生理学实验的注意事项
动物生理学实验目的
动物生理学实验目的、要求和实验室规则一、实验课的目的生理学是一门实验学科。
它从一开始就建立在实验和观察分析基础上的。
生理学的发展也离不开实验研究。
家畜生理学实验课的目的是通过实验使学生逐步掌握生理学实验的基本操作技术,了解生理学实验设计的基本原理和获得生理学知识的科学方法,验证某些讲授过的生理学基本理论,帮助学生理解、巩固和掌握部分理论内容。
更重要的是通过实验,使学生学会科学的思维方法,提高分析问题和解决问题的能力,培养学生对科学实验的严肃的态度、认真的精神、严谨的工作方法和实事求是的工作作风。
二、实验报告的写作与要求(一)实验报告是对实验结果的总结,也是生理学实验课的基本训练之一。
不论示教实验或自己操作的实验均应独立完成实验报告。
写作应注意文字简练、通顺,书写清楚、整洁。
(二)实验报告的格式1.学号、姓名、班级、组别、日期。
2.实验序号及实验题目。
3.实验目的。
4.实验方法:参考指导书作扼要描述,方法若有变动,另作简要说明。
5.实验结果:实验结果是报告的关键。
对实验结果的记录可用文字说明、列表、绘图等方式进行,记录要真实、正确、详细。
6.讨论和结论:讨论和结论是实验报告的核心。
讨论是根据已知的理论知识对结果进行解释和分析。
要判断实验结果是否为预期的,如果出现非预期的结果,应该考虑和分析其可能的原因,还要指出实验结果的生理意义。
实验结论是从实验结果中归纳出来的一般的、概括性的判断,也就是这一实验所能验证的概念、原则或理论的简明总结。
在实验结果中未能得到充分证明的理论分析,不要写入结论。
实验的讨论和结论的书写是带有创造性的工作,应该严肃认真,不要盲目照抄书本。
三、实验室规则1.遵守学习纪律,按时到实验室,做到有事请假,不得随意缺席。
2.对实验内容的理解程度,是实验能否顺利进行的关键。
因此:实验前(1)仔细阅读实验指导,了解实验目的、要求、操作程序和注意事项。
(2)结合实验内容复习有关理论,做到充分理解。
人体及动物生理学实验
人体及动物生理学实验人体及动物生理学实验是一种探究生命科学的实验技术。
它包括生命体系(如人体或动物)的组织、器官、细胞和分子水平的生理过程的研究。
人体及动物生理学实验在医学、生物化学、药理学等领域应用广泛,可用于阐明一系列生理过程,如糖代谢、蛋白质合成和分解、细胞增殖、免疫系统的功能等。
在这篇文章中,我们将探讨人体及动物生理学实验的一些事项。
实验品种选择实验品种是人体及动物生理学实验的一个重要方面。
医学和生物学研究中常用的动物种类包括小鼠、大鼠、豚鼠、兔、猪和猕猴等姐稳标准动物模型。
小鼠和大鼠最常用于实验有其原因,首先是因为小鼠和大鼠的易得性和繁殖能力。
其次,小鼠和大鼠的基因组已经被很好地研究过,因此这些动物为疾病条件下的遗传学研究提供了独特的机会。
实验条件实验条件的设置对于获得有意义的结果至关重要。
动物的生理过程非常复杂,它们会对环境的变化作出反应,这就需要特定的实验环境。
例如,实验室应该保持适宜的温度和湿度,以确保实验室中环境的一致性。
此外,光照的时间和强度、饮食和水的质量、动物容纳空间的大小以及实验室卫生状况也都需要严格控制。
实验过程在进行人体及动物生理学实验前,需要制定实验计划和一份实验方案,以确保实验结果的可重复性和准确性。
需要逐一考虑可能影响实验结果的变量,并尽可能加以控制。
另外,实验中的操作技能也非常重要。
例如,手术技巧、标本制备和实验技术等。
通过训练培养实验人员的技术水平,可以提高实验结果的准确性和有效性。
安全在进行人体及动物生理学实验时,需要非常重视安全问题。
为了确保人和动物的安全,应在实验前评估潜在的风险,并采取相应的措施进行应对。
例如,在进行手术操作时,需要采取最大可能的无菌措施以及避免实验过程中的并发症。
同时,在动物实验过程中,应尽最大努力减少对动物的伤害和压力。
结语人体及动物生理学实验是研究生命科学的一个重要手段。
为了获得稳定、可重复、准确的实验结果,需要注意选择实验品种、设置实验条件、制定实验方案、提高实验技巧和注意安全问题。
[精品]蚕体解剖生理学实验指导
《蚕体解剖生理学》实验指导实验目的与要求蚕体解剖生理学实验,是本课程的一个组成部分,是学好这门课程的重要环节。
蚕体解剖生理学实验的目的,不仅在于加深和巩固对讲课内容的理解,更重要的是在学习理论知识的基础上,掌握蚕体解剖生理学的实验技术,进一步使理论密切联系实际,培养分析和解决问题的能力,为学好蚕桑技术专业课以及开展科学实验活动打下基础。
为使实验顺利进行,提高实际效果,特提出以下要求:一、实验前要预习实验内容,明确实验目的和要求,了解操作方法和注意事项。
