乳小鼠心肌成纤维细胞和心肌细胞的分离培养及荧光鉴定_辛毅

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乳鼠心肌细胞分离及培养程序

乳鼠心肌细胞分离及培养程序

下文所述程序改编于Speicher和McCarl(1974)的方法。

实验需要两把弯头的解剖剪,两把5号钳子,一个25-ml的带橡皮塞的锥形瓶,内装一搅拌棒。

所有器械使用前均应消毒灭菌。

为了进一步保证无菌条件,最好用一次性无菌塑料用品。

所有的孵育操作均应在高湿度的5% CO237℃孵箱中。

本实验适合处理20~30只幼鼠,若少于20只鼠则可能会发生组织消化过度的情况,若超过30只,则由于准备工作加长降低了细胞的成活性。

组织消化和分离细胞1)在细胞操作间内,放一个加热搅拌台,上放一个装有100-ml灭菌水的容量600-ml的烧杯,加热至37℃。

2)准备胰酶液。

用水浴或温箱使胰酶液温度保持在37℃。

胰酶(0.1)%,100ml盐水A 90ml1%胰酶1:300(GIBCO/BRL)10ml使用当天配制盐水A137mmol/L NaCl4 mmol/L KCl4.2 mmol/L NaHCO35 mmol/L 葡萄糖溶于无菌蒸馏水中3)做一个冰台:将一只平皿装满冰后倒置即可,70%乙醇擦拭平皿后放进操作台。

取3个60-mm的一次性组织培养用平皿,加入5 ml盐水A,标记上1,2,3,放进操作台的冰台上。

4)取一只干净加盖的烧杯,内放一块Metofane饱和的纱布,把0~1日龄的SD幼鼠放进该烧杯中麻醉。

20只幼鼠大约需要5分钟时间。

用70%乙醇擦净烧杯再放进操作间。

5)一次取出一只幼鼠,一定要再盖好盖子,然后将幼鼠躺着放在一块无菌纱布上。

用乙醇擦洗其胸部及腹部。

把鼠肩胛骨往后夹,使突出胸腔,在肋骨下沿胸骨方向拉一口,摘出心脏放进标记着1的培养皿中。

24-mm规格的弯头解剖刀适合用于切口及摘除心脏。

此时幼鼠心脏仍能跳动,故一般很容易找到并摘除。

可用同一把解剖刀将心脏摘出放进盐水A溶液,若需要也可用灭菌的5号钳子。

6)继续处理余下的幼鼠,一定要保持手套及所用器械洁净。

每次解剖约需1分钟。

7)上述操作完成后,用两把5号钳子剔除心脏上结缔组织和血块再转入标记为2的平皿中。

小鼠心脏成纤维细胞说明书

小鼠心脏成纤维细胞说明书

小鼠心脏成纤维细胞说明书
1、组织来源:小鼠乳鼠
2、产品规格:25cm2培养瓶
3、细胞简介:
小鼠心脏成纤维细胞分离自正常大鼠心脏组织,细胞呈梭型、多边形等不规则形状。

体外培养的小鼠心脏成纤维细胞对于研究其生理功能、药物作用以及各种致病因素作用下的病理生理改变具重要意义。

本公司生产的小鼠心脏成纤维细胞采用酶解法制备而来,细胞总量约为1×106个/瓶,细胞纯度可达85%以上,且不含有HIV-1、 HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。

二、使用方法
客户收到细胞后,请按照以下方法进行操作。

1、取出25cm2培养瓶,75%酒精消毒,拆下封口膜,放入37℃,5%CO2细胞培养箱中静置6-8小时或者过夜,以稳定细胞状态;
2、待细胞达到80%汇合时准备进行传代培养;
3、细胞传代
(1)吸出25cm2培养瓶中的培养基,用PBS清洗细胞一次;
(2)添加0.25%胰蛋白酶消化液约1ml至培养瓶中,37℃温浴1-2min左右;倒置显微镜下观察,待细胞回缩变圆后吸弃消化液,再加入完全培养液终止消化;
(3)用吸管轻轻吹打混匀,按1:2或1:3等适当的比例进行接种传代,然后补充新鲜的完全培养基至5ml,放入37℃,5%CO2细胞培养箱中培养;
(4)待细胞完全贴壁后,培养观察。

之后每隔2-3天更换新鲜的完全培养基。

(备注:由于实验所用试剂与操作环境的不同,以上方法供各实验室参考。


三、注意事项
1、培养基于4℃条件下可保存3-6个月;
2、在细胞培养过程中,请注意保持无菌操作;
3、传代培养过程中,胰酶消化时间不宜过长,否则会影响细胞贴壁及其生长状态;
4、该细胞只可用于科研。

乳鼠心肌细胞分离步骤

乳鼠心肌细胞分离步骤

一、细胞室灭菌1.将酒精灯、止血钳、枪、滴管架子、离心管架子、器械饭盒等清点无误后置于超净台内,紫外照射20-30min。

2.(注:物品不可重叠放置,否则会遮挡射线。

培养细胞和培养用液不可照射紫外。

)3.将实验服等摊开置于培养室,打开紫外照射20-30min。

4.紫外照射结束后,打开超净台风机,吹10min,吹走O3。

5.(注:若超净台内物品不全,向台内拿取物品前,应先用75%酒精喷洒消毒。

)二、胶原酶1的配置分离心肌细胞的胶原酶1浓度为:10mg胶原酶/12ml PBS。

具体方法为:(以下过程均在超净台内操作)1.称取10mg胶原酶于小烧杯中。

2.加入12ml PBS溶液。

3.灼烧止血钳,夹出青霉素小瓶,灼烧备用。

4.用10ml一次性无菌注射器吸取小烧杯中溶液,用一次性无菌滤器过滤于青霉素小瓶中,即得到无菌的胶原酶1溶液,呈淡土黄色。

三、取材并分离心肌细胞1.用止血钳取5-6个平皿,分别加入适量PBS溶液。

2.用止血钳夹住小烧杯壁,从器械饭盒中取出剪刀、镊子等器械。

3.准备2个小烧杯,加入75%酒精适量,一个置于超净台外,一个置于超净台内。

先将乳鼠头朝下置于外面的小烧杯中消毒2min左右,取出,拿进超净台内,置于内部的小烧杯中消毒2min.4.左手捏住乳鼠背部皮肤,暴露出胸腔,右手拿一直的小剪刀,在中间靠左处剪开皮肤,左手轻轻一捏,其心脏即弹出来。

