核-胞浆蛋白提取方法

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WB二抗稀释液-凯基生物

WB二抗稀释液Cat Number：KGP107For Research Use OnlyStore at4℃for one yearExpire date：20130105一、试剂盒说明WB二抗稀释液是蛋白印迹(Western Blot，WB)等实验中最常用的蛋白类生物试剂，为保证抗体标记物具有较高的生物活性，厂家在生产运输过程中一般都以较高的浓度分装保存。

在蛋白印迹等实验中，为获得较好的染色结果，降低实验成本，二抗在使用前都需要适当稀释。

本产品仅用于WB实验中二抗的稀释。

二、试剂盒组份WB二抗稀释溶解液100mlBSA3g说明书一份三、使用说明1、WB二抗稀释液的配制：按照需求的量配制含3％BSA的WB二抗稀释溶解液，比如称取0.3gBSA溶于10ml的WB二抗稀释溶解液，现配现用。

2、用时取适量用于二抗稀释。

二抗的稀释倍数请参照抗体生产厂家使用说明。

四、注意事项1．本产品属蛋白制剂，室温放置过久易导致蛋白的降解和活性丧失。

2．反复冻融亦会导致蛋白活性的丧失。

3．为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

4．WB二抗稀释液现配现用。

五、凯基相关产品（详见凯基网站）1、蛋白提取核蛋白和胞浆蛋白提取试剂盒全蛋白提取试剂盒膜蛋白和胞浆蛋白提取试剂盒线粒体蛋白提取试剂盒磷酸化蛋白提取试剂盒（简易型）活性蛋白提取试剂盒红细胞裂解液细菌蛋白提取试剂盒酵母蛋白提取试剂盒植物蛋白提取试剂盒蛋白裂解液系列2、蛋白定量BCA法蛋白定量检测试剂盒Bradford法蛋白定量检测试剂盒Lowry法蛋白定量检测试剂盒3、蛋白染色蛋白质银染检测试剂盒蛋白质考马斯亮蓝染色检测试剂盒考马斯亮蓝蛋白快速染液4、蛋白分子量Marker蛋白分子量Marker（14KD-116KD）蛋白分子量Marker（10KD-200KD）预染蛋白分子量Marker（20KD-118KD）预染彩色蛋白分子量Marker（11KD-250KD）5、Western bloting组装试剂盒凯基蛋白提取和SDS-PAGE凝胶电泳试剂盒凯基Western bloting检测试剂盒6、Western bloting化学发光试剂盒ECL检测试剂盒加强型ECL检测试剂盒。