二、教师讲解时必须注意听讲。
三、领到实验材料和仪器后,立即进行检查,如有遗缺或差错应及时向有关教师提出。
四、示范标本不得随便移动。
如需变动位置或观察部位,应征得教师的同意。
五、每次实验不得迟到早退,有事外出必须请假。
实验时要保持安静,不得高声谈笑,不要到处走动,以确保实验顺利进行。
六、实验中要坚持严肃性、严格性和严密性,按照实验步骤,依次操作。
须据实记录,并认真分析研究。
实验报告要求数据确实,绘图准确。
七、实验观察如不能当日结束,必须在指定时间内观察完毕。
八、注意节约水,电、药物及其他实验材料。
仪器、用具、药物用完后要放回原处。
未经教师许可,实验材料,药物、仪器,用后不得携出室外。
仪器损坏要及时登记,酌情赔偿。
九、实验完毕后,要整理桌面,清洗仪器及用具,打扫实验室,保持室内整洁卫生。
实验一外部形态的观察一、目的要求:1、了解卵的外形2、能识别各种卵3、了解蚕的外部形态4、掌握口器各部及触角的构造二、材料:1、越年卵及不良卵2、5令浸渍材料蚕3、口器各部、胸、腹、足标本片4、雌、雄蛹,雌、雄蛾三、用具:解剖镜,显微镜、解剖器、烧杯(500m1)、二重皿、吸管、载玻片、乙醚。
四、观察内容:(一) 观察卵的形状、卵涡、卵色、卵纹、卵孔、气孔以及越年卵和不良卵卵呈扁平椭圆形,一端稍尖,一端略大,在尖的一端生有卵孔。
卵壳无色透明或带淡黄色,表面布满五角形或六角形卵纹。
人体解剖生理学实验指导
实验一生理学实验方法与生物机能实验系统操作【目的要求】1、了解生理学实验的基本操作技术;2、了解生理学常用实验器械,熟悉并掌握BL-420生物机能实验系统的使用。
3、学习解剖生理学实验报告的写作。
【实验内容】一、生理学实验方法1、实验动物的选择2、常用动物的捕捉方法3、常用动物的麻醉方法(1)常用的麻醉剂(2)常用麻醉给药途径4、用动物的固定方法5、常用手术的基本操作二、BL-420生物机能实验系统的操作BL-420生物机能实验系统是配置在微机上的4通道生物信号采集、放大、显示、记录与处理系统。
它具有记录仪+示波器+放大器+剌激器+心电图仪等传统的实验仪器的全部功能。
可记录动作电位、神经放电、肌电、脑电、心电、慢速电信号、压力、张力、呼吸、温度以及液滴计数等信号。
可输出电压、电流用于刺激。
由以下三部分构成:1.微型计算机。
2.BL-420生物信号采集、放大、A/D转换及刺激输出等多功能硬卡和前面板。
3.BL-420生物信号显示与处理软件。
实验二坐骨神经-腓肠肌标本与坐骨神经标本的制备【目的要求】学习两栖类的毁髓方法;掌握坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。
【实验原理】两栖类动物的一些基本生命活动和生理功能与温血动物近似,但其离体组织所需的生活条件比较简单,易于控制和掌握。
在生理实验中常用蟾蜍或蛙的离体组织或器官作为实验标本。
如用蟾蜍的坐骨神经腓肠肌标本来观察兴奋性、兴奋过程、刺激的一些规律及骨骼肌收缩特点等。
因此,制备坐骨神经腓肠肌标本是生理实验中必须掌握的一项基本技能。
【材料与器械】蟾蜍或蛙、任氏液、蛙类手术器械(普通剪刀、手术剪、手术镊、眼科剪、眼科镊、金属探针)、玻璃分针、蛙板、蛙钉、细线、培养皿、滴管、小烧杯、锌铜弓等。
【实验步骤】1、破坏脑和脊髓(双毁髓)取蟾蜍一只,用自来水冲洗干净(勿用手搓)。
左手握住蟾蜍,使其背部向上,用大拇指或食指使头前俯(以头颅后缘稍稍拱起为宜)。
右手持探针由头颅后缘的枕骨大孔处垂直刺入椎管(图2-1)。
植物生理学实验指导张志良
植物生理学实验指导引言植物生理学是研究植物内部生物化学和物理活动的科学。
通过实验的方法研究植物的生理过程和生理功能,能够帮助我们更好地了解植物的生长发育、代谢、适应环境等方面的机制。
本实验指导将介绍几个常见的植物生理学实验,并详细说明实验的步骤和注意事项。
实验一:光合作用的测定实验目的通过测定植物光合作用的速率,了解光合作用的基本原理和影响因素。
实验材料和设备•高度光合作用活跃的绿叶片•蒸馏水•滤纸•光合色素提取液•盐酸•詹氏液•光合作用速率测定仪实验步骤1.准备一片新鲜的绿叶片,并使用滤纸将其表面的水分吸干。
2.将绿叶片放入提取瓶中,加入适量的蒸馏水,盖好瓶盖,放置在强光下静置30分钟。
3.将提取瓶中的绿叶片取出,并将其压碎,制成绿叶片提取液。
4.在一次容器中加入10ml绿叶片提取液,同时加入1ml盐酸,用詹氏液调节为酸性条件。
5.将调节好酸性的绿叶片提取液瞬时注入光合作用速率测定仪中。
6.根据测定仪的说明书进行操作,记录每个时间点下的光合作用速率值。
注意事项•实验中所使用的绿叶片应当是光合作用活跃的绿叶片,新鲜度较高。
