS具有抗凝抗吞噬抗补体及拮抗某些抗生素 的作用。
培养条件
视患者的感染、用药情况选用不同的培养瓶。真菌培 养可和普通培养共用一需氧瓶。
及时、准确地从患者血液中分离出病原菌，才 能正确实施有效地抗菌治疗，从而有助于提高 治愈率和降低医疗费用。
采血时机
在出现临床症状后应尽快抽血作培养，最好在 发热初期和高峰或寒战时。
原则上应选择在抗菌药物应用之前，对已应用 药物而病情不允许停药的患者也应在下一次用 药前采血。
采血部位
通常采血部位为肘静脉。
痰标本采集方法
自然咳痰：清水反复漱口后用力咳痰，从呼吸道深部咳出新鲜痰液于 无菌容器送检。痰量极少者可用45℃10%氯化钠溶液雾化吸入导痰。
气管穿刺法: 适用于昏迷和咳嗽乏力患者。 纤维支气管镜抽取法: 适用于纤维支气管镜检查或治疗的患者。用纤维
支气管镜可直接在病灶部位采集高浓度的感染病原菌，但不能完全避 免咽喉部正常菌群感染。 小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，用棉拭子伸入咽部，小儿因压舌 刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上，从而获得标本。 双侧肺部感染伴人工气道如气管切开或气管插管患者，可用吸痰管经 人工气道估插至叶支气管水平吸引痰液。
隔不少于60分钟。
采血方法
采血部位的局部皮肤应严格消毒。将采集的血 液注入血培养瓶前，应更换针头或过火消毒针 头。
血培养瓶口也要消毒，并待酒精挥发后（建议 用酒精灯烧灼瓶口）再注入血样, 。
采血量
每次采血量成人5～10ml，婴幼儿1～2ml， 培养基与血液之比以10：1为宜，以稀释血液 中的抗生素。
细菌培养标本采集
水化, 生理盐水雾化排痰---重症病人, 气管 抽痰
标本立即送检(1小时内),否则4℃存放 咳痰不宜做厌氧培养---口咽部大量厌氧菌 应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如
不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。
尿培养 ( Urine Culture )
2 采血量
成人：推荐每个血培养瓶应加的血量为 8～10ml，血液和肉汤比为1：5～10 （体积：体积）。
儿童：因很难获得大量的血液，一般静脉 采血3～5ml 用于血培养。
血液量太多或太少都不利于细菌的检出， 血液的培养量每增加1ml,阳性率增加3～5 ％。人体血液内包含各种抑制细菌生长的 因子或抗生素，注入血液太多可能会抑制 细菌的生长。
体液培养 （Body Fluids Culture）
细菌培养和染色最少需2ml。 需做厌氧培养的体液注意隔绝氧气
接收容器：无抗凝剂的无菌管，密封注 射器。腹腔透析液、腹水、和胸腔积液 更适于种细菌（血）瓶，每瓶接种510ml体液。
抽取尽可能多的液体，不要将拭子放入 液体中。
脑脊液培养 ( Cerebrospinal Fluid Culture )
清洁中段尿：培养前最好停用抗生素48-72 小时, 最好为晨尿。采集标本前,至少清洁尿 道口三次。弃去前段尿，留取中段尿1小时 内送检
无菌导管尿：嘱咐病人憋尿，清洁尿道口， 插尿管，弃去前15-30ML尿液，收集中后段 尿送检
绝对不要送检尿袋尿！！！
ICU病人尿标本采集方法
1.留置导尿管收集尿液：利用留置导尿管 采集标本时，应先消毒导尿管外部，按无 菌操作方法用注射器穿刺导尿管吸取尿液， 操作时应防止混入消毒剂，不能从收集袋 中采集尿液。长期留置导尿患者，应在更 换新尿管时留取尿标本。
留取细菌培养标本的要求
留取细菌培养标本的要求[留取细菌培养标本的要求]正确采集细菌标本进行细菌学检查，是正确检验病人细菌感染的关键，因此留取细菌检验标本应注意以下几点：1.如何采集血液标本?血液标本应在病人发热1～2日或发热高峰采集培养为宜。
此时阳性率高。