5.剪下心室部分置于含PBS的平皿中。

6.待8只乳鼠心脏全部取定后,换手套,喷酒精。

7.左手拿镊子,右手拿剪刀,在心脏中间部位剪一刀,成“肉夹馍”形,在PBS中冲洗干净,洗去血细胞。

8.将心室转移到另一新的培养皿中,继续清洗,此时可继续打开心室,取出余血。

9.继续冲洗2-3遍,10.将洗好的心脏置于含转子的带盖玻璃瓶中(提前将转子取出置于干净处),加入2ml PBS溶液。

11.灼烧剪刀,左手拿玻璃瓶,右手拿剪刀剪碎心脏成不能再剪的碎片。

12.用枪吸掉上清,只留碎片,将转子放入玻璃瓶中,盖好盖子备用。

一种改良的原代大鼠乳鼠心肌细胞分离及培养方法

一种改良的原代大鼠乳鼠心肌细胞分离及培养方法

种传 统 方 法 所 分 离 的 乳 鼠 一 i X , 肌 细胞 的存活 率低 、 纯度 不高 , 不 能 广 泛 应 用 于 t l , 血 管 疾 病 的 基 础 性 研 究 。经 过 几 十 年 的 探 索 和发现 , 人 们 不 断 改 良方 法 , 力 求 寻 到 更 适 合 的 乳 鼠 心 肌 细 胞 分离方法 , 当前 很 多 文 献 报 道 的培 养 方 法 大 多数 都 是 在 传 统 方 法 基 础 上 进 行 改 良E z - 1 0 ] , 总结起 来 主要有 两种方 法 , 胰 蛋 白酶
的研 究中。
关键 词 : 乳鼠 ; 心肌细胞
在心血管疾病的临床和基础研究 中 , 大 鼠 乳 鼠心 肌 细 胞 常 常 被 用 作 细 胞 体 外 实 验 的 研 究 模 型 。虽 然 Ha r a r y等 _ 1 ] 早 在
1 9 6 0年 就 已经 找 到 原 代 乳 鼠心 肌 细 胞 分 离 及 培 养 方 法 , 但 用 这
摘 要 目的 : 本研 究 旨 在探讨 一种经改 良 后 既稳定 又高效的分 离大鼠乳 鼠心肌 细胞 的原代 分离和培 养方法 , 拟建立 此种
方 法, 为 进 一 步 研 究 单 个 心 肌 细 胞 上 的 各 种 电生 机 制 等 诸 多 实验 提 供 有 利 的前 提 保 障 。方 法 : 取 出生 l 一 3天 内 S D大鼠心脏 , 联
合 应 用胰 蛋 白酶 和 Ⅱ胶 原 酶 两 步 消化 , 离心 收 集 到 心 肌 细 胞 , 差速培 养, 加入 5 一 溴 脱 氧 尿 嘧 啶 核 苷 纯 化 后 得 到 原代 心 肌 细 胞 , 经 高
糖D ME M 培养 , 即 可得 到 立体 感较 强的 大 鼠乳 鼠 心肌 细胞 。结 果 : 联 合 应 用 胰 蛋 白酶 和 Ⅱ胶 原 酶 两步 消化 , 经过 高糖 D ME M 培 养

乳鼠心肌细胞和心脏成纤维细胞的原代培养

乳鼠心肌细胞和心脏成纤维细胞的原代培养

1 3 实验 仪 器 超 净 工 作 台 ( 海 浦 东 物 理 光 学 . 上
仪器 厂 ) C 培养 箱 ( 国 S E LL B公 司 ) 普 、O 美 H L A 、
通光 学显微 镜 ( 日本 O y u ) 离心 机 ( 大利 A C l mp s 、 意 L 公 司) 。 等
胎 牛血清 为接 种培养 液 , 加入 1 %新 生 牛 血清 为 交 0
换 培养液 。酶 消化液 : 将胰 蛋 白酶溶 于 P S缓 冲液 B ( H 7 2~ . ) , p . 7 4 中 配成 0 1 . %胰 蛋 白酶 消化 液 ; 将
I 型胶原 酶 溶 于 P S缓 冲 液 ( H 72~74 中 , B p . . ) 配 成 0 0 % 的 胶 原 酶 消 化 液 。0 1 胰 蛋 白 酶 及 .8 .%
14 方 法 .
维细胞 培养 常存 在 污染 、 消化 不 全 和 纯度 不 够 等 现 象 。为此 , 们 参 照 Sm sn等 的 培养 方 法 并 作 我 ipo
了改进, 摸索 出一种简便 、 可靠 , 且同时能培养出心 肌细 胞和心 脏成 纤维 细 胞 的方法 , 心肌 细 胞 和 心 为 脏 成纤 维 细胞 的 体外 研究 提供 了 更 有 效Байду номын сангаас的技 术 手 段 , 作报道 。 现
0 0 % I型胶原 酶 以 2 1 .8 : 混合 , 配现用 。 现 1 2 实验 动物 1~ F龄 S . 3 t D大 鼠 1 2 0~ 5只 , 由 本 院实验 动物 中心提 供 。
[ 收稿 日期 ]2 0 -63 090 -0 [ 作者单位 ]1蚌埠 医学院 药理学教 研室 , . 安徽 蚌埠 2 3 3 2 蚌 30 0;. 埠医学 院第一附属医院 心血管 内科 , 安徽 蚌埠 2 30 3 04 [ 作者简介 ]张乃菊 (9 1一) 女 , 士研究生. 18 , 硕 [ 通讯作者 ]祝晓光 , 研究生导师 , 教授.

乳鼠心肌细胞片状生长的分离、培养及纯化

乳鼠心肌细胞片状生长的分离、培养及纯化

DOI :10.3969/j.issn.1672-9463.2020.04.002乳鼠心肌细胞片状生长的分离、培养及纯化张宇 杨帆【摘要】 目的 探讨乳鼠心肌细胞分离、培养的方法与条件,从而在体外实验中得到纯度、存活率更高的心肌细胞。

方法 出生24h 内C57BL/6J 乳小鼠,开胸分离出左心室并剪碎,用0.1%胰酶与0.1%胶原酶Ⅱ型的混合液消化心肌组织,并用两次差速贴壁法纯化心肌细胞。

在倒置光学及荧光显微镜下观察细胞形态,并计数心肌细胞搏动次数,通过台盼蓝染色法检测细胞存活率。

结果 心肌细胞培养24h 后基本全部贴壁,伸出伪足;培养48h 后,细胞伪足逐渐增多呈局部片状;培养72h 后,大部分心肌细胞的突起相互交联,形成片状。

培养第2天细胞存活率达到(95.33±2.51)%。

…结论 本研究方法所培养的心肌细胞具有存活率高、纯度高及稳定性强等优势,有利于加强心肌细胞的基础实验研究。

【关键词】 心肌细胞 原代培养 改良 存活率 片状生长Isolation, culture and purification of flaky growth of neonatal rat cardiomyocytes Zhang Yu, Yang Fan. Department of Cardiology, Xixiu District People's Hospital of Anshun City, Anshun 561000【Abstract 】 Objective To…investigate…the…methods…and…condition…of…isolation…and…culture…of…the…neonatal…rat…cardiomyocytes,…acquire…the…higher…purity…and…survival…of…cardiomyocytes…in…vitro.…Methods The…C57BL/6J…mice…in…24…hours…of…birth…were…executed…to…obtain…the…left…ventricle.…The…left…ventricle…tissues…were…digested…by…the…mixture…(containing…0.1%…trypsin…and…0.1%…collagenase…type…Ⅱ)…for…isolation…and…then…were…purified…by…twice…adherence.…The…morphology…and…beats…of…cardiomyocytes…were…detected…by…microscope…and…the…cellular…survival…rates…were…measured…by…Trypan…Blue.…Results The…cardiomyocytes…were…adherent…after…24…hours…with…the…protruding…portions.…The…protruding…portions…were…partly…extended…flakily…after…48…hours.…Most…of…cardiomyocytes…were…cross-linked…through…the…increased…protruding…portions…after…72…hours.…The…cellular…survival…rate…was…about…(95.33±2.51)%…after…48…hours.…Conclusion The…high…survival…rate,…purity…and…stability…of…cardiomyocytes…can…be…obtained…by…our…improving…method,…which…could…enhance…the…basic…researches…in…cardiomyocytes.【Key words 】 Cardiomyocyte Primary…culture Improving Survival…rate Flaky…growth▲基金项目:国家自然科学基金资助项目(编号:81960083);安顺市科技计划项目(编号:安市科社[2019]07号)作者单位:561000 贵州省安顺市西秀区人民医院心内科(张宇);贵州省人民医院心内科(杨帆)通讯作者:杨帆,E-mail:*********************随着社会进步与人们生活水平提高,心血管疾病的发病率日趋增高并逐步年轻化[1],心血管疾病研究一直是科研工作者不断探索及关注的领域。