•测定的过程中应注意光照的稳定性,以免影响光合作用速率的准确性。
•实验过程中应注意安全操作,避免盐酸和其他化学试剂的直接接触。
实验二:渗透压的测定实验目的通过测定植物细胞内外溶液的渗透压差,了解渗透压的基本原理和影响因素。
实验材料和设备•草莓或马铃薯等含有较多汁液的植物组织•单质水•盐水•倒置显微镜•毛细管实验步骤1.取一片新鲜的含有较多汁液的植物组织,如草莓或马铃薯。
2.用刀将该组织剪碎,并将碎片放入一个玻璃杯中。
3.加入适量的单质水,使植物组织完全浸泡其中,静置12小时。
4.取一根毛细管,在一端封闭后,用吸管吸取约5cm 长的盐水,并保持液柱不断。
5.将封闭端的毛细管插入玻璃杯中,并用胶带固定在较深的位置。
6.进行倒置显微镜观察,记录质点的运动情况。
7.根据质点的运动情况,判断渗透压差的大小。
动物生理学实验鱼类渗透压调节实验注意事项
动物生理学实验鱼类渗透压调节实验注意事项在进行动物生理学实验时,鱼类渗透压调节实验是非常重要的一个环节。
这个实验可以帮助我们更好地了解鱼类的生理特性,为后续的研究提供有力的支持。
在进行这个实验的过程中,我们需要注意一些细节问题,以确保实验的顺利进行。
下面我将从三个方面来介绍鱼类渗透压调节实验的注意事项。
我们需要准备好实验所需的器材和材料。
在这个实验中,我们需要使用到一些特殊的器材,比如鱼缸、水泵、过滤器等等。
我们还需要准备一些鱼类和鱼食。
在选择鱼类时,我们应该选择那些生长迅速、健康状况良好的品种,以便更好地观察它们在不同环境下的生理反应。
我们还需要注意鱼食的质量和数量,以免对鱼类造成不良影响。
我们需要掌握正确的操作方法。
在进行鱼类渗透压调节实验时,我们需要注意以下几个方面:一是控制好水温和水质。
鱼类对水温的要求比较高,一般要求在20°C~30°C 之间。
水质也非常重要,我们需要定期更换水并加入适量的盐分和矿物质。
二是控制好鱼缸内的水量。
在实验过程中,我们需要不断地向鱼缸中加水或抽水,以保持鱼缸内的水量稳定。
三是控制好实验时间和频率。
一般来说,我们每次实验的时间不宜过长,每周进行一次即可。
我们需要做好实验数据的记录和分析工作。
在进行鱼类渗透压调节实验时,我们需要注意以下几个方面:一是准确记录每条鱼的数量、体重、活动情况等基本信息。
二是定期测量每条鱼的血压、心率等生理指标。
三是观察每条鱼的行为变化和反应情况。
通过这些数据的综合分析,我们可以得出一些有价值的结论,为后续的研究提供有力的支持。
鱼类渗透压调节实验是一项非常关键的研究工作。
只有通过认真细致的操作和精确的数据记录,才能得到准确可靠的实验结果。
希望以上的建议能够对大家有所帮助!。
生理学实验的一般操作方法
生理学实验的一般操作方法一.生理学实验方法概述生理学实验一般可分为急性实验法和慢性实验法两大类。
1.急性实验法是在无痛条件下剖开动物身体,对某一两个器官进行实验观察。
实验过程不能太长,试验后将动物处死。
它又可分为两种:(1)离体实验法将要研究的器官或组织从活的或刚处死的动物上取出,置于接近正常生理条件的人工环境中,以观察、研究其生理机能。
如离体蛙心灌流等。
(2)在体实验法动物在麻醉或毁坏脑或脊髓的状态下,用手术的方法暴露某一器官,观察、研究其机能及变化规律。
如心搏过程的观察、小肠运动的观察等。
2.慢性实验法在无菌条件下对健康动物进行手术,暴露要研究的器官或摘除、破坏某一器官,然后在接近正常生活条件下,观察所暴露器官的某些功能、以及摘除或破坏某器官后所产生的功能紊乱等。
二.实验动物的固定在手术过程中,必须将麻醉动物进行固定,以限制动物的活动,保证实验或手术的利进行。
常用的固定方法有两种:1.背位固定法将动物的背部直接接触手术台的固定方法。
在呼吸、循环、消化、泌尿等试验中均采用此法。
2.腹部固定法将动物的腹部直接接触手术台的固定方法。
这种固定法适用进行脑脊髓的实验。
三.实验动物的麻醉为了使动物在实验过程中保持安静,不挣扎,必须对动物进行麻醉。
麻醉的深浅可以从呼吸、某些反射的消失、肌肉的紧张程度和瞳孔的大小等加以判断。
一般用夹捏后肢股部肌肉以观察其反应的简易方法了解动物的麻醉深度。
(一)常用麻醉药麻醉药可分为局部麻醉剂和全身麻醉剂两种。
在生理实验中,常采用全身麻醉法,如挥发性的乙醚和非挥发性的巴比妥类、水合氯醛等。
(二)麻醉药的给药途径和方法非挥发性麻醉药的给药途径为注射给药法,主要有静脉、腹腔、肌肉、皮下和淋巴囊注射。
1. 静脉注射:兔的部位为耳缘静脉,兔耳的外缘血管为静脉,中央的血管为动脉。
注射前,先剪去注射部位的被毛,用左手食指和中指夹住耳缘静脉近心端,使其充血,并用左拇指和无名指固定兔耳。