采集时应以无菌手续由静脉取血5～10ml，立即注入适当的液体增菌培养瓶内，并迅速轻摇，使充分混匀，以防凝固，并有利于细菌生长。
作厌氧菌培养时，抽血后应立即接种厌氧培养基中，避免接触空气，并尽快送往细菌室放入温箱，避免温度对细菌生长不利。
另外磺胺类药物和抗生素可影响细菌检出的结果，因此采集标本应力争在抗菌药物治疗之前，否则应提醒细菌室，选用可以中和抗生素的培养基，这样血液中残留的抗生素被中和掉，有利于细菌生长，以便准确地检测出种类。
2．脓及创伤感染标本的留取。
(1)应首先用无菌生理盐水清洗脓液及病灶的杂菌，再采集标本，以免影响检验结果。
(2)一般用棉拭子采取脓液及病灶的深部的分泌物，瘘管也可以无菌手续采取组织放入无菌试管内送检。
(3)脓肿标本以无菌注射器抽取为好，也可在切开排脓时，以无菌棉拭子采取，也可以将沾有脓汁的最内层敷料放人无菌平皿中送检。
(4)厌氧菌感染的脓液常有腐臭应予注意。
采集和运送标本是否合格，对厌氧培养是否成功至关重要，特别要注意两点：①避免正常菌群所污染；②由采集至接种前尽量避免接触空气。
标本采取完毕应立即送往细菌室检测。
如一时来不及送，应在室温内作暂短保存，一般认为不要冷藏，因冷藏对某些细菌有害，而且在低温时氧的溶解度较高。
3．痰液标本的留取。
(1)痰液标本的采集以清晨为好，因此时痰量多，含菌量大。
标本收集前，病人最好用清水漱口数次，除去口腔内大部分杂菌。
然后用力自气管深部咳出痰液，吐人无菌器皿内，及时送检。
咳痰时应尽量防止唾液及鼻咽部的分泌物混入，以减少污染。
(2)若病人痰量较少，需要检查结核菌时，则应收集24小时痰液，以提高阳性率。
(3)支气管分泌物内含的细菌常能正确地反映出下呼吸道中的病理变化，标本的采集应由专科医生利用支气管镜直接从患者支气管内采取。
微生物检验标本的正确采集运送及处理
微生物检验标本的正确采集、运送及处理，与细菌的培养、鉴定结果有十分密切的关系，医生、护士、检验人员均应重视微生物标本的正确采集的有关问题，并有责任向患者及家属进行正确采集标本的宣传和指导。
（一）微生物检验标本采集、运送、验收
1、标本的采集
不同的标本在采集时会在技术、方法和量方面的内容有所不同，但是最基本需要遵循的是以下几项：
（1）申请单必须标记清楚姓名、性别、年龄、病原号、标本来源（具体写明）、检查项目（目的要明确）等，以便试验室能够合理选择培养环境和培养基。
（2）尽量在抗生素应用前采集标本、以提**性检出率和避免漏检。
（3）标本采集应严格执行无菌操作。
（4）采集标本的容器必须经灭菌处理，不可用消毒剂。
2、标本运送
（1）标本采集后应尽快运送到细菌室。
（2）标本采集后在室温下超过2小时未送到细菌室的，可视为不合格标本。
3、标本验收
（1）实验室只接受和处理合格标本。
（2）实验室对不合格标本退回必须说明原因、并及时与临床联系。
4、注意事项
（1）微生物检验样本必须要求采集转运，否则将影响检查结果，并给评价其意义带来麻烦甚至误导。
（2）微生物样本极易被污染，污染的样本杂菌大量繁殖抑制病原菌生长，条件致病菌也是致病菌，如污染条件致病菌将误导临床，造成对患者的损害以及经济和时间的浪费。
（3）某些标本离体极易死亡，应在床边采取和接种或立即保温送至实验室检验。
室温放置或延迟送检，可使检出的阳性率降低；不能使用冷藏的样本检验。
（4）厌氧菌样本采取必须隔绝空气，混入空气的样本影响检验结果，不能使用。
微生物检验标本的正确采集方法及注意事项
56医药健闻微生物检验标本的正确采集方法及注意事项刘洋 （河南京城皮肤中医院，河南郑州 450000）常见的微生物检验标本包括以下几种类型：血、骨髓、静脉导管标本，痰及下呼吸道标本，尿液标本，大便标本，生殖道系统标本，眼、耳、鼻、咽拭子标本。
血、骨髓、静脉导管标本正确采集方法：（1）先用75%酒精对静脉穿刺部位擦拭消毒30 s 以上，用一根碘棉签从穿刺点向外1.5~2 cm 的直径范围内再次消毒60 s 。
（2）使用75%酒精对血培养瓶和橡皮塞子消毒60 s 。