高中生物用到离心的实验

高中生物用到离心的实验
1. 分离细胞核和胞浆：将细胞悬液加入到离心管中，进行离心，使细胞核沉淀到管底，胞浆上清液悬于管顶，然后通过分离液层，得到细胞核和胞浆。

这可以用于细胞质和细胞核的分离研究以及推导细胞核DNA含量的研究。

2. 离心分离蛋白质：将细胞悬液加入到离心管中，进行适当的离心，使蛋白质沉淀到管底。

然后可以用各种方法对分离的蛋白质进行进一步的鉴定和分析，包括酶学分析、免疫学检测等。

3. 分离膜蛋白和溶解蛋白：用离心法可以分离细胞膜上的膜蛋白和溶解在细胞液中的溶解蛋白。

这可以用于研究细胞膜结构和功能。

4. 分离细胞器：用离心法可以分离不同细胞器，如线粒体、内质网、高尔基体等。

这可以用于研究不同细胞器的结构和功能。

5. 分离DNA和RNA：用离心法可以分离DNA和RNA，这可以用于研究基因结构和功能，以及编制DNA和RNA文库等。

6. 血浆分离：用离心法可以分离血浆中的白细胞、红细胞和血小板，这可以用于研究血液成分、疾病诊断等。

7. 微生物培养液分离：用离心法可以分离微生物培养液中的细胞、孢子等，这可以用于研究微生物生长行为、菌株鉴定、药物研发等。

核蛋白提取试剂盒说明书

核蛋白提取试剂盒说明书货号：R0050规格：50T/100T 产品内容：保存：核/浆蛋白抽提试剂2-8℃保存，PMSF 于-20℃保存。

产品简介：本试剂盒提供了一种简单、方便的从培养细胞或新鲜组织中抽提核蛋白的方法。

整个过程只需约60分钟就可以将核蛋白和浆蛋白从细胞中分离出来。

得到的蛋白可以用于Western blot 等实验。

本试剂盒通过浆蛋白抽提试剂使细胞膨胀破裂，释放出胞浆蛋白，再通过离心得到细胞核。

然后通过核蛋白抽提试剂抽提得到细胞核蛋白。

本试剂盒可以抽提50/100个样品（每个样品约2×106个Hela 细胞或40mg 组织）。

操作方法（仅供参考）：*裂解蛋白的所有步骤都需在冰上或4℃进行。

一、对于体外培养细胞：1．根据用量取适当的浆蛋白抽提试剂和核蛋白抽提试剂加入PMSF ，使PMSF 的最终浓度为1mM 。

PMSF 需现用现加，若目标蛋白含有丰富的半胱氨酸，可以在两种蛋白抽提液中加入DTT 至终浓度0.5mM 。

2．对于贴壁细胞，去除培养液，用PBS 洗一遍，用细胞刮刀收集细胞，或用EDTA 消化后吹打下细胞（最好不用胰酶硝化，以免胰酶消化目的蛋白）。

500g 离心2～3分钟收集细胞，吸尽上清留下沉淀备用。

3．对于悬浮细胞：用PBS 洗一遍，500g 离心2～3分钟收集细胞，吸尽上清，留下细胞沉淀备用。

4．每20μL 细胞沉淀加入200μL 浆蛋白抽提试剂（2×106个细胞沉淀的体积约20μL 或40mg ）。

5．用移液器吹打或高速涡旋15秒（可适当延长），必须使细胞沉淀完全分散开成单细胞悬液。

细胞沉淀分散不完全会导致蛋白产量降低。

6．冰浴10分钟。

7．最高转速剧烈涡旋10秒，4℃12000～16000g 离心10分钟。

8．上清即为抽提得到的细胞浆蛋白，立即吸取上清至预冷的样品管中备用，进行后续的PAGE 、Western 等实验，但蛋白浓度较低，可根据需要进行相应浓缩。

RIP试剂配方

RIP试剂配方及操作步骤所有试剂需用DEPC水配置，临用前加入终浓度1 mM PMSF，1×Protease inhibitors (PIC)和100 U/ml RNase inhibitor！！！1、胞浆和核蛋白提取(10 mM Tris, pH 7.4, 200 mM NaCl, 30 mM EDTA and 0.5% Triton-X 100)(10 mM Tris, pH 7.4, 200 mM NaCl, 30 mM EDTA and 0.5% Triton-X 100, 0.5% NP40)也可以直接用RIP buffer。

2、膜蛋白提取(150 mM NaCl, 1% NP-40, 0.5% sodium deoxycholate, 0.1% SDS, 50 mM Tris-HCl (pH 7.4), 1mM EDTA)，相当于碧云天的中强裂解液。

3、RIP Buffer(150 mM KCl, 0.5 mM DTT, 25mM Tris PH7.5, 5 mM EDTA, 0.5% NP40)4、Wash buffer I（低盐）(20 mM Tris-Hcl pH 8.1, 150 mM NaCl, 1% Triton X-100 and 0.1% SDS)5、Wash buffer II（高盐）(20 mMTris-Hcl pH 8.1, 500 Mm NaCl, 1% TritonX-100 and 0.1% SDS)6、PBS（137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 10 mM Na2HPO4, 2 mM KH2PO4）7、Nuclear isolation buffer（1.28 M sucrose，40 mM Tris-HCl pH 7.5，20 mM MgCl 2，4% Triton X-100）步骤：蛋白的制备1、睾丸组织样本用预冷的PBS洗三次，加入PBS冰浴匀浆为单细胞。

细胞核-胞浆分离方法

盒提供了一个系统，维持核和胞浆组分是分开和完整的。优化的试剂配方和程序可以快速分离胞核和胞浆，而几乎没有交叉污染。
本试剂盒提取的胞核和胞浆组分仍保持其生化功能，适合下游分析如转录活性，RNA 拼接，gel－shift 分析，报告分析，酶活性分析和 WB 等。
使用方法： 1. 取 5-10×106 个细胞①，在 4℃，500×g 条件下离心 2-3 分钟，小心吸取培养基，尽可能吸干，收集细胞。 2. 用冷 PBS 洗涤细胞两次，每次洗涤后尽可能吸干上清。 3. 在细胞沉淀中加入 200μl 冷的提取液 A，涡旋振荡混匀或吹打混匀，置冰上振荡 30 分钟。（没有振荡条件的话，也可冰上静置，中间每隔 5 分钟涡旋振荡或吹打混匀。） 4. 在 4℃，1200×g 条件下离心 5 分钟。 5. 将上清吸入另一预冷的干净离心管，即得到胞浆组分，请置冰箱保存备用或直接用于下游实验。 6. 沉淀用 PBS 洗涤一次，然后在 4℃，2000×g 条件下离心 5 分钟，弃上清。 7. 沉淀为细胞核组分，将沉淀用 200ul 保存液 B 重悬后保存备用或直接用于下游实验。
-1-
细胞核/胞浆分离试剂盒
产品组成：
产品组成规格
提取液 A 核保存液 B 蛋白酶抑制剂混合物
BB-36021-1 50T 10ml 10ml 250ul
BB-36021-2 100T 20ml 20ml 500ul
储存条件：提取液 2-8℃保存；蛋白酶抑制剂-20℃保存。
有效期：一年。
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
产品简介：贝博细胞核/胞浆分离试剂盒可以从哺乳动物细胞中分离细胞核和胞浆组分。此试剂