用左手持注射器将针头顺血管方向刺入静脉,刺入后再将左手食指和中指移至针头处,协同拇指将针头固定静脉内,便可缓缓注射。
植物生理学实验指导
植物生理学实验指导目录植物材料的采集、处理与保存植物生理实验使用的材料非常广泛,根据来源可划分为天然的植物材料(如植物幼苗、根、茎、叶、花等器官或组织等)和人工培养、选育的植物材料(如杂交种、诱导突变种、植物组织培养突变型细胞、愈伤组织、酵母等)两大类;按其水分状况、生理状态可划分为新鲜植物材料(如苹果、梨、桃果肉,蔬菜叶片,绿豆、豌豆芽下胚轴,麦芽、谷芽,鳞茎、花椰菜等)和干材料(小麦面粉,玉米粉,大豆粉,根、茎、叶干粉,干酵母等)两大类,因实验目的和条件不同,而加以选择。
植物材料的采集和处理,是植物生理研究测定中的重要环节。
在实际工作中,往往容易把注意力集中在具体的仪器测定上,而对于如何正确地采集和处理样品却不够注意,结果导致了较大的实验误差,甚至造成整个测定结果的失败。
因此,必须对样品的采集、处理与保存给予足够的重视。
一、原始样品及平均样品的采取、处理植物生理研究测定结果的可靠性(或准确性),首先取决于试材对总体的代表性,如果采样缺乏代表性,那么测定所得数据再精确也没有意义。
所以,样品的采集除必须遵循田间试验抽样技术的一般原则外,还要根据不同测定项目的具体要求,正确采集所需试材。
目前,随着研究技术的不断发展,应该不断提高采样技术的水平。
在作物苗期的许多生理测定项目中都需要采集整株的试材样品,在作物中后期的一些生理测定项目中,如作物群体物质生产的研究,也需要采集整株的试材样品,有时虽然是测定植株的部分器官,但为了维持器官的正常生理状态,也需要进行整株采样。
除研究作物群体物质生产外,对于作物生理过程的研究来说,许多生理指标测定中的整株采样,也只是对地上部分的采样,没有必要连根采样,当然对根系的研究测定例外。
采样时间因研究目的而不同,如按生育时期或某一特殊需要的时间进行。
除逆境生理研究等特殊需要外,所取植株应是能代表试验小区正常生育无损伤的健康植株。
为了保证植物材料的代表性,必须运用科学方法采取材料。
动物生理学实验鱼类渗透压调节实验注意事项
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植物生理学实验指导
植物生理学实验指导引言部分的内容:1.1 概述植物生理学是研究植物内部生物化学过程和生理功能的科学领域。
它涉及到植物的生长、发育、营养吸收、代谢反应等方面,对于揭示植物的生命活动规律具有重要意义。
通过实验方法,我们可以深入了解植物生理过程中的变化和机制,并为改善农业生产、保护植物资源等提供科学依据。
1.2 文章结构本文按照以下结构进行组织:首先,我们会介绍实验的背景和目标;其次,将详细阐述实验的准备工作,包括所需材料和设备以及实验设计;然后,给出实验步骤,并说明如何进行样本处理、观察测量以及控制变量与数据收集;接下来,在结果与讨论部分,我们将展示并解读实验结果,并分析所得数据;最后,通过总结主要发现、评估实验贡献以及提出可改进之处建议,我们将给出结论。
1.3 目的本文旨在提供一份关于植物生理学实验的指导,使读者能够全面了解实验的目标、设计和步骤,并具备对实验结果进行分析和讨论的能力。
通过本文的阅读,读者将能够掌握植物生理学实验的基本原理和操作技巧,并为进一步开展相关研究提供参考。
注意:以上内容为普通文本格式,不包含任何网址链接。
2. 实验准备2.1 材料和设备在进行植物生理学实验之前,需要准备以下材料和设备:- 植物样本:选择一种适合的植物作为研究对象,并确保样本鲜活、健康。
- 培养基:根据实验的需要选择合适的培养基,如MS培养基或Hoagland培养基等,并准备好所需的量。
- 生长环境:提供适宜的生长环境以促进植物生长,在实验室中可使用温室或生长箱来控制温度、湿度和光照条件。
- 实验室设备:包括显微镜、离心机、天平、移液器、试管架等常见实验室设备,以及pH计和电导仪等特定于植物实验的设备。
2.2 实验设计在进行植物生理学实验之前,应先设计一个科学合理的实验方案。
以下是一些实验设计要考虑的因素:- 实验目标:明确所要研究的问题或假设,并制定相应的研究方法。
- 处理组与对照组:根据研究目标确定不同处理组并设置相应的对照组,以比较不同处理条件下的实验结果。
《生理学实验》教学大纲
《生理学实验》教学大纲生理学是一门实验性科学。
《生理学实验》是生理学理论教学的必要补充,它也是生理学学科的有机组成部分。
《生理学实验》教学时数为12学时。
由生理学科教师主讲。
课程性质必修适用专业生物医学工程和生物技术专业开设学期 3一、教学目的和要求教学目的:通过实验使学生初步掌握生理学实验的基本操作技术;了解获得生理学知识的科学方法,验证和巩固课堂理论。