在血液注入血培养瓶前，先用无菌纱布或者棉签将橡皮塞子表面的残余酒精清除干净。
（3）在穿刺前或穿刺期间，佩戴乳胶手套将静脉进行固定，防止滑动，但是不可接触穿刺点；使用注射器无菌穿刺取血后，可直接注入血培养瓶中；在血标本进入到培养瓶后，轻轻颠倒混匀并立即送检，以免血液凝固。
（4）成人的采血量是8~10 ml ，儿童的采血量是1~3 ml ，骨髓采血量是1~2 ml 。
注意事项：（1）静脉采血的部位通常为肘静脉，不建议从动脉采血。
患者疑是细菌性心内膜炎时，可以选择肘动脉或者股动脉采血，勿要在静脉滴注抗菌药物时进行采血。
（2）使用注射器无菌穿刺取血后勿换针头，直接注入血培养瓶。
如果需要进行第二次穿刺，需要更换针头。
（3）多次采血时，应在不同部位的血管穿刺，以排除皮肤菌丛污染的可能。
除非无法从静脉穿刺处取血，否则不能从静脉植入管内取血。
（4）若是从静脉植入管内取血，应该同时自外周静脉采集血液进行培养，以协助判读血培养阳性结果，同时在申请单上注明标本类型。
（5）采血前，应该将患者信息、采血时间、部位、采血量写在标签上，并贴在培养瓶上。
（6）有血的培养瓶若不能立即送检，可放室温保存，切不可放入冰箱。
痰及下呼吸道标本正确采集方法：（1）能够自行取痰的患者，在清晨起床后未进食前，先用漱口水漱口，去除口腔细菌，再用清水漱口，深呼吸后用力咳出气管深处的痰液，放置于无菌集痰器中并盖好瓶盖；无法咳痰或者不合作的患者，需要帮助其采取卧位，由上而下叩击背部，并戴好无菌手套，将无菌集痰器分别连接吸引器和无菌吸痰器，按吸痰法将痰吸入无菌集痰器内，并盖好瓶盖，收集好后立即送检。
图文细菌培养标本的采集运送与处理
图文细菌培养标本的采集运送与处理细菌培养标本的采集、运送和处理是临床微生物学工作中至关重要的环节之一。
正确的操作能够保障标本的质量，减少误诊率，提高诊断准确性。
本文将介绍细菌培养标本的采集、运送和处理注意事项，为临床人员提供一些指导性意见。
采集标本的注意事项采集时间标本采集应在患者服用抗生素前或停药时间超过7天后进行。
因为在抗生素作用下，细菌数量减少，可能导致假阴性结果。
而停药时间不足7天，则可能出现抗生素抑制菌体繁殖的影响，导致假阴性结果。
采集部位细菌培养标本的采集要点是要选择适当的部位，从病变部位采集标本，以尽可能多地含有病原体。
采集前要先进行消毒处理，避免检测结果的偏差。
常见的采样部位有：•血液：静脉血、动脉血•尿液：中段尿、早晨第一次排尿•痰液：清晨空腹，深喉刺激后咳出的痰液•脑脊液：用腰穿法获取•分泌物：如脓性分泌物，要清洁创面后进行采集采集器具采集器具应为无菌的容器和器械，避免造成二次污染。
选择采集器具时，应以病变部位大小、特点及病因为基础选择适当的采集方法和器械。
标本采集量标本采集量的大小会影响到检验结果的准确性。
采集过程中，应尽量采集足够量的标本，以避免过多或过少对检测结果的影响。
一般来说，采集量不得少于2mL。
标本的运送和保存标本运送标本运送应保证其质量，在保持标本稳定性的同时，避免造成地区性污染。
运输时应按照相关规定要求，采取避光、避热、避冻等措施。
运送过程中，标本应保持无菌状态，防止被粉尘、脏物等污染。
标本保存在采集后未能及时运送的标本，应保存在4℃～8℃冰箱内，以避免培养所需的营养物质的耗损，影响后续检测结果。
冰箱应定期整理清洗，并进行温度调整，以避免异常温度对标本品质的影响。
标本处理标本处理前的准备工作在进行标本处理之前，需要对关键环节进行准备，如检查及清理工作区、准备必要器械和环境、做好相应的操作准备。
标本的处理方法标本处理一般包括离心、涂片、加药涂布和灭菌。
标本处理应按照相关规定进行，避免外界因素干扰或影响检测结果。
细菌培养标本的正确采集1
细菌培养标本的正确采集方法正确的无菌采取、处理与运送是临床细菌检验成功的关键：标本采取与处理的规范化，减少污染是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础;反之，结果毫无意义1.血培养：细菌通常在畏寒、寒战和发热前1小时入血，此时为采集血培养标本进行病原菌培养的最佳时机。