乳鼠心肌成纤维细胞培养方法的改进

乳鼠心肌成纤维细胞培养方法的改进

・论著・乳鼠心肌成纤维细胞培养方法的改进陈勇兵 陈如坤 陈力 吴明 施立 杨文涛 钱永跃【摘要】 目的 建立乳鼠心肌成纤维细胞培养模型。

方法 通过对经典的差速贴壁分离法稍作改进,采用每次贴壁60min 、两次差速贴壁分离法收集、培养心肌成纤维细胞。

结果 形态学观察和免疫细胞化学染色鉴定显示,成功培养心肌成纤维细胞,纯度达95%以上。

结论 该研究成功建立乳鼠心肌成纤维细胞培养模型,为高纯度心肌成纤维细胞的获得和对其病理生理学的进一步研究打下良好基础。

【关键词】 心肌成纤维细胞;细胞培养A modif ication of the model establishment for cell culture of neonatal rat myocardial f ibroblasts CHEN Yongbing ,CHEN Rukun ,CHEN Li ,et al.Depart ment of Thoracic a nd Cardiovascular Surgery ,Second Affiliated Hospital ,Soochow University ,Suzhou 215004,CHINA【Abstract 】 Objective To establish the model of cell culture of neonatal rat myocardial fibro 2blasts.Methods Neonatal rat myocardial fibroblasts were isolated and cultured with a modified tech 2nique of differential anchoring velocity for twice with 60min each.Morphologic characters of those cells were observed with the inverted microscope.Immunocytochemical staining was used to evaluate and confirm the myocardial fibroblasts.R esults The morphological observation and immunocyto 2chemical staining used to confirm the myocardial fibroblasts showed that the purity of cells cultured was more than 95%.Conclusion The model of cell culture of neonatal rat myocardial fibroblasts was successfully established ,which has laid good foundation for f urther research on myocardial fibroblasts.【K ey w ords 】 Myocardial fibroblast ;Cell culture 基金项目:苏州大学青年基金;浙江省医药卫生科学研究基金(编号2000A110)作者单位:215004 苏州大学附属第二医院胸心外科(陈勇兵、施立、杨文涛、钱永跃);浙江大学附属第二医院胸心外科(陈如坤、陈力、吴明) 心脏由心肌细胞和非心肌细胞组成。

高效分离培养乳鼠心肌细胞和心肌成纤维细胞的方法[发明专利]

高效分离培养乳鼠心肌细胞和心肌成纤维细胞的方法[发明专利]

(19)中华人民共和国国家知识产权局(12)发明专利申请(10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 202010680696.2(22)申请日 2020.07.15(71)申请人 四川大学华西医院地址 610041 四川省成都市武侯区国学巷37号(72)发明人 黄方洋 李君丽 田格尔 周骏腾 (74)专利代理机构 成都虹桥专利事务所(普通合伙) 51124代理人 伍云萍(51)Int.Cl.C12N 5/077(2010.01)(54)发明名称高效分离培养乳鼠心肌细胞和心肌成纤维细胞的方法(57)摘要本发明属于细胞分离培养技术领域,具体涉及一种高效分离培养乳鼠心肌细胞和心肌成纤维细胞的方法。

针对现有大/小鼠乳鼠心肌细胞及心肌成纤维细胞分离效率低、活性差、操作条件不易控制的问题,本发明提供了一种方法,包括以下步骤:a、取乳鼠心脏,清洗后转移至含胰蛋白酶的分离液中,剪碎;b、组织块在分离液中消化后,吸走上清,剩余物中加入消化液,消化;c、移液管吹打混匀,静置,转移上部悬浮液,对下部的组织块再加入消化液消化;d、悬浮液混合,离心,弃上清,重悬细胞,孵育,成纤维细胞和心肌细胞。

本方法能够高效分离心肌细胞,得到的心肌细胞活性高,得率高;还能同时获得心肌成纤维细胞,适宜工业化生产。

权利要求书1页 说明书6页 附图2页CN 111876378 A 2020.11.03C N 111876378A1.高效分离培养乳鼠心肌细胞及心肌成纤维细胞的方法,其特征在于,包括以下步骤:a、取乳鼠心脏,置于含Blebbistatin的PBS溶液中清洗后,转移至含胰蛋白酶的分离液中,剪碎心脏成小的组织块;b、将步骤a所述组织块在10~15ml分离液中消化,2~8℃消化4~12小时后,吸走上清,剩余物中加入消化液,在37℃下消化20~30min;c、步骤b消化完成后,采用移液管吹打混匀,静置,转移上部悬浮液,对静置后下部的组织块再加入消化液,在37℃下消化20~30min,直至无肉眼可见组织块;d、将步骤c消化后得到的悬浮液混合,离心,弃上清,采用铺板培养基重悬细胞,孵育30~60min,成纤维细胞铺于相应孔板中,上清中的细胞即为心肌细胞。

SD乳鼠原代心脏成纤维细胞培养及鉴定

SD乳鼠原代心脏成纤维细胞培养及鉴定

SD乳鼠原代心脏成纤维细胞培养及鉴定杨艳1 ,欧阳伟炜1,2 ,苏胜发1,2,马筑1,2,李青松1,2,耿一超1,2,卢冰1,2(1.贵州医科大学附院肿瘤科,贵州省肿瘤医院肿瘤科,贵州贵阳 550004;2.贵州医科大学肿瘤学教研室,贵州贵阳 550004)[摘 要]目的:建立一种乳鼠心脏成纤维细胞分离、培养及鉴定的方法。

方法:选取新出生的SD乳鼠,用胰蛋白酶和Ⅱ型胶原酶消化组织,差速贴壁法分离纯化心脏成纤维细胞;倒置显微镜观察细胞形态特征及生长情况,并进行Vimentin免疫组化对培养的原代细胞进行鉴定,观察原代细胞生长中出现污染情况。

结果:差速贴壁60~90min后镜下可见圆形细胞贴壁,2d后可见细胞呈梭形、扁平形、三角形或多角形,且细胞数量增多、核分裂相增多;第3~4天时细胞生长约90%,免疫组化见细胞染色达90%以上,在原代细胞培养48h时出现细菌污染。