在实验过程中培养对科学实验的严肃的态度,严格的要求,严密的工作方法。
通过实验逐步培养学生能够客观地对事物进行观察、比较、分析和综合的能力,以及独立思考解决实验问题的能力。
实验要求:1.实验前(1)仔细阅读实验指导,了解实验目的、要求和实验步骤。
(2)复习与实验有关的理论知识。
(3)预测该实验各个步骤应得的结果。
2.实验时(1)实验器材的安放要正确、整齐、稳当。
(2)按照实验步骤,以严肃认真的态度循序操作。
不得进行与实验无关的活动。
要注意保护实验动物和标本,节省实验材料和药品。
(3)仔细观察、认真思考实验过程中出现的现象,随时记录实验结果。
3.实验后(1)将实验用具整理归位,所用器械洗净擦干。
如有损坏或缺少,应报告负责教师。
实验完毕后,将所借用的器材或物品,点清并交给负责老师。
(2)整理实验记录,认真填写实验报告,按时交给负责老师评阅。
二、教学目的、教学内容、学时分配及其他实验一蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本制备(4课时)〖实验性质〗专业基础〖实验类型〗基本操作性实验〖目的要求〗1.掌握蟾蜍坐骨神经干标本的制备方法。
2.掌握蛙类手术器械的使用方法。
〖实验内容〗1.制备蟾蜍坐骨神经干标本。
2.观察标本的兴奋收缩功能。
实验二神经干动作电位和传导速度的测定(4课时)〖实验性质〗专业基础〖实验类型〗综合性实验〖目的要求〗1.熟悉电生理仪器的使用方法。
2.了解测定蟾蜍坐骨神经干动作电位的基本原理和方法。
3.了解测定动作电位传导速度的基本原理和方法。
〖实验内容〗1.制备蟾蜍坐骨神经干标本。
动物生理学实验指导
绪言动物生理学是一门实验性学科。
因此学习动物生理学必须通过做一定的实验,才能更好地理解和掌握生理学的基本理论知识和知识。
是生理学教学中的一个重要组成部分。
一.实验课的目的生理学实验是以活的动物或人体为对象和材料进行实验,以此来了解和获得生理学知识的科学方法。
通过实验可以验证、巩固和加深课堂中生理学基本理论和知识。
同时,可通过生理实验,初步掌握生理学实验的基本技能和基本操作。
培养学生的科学思维方法和严肃的科学实验态度。
通过实验训练,可提高学生对各种生理现象的观察分析能力,以及解决问题的能力。
同时还可以培养学生的独立思考能力。
二.实验课的要求实验前,必须详细阅读实验指导,了解实验目的、原理和基本操作步骤。
并结合其基本理论,做到充分理解,心中有数。
并能预测实验的正确结果和可能出现的问题。
实验过程中,实验器材力求安放整齐,布局合理,便于操作。
同时要保持桌面清洁。
随时清除实验中的污物。
公用仪器、药品等不得随意挪动。
要爱护仪器。
节省实验动物和药品。
实验中还应注意实验分工交换,人人动手,使每个学生都有学习各种操作的机会。
实验时要认真、仔细、耐心地观察实验中出现的现象,并如实记录。
同时应对各种变化的原因进行分析和处理。
另外仪器发生故障应及时报告。
不得自行拆动。
实验用品损坏也应及时报告和登记。
实验后,将所用物品及器材进行整理和清洗。
实验用过的动物处死后,放在指定处。
最后要认真写出实验报告,及时上交。
三.实验结果的处理实验过程所得的结果都要分析和整理。
凡是属于测量性质的结果,如高低、长短、快慢、轻重、多少等,均应以正确的单位和数值定量。
凡有曲线记录的实验应尽量用曲线记录实验结果,并在曲线上标明各个变化。
如刺激标记,时间标记等。
有些结果为了比较和分析之便,可用表格或绘图表示。
制表时要全面而又简单明确。
绘图时应标出各坐标的意义。
非连续变化可用柱形图表示。
例如:对几个(组)实验对象,分别进行同样系列的实验观察所得结果,最宜制成表格。
植物生理学实验指导
植物生理学实验指导细胞是植物结构与功能的基本单位,原生质是细胞中有生命的部分。
死、活细胞原生质的理化性质有本质的差别。
如活细胞的原生质膜系统具有半透性,可与外界溶液构成渗透系统,活细胞可主动积累某些溶质等;而死细胞丧失了这些特性。
通过细胞活体染色质壁分离现象的观察,了解原生质体的某些性质,如粘滞性等,以加深对有关理论的理解。
【原理】活体染色是利用某种对植物无害的染料溶液对活细胞进行染色的技术。
中性红是常用的活体染料之一,它是一种弱碱性ph 指示剂,变色范围在ph 6.4~8.0之间(由红变黄)。
在中性或微碱性环境中,植物的活细胞能大量吸收中性红并向液泡中分泌,由于液泡在一般情况下呈酸性反应,因此,进入液泡的中性红便解离出大量阳离子而呈现樱桃红色,在这种情况下,原生质和细胞壁一般不着色;死细胞由于原生质变性凝固,细胞液不能维持在液泡内,因此,用中性红染色后,不产生液泡着色现象。