应在使用抗菌药物之前，及早采集血培养标本若患者已行抗菌药物治疗，则在下一次抗菌药物应用前采血培养推荐同时或短时间间隔（30~60分钟）从不同部位（如双臂）采集2～3套血培养标本，即“四瓶双侧”，如难以达到，至少做到“双侧双瓶。
婴幼儿患者：应在短时间内收集2～3瓶（不同部位）血培养。
由于儿童患者厌氧菌感染少见，除特殊诊断外，推荐仅使用需氧瓶。
成年患者：推荐的采血量为20--30ml, 每套不少于10ml，每瓶不少于5ml。
婴幼儿患者推荐的采血量应少于患儿总血容量的1%，每瓶不少于2ml。
注：血培养瓶在接种前、接种后均不得冷藏或冷冻，否则会导致某些病原微生物死亡。
采血后应该立即送检。
如不能立即送检，需室温保存，切勿冷藏。
血培养延迟送检时间最长不能超过2小时。
2. 痰培养采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前宜采集清晨第二口痰液。
对于普通细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连续2～3天。
不建议24 h内多次采样送检，除非痰液外观性状出现改变。
怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送检。
无痰或痰量极少者：可用3％～5％氯化钠溶液5 ml雾化吸人约5 min后留取痰液，嘱咐患者留取前摘去牙托，清洁口腔，如刷牙后反复用生理盐水漱口；深吸气后用力自气管深部咳出痰液，置无菌容器内。
3.尿液培养：为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿液清洁中段尿。
女性：采样前用肥皂水或0.1％的高锰酸钾溶液等冲洗外阴，用手指分开阴唇，弃其前段尿，不终止排尿，留取中段尿10--20 ml于无菌容器内。
男性：采样前用肥皂水或0.05％--0.1％的聚维酮碘(碘伏)溶液等消毒液清洗尿道口，擦于后上翻包皮，弃其前段尿，不终止排尿，留取中段尿10--20 ml 于无菌容器内。
正确的采取、处理与运送细菌培养的标本
正确的采取、处理与运送细菌培养的标本正确的采取、处理与运送细菌培养的标本是临床细菌检验成功的关键。
标本采取与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础；而标本采取与处理不符合要求，则细菌培养的结果毫无意义。
如标本采取或处理失当，造成污染，甚至使检验结果给临床以误导，延误对患者的正确治疗造成严重后果。
因此，著名的临床微生物检验专著Manual of Clinical Microbiology的主编Patrick R Murray在书中提出“正确的微生物学检验始自正确的标本采取。
临床医师、护师及检验技师都必须通晓其要领。
”如今，全面的检验保证系统更加重视分析前与分析后的因素对检验质量的影响，微生物检验分析前质量控制的重要内容之一，即是对标本采取与处理的质量保证。
为推行检验方法的标准化，我国借鉴国外部分经验已成立中国临床实验室标准化委员会（CCCLS），临床实验室的认证工作开始准备。
微生物检验的标准化首先应从标本采取与处理的规范化开始。
一、血液细菌培养标本的采集和处理临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者，需做血液细菌培养以明确病原。
及时、准确地从患者血液中分离出病原菌，才能正确实施有效的抗菌治疗，从而有助于治愈率的提高和医疗费用的降低。
1、采血时机：在患者发热期间越早越好，最好在抗菌治疗前，以正在发冷发热前半个小时为宜。
2、采血次数及间隔：在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎，需马上做抗菌治疗：或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者，应立即从两臂分别取2份标本。
