荸荠组培苗在间歇浸没式生物反应器(TIBs)中的高效增殖技术

荸荠组培苗在间歇浸没式生物反应器（TIBs）中的高效增殖技术作者：高美萍林志城张驰江文董伟清欧昆鹏桂杰闭志强何芳练陈丽娟来源：《南方农业学报》2016年第10期摘要：【目的】探讨间歇浸没式生物反应器（TIBs）对荸荠（Eleocharis dulcis）组培苗快速繁殖的效果，为提高荸荠组培苗繁殖效率及其工厂化生产提供技术支撑。

【方法】以初代诱导培养获得的桂蹄2号荸荠组培苗为外植体，利用TIBs系统进行组培快繁，研究荸荠组培苗不同继代代数、接种密度、激素组合及反应器间歇浸没频率等因子对荸荠组培增殖的影响。

【结果】经初代诱导培养的第4、5、6代继代材料增殖倍数较高，其中第6代继代苗增殖倍数最高，达31.1倍，到第7代后随继代代数的增加增殖倍数逐渐降低。

当接种密度大于15丛/瓶时，外植体污染率达16.0%；当接种密度低于10丛/瓶时，外植体的污染率为0。

低于10min/6 h的间歇浸没频率有利于降低污染率，在6 h内低于15 min的浸没时间有利于降低玻璃化苗率；当激素组合为3.0 mg/L 6-BA+0.01 mg/L NAA时，组培苗增殖倍数达38.5倍，且组培苗生长正常。

【结论】在TIBs系统中，采用经初代诱导培养的第5代荸荠继代组培苗，增殖培养基为MS+3.0 mg/L 6-BA+0.01 mg/L NAA+30.0 g/L蔗糖，pH 6.0，接种密度10丛/瓶，反应器间歇浸没频率为10 min/6 h，可获得较好的培养效果。

关键词：荸荠；组培苗；TIBs；高效增殖中图分类号： S645.3 文献标志码：A 文章编号：2095-1191（2016）10-1653-050 引言【研究意义】荸荠（Eleocharis dulcis）属莎草科荸荠属，又叫马蹄、乌芋、通天草等，是我国原产的一种多年水生草本植物，其味甜多汁，肉质松脆爽口消渣，是一种药食兼用的果蔬。

荸荠不仅是广西名特优农产品之一，还是我国传统的重要出口创汇产品之一。

传统荸荠组织培养主要采用半固体培养，该方法在组织培养操作过程中需要大量的手工劳动，增殖率较低，是一种劳动密集型技术。

因此，加强对荸荠组培快繁技术的研究，对于解决市场需求、实现荸荠组培苗工厂化生产具有重要意义。

【前人研究进展】间歇浸没式生物反应系统是近20年来发明的一种用于植物组织快繁生产的系统，最先由Teisson改进命名。

该培养方式结合固体培养和液体培养的优点而舍弃其缺点，使培养材料达到最大增殖数（Alverd et al.，1993；Etienne and Berthouly，2002；Be and Debergh，2006；Benlal et al.，2008）。

目前，国外利用间歇浸没式生物反应器（TIBs）进行组培快繁研究的植物品种较多，国内利用该套系统进行研究的作物品种也在不断增多，其中在甘蔗上的研究报道较多。

Lorenzo等（2001）利用TIBs系统对一个古巴甘蔗品种进行组织培养，其一代增殖可达40倍，获得的组培苗在田间的生长情况也较传统方法获得的组培苗适应性好。

Angela等（2009）将几个澳大利亚甘蔗品种在不同生物反应器中进行试验比较，发现利用TIBs系统的甘蔗组培苗一代增殖率超过20倍。

在国内，部分学者采用TIBs系统对甘蔗和香蕉进行组培快繁研究。

刘丽敏等（2009）利用TIBs系统对ROC16和ROC22两个甘蔗品种进行组培快繁研究，发现ROC16一代增殖率达40倍，ROC22一代增殖率为30倍。

杨柳等（2011）以新台农22号茎尖脱毒组培苗为材料，研究了不同激素组合、间歇浸没频率、接种密度等因素对其在TIBs系统中增殖效果的影响，结果表明，该系统可使甘蔗组培一代增殖40倍以上。