相反,中性红的阳离子,却与带有一定负电荷的原生质及细胞核结合,而使原生质与细胞核染色。
【仪器设备】1.显微镜;2.小培养皿;3.载玻片和盖玻片;4.单面刀片;5.尖头镊子;6.酒精灯;7.火柴; 8.擦镜纸;9.吸水纸适量。
【试剂】1. 0.03﹪中性红溶液;2. 1 mol · l-1硝酸钾溶液。
【材料】洋葱鳞茎(或大葱假茎基部)及小麦叶片。
【方法步骤】1.切下一片较幼嫩的洋葱鳞片,用单面刀片在鳞片内侧割划成0.5 cm2左右的小块,用尖头镊子将内表皮小块轻轻撕下,即可投入中性红溶液染色(注意应将表皮内侧向下)。
若用小麦叶片为材料,可将叶片背面朝上平放在载玻片上,再将此载玻片放入盛有少量清水的培养皿内,用左手将叶片按平,右手用刀片从一个方向轻轻刮去下表皮和叶肉部分,只留下透明的上表皮细胞。
当刮到只剩下少量叶肉细胞时要十分小心,用力太重容易损伤表皮细胞,甚至只剩下一层细胞壁,太轻又会留下过多的叶肉细胞,影响观察。
除小麦外其他禾本科植物也可用此法制备表皮细胞制片。
动物生理学实验鱼类渗透压调节实验注意事项
动物生理学实验鱼类渗透压调节实验注意事项大家好,今天我们来聊聊一个非常有趣的话题——动物生理学实验鱼类渗透压调节实验。
这个实验听起来好像很高大上,其实呢,它就是让我们看看鱼儿是如何调节体内的水分平衡的。
那么,在进行这个实验的时候,我们需要注意什么呢?别着急,我马上就给大家一一道来。
我们要准备好实验所需的器材和材料。
比如说,我们需要一条健康的金鱼、一个透明的玻璃容器、一些食盐和一些水。
这些材料都是非常简单的,大家应该都能轻松找到。
接下来,我们就要开始进行实验了。
我们要把金鱼放进透明的玻璃容器里。
这时候,大家可能会觉得有点紧张,因为毕竟是在观察活生生的小生命。
不过没关系,我们要保持冷静,慢慢地进行实验。
接下来,我们要在容器里加入一些食盐。
大家知道吗,食盐其实就是一种很好的渗透压调节剂。
当我们往容器里加盐的时候,会让水的渗透压变高,从而促使鱼儿排出多余的水分。
这样一来,鱼儿就能更好地调节体内的水分平衡了。
然后,我们要观察鱼儿的反应。
在这个过程中,大家可能会发现一些有趣的现象。
比如说,当盐放进去之后,鱼儿可能会变得有些不安分,不停地在水里游来游去。
这是因为它们正在努力地调节体内的水分平衡。
而且,你还会看到一些白色的小泡沫出现在水面上。
这就是因为鱼儿排出来的多余的水分被食盐吸收了,形成了这些小小的泡沫。
我们在进行这个实验的时候,也要注意一些安全事项。
比如说,不要把盐直接撒在鱼儿身上,以免对它们造成伤害。
还有就是,实验结束后,要及时把容器里的水倒掉,清洗干净,以免对下一次实验造成影响。
总的来说,动物生理学实验鱼类渗透压调节实验是一个非常有趣又富有教育意义的实验。
通过这个实验,我们可以更好地了解鱼儿是如何调节体内的水分平衡的,也可以培养我们对待生命的敬畏之心。
所以呢,大家不妨在课余时间尝试一下这个实验,相信一定会收获很多乐趣的哦!好了,今天的分享就到这里啦!希望大家喜欢这次关于动物生理学实验鱼类渗透压调节实验的探讨。
生理学实验指导(一)
生理学实验指导(一)引言概述:生理学实验是生理学课程中重要的一环,通过实验可以帮助学生更具体地了解和掌握相关知识。
本文将重点讲解生理学实验指导(一)的内容,包括实验目的、实验原理、实验步骤和注意事项等。
正文:1. 实验目的:- 了解生物质膜的结构和功能。
- 理解膜通透性的测定方法。
- 掌握实验室常用的实验操作技巧。
小点:a. 简述生物质膜的组成和特点。
b. 分析测定膜通透性的常用方法。
c. 介绍实验操作中需要注意的事项。
2. 实验原理:- 生物质膜是由脂质双分子层和蛋白质组成,扮演着细胞内外物质交换的重要角色。
- 测定膜通透性的方法有渗透压法、胆红素法等,通过测量物质的透过膜的能力来判断膜的通透性。
- 实验中常用的操作技巧包括离心、分液漏斗等。
小点:a. 生物质膜的结构和功能。
b. 常用的膜通透性测定方法的原理。
c. 实验中的基本操作技巧介绍。
3. 实验步骤:- 准备实验所需材料和仪器。
- 按照实验流程进行实验。
- 记录实验数据并进行分析。
- 清洗实验器具和材料。
小点:a. 实验前的准备工作。
b. 实验流程的具体步骤。
c. 数据记录和分析的方法。
d. 实验后的清洗工作注意事项。
4. 注意事项:- 实验室安全第一,穿戴适当的实验服和安全眼镜。
- 仔细阅读实验指导书,熟悉实验流程和注意事项。
- 保持实验环境的整洁和有序。
- 处理实验废物时,按照规定进行分类和处置。
小点:a. 实验室安全注意事项。