结论:成功建立一种稳定、有效的心脏成纤维细胞培养方法。

[关键词]心脏;成纤维细胞;形态发生;免疫组织化学;原代培养;鉴定[中图分类号]R329.2;Q954.6 [文献标识码]A [文章编号]1000 2707(2020)04 0427 05DOI:10.19367/j.cnki.1000 2707.2020.04.010CultureandIdentificationofPrimaryCardiacFibroblastsinSDNeonatalMiceYANGYan1,OUYANGWeiwei1,2,SUShengfa1,2,MAZhu1,2,LIQingsong1,2,GENGYichao1,2,LUBing1,2(1.DepartmentofOncology,theAffiliatedHospitalofGuizhouMedicalUniversity,DepartmentofOncology,GuizhouProvincialCancerHospital,Guiyang550004,Guizhou,China;2.DepartmentofOncology,GuizhouMedicalUniversity,Guiyang550004,Guizhou,China)[Abstract]Objective:Toestablishamethodfortheisolation,cultureandidentificationofcardiacfibroblastsinSDneonatalmice.Methods:TheSDnewbornmicewereselectedandthetissuesweredigestedwithtrypsinandtypeIIcollagenase,andthecardiacfibroblastswereisolatedandpurifiedbyrapidadherence.Cardiacfibroblastsandmyocardialcellswereisolatedwithdifferentialadhesionmethod.Themorphologicalchangesandgrowsofcardiacfibroblastswereobservedunderinvertedmicroscope.TheprimarycellsareidentifiedbyVimentinimmunochemistrystainingandthecontaminationinprimarycellgrowthwasobserved.Results:After60~90minutesofdifferentialadhesion,adherentfibroblastsformedsphericalcellmassandcellswerespindle shapedandproliferatedrapidlyafter2days.Cellswereconfluentafter3~4daysandnuclearfissionincreased.ThepositiverateofVimentinimmunochemistrystainingwerenearlyupto90%.Bacterialcontaminationoccurredduringprimarycellcultureat48h.Conclusion:Thismethodiseconomicalandstabletoisolatecardiacfibroblastswithhighactivityandhighpurityfromadultmice.[Keywords]heart;fibroblasts;morphogenesis;immunohistochemistry;primaryculture;identification724第45卷 第4期2020年4月 贵州医科大学学报JOURNALOFGUIZHOUMEDICALUNIVERSITY Vol.45 No.42020.4[基金项目]贵州省科技厅课题[黔科合LH字(2014)7135];贵州省教育厅创新群体重大研究项目[黔教合KY字(2016)032];国家自然科学基金地区科学基金项目(81660507)贵州医科大学2015级硕士研究生 通信作者E mail:ouyangww103173@163.com;lbgy-maaaa@163.com 成纤维细胞是疏松结缔组织中最主要的细胞,可分泌多种生长因子调节细胞增殖及分化。

原代乳小鼠心肌细胞的分离培养及鉴定

原代乳小鼠心肌细胞的分离培养及鉴定

原代乳小鼠心肌细胞的分离培养及鉴定*程阔菊,黄河,杜智勇,李洪,杨天德△【摘要】目的建立原代乳小鼠心肌细胞的培养方法,评价心肌细胞的存活状况并鉴定心肌细胞纯度。

方法应用胰酶联合胶原酶共同消化3d内C57乳小鼠心脏,台盼蓝染色判断心肌细胞存活率,α-actin免疫荧光染色鉴定心肌细胞纯度。

结果利用3d内乳鼠心脏可成功培养原代小鼠心肌细胞,台盼蓝染色显示细胞存活率大于95%,α-actin免疫荧光染色显示心肌细胞纯度达95%以上。

结论严格控制实验条件,可成功培养高存活率和高纯度的小鼠心肌细胞。

【期刊名称】重庆医学【年(卷),期】2013(000)022【总页数】3【关键词】乳小鼠;心肌细胞;分离;纯化;培养;鉴定各种基因敲除及转基因小鼠已广泛应用于心血管疾病动物模型的建立,已为心血管疾病机制的研究作出了巨大贡献。

体外心肌细胞培养作为一种体外实验研究模型,可以排除神经、体液的干扰而独立地从细胞和分子水平研究心血管疾病的发生、发展机制,但由于小鼠心肌细胞的分离和培养比较困难,所以一直限制了医学科研工作者在细胞生物学水平上对心血管疾病方面的深入研究。

本实验室在以往的经验基础上,摸索出了一套成熟可行、简单可靠的小鼠心肌细胞培养方法,获得的心肌细胞存活率高且纯度高。

本文对此培养方法做一简单介绍,并对其中的关键影响因素做详细的探讨。

1 材料与方法1.1 材料1.1.1 实验动物1~3d龄野生型C57新生乳鼠,SPF级,由第三军医大学实验动物中心提供,合格证号:SCXK(渝)2007-0003。

1.1.2 主要仪器与试剂显微眼用镊、眼科剪、显微镊、显微剪(上海医疗器械有限公司),器械使用前清洗干净并经高压灭菌(121℃,20min)。

二氧化碳培养箱、倒置显微镜(OLYMPUS)、超净工作台(苏净安泰)、低温台式离心机(Sigma)。

小牛血清、DMEM/F12、胰酶、胶原酶Ⅱ(GIBCO),BrdU-溴脱氧尿苷(Sigma),青霉素、链霉素(华美生物工程公司),anti-α-actinin(Millipore),组织固定液(Alphelys),Triton X-100(Amresco),SlowFade Gold antifade reagent with DAPI(Invitrogen),Alexa goat anti-mouse IgG(H+L)(Invitrogen)。

