油红O染色法及Masson染色法
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油红O染色及Masson染色
油红O染色
1. 染色液的配制
材料:油红染料棕色可密封瓶异丙醇研钵漏斗定性滤纸
称取预先研磨粉碎的0.5g油红干粉,溶于少量异丙醇中,然后加异丙醇至100ml,棕色瓶密封(或锡箔纸包裹避光)4℃保存,为储存液,可长期保存。用时取6ml加三蒸水4ml 混匀,定性滤纸过滤,稀释后数小时内用完。 2. 10%中性甲醛的配制
材料:中性甲醛(多聚甲醛)密封瓶
称取1g中性甲醛粉末,加入10ml的三蒸水中,密封,在60度水浴中过夜才能溶解。配好的溶液1个星期内有效,最好4度保存。
3.染色对象间充质细胞脂肪诱导后不同时间段。
4.培养载体 3毫升培养瓶。如果培养载体为塑料制品,hoechst33342染核的话,塑料板自发荧光也为蓝色,必须考虑。
5.染色步骤:
5.1 先小心轻缓倒去培养夜。
5.2 用pbs轻缓漂洗(不洗没问题)。
5.3 加10%中性甲醛固定30min(实际固定时间过夜都没问题。固定液用95%酒精也可)。固定的是细胞膜。
5.4 稀释油红储存液,油红:去离子水=3:2,滤纸过滤,室温放置10min(除去一些杂质,染色结果更清晰)。
5.5 染色10min左右,加的体积覆盖住板底即可,如6孔加1.5ml,24孔加0.5-1ml(实际染色时间1小时都可以)。
5.6 脱色,用75%酒精/60%异丙醇漂洗,除去多余的染料(实际用其他平衡液洗也没问题,背景并不会残留多少)。
5.7 复染,淡苏木染色1/5分钟,pbs漂洗(这一步不做也可,看试验需要,并且苏木素会把胞浆染红,如要显示核, hoechst33342也可以,浓度5微克/毫升染10分钟即可把核染上)。 5.8甘油明胶封片(封片后可长期保存)。 5.9 显微镜观察。注意事项:
脂肪油红染色,有的是动物/人体脂肪组织切片,或细胞爬片。各有操作差异。以下是各论坛方法小结,不全。
1.完全成熟饱满的脂肪细胞,容易破裂,脂滴泄漏,所以压片,切片都要考虑到这个问题。
2.细胞爬片细胞溶液脱落,特别是脂滴大的。操作务要轻柔。不要把细胞冲掉。
3.如果做脂肪组织冰冻切片,冰冻温度比普通要低,切片厚度加厚。
Masson三色染色
主要用途:主要用于胶原纤维和肌纤维的鉴别染色。
检验原理:
由mallory三色染色改造,利用两种或三种阴离子染料混合一起或先后作用完成染色,与阴离子染料分子大小和组织的渗透性有关。根据组织不同的渗透性能,选择分子大小不同的阴离子的染料进行染色,便可把不同组织成份显示出来。
一、实验试剂
1. Regaud 氏苏木精:苏木精1g,95%酒精10ml,甘油10ml,蒸馏水80ml。将苏木精加入蒸馏水内加温溶解,冷却后加入酒精和甘油,放数日后即可应用;
2. Masson丽春红酸性复红液:丽春红0.7g,酸性复红0.3g,蒸馏水99ml,冰醋酸1ml;
3. 0.2%冰醋酸水溶液:冰醋酸0.2 ml,蒸馏水100 ml;
4. 1%磷钼酸水溶液:磷钼酸1g,蒸馏水100 ml;
5. 苯胺蓝水溶液:苯胺蓝2g,蒸馏水98 ml,冰醋酸2 ml;
6. 1%光绿水溶液:光绿 1g,蒸馏水100 ml。
二、操作步骤
1. 石蜡切片脱蜡至水;
2. 铬化处理或去汞盐沉淀(甲醛固定的组织此步可略);
3. 依次自来水和蒸馏水洗;
4. 用Regaud苏木精染液或Weigert苏木精液染核5-10min;
5. 充分水洗,如过染可盐酸酒精分化;
6. 蒸馏水洗;
7. 用Masson 丽春红酸性复红液5-10min;
8. 以2%冰醋酸水溶液浸洗片刻;
9. 1%磷钼酸水溶液分化3-5min;
10. 不经水洗,直接用苯胺蓝或光绿液染5min;
11. 以0.2%冰醋酸水溶液浸洗片刻;
12. 95%酒精、无水酒精、二甲苯透明、中性树胶封固。
结果:胶原纤维、粘液、软骨呈蓝色(如光绿液染色为绿色),胞浆、肌肉、纤维素、神经胶质呈红色,胞核黑蓝色。
三、体会与说明
1. 控制好染色步骤;
2. 组织固定起着很重要的作用,根据不同的固定液可延长或缩短染色时间;
3. 0.2%冰醋酸水溶液洗,可使色调清晰鲜艳;
4. 磷钼酸水溶液对丽春红、酸性复红有分化作用,分化时镜下控制,肌纤维和纤维素呈红色,胶原纤维呈淡粉红色即可。
检验结果:
胶原纤维、粘液、软骨呈蓝色,肌纤维、纤维素和红细胞染红色、胞核染蓝黑色。
注意事项:
1.weigert铁苏木素分A、B两液,应与临用前将两液等分混合,而不宜预先混合,否则容易氧化沉淀而逐渐失去染色能力。
2.组织用bouin氏液或zenker氏液固定为佳,如已用10%甲醛液固定,切片可在脱蜡至水后,再放入bouin氏液作用一晚或置37℃温箱内1-2小时,然后流水冲洗切片至黄色消失再进行染色。
3.磷钼酸处理时,要镜下控制,见肌纤维呈红色,胶原纤维呈淡红色即可