李铁军等（2012）以笃斯越橘（Vaccinium uliginosum）丛生苗为材料，研究笃斯越橘在TIBs中的增殖效果，结果发现接种密度对笃斯越橘丛生苗增殖生长有重要影响，接种密度是重要的调控参数之一。

【本研究切入点】目前，国内利用TIBs系统进行组培快繁的植物品种主要有甘蔗和香蕉，未见应用于水生蔬菜荸荠的相关报道。

【拟解决的关键问题】研究荸荠组培苗不同继代代数、接种密度、激素组合及反应器间歇浸没频率等因子对荸荠组培增殖的效果，优化TIBs系统培养荸荠组培苗的增殖技术，为提高荸薺组培苗繁殖效率及其工厂化生产提供技术支撑。

1 材料与方法1. 1 试验材料以广西农业科学院生物技术研究所提供的经初代诱导培养的健康荸荠组培苗（桂蹄2号）为试验材料，诱导培养基为MS+1.0 mg/L BA+0.1 mg/L NAA+ 30.0 g/L蔗糖。

TIBs系统根据Lorenzo等（1998）的设计思路建立。

TIBs系统中培养瓶和储液瓶分别为2.5和3.0 L的广口无色玻璃瓶和三角瓶，瓶高分别为26和30 cm，直径为14和15 cm。

储液瓶中液体培养基体积为1.0 L。

1. 2 试验方法1. 2. 1 不同代数继代组培苗对TIBs系统组培的影响分别以继代培养2～8代的组培苗为试验材料，增殖培养基为传统荸荠增殖培养基，即MS+6-BA 1.5 mg/L+ NAA 0.01 mg/L+30.0 g/L蔗糖，pH 5.8～6.0，TIBs系统间歇浸没频率为10 min/3 h，接种密度为10丛/L（每15颗芽为1丛）。

1. 2. 2 不同接种密度在TIBs系统中的增殖效果在试验1.2.1基础上，以第5代继代组培苗为材料，培养基配方及TIBs条件同1.2.1，组培苗接种密度设置为5、10、15和20丛/L。

1. 2. 3 不同间歇浸没频率对TIBs系统组培的影响在试验1.2.2基础上以第5代继代组培苗为试验材料，增殖培养基配方同上，接种密度10丛/L，TIBs系统间歇浸没频率设为10 min/3 h、10 min/6 h、10 min/12 h和10 min/24 h，共4个处理。

1. 2. 4 不同浸没时间对TIBs系统组培的影响在试验1.2.3基础上以第5代继代组培苗为试验材料，增殖培养基配方同上，接种密度10丛/L，TIBs系统设组培苗在培养液中浸没时间为5、10、15、20和30 min/6 h，共5个处理。

1. 2. 5 不同激素组合对TIBs系统组培的影响在试验1.2.4基础上以第5代继代组培苗为试验材料，接种密度为10丛/L，间歇浸没频率为10 min/6 h，6-BA浓度梯度设为1.0、1.5、2.0、3.0和4.0 mg/L，NAA浓度设为0.01和0.05 mg/L，共10个处理。

以上各试验培养条件：光照强度1500 lx，培养温度（28±2）℃，光照16 h/d，黑暗8h/d。

增殖培养40 d。

试验均设每处理3套TIBs系统，重复2次，取平均值。

1. 3 统计分析接种后每周观察记录1次生长状况，40 d后计算每瓶组培苗丛数，数据采用SPSS 18.0的SNK法进行差异显著性分析。

2 结果与分析2. 1 不同代数荸荠继代组培苗在TIBs系统中的增殖效果将经初代诱导培养的第2～8代荸荠组培苗转接到TIBs系统中培养，增殖效果见表1。

经过40 d培养后，第4、5、6代继代组培苗增殖倍数较高，其中第6代继代组培苗增殖倍数最高，为31.1倍；到第7代增殖倍数开始下降，第8代增殖倍数降到最低，为22.6倍。