大鼠心肌细胞的分离鉴定以及培养

大鼠心肌细胞的分离鉴定以及培养

大鼠心肌细胞的分离鉴定以及培养心肌细胞是构成心脏肌肉的主要细胞类型,具有重要的生理功能。

研究大鼠心肌细胞具有重要的意义,可以探究心血管疾病的发生和发展机制,以及开发相关的药物治疗。

大鼠心肌细胞的分离可通过以下步骤进行:1. 预处理:取出大鼠心脏,迅速放置在冷却的维生素-free Hanks盐溶液中。

然后,用冷却过的Hanks盐溶液洗涤心脏,去除血液和杂质。

2. 细胞分离酶处理:将心脏切成小块,并放入含有0.1%胰蛋白酶和0.1%胆汁酸的预温化酶解缓冲液中。

在37℃的恒温摇床上进行酶解处理。

3. 细胞分离:酶解后的心脏组织经过轻微的摇晃,并用玻璃棒将组织块轻轻破碎。

将破碎的组织悬浮液通过细胞筛过滤器,并用高离心力离心收集上清液。

4. 细胞沉降:将上清液经过离心,去除上清液,留下细胞沉淀。

再次加入含有0.1%胰蛋白酶的预温化酶解缓冲液,并摇动细胞沉淀,使细胞悬浮。

5. 细胞富集:采用密度梯度离心法,将细胞悬液慢慢加入含有离心液的离心管中进行离心。

心肌细胞将沉积在密度梯度的底部。

6. 细胞培养:将心肌细胞的上清液去除,留下沉积的心肌细胞,加入预先准备好的心肌培养基中。

将细胞培养于37℃恒温孵化箱中,并提供适当的营养物质。

1. 形态学鉴定:使用显微镜观察细胞的形态结构。

正常的心肌细胞呈长条状,具有交叉纹理的横纹。

如果细胞形态发生变化,如变形、伸长或成球状,则可能表示细胞出现异常。

2. 免疫细胞化学鉴定:使用免疫荧光染色或免疫组化染色的方法,检测心肌细胞特异性标记物,如肌球蛋白(myosin)等。

正常的心肌细胞应表达这些标记物。

3. 功能鉴定:利用心肌细胞的特殊功能特点,如收缩、钙离子跨膜转运等,进行鉴定。

可通过记录细胞的膜电位变化、细胞的跳动频率等指标来评估细胞功能。

心肌细胞的培养需要特别注意以下事项:1. 培养基的选择:根据不同研究需求选择适当的培养基,如DMEM、Dulbecco改良的培养基等。

培养基应添加适量的血清、营养物质和生长因子,以提供细胞所需的营养和生长环境。

原代乳鼠心肌细胞分离培养的改进-论文

原代乳鼠心肌细胞分离培养的改进-论文

Mo s t c e 1 1 s we r e t o U C h i n g t o wa l l i n 1 2 h o u r s ,a n d a l 1 c e l l s s t i c k i n g t o wa l l i n 2 4 h o u r s ,wi t h s ma l l a mo u n t
1 . 1 材 料
1 . 1 . 1 实 验动 物 新 生 S D 大 鼠乳 鼠 ( 1 ~3 d ) , 由
自主 搏动情 况 及频 率 。
1 . 2 . 5 心 肌 细 胞 纯 度 鉴 定 用 免 疫 荧 光 法 鉴 定 心 肌细 胞纯度 , 一 抗 为 抗 心 肌 肌 钙 蛋 白 T抗 体 , 二 抗 标 有 红色荧 光 。将 培 养 7 2 h的接 有 心 肌 细 胞 的 6 孔板用 P B S清洗 2 43遍 , 室 温下 4 多聚 甲醛 固定 1 0 mi n , 0 . 2 5 Tr i t o n - X1 0 0透化 1 0 mi n , 驴 血清 封 闭3 0 mi n后 加入一 抗孵 育 1 h 。加入二 抗 避光孵 育 1 h后 用 DAP I 1 ̄ g / mL染 色 1 mi n 。 于倒 置 荧 光
及 纯度低 、 细胞活性 差 等原 因 , 尚不能 满足 于基础 研
基金项 目: 国家 自然 科 学 基 金 ( 8 1 0 6 0 0 2 1 ) 作者简介 : 包馨慧( 1 9 8 9 一) , 女, 在读 硕 士 , 研究方 向: 心 血 管 疾 病 基 础 与 临 床研 究 。
通信作者 : 李 晓 梅 。女 , 博 士, 副 主任 医师 , 副教授 , 研究方向 : 冠 脉介 人 的基 础 及 临床 研 究 , E — ma i l :L i x m5 0 5 @1 6 3 . c o m。

乳小鼠心肌成纤维细胞和心肌细胞的分离培养及荧光鉴定_辛毅

乳小鼠心肌成纤维细胞和心肌细胞的分离培养及荧光鉴定_辛毅
( 1 . Beijing Anzhen Hospital, Capital Medical University, Department of Experimental Center, Beijing Institute of Heart, Lung and Blood Vessel Diseases, Beijing 100029 , China; 2 . Beijing Anzhen Hospital, Capital Medical University, Department of Molecular Beijing Institute of Heart, Lung and Blood Vessel Diseases, Beijing 100029 , China; 3 . Department of Cardiac Surgery, Biology, Beijing Anzhen Hospital, Affiliated to Capital Medical University, Beijing 100029 , China) Abstract: Objective To build the isolation, culture and identification techniques of cardiac fibroblasts and cardiac The heart of neonate mouse was cut into pieces, then type Ⅱ collagenase plus trypsimyocytes of neonate mouse. Methods
[23 ]
泡 10 s, 转移至超净台。将乳鼠固定于左手掌中, 右 手用无菌棉签蘸体积分数 75% 酒精消毒胸、 腹部皮 肤 3 次。用眼科虹膜剪在剑突处正中线稍偏左向上 开胸后, 用剪子压住胸骨右缘, 使心脏自然跳出, 用 取 出 心 脏, 置于装有预冷 弯镊 子 勾 住 心 尖 根 部, 0. 01 mol · L - 1 磷酸盐缓冲溶液 ( phosphate buffered PBS) 的培养皿中。 将鼠心脏全部取出后, solution, 剪去心房、 剔除心脏上结缔组织、 脂肪及血管, 于预

成年小鼠心肌细胞的分离培养及鉴定

成年小鼠心肌细胞的分离培养及鉴定

成年小鼠心肌细胞的分离培养及鉴定王丽娟;贾大林;齐国先【期刊名称】《中国实验动物学报》【年(卷),期】2007(015)003【摘要】目的探讨成年小鼠心肌细胞分离培养的方法,评价心肌细胞的存活状况.方法应用改良Langendorff方法进行成年小鼠心脏灌流,分离并培养心肌细胞, 评价杆状心肌细胞的比例变化.台盼蓝染色判定心肌细胞活力,应用毒胡萝卜素(thapsigargin) 治疗心肌细胞24 h后,WST方法测定细胞生存率.结果在每个成年小鼠心脏分离了40~60万的心肌细胞,台盼蓝染色结果68%为存活心肌细胞.心肌细胞培养1 h、24 h及48 h后,杆状心肌细胞的比例分别为70%、50%及30%.心肌细胞生存率随着毒胡萝卜素浓度的增加逐渐减低,其中1、5及10 μmol/L毒胡萝卜素的生存率明显低于对照组 (P<0.05,P<0.01).结论应用改良Langendorff 方法及严格控制心脏灌流培养的条件,可以成功地分离培养成年小鼠心肌细胞,有助于进行细胞分子水平的研究.【总页数】4页(P175-178)【作者】王丽娟;贾大林;齐国先【作者单位】中国医科大学第一临床学院循环内科,辽宁,沈阳,110001;中国医科大学第一临床学院循环内科,辽宁,沈阳,110001;中国医科大学第一临床学院循环内科,辽宁,沈阳,110001【正文语种】中文【中图分类】R332【相关文献】1.原代乳小鼠心肌细胞的分离培养及鉴定 [J], 程阔菊;黄河;杜智勇;李洪;杨天德2.乳小鼠心肌成纤维细胞和心肌细胞的分离培养及荧光鉴定 [J], 辛毅;许秀芳;黄益民;张颖;李温斌3.成年C57BL/6小鼠空肠Cajal间质细胞的分离、培养及鉴定 [J], 刘登群;龙爽;王军平;史春梦;冉新泽;粟永萍4.C57胎鼠、乳鼠及成年小鼠心室肌细胞分离、培养及鉴定 [J], 张玲;段明军;魏琴;陈华;时利;侯月梅5.新生小鼠心肌细胞分离培养的改良及其鉴定 [J], 夏机良;朱泽安;张湘涛;王跃群;吴秀山因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