对感染性心内膜炎患者，在24h内取血3次，每次间隔不少于30min；必要时次日再做血培养两次。
对发热原因不明者两次抽血间隔60min；必要时于24~48h后再抽血2次。
因为1次血培养不足以说明问题，且会遗漏阳性结果。
国外有人统计1次血培养可检出菌血症的80%，2次检出90%，3次检出99%。
国内统计17家医院1次血培养阳性率10.8%，18家医院2次以上血培养阳性率14.8%。
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细菌培养标本的正确采集方法
正确的无菌采取、处理与运送是临床细菌检验成功的关键：
标本采取与处理的规范化，减少污染是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础;反之，结果毫无意义
血培养：
细菌通常在畏寒、寒战和发热前1小时入血，此时为采集血培养标本进行病原菌培养的最佳时机。
应在使用抗菌药物之前，及早采集血培养标本
若患者已行抗菌药物治疗，则在下一次抗菌药物应用前采血培养推荐同时或短时间间隔（30~60分钟）从不同部位（如双臂）采集2～3套血培养标本，即“四瓶双侧”，如难以达到，至少做到“双侧双瓶。
婴幼儿患者：
应在短时间内收集2～3瓶（不同部位）血培养。
由于儿童患者厌氧菌感染少见，
除特殊诊断外，推荐仅使用需氧瓶。
成年患者：
推荐的采血量为20--30ml, 每套不少于10ml，每瓶不少于5ml。
婴幼儿患者推荐
的采血量应少于患儿总血容量的1%，每瓶不少于2ml。
血培养瓶
在接种前、接种后均不得冷藏或冷冻，否则会导致某些病原微生物死亡。
采血后应该立即送检。
如不能立即送检，需室温保存，切勿冷藏。
血培养延迟送检时间最长不能超过2小时。
痰培养：
采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前宜采集清晨第二口痰液。
对于普通细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连续2～3天。
不建议24 h内多次采样送检，除非痰液外观性状出现改变。
怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送检。
无痰或痰量极少者：可用3％～5％氯化钠溶液5 ml雾化吸人约5 min后留取痰液，嘱咐患者留取前摘去牙托，清洁口腔，如刷牙后反复用生理盐水漱口；深吸气后用力自气管深部咳出痰液，置无菌容器内。
尿液培养：为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿液清洁中段尿。
女性：采样前用肥皂水或0.1％的高锰酸钾溶液等冲洗外阴，用手指分开阴唇，弃其前段尿，不终止排尿，留取中段尿10--20 ml于无菌容器内。
男性：采样前用肥皂水或0.05％--0.1％的聚维酮碘(碘伏)溶液等消毒液清洗尿道口，擦于后上翻包皮，弃其前段尿，不终止排尿，留取中段尿10--20 ml 于无菌容器内。
导尿管尿：
直接导尿法：使用0.05％--0.1％的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒会阴局部，用导尿管直接经尿道插入膀胱，先弃其前段尿液约15 ml，再留取中段尿液10--20 ml于无菌容器内。
封闭性脓肿：
留置导尿管法采集前先夹住导尿管，采集时则松管弃其前段尿液，使用0.25％-0.5％的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒导尿管的采样部位，使用无菌注射器斜刺人导尿管(从采样口或靠近尿道的导尿管管壁)抽取10-20 ml尿液于无菌容器内。
开放伤口：无菌生理盐水彻底冲洗浅表部位，去除表面的渗出物和碎屑用拭子深入伤口的基底部或伤口-正常组织边缘部采集两个标本，分别用于培养和革兰氏染色。