免疫亲和色谱PPT幻灯片

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2021/3/8
IAC的选择性取决于固定化的抗体的特异性, 因此,最好使用单克隆抗体。这样大量的样品可用 免疫亲和净化而没有任何基质成分保留,从而使在 动物性食品中很低浓度的药物残留测定成为可能。 例如,当1L脱脂奶用免疫亲和净化后,能测定1L奶 中的20ng氯霉素,回收率达99%。
能识别一类药物中所有组分的基本分子结构的 多克隆抗体也可用于需要分析同类中的一些组分的 分析。
2021/3/8
免疫亲和柱能重复使用的程度主要取决于所分 析的样品的性质和抗体与载体的稳定性。最重要的 一步是除去物理吸着在抗体上的物质,以便使柱子 能重现性地重复使用。在动物性食品样品正常脱脂 和不含固体颗粒时,大多数柱子至少可使用100次 。有报道,分析玉米、花生中黄曲霉毒素B1、B2、 G1、G2时,用水洗柱使之再生,可重复使用50次以 上;而用于啤酒中黄曲霉毒素B1、B2、 G1、G2测 定时,用磷酸缓冲液洗柱再生,只能用1-2次。
2021/3/8
IAC具有特异性高、耗时少、操作简便、节省 溶剂等优点,然而要成为真正普及的技术,对IAC 还有更多要求。
IAC基体的可供性是主要因素。除极少数外, 大多数试验室没有生产抗体的设备。另外,订制抗 体不一定能保证最后产品的质量,而且一般要等624个月才能得到血清。迄今,市场上能得到的免疫 亲和柱和吸着剂仅限于激素、ß-激动剂、皮质激素 以及几种真菌毒素。当为了分析目的的抗体生产商 业化成为现实时,IAC将会显示出它的潜力。
202Βιβλιοθήκη Baidu/3/8
2021/3/8
制备IAC基体首先需要抗血清,单独地看免疫原的 合成和抗体的免疫与纯化方法和IAC本身不太有什么关 联,但这些是所有免疫化学方法的主要部分。制成IAC 基体,必须将抗体结合到载体上,且不能丢失太多活 性。大多数情况下,抗体与载体以共价键结合,如聚 丙烯酰胺(polyacrylamide)、三丙烯酰胺(trisacryl) 、 琼 脂 糖 ( agarose ) 、 葡 聚 糖 (dextran) 和 纤 维 素 (cellulose)。
2021/3/8
多 免 疫 亲 和 净 化 ( multi-immunoaffinity cleanup, MIAC)是将不同的多克隆抗体合装在 一个柱中。
用GC-MS测定牛肉中的去甲睾酮和甲基睾酮 ,是将两个不同的多克隆抗体混合偶联到一个载 体上。为了分析7个同化激素,用7个单独的IAC 基体合在一个柱中。
免疫亲和色谱(immunoaffinity chromatography, IAC)是极为有效的样品制备方法。IAC根据分析物和其 所引起的抗体之间有选择的和可逆的相互作用,从复杂 样品基质中分离出分析物。通常,将载体上固定化的抗 体移到小柱中,样品液通过重力或泵流过小柱。使用泵 是更好的方法,因为它保证恒定的流速并可同时进行多 柱操作。免疫化学相互作用的结果使分析物分子为固定 化抗体所保留,但基质组分不与抗体作用而流出柱子。 用磷酸缓冲液洗涤柱子将其余未保留的成分全部除去。 洗涤之后,用比吸附缓冲剂离子强度大的和pH值低的缓 冲液将被吸附的分析物脱附;分析物的分配平衡从配体 移至缓冲液,因此将分析物洗脱。
在偶联操作时,免疫球蛋白与载体形成共价 键的过程通常通过其氨基间的相互作用完成。
免疫亲和吸着剂显示的分析物容量通常比理论 上计算的低,主要由于在固化中抗体部分失活,免 疫球蛋白分子在载体上的随意固定化屏蔽了分析物 的结合点。
分析物能键合免疫亲和柱上的最大量取决于 在吸着剂上抗体分子的数目和取向。然而,一个免 疫亲和柱的结合效率随流速、分析物浓度和样品溶 液性质而变化。分析物实际上的保留量通常小于理 论计算值。仅当低流速结合低浓度分析物通过柱子 时,才可近乎理论计算值。
偶联之前,载体必须用试剂致活,如澳化氰( cyanogen bromide) 、 高 碘 酸 盐 (periodate) 、 三 嗪 (triazine) 、 羰 基二 咪唑 ( carbonyldiimidazole) 或 N-羟基琥珀酰亚胺(N-hydroxysuccinimide)。
2021/3/8
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