b. 对实验指导书的阅读和理解。
c. 维护实验环境的要求。
d. 实验废物处理的规范。
总结:本文介绍了生理学实验指导(一)的内容,包括实验目的、实验原理、实验步骤和注意事项等。
通过实验,学生可以更好地了解生物质膜的结构和功能,并掌握膜通透性的测定方法。
在实验过程中,注意实验室安全,遵守操作规范,保持实验环境整洁,并正确处理实验废物。
生理学实验蛙心起搏分析中注意事项
生理学实验蛙心起搏分析中注意事项生理学的任务就是研究生物机体的功能,是医学基础课程中重要的一门学科,它的理论比较抽象,但实践性很强。
两栖类动物的心脏是由两心房、一个或者两个心室组成的,起搏点是静脉窦,并且它的自律性比较高,在正常的情况下心脏的活动节律跟静脉窦的节律是相符的,其活动顺序是静脉窦、心房,最后是心室。
在进行生理学蛙心起搏实验中,需要做好充分的准备工作才能够完成这项实验。
本文分析了进行蛙心起搏实验的具体方法和步骤,并且探讨了生理学实验蛙心起搏分析中应该注意的事项,期盼为生理学实验做出一定的贡献。
标签:生理学实验;蛙心起搏;注意事项0.引言在医学体系中生理学是一门重要的基础医学理论课程,并且和其他的各个学科都有着密切的联系,并且生理学的理论知识主要是通过实验获得的,我们甚至可以说,没有实验就没有生理学。
蛙心起搏是生理学中一个重要的实验,那么在进行生理学实验蛙心起搏分析中,我们应该注意哪些问题,以防止实验结果出现差异。
1.蛙心起搏实验的综述哺乳动物的心脏的特殊传导系统具有自动节律性,但是心脏各部分的自律性高低是不一样的,窦房结的自律性是最高的,正常的心脏搏动每次都是由窦房结发出的,然后再传到心房以及心室,从而引起兴奋和收缩,两栖类动物心脏的起搏点是静脉窦[1],本文将对两栖类蛙的心脏进行实验。
进行蛙心起搏实验的目的是为了利用局部温度的改变,以及结扎的方法来观察蛙心的正常起搏点,以此来比较蛙心不同位置的自律性的高低。
进行蛙心起搏实验的对象是蛙或者蟾蜍,需要准确蛙类手术器械、蛙心夹、滴管、任氏液以及蛙板和小试管、丝线。
那么进行蛙心起搏实验需要进行哪些步骤,才能够保证实验的完成,下面我们将对蛙心起搏实验的实验步骤进行具体的分析。
①取一只蛙或者是蟾蜍,利用探针将蟾蜍的脑和脊髓破坏,然后将蟾蜍仰卧着固定在蛙板上,利用剪刀将蟾蜍的胸骨表面皮肤沿着中线剪开,那么就可以看到蛙心脏被包在心中。
利用剪刀仔细的将蛙心包剪开,最终将蛙心脏露出。
生理学实训前准备报告
一、实训目的本次生理学实训旨在通过实验操作,加深对生理学基本理论的理解,培养学生的动手能力和实验技能,提高对生理现象的观察和分析能力。
二、实训时间2023年10月25日三、实训地点学校生理学实验室四、实训内容1. 血液凝固实验2. 心电图实验3. 肌肉收缩实验4. 神经传导实验五、实训前准备工作1. 理论学习在实训前,我们通过查阅教材、网络资源等途径,对本次实训涉及的生理学知识进行了系统学习,包括血液凝固、心电图、肌肉收缩和神经传导等方面的基本理论。
2. 实验原理掌握(1)血液凝固实验:通过观察血液在加入凝血酶原激活物后凝固的过程,了解血液凝固的原理。
(2)心电图实验:通过观察心电图波形,了解心脏的电生理活动规律。
(3)肌肉收缩实验:通过观察肌肉在神经刺激下的收缩现象,了解肌肉收缩的原理。
(4)神经传导实验:通过观察神经纤维在电刺激下的传导现象,了解神经传导的原理。
3. 实验操作准备(1)熟悉实验器材:在实训前,我们详细了解了实验器材的使用方法,包括仪器、试剂、耗材等。
(2)实验步骤学习:我们认真学习了实验步骤,确保在实训过程中能够顺利进行。
(3)实验注意事项:我们了解了实验过程中的注意事项,如安全操作、数据记录等。
4. 实验分组与分工我们将实训小组分为四组,每组负责一个实验。
在实训前,我们明确了各组成员的分工,确保实验顺利进行。
六、实训预期效果1. 理论联系实际:通过实验操作,加深对生理学基本理论的理解。
2. 提高实验技能:培养实验操作能力,提高动手能力。
3. 增强团队协作:通过小组合作,提高团队协作能力。
4. 培养科学素养:培养严谨的科学态度和观察能力。
七、实训总结通过本次生理学实训,我们掌握了实验操作技能,加深了对生理学基本理论的理解。
在实训过程中,我们注重团队协作,共同完成实验任务。
在今后的学习和工作中,我们将继续努力,不断提高自己的生理学素养。
八、实训反思在实训过程中,我们发现自己在实验操作和理论知识掌握方面还存在不足。
生理学的实验报告
生理学的实验报告生理学的实验报告(一)一般要求使用学校统一印制的报告纸。
填全各栏目,并标明学号或组号,“日期”一栏填做实验日期,写报告日期可标于文末。
“指导教师”一栏不写,系留阅报告人签名用。