乳鼠心肌细胞的分离和培养

乳鼠心肌细胞的分离和培养

2.方法
2.3 于剩余沉淀中加入混合消化液5ml(0.06%胰酶+0.1%II型 胶原酶),置37℃水浴消化8-10分钟,其间震荡2-3次,然后静置。 上述消化处理的同时,往一只50ml的一次性无菌离心管中加入 20ml预冷的含10%血清的DMEM/F12培养液,并放置冰台上。 消化处理之后,小心移出上清转至上述加有培养液的离心管中,第 一次消化结束;随后用上述方法反复消化7-8次至组织块基本消化 完毕。
2.方法
2.5 一般不用加BrdU,如果培养时间长(发现成纤维细胞也极少), 可以培养前3d加入0.1mmol/L BrdU抑制成纤维细胞生长。加了 BrdU,心肌细胞搏动的时间会更长。 2.6 接种后24h,用温的培养基或者平衡盐溶液轻轻冲洗培养的心 肌细胞一次,以去除未贴壁的细胞(部分细胞会在24h之后贴,结果 很多细胞重叠生长),再更换培养液即可。可以按照实验在48或 72h后施加处理因素。
4、讨论
乳鼠心肌细胞的分离和培养
整理:杜子欧
1.材料
1.1 动物 出生后1-4天乳鼠(15)只
1.2 试剂 1:1混合的DMEM/F12培养液:10%新生胎牛血清(FCS)、
100IU/ml青霉素、100ug/ml链霉素。(L-谷氨酰胺) 消化液:0.06%胰酶、0.1%胶原酶,用pH7.2-7.8的D-
已消毒的铝盒、眼科直剪、眼科弯剪、眼科直镊、玻璃培养皿(共两 套,一套用于解剖,一套用于剪碎心脏组织)、75cm2培养瓶、50ml 离心管、离心机、磁力搅拌器和搅拌棒、200目尼龙网、微量移液枪、 37度恒温水浴锅、5%CO2恒温培育箱、倒置相差显微镜、净化工作台。
2.方法
2.1 颈脱位处死乳鼠,消毒取样:放入装有75%酒精的烧杯6s即 可。左手捏紧乳鼠颈背部皮肤以充分展露胸部,右手取一把眼科直 剪剪开皮,充分撕拉开,再用酒精棉球消毒后,取一把眼科弯剪沿 胸骨柄左下缘向上剪开肋骨,然后在切口中间横剪胸骨。这样只要 左手稍顶,乳鼠的心脏就直接跳出来。然后用眼科弯镊从心脏中部 直接将心室部分剪下,放入冰浴的D-Hanks溶液中。 注:速度越快越好,以保持心肌细胞的活性。

C57胎鼠、乳鼠及成年小鼠心室肌细胞分离、培养及鉴定

C57胎鼠、乳鼠及成年小鼠心室肌细胞分离、培养及鉴定

C57胎鼠、乳鼠及成年小鼠心室肌细胞分离、培养及鉴定张玲;段明军;魏琴;陈华;时利;侯月梅【期刊名称】《中国组织工程研究》【年(卷),期】2011(015)020【摘要】背景:培养的心肌细胞被广泛应用于心肌细胞的生理特性、毒性实验、基因工程、疾病模型和药物筛选等方面的研究.获得纯度较高活性良好的品系小鼠心肌细胞是研究的关键前提.目的:分离和培养C57小鼠胎鼠、乳鼠及成年小鼠心室肌细胞.方法:应用机械切碎心室肌后,胰蛋白酶消化不同发育阶段的C57小鼠心室肌细胞,差速贴壁1 h纯化心室肌细胞,锥虫蓝染色判定心肌细胞活力,体外分别培养48~72 h后分别行倒置显微镜、扫描及透射电镜观察细胞形态,微电极阵列评价细胞电生理指标,免疫组化鉴定.结果与结论:经3~6次消化后,心室组织消化完全,即刻细胞存活率大于85%.倒置显微镜下观察,细胞呈梭形、多角形.12 h有少部分细胞搏动,48 h细胞交织成网,搏动呈同步性,搏动频率30~90次/min.说明用胰蛋白酶组织消化法可以成功地分离、培养,并获得形态、活力良好的胎鼠、乳鼠及成年C57小鼠心室肌细胞.%BACKGROUND: Cultured cardiomyocytes are widely utilized in related researches such as physiological and toxicologic experiments, gene engineering, diseases model, drug screening and so on. How to harvest mouse cardiomyocytes with high activity is a key premise for these studies.OBJECTIVE: To establish a method to isolate and culture ventricular cardiomyocytes from embryonal, neonate and adult C57 mice.METHODS: The ventricular myocardium from fetal, neonatal and adult C57 mice were minced and digested in trypsin, the purifiedventricular cardiocytes were obtained by differential adhesion about 1 hour. The survival rate was assessed by trypan staining. Morphology of ventricular cardiomyocytes was observed through the methods of inverted phase contrast microscope, transmission electron microscope, scanning electron microscope, and the electrophysiological properties were identified through immunocytochemistry and microelectrodearray.RESULTS AND CONCLUSION: The ventricular tissues were almost completely digested through 3-6 times. Trypan staining showed that the survival rate of the cardiocytes cultured was more than 85%. Under the inverted phase contrast microscope, we found that the cells were fusiform or polyhedron and connected to each other and some cells began beat after 12 hours. The cells monolayer formed a network and beat spontaneously at the 30-90 times per minutes. The ventricular cardiomyocytes from embryonal, neonate and adult C57 mice can be obtained with well morphology and spontaneous beating with trypsin digestion.【总页数】5页(P3683-3687)【作者】张玲;段明军;魏琴;陈华;时利;侯月梅【作者单位】新疆医科大学第一附属医院,心律失常VIP研究室,新疆维吾尔自治区乌鲁木齐市,830054;新疆医科大学第一附属医院,医学研究中心实验动物科学研究部,新疆维吾尔自治区乌鲁木齐市,830054;新疆医科大学第一附属医院,医学研究中心实验动物科学研究部,新疆维吾尔自治区乌鲁木齐市,830054;新疆医科大学第一附属医院,心律失常VIP研究室,新疆维吾尔自治区乌鲁木齐市,830054;解放军总医院肿瘤科,北京市,100853;新疆医科大学第一附属医院,心律失常VIP研究室,新疆维吾尔自治区乌鲁木齐市,830054【正文语种】中文【中图分类】R318【相关文献】1.Wistar大鼠乳鼠与成年鼠心室肌细胞的分离与性质鉴定 [J], 郭玉君;范平;张玲;孙娟;宋建国;侯月梅2.昆明小鼠胎鼠心室肌细胞的原代培养 [J], 张玲;郭玉君;段明军;侯月梅3.乳鼠心室肌细胞分离培养及鉴定方法的改良 [J], 李红霞;韩莲花;赵欣;杨向军4.成年小鼠心肌细胞的分离培养及鉴定 [J], 王丽娟;贾大林;齐国先5.成年大鼠心室肌细胞的分离、培养与鉴定 [J], 李洪;肖颖彬因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

小鼠成体心脏干细胞的分离和鉴定

小鼠成体心脏干细胞的分离和鉴定

小鼠成体心脏干细胞的分离和鉴定
徐路;詹金熹;李云;王晓侠;吴琼
【期刊名称】《吉林医药学院学报》
【年(卷),期】2015(036)003
【摘要】目的建立稳定的心脏干细胞提取方法,为进一步研究心脏干细胞生物学特性及临床应用奠定基础。