动物固体组织蛋白提取-Protocol

动物固体组织蛋白提取1、前夜将磁珠及匀浆管洗净置入75%乙醇中浸泡。

早晨取出磁珠和匀浆管，自然晾干；也可放入烤箱中，速度较快。

2、裂解液配制：：100：1，现配现用。

（100010）。

置入4℃冰上。

3、抽蛋白（应冰上进行）：a、适量组织（最好放入液氮中反复研磨成粉状）加入裂解液中。

一般10管体系中加入：7-8粒磁珠、100组织、110、1 。

b、匀浆。

手工匀浆：将剪碎的组织倒入玻璃匀浆管中，再将剩余的1/3匀浆介质或生理盐水冲洗残留在烧杯中的碎组织块，一起倒入匀浆管中进行匀浆，左手持匀浆管将下端插入盛有冰水混合物的器皿中，右手将捣杆垂直插入套管中，上下转动研磨数十次（6～8分钟），充分研碎，使组织匀浆化。

机器匀浆：用组织捣碎机10000～15000上下研磨制成10％组织匀浆，也可用内切式组织匀浆机制备（匀浆时间10秒/次，间隙30秒，连续3～5次，在冰水中进行），皮肤、肌肉组织等可延长匀浆时间。

超声粉碎：用超声粉碎机进行粉碎，可用150型超声波发生器以振幅14微米超声处理30秒使细胞破碎，也可用国产超声波发生仪，用40安培，5秒/次，间隙10秒反复3～5次。

反复冻融：培养或者分离的细胞可以用以上的方法匀浆，也可以反复冻溶3次左右（即让细胞加适量的低渗液或者双蒸水放低温冰箱中结冰，溶解，再结冰，再溶解，反复3次左右），但有部分酶活力会受影响。

c、将组织匀浆转入1.5的管中（管、离心管）。

12000 4°C 离心15。

d、离心后管中液体分三层，提取中间无色液相，移入新的管中。

可-80℃保存。

4、蛋白浓度测定。

a、配工作液：溶液A：溶液50：1（200：4）。

*200；2*（1+1）*4。

需测试复孔。

标本X，则需Ac、复孔，取蛋白6加入0.6管，再加入542O，混匀。

即10倍稀释。

d、取20-25 10倍稀释蛋白样本加入96孔板平底板内，再加入200工作液，混匀振荡后，37℃30。

注：应现加蛋白样本，再加工作液。

胞浆蛋白—核蛋白抽提试剂盒说明书

胞浆蛋白—核蛋白抽提试剂盒产品编号产品名称包装SINP001 胞浆－核蛋白抽提试剂盒50×产品简介：细胞核和细胞浆目前成为研究细胞组分的两个热点，获得高浓度的细胞核蛋白和细胞浆蛋白成为得到好的研究结果的重要实验过程。

本试剂盒主要原理是在低渗透压条件下，使细胞充分膨胀，然后破坏细胞膜，释放出细胞浆蛋白，离心得到细胞核沉淀。

最后通过高盐的细胞核蛋白抽提试剂抽提得到细胞核蛋白。

本试剂盒是本公司非放射性EMSA试剂盒（cat; SIDET001, SIDET003, SIDET004,）实验成功的重要部分，经BCA测定24cm2贴壁细胞(或50ml规格培养瓶养的悬浮细胞)抽提物，核蛋白浓度约为 2.5ug/ul或更高。

抽提得到的蛋白可以用于Western，EMSA，footprinting，报告基因检测以及酶活力测定等后续操作。

本试剂盒可足够您进行50次抽提操作！包装清单：试剂包装总量5X Buffer A 1瓶35ml/瓶2X Buffer B1支 1.5ml/支Solution I（溶液I）1支 1.75ml/支Solution II（溶液II）1支 1.75ml/支Solution III（溶液III）1支 1.5ml/支PMSF Solution 1支0.85ml/支User Manual (说明书)1份1份/Kit保存温度： 4℃保存。