报告要求格式标准、卷面整洁、图表准确、字迹端正、简明精练,按时上交。
写报告不得使用圆珠笔,绘图宜用铅笔。
注意文字规范,语句通顺,不用自造的`不规范的简化字、代号。
(二)基本格式与写法生理实验有的侧重于操作方法(如神经-肌肉标本制备),有的侧重于现象观察(胃肠运动的直接观察),有的侧重于结果及分析(影响尿生成的因素),多数则兼而有之。
应根据实验类型,选用合适的报告格式及详略安排各栏目。
实验报告大体上有两种格式:一种是一般实验报告式,另一种是仿学术论文式,其对应关系如下表。
一般认为操作类宜选用前者,而侧重结果的实验后者更适用。
表4 实验报告的基本格式一般实验报告式仿学术论文式题目(内容) 题目目的原理引言(导言)实验对象与用品材料与方法方法步骤结果与分析结果与分析讨论讨论与结论(语)(结论或结语)注意事项原始记录附录(含原始记录,公式实验分工体会与建议推导,参考文献,致谢等)(三)注意事项写报告应以事实为根据,尽量用自己的话表述,忌抄书,不许修改、编造数据。
实验方法与步骤可视重要否而详略,但报告应独立成章,不可用“见书第××页”字样而省略。
有的实验报告中,结果、分析甚至实验项目可以列表表达。
“讨论”是一篇报告的核心,应紧扣结果联系相关理论进行,忌就事论事或离题万里;结果也不可轻易推断或引申。
“结果与分析”一栏可在实验小组内讨论,必要时也可以参考其他组数据(需注明),但报告必须按要求独立完成,禁止互相抄袭。
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实验的注意事项
1、动物麻醉注意事项?
(1)正确选用药品、用药剂量及给药途径。
(2)静脉麻醉时,先将总量的1/3快速注入,使动物迅速渡过
兴奋期,余下2/3 缓慢注射,并观察动物状态及反应,
以准确判断麻醉深度。
(3)需补充麻醉药时,一次补量不超过总量的1/5 。
(4)麻醉中应随时保持呼吸道通畅,注意保温。
(5)在手术操作复杂、创伤大、实验时间较长或麻醉深度不
理想等情况下,可配合局部浸润麻醉或基础麻醉。
(6)实验中注意体液平衡,防止酸中毒及肺水肿的发生。
2、影响血液凝固因素注意事项?
1 采血过程要尽量快,以减少计时误差,对比实验的采血时间要紧接着进行。
2 每支试管口径大小及采血量要相对一致,不可相差太大。
3 判断凝血的标准要一致,一般以倾斜试管达45°时试管内血液不见流动为准。
4液体石蜡不能加得过多,影响凝血时间观察
3、红细胞脆性实验注意事项?
1试管要干净;
2 NaCL溶液配液要准确;
3 加入大小基本相同的一滴血液;
4 轻轻混匀,减少机械溶血机会;
5 静置时间不少于30min。
中途不得人为振荡。
观察结果时动作尽量要轻,且在光线明亮处进行4、血红蛋白测定注意事项?
(1)血红蛋白吸管和比色管要清洁;
(2)吸取血液要准确,避免起泡;
(3)滴加蒸馏水时逐滴进行,防止一次加入过多;
(4)酸化时间不能少于10min;
(5)在自然光下比色。
5、心肌特性实验注意事项?
1.破坏蛙的大脑和脊髓要彻底。
2.经常给心脏滴加任氏液,以保持心脏适宜的环境。
3.张力传感器与蛙心夹之间的丝线应保持适宜的紧张度,间距一般小于20cm
4.铜丝与心室接触良好的同时,还应尽量不让其阻碍心脏的自发收缩。
5、沿窦房沟结扎时一定要准确
6、动脉血压直接测定时注意事项
1 麻醉应适量,注射要慢,注意呼吸变化,以免过量引起动物死亡;
2 分离血管、神经原则:先认准再分离;先神经再血管;先细后粗;
3 动脉导管的固定要可靠,防止漏液和血管堵塞;
4 要待前一项目恢复正常后才能进行下一项目;
5 实验结束后,先结扎颈总动脉近心端,再拔除动脉插管。
6、整过实验中要尽量减少出血。
7、家兔呼吸运动描记实验注意事项?
1 气管插管内壁要干净;
2气流适宜,以免直接影响呼吸运动,干扰实验结果;
3注射乳酸时要避免外漏以引起动物躁动;
4每项实验前均应有正常呼吸曲线作比较;
5 吸入CO2时,出现现象应立即移开CO2,防止动物死亡。
8、离体小肠运动描记实验注意事项?
1实验动物要禁食24h,实验前1小时饲喂一次。
2实验前标本要放在38℃台氏液中浸泡数分钟,使标本兴奋性稳定后再进行实验;
3实验中注意控制温度;
4 实验中随时更换新鲜台氏液;
5 实验中添加的药物量要由少至多。
9、泌尿实验时的注意事项?
1、实验前家兔多喂菜叶或水,以增加基础尿量;
2、保护好耳静脉,应从耳静脉远心端开始注射,逐渐向耳根部推进;
3、暴露膀胱时,手术切口3~4cm为度,防止肠管漏出;
4、输尿管插管时一定要准确,且事先在插管内充满水;
5、每一项目要待前一项目的影响基本结束后再进行。