方法通过机械法剪碎组织,利用胶原酶Ⅱ消化后过细胞筛,再经流式细胞术根据细胞表面标志以及免疫荧光染色法进行鉴定,无菌分选得到细胞,体外培养。

结果通过酶消化过筛法获得单细胞悬液,经流式细胞术细胞表面标志鉴定出Lin-CD45-Sca-1+细胞,无菌分选获得高纯度细胞可进行体外培养。

结论本实验建立的小鼠成体心脏干细胞提取方法,可获得足够量的Lin-CD45-Sca-1+细胞用于实验研究,为心脏疾病的干细胞治疗提供技术支持,
【总页数】4页(P167-170)
【作者】徐路;詹金熹;李云;王晓侠;吴琼
【作者单位】广西师范大学,广西桂林541004
【正文语种】中文
【中图分类】R96
【相关文献】
1.成年小鼠心脏干细胞的分离、培养鉴定和离子通道特征 [J], 刘祖梅;韩毅;杜心灵;胡燕;金满文
2.新生小鼠Sca-1+心脏干细胞的分离与鉴定 [J], 韦静;吴成强;桂春
3.小鼠成体心脏干细胞的分离和鉴定 [J], 徐路;詹金熹;李云;王晓侠;吴琼
4.成年小鼠心脏干细胞的体外分离及表型鉴定 [J], 邓文文;赵然尊;龙仙萍;石蓓
5.成体小鼠肠神经嵴干细胞体外分离、培养及鉴定 [J], 肖莉;高亚;刘勇
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梯度离心法分离、富集、纯化新生乳鼠心肌细胞

梯度离心法分离、富集、纯化新生乳鼠心肌细胞

梯度离心法分离、富集、纯化新生乳鼠心肌细胞马燕琳;杨祥胜;林曦;黄元华;李崎【期刊名称】《海南医学院学报》【年(卷),期】2011(017)012【摘要】目的:探讨体外心肌细胞的分离与培养实验方法,建立研究心脏疾病的基础实验平台.方法:取新生小鼠心脏12只,利用胰酶和胶原酶双消化6次,利用percoll 密度梯度离心法离心纯化分离细胞,贴壁培养1h,分离层纤维细胞,抗体标记分离后的心肌细胞,流式细胞仪鉴定细胞纯度.结果:分离新生小鼠的心肌细胞的纯度为91.3%.结论:本方法操作简单,获得心肌细胞的分离效率高,存活时间长.【总页数】3页(P1598-1599,1605)【作者】马燕琳;杨祥胜;林曦;黄元华;李崎【作者单位】海南医学院附属医院海南省人类生殖与遗传重点实验室,海南海口570102;美国德州A&M大学;美国德州A&M大学;海南医学院附属医院海南省人类生殖与遗传重点实验室,海南海口 570102;海南医学院附属医院海南省人类生殖与遗传重点实验室,海南海口 570102【正文语种】中文【中图分类】R697.3【相关文献】1.Ficoll密度梯度离心法分离培养纯化猪的骨髓间充质干细胞 [J], 刘传斌;吕双红;张孝忠2.Ficoll密度梯度离心法分离培养纯化猪的骨髓间充质干细胞 [J], 刘传斌;吕双红;张孝忠;3.犬骨髓间充质干细胞分离纯化和成骨诱导分化:Ficoll液密度梯度离心法体外分离的可行性 [J], 解芳;滕利;蔡磊;徐家杰;靳小雷;肖苒;曹谊林4.全骨髓贴壁并差速传代分离纯化大鼠骨髓间充质干细胞:与密度梯度离心法的比较 [J], 林楚伟;周胜华;杜优优5.基于密度梯度法分离纯化的改良培养新生小鼠心肌细胞方法研究 [J], 熊劲节; 刘旖; 曾晓聪因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

乳鼠心脏取材方法

乳鼠心脏取材方法

乳⿏⼼脏取材⽅法1、乳⿏⼼肌细胞⽐成年⼼肌细胞容易培养,⽽且对缺⾎缺氧的耐受性好2、抓住⼩⿏后颈肩胛⾻处,使胸腔向前3、⽤⽆名指和⼩指固定⼩⿏后肢。

4、将⼩⿏放⼊75%酒精中消毒。

下⾯放⼀个纱布,吸取掉落酒精5、从⼩⿏左肋缘锁⾻中线处⼊剪⼑,剪⾄锁⾻中线,注意剪⼑上翘,如果⼼脏未暴露,可以⾃剪线的中点剪向胸⾻。

6、剪取⼼尖部⼼肌,放在DMEM中7、⽤⼩镊⼦轻轻挤压⼼尖部,注意不要⽤⼒过度,避免镊⼦碰撞。

8、换液,清洗⼆次9、在培养⽫中将组织剪碎。

10、将⼼脏剪成1mm3⼤⼩的碎⽚,再将⼼脏碎⽚转移⾄离⼼管中,加配好的胰酶和胶原酶,37℃消化5 min⾄8分钟,⾃然沉淀,弃上清,再加⼊胰酶和胶原酶,重复操作,吸取上清,反复操作6⾄8次,⼆次完成时加⼊⾎清,终⽌胰酶对细胞的损害11、操作完成后⽤滤器除去其中的纤维和胶原等12、离⼼换液,除去胶原酶,(胶原酶是外来物质,对细胞有损伤)将培养瓶放在37°C孵箱中1~2个⼩时,使成纤维细胞贴壁,⽽⼼肌细胞贴壁多需要6~8⼩时,分离作⽤13、原理:⼼肌细胞本来就是不容易贴壁的细胞,在除去⼼肌细胞中混杂的成纤维细胞和内⽪细胞就是利⽤成纤维细胞和内⽪细胞贴壁快⽽⼼肌细胞贴壁慢的原理进⾏换⽫法来纯化⼼肌细胞的。

换⽫后最好48⼩时内对你所培养的⼼肌细胞不进⾏任何处理,包括观察,这样应该没有问题了。

如果还是不能够贴壁的话,你可以考虑⼀下⽤塑料瓶,或者对培养⽤的玻璃瓶进⾏如下处理:在培养前进⾏⿏尾胶原包被或者硝酸蚀刻或者纤粘连蛋⽩包被,在这⽅⾯有许多⽂献报道的,你只需要注意看都会有解决办法的。