随着继代苗代数的增加，组培苗增殖的时间推迟，第4、5、6、7代差异不显著（P>0.05，下同），均在6.0 d左右开始增殖。

因此，为了保证材料的充足且不影响增殖倍数，利用TIBs系统进行荸荠组培苗快繁以第5代材料最佳。

2. 2 不同接种密度在TIBs系统中的增殖效果选用第5代继代组培苗，研究不同接种密度对荸荠组培快繁效果的影响，结果见表2。

随着接种密度的增加，增殖芽数也逐渐增多，但培养基污染风险加大，当接种密度大于15丛/瓶时污染率达16.0%，而低于10丛/瓶的接种密度外植体的污染率得到有效控制。

因此，为达到低污染高增值的培养效果，选择10丛/瓶用于后续试验研究。

2. 3 不同间歇浸没频率在TIBs系统中的增殖效果间歇浸没频率是TIBs系统的重要调控因素之一。

选用第5代继代组培苗、接种密度10丛/瓶，研究间歇浸没频率对荸荠组培快繁效果的影响，结果见表3。

由表3可知，随着间歇浸没频率的延长，组培苗的污染率上升，当间歇浸没频率达10 min/12 h后污染率明显增加，植株的生长势也较差；增殖倍数随着间歇浸没频率的延长而降低，当间歇浸没频率为10 min/3 h和10 min/24 h时，芽增殖倍数分别达到最高32.1倍及最低24.4倍；当间歇浸没频率为10 min/3 h 和10 min/6 h时，芽增殖倍数均在30.0倍以上。

由此可见，短时间的间歇浸没有利于荸荠植株的生长，提高荸荠组培苗的增殖率和降低污染率。

本研究适宜的间歇浸没频率为10 min/6 h以下。

2. 4 不同浸没时间在TIBs系统中的增殖效果由表4可知，随着浸没时间的增加，组培苗芽的增殖倍数逐渐增加，其中，每6 h浸没30 min的增殖倍数最高，为34.8倍。

SNK法分析结果表明，浸没20 min与浸没30 min的增殖倍数间差异不显著，浸没5、10、15 min与浸没20、30 min的增殖倍数间差异显著（P2. 5 不同激素组合对荸荠组培苗增殖的影响在上述试验结果的基础上，将组培诱导的第5代继代苗、接种密度10丛/瓶、间歇浸没频率采用10 min/6 h，转接至含不同浓度6-BA和NAA组合的增殖培养基中培养。

培养6 d左右时基部长出新芽，25 d后可见1 cm长的新芽，30～40 d内新芽增长速度最快。

从表5可以看出，芽的增殖倍数随着6-BA浓度的增加而逐渐上升，在4.0 mg/L 6-BA条件下培养基添加0.05和0.01 mg/L NAA，芽的增殖倍数最高，分别为37.7和42.6倍；当NAA为0.05 mg/L 时，6-BA为1.0 mg/L与1.5、2.0、3.0、4.0 mg/L的增殖倍数差异显著，而2.0与3.0 mg/L、2.0与4.0 mg/L间的增殖倍数差异不显著；当NAA为0.01 mg/L时，6-BA为3.0与4.0 mg/L间增殖倍数差异不显著，其他处理间增殖倍数差异均显著；NAA 0.01 mg/L较0.05 mg/L更有利于芽的分蘖，增殖倍数更多，但植株较细，长势稍逊。

试验还发现，当6-BA达到4.0 mg/L时出现丛生苗，苗细弱，紧密成一簇。

为降低组培苗变异率，在保证组培苗质量的同时拥有较高的增殖倍数，以3.0 mg/L 6-BA+0.01 mg/L NAA最佳，在该条件下组培苗增殖倍数可达38.5倍。

3 讨论本研究通过对荸荠组培苗在TIBs系统中继代增殖培养条件优化，得到采用经初代诱导培养到第5代继代组培苗、接种密度10丛/瓶、培养基激素组合3.0 mg/L 6-BA+0.01 mg/L NAA、間歇浸没频率10 min/6 h，组培苗增殖达38.5倍。