14、吸取培养液中的⼼肌细胞,将成纤维细胞保存待⽤,⼼肌细胞中加⼊5—溴尿嘧啶(终⽌RNA的合成),终⽌其中的成纤维细胞的分裂,并做计数。

15、将⼼肌细胞培养⼗⼆⼩时,⼀定不要动,放在孵箱的最⾥⾯16、将⼼肌细胞冻存、传代。

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Isolation, primary culture and identification of cardiac fibroblasts and cardiac myocytes of neonatal mouse XIN Yi1 , XU Xiufang2 , HUANG Yimin2 , ZHANG Ying1 , LI Wenbin3
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泡 10 s, 转移至超净台。将乳鼠固定于左手掌中, 右 手用无菌棉签蘸体积分数 75% 酒精消毒胸、 腹部皮 肤 3 次。用眼科虹膜剪在剑突处正中线稍偏左向上 开胸后, 用剪子压住胸骨右缘, 使心脏自然跳出, 用 取 出 心 脏, 置于装有预冷 弯镊 子 勾 住 心 尖 根 部, 0. 01 mol · L - 1 磷酸盐缓冲溶液 ( phosphate buffered PBS) 的培养皿中。 将鼠心脏全部取出后, solution, 剪去心房、 剔除心脏上结缔组织、 脂肪及血管, 于预
第 28 卷
随着分子、 细胞生物学的发展, 细胞水平的研究 日益受到重视。国内外诸多学者开展了心肌细胞的 生理、 病理、 药理、 代谢等方面的基础研究
[1 ]
sarcomeric腹水单克隆抗体 α 横纹肌肌动蛋白 ( α actin, SA; 美国 Sigma, EA53 ) 、 TRITC 标记的羊抗 α鼠 IgG( 二抗, 美国 Jacson ) ; 肌球蛋白重链 ( myosin MHC ) 小鼠单克隆抗体 ( 英国 Abcam, 3heavy chain, 48 ) , CMM 为 美 国 ScienCell 公 司 产 品。 细 胞 培 养 板、 离心管、 培养皿等耗材购自美国 Corning 公司。 1. 1. 3 主要仪器 荧光倒置显微镜 ( 德国 Leica, 4000B 型) , 51 ) , 荧光正置显微镜 ( 日本 OlympusBXCO2 细胞培养箱( 日本三洋公司产品 ) , 酶标检测仪 ( 德国 Beckman ) , 超净工作台 ( 北京昌平长城净化 空气仪器厂 ) , 离心机 ( 上海安亭科学仪器厂 TGL16C ) 。 1. 2 1. 2. 1 方法 取材 将乳鼠于体积分数 75% 乙醇缸中浸
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乳小鼠心肌成纤维细胞和心肌细胞的分离培养及荧光鉴定
1 2 2 毅 ,许秀芳 ,黄益民 ,张 1 3 颖 ,李温斌
北京市心肺血管疾病研究所实验中心 , 北京
100029 ; 2. 首都医科大学附属北
北京 100029 ; 3. 首都医科大学附属北京安贞医院心外 北京市心肺血管疾病研究所分子生物学研究室 ,
( 1 . Beijing Anzhen Hospital, Capital Medical University, Department of Experimental Center, Beijing Institute of Heart, Lung and Blood Vessel Diseases, Beijing 100029 , China; 2 . Beijing Anzhen Hospital, Capital Medical University, Department of Molecular Beijing Institute of Heart, Lung and Blood Vessel Diseases, Beijing 100029 , China; 3 . Department of Cardiac Surgery, Biology, Beijing Anzhen Hospital, Affiliated to Capital Medical University, Beijing 100029 , China) Abstract: Objective To build the isolation, culture and identification techniques of cardiac fibroblasts and cardiac The heart of neonate mouse was cut into pieces, then type Ⅱ collagenase plus trypsimyocytes of neonate mouse. Methods
欁欁氉

( 1. 首都医科大学附属北京安贞医院 京安贞医院 科, 北京 100029 )
小鼠心肌成纤维细胞和心肌细胞 。光学显微镜下分别观察成纤维细胞和心肌细胞的基本形态特征的变化 , 并对 2 种 细胞行苏木素伊红( HE) 染色, 用第 2 代心肌成纤维细胞行波形蛋白免疫荧光鉴定 , 而原代心肌细胞行 α横纹肌肌动 蛋白、 心肌肌钙蛋白和心肌肌球蛋白重链免疫荧光鉴定 。结果 差速贴壁分离法心肌成纤维细胞原代培养 90 min 基 72 h 心肌成纤维细胞波形蛋白免疫荧光鉴定纯度高达 97% ; 而心肌 本贴壁, 贴壁较早, 培养第 3 ~ 5 代细胞生长良好, 24 h 贴壁后部分心肌细胞出现自发性搏动现象 , 48 h 后细胞逐渐展开, 72 h 后逐渐形成细胞簇并出现 细胞贴壁较晚, 93% 、 心肌肌球蛋白重链、 心肌横纹肌肌动蛋白、 心肌肌钙蛋白免疫荧光鉴定心肌细胞纯度分别为 95% 、 同步搏动, 95% 。结论 关键词: 差速贴壁分离法结合免疫荧光鉴定可分离乳小鼠心肌成纤维细胞和心肌细胞 , 此方法成熟、 稳定、 有效, 心肌成纤维细胞; 心肌细胞; 原代培养; 乳小鼠; 免疫荧光 文献标志码: A 7239 ( 2011 ) 05-0541-07 文章编号: 1004为研究心脏疾病的基础与临床研究提供了理想的实验模型 。 33 ; Q233 中图分类号: Q95-
, 体外
培养的心肌细胞可保持结构及功能上的某些特点 , 并具有自发性节律搏动、 不传代, 且心肌细胞的培养 具有不受体内神经体液因素的影响等特点 。成纤维 细胞是结缔组织中最常见的细胞, 可合成和分泌胶 原纤维、 弹性纤维、 网状纤维及有机基质, 并且在外 伤等因素刺激下, 部分纤维细胞可重新转变为幼稚 的成纤维细胞, 其功能活动也得以恢复, 参与组织损 伤后的修复。实验研究中由于心肌细胞和成纤维细 胞在原代细胞培养时均是贴壁细胞, 故需要建立一 种技术方法将 2 种细胞分离开并保持各自的纯度。 差速贴壁纯化法是根据成纤维细胞和心肌细胞在培 养皿表面贴壁时间不同而进行分离的 , 操作简单, 对 分 离 纯 度 高。 本 实 验 参 照 Simpson 细胞 影 响 小, 等
收稿日期:2011 - 05 - 24 基金项目:国家自然科学基金资助项目 ( 编号: 81070077 ) ; 省部共建重点教育部心血管重塑相关疾病重点实验室项目( 编号: 110267 ) ; 首都医科大学基础 - 临床合作基金重点项目 ( 编号: 11JL09 ) 作者简介:辛 毅( 1968 - ) , 女, 北京市人, 学士, 主管技师, 主要从事细胞生物学研究。 通讯作者:李温斌( 1965 - ) , 男, 河南焦作人, 博士, 主任医师, 博士生导师, 主要从事心脏外科的基础与临床研究。
第 28 卷 第 5 期 2011 年 9 月
新乡医学院学报 Journal of Xinxiang Medical College
Vol. 28 No. 5 Sep. 2011
· 541·
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. 新乡医学院学报, 2011 , 28 ( 5 ) : 541本文引用:辛毅, 许秀芳, 黄益民, 等. 乳小鼠心肌成纤维细胞和心肌细胞的分离培养及荧光鉴定[J] 547.
nase digestion method were used for isolating cell and then cardiac fibroblasts and cardiac myocytes were collected and cultured by different speed adherence. The basic shape change of cardiac fibroblasts and cardiac myocytes were observed under the opitical microscope and the two kinds cells were given hematoxylineosin staining. The second generation cardiac fibroblasts were assayed by vimentin immunofluorescence and cardiac myocytes were assayed by αsarcomericactin, cardiac troponin and cardiac myoglobulin heavy chain immunofluorescence. Results Fibroblasts were adhered after 90 minutes of primary culture by the and the third generation to the fifth generation cells growth well. The expression of vimenmethod of different speed adherence, tin of 97% fibroblasts were positive after 72 hours' culture. But cardiac myocytes were adhered after 24 hours of culture and there was spontaneous beating phenomenon of part cardiac myocytes. The cells gradually spread after 48 hours. The cells clusters were formed and there was synchronous pulsation after 72 hours. The positive expression rate of cardiac myoglobulin heavy chain , sarcomericactin and cardiac troponin was 95% , 93% , 95% , respectively after 72 hours' culture. Conclusion αmyocytes. This method provide an ideal experimental model for the basic and clinical research of heart disease. Key words: cardiac fibroblasts; cardiac myocytes; primary culture; neonatal mouse; immunoflourescence Different speed adherence method and immunoflurescence were effective and stable to isolate the cardiac fibroblasts and cardiac
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