Ⅰ.准备抽提试剂：按照下列方法制备胞浆－核蛋白抽提液：1.制备3ml胞浆蛋白裂解液I ：试剂体积5X Buffer A0.6mlSolution I（溶液I）30ulSolution II（溶液II）30ulPMSF Solution 15uldd-H2O 2.325ml总体积 3.0ml注：PMSF Solution须在抽提试剂加入到样品中前2-3分钟内加入。

2.制备1.02ml胞浆蛋白裂解液II：试剂体积Solution III（溶液III）20ul胞浆蛋白裂解液I 1.0ml总体积 1.02ml3.制备1ml核裂解液：试剂体积2X Buffer B25ulSolution I（溶液I）0.5ulSolution II（溶液II）0.5ulPMSF Solution0.25uldd-H2O23.75ul总体积 50ul注：PMSF Solution须在抽提试剂加入到样品中前2-3分钟内加入。

细胞膜-胞浆-核膜蛋白分步提取方法

蛋白提取步骤： 1. 提取液制备：每400ul 冷的蛋白提取液A/D 中加入分别加入2ul 蛋白酶抑制剂混合物和2ul 磷酸酶抑制剂混合物，混匀后置冰上备用。 2. 取5-10×106 个细胞①，在4℃，1000rpm 条件下离心5-10 分钟，小心吸取培养基，尽可能吸干，用细胞刮刀收集细胞。（组织样本50-100mg 剪碎，加冷PBS，用组
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
浴10 分钟，37℃下②1000g-2000g 力离心5 分钟，此时溶液分为两层
（对着光线看），上层为核内蛋白，下层是核膜蛋白约为20-40μl。小心移除上层，用1-2 倍体积的提取液D 溶解下层即为细胞核膜蛋白。 9. 在步骤6 中所得到的上清（I）中加入5ul 提取液C，充分混匀。37℃水浴10 分钟。
10. 37℃下② 1000g 离心3 分钟，此时溶液分为两层（对着光线看），上层是胞浆
蛋白部分，下层是细胞膜蛋白部分约为40-50μl。 11. 将上清吸入另一预冷的干净离心管，即可得到胞浆蛋白。
12. 用80-200μl 冰冷的提取液D 溶解步骤10 中的下层部分，即得细胞膜蛋白。 13. 将上述蛋白提取物定量③后分装于-80℃冰箱保存备用或直接用于下游实验④。
织匀浆器匀浆至无明显肉眼可见固体（或用液氮研磨），冰上静置5 分钟，小心将匀浆吸入另一预冷的干净离心管。在4℃，500g 条件下离心2-3 分钟，弃上清。）
3. 用冷PBS 洗涤细胞两次，每次洗涤后尽可能吸干上清。 4. 每5×106 个细胞中加入400ul 冷的蛋白提取液A，混匀后，在4℃条件下用试剂盒所配针筒反复吸吹细胞，使细胞完全破裂。 5. 在4℃，1000g 条件下离心5 分钟。 6. 快速将上清（I）吸入另一预冷的干净离心管，在沉淀中加入200μl 冷的提取液 B，高速涡旋振荡15 秒。 7. 将混匀的提取液B 置2-8℃振荡1-2 小时，至沉淀充分裂解，沉淀明显减少。8. 37℃水

蛋白免疫印迹杂交(WesternBlot)技术手册

蛋白免疫印迹杂交〔Western Blot〕技术手册A蛋白样本提取制备蛋白样品制备是Western Blotting 的第一步，更是打算WB 成败的关键步骤，总体原则和留意事项：1：尽可能提取完全或降低样本简洁度只集中于提取目的蛋白〔通过承受不同提取方法或选择不同的试剂盒产品〕2：保持蛋白的处于溶解状态〔通过裂解液的PH 盐浓度外表活性剂、复原剂等的选择〕3：提取过程防止蛋白降解、聚拢、沉淀、修饰等，〔低温操作，参与适宜的蛋白酶和磷酸酶抑制剂〕4：尽量去除核酸，多糖，脂类等干扰分子〔通过参与核酸酶或实行不同提取策略〕5：样品分装，长期于-80℃中保存，避开反复冻融。

A-1细胞或组织裂解A-1-1细胞裂解裂解液Lysis buffer 或商品化蛋白抽提试剂盒的选择*目的蛋白分布定位推举裂解液Lysis buffe 推举试剂盒全细胞NP-40 or RIPA〔附录1〕全蛋白抽提试剂盒细胞质〔可溶蛋白〕Tris-HCl〔附录1〕胞浆蛋白和核蛋白抽提试剂盒线粒体蛋白提取试剂盒细胞质〔细胞骨架等不溶蛋白〕Tris-Triton〔附录1〕蛋白分级抽提试剂盒细胞质〔磷酸化蛋白〕磷酸化蛋白抽提试剂盒细胞膜NP-40 or RIPA〔附录1〕膜蛋白抽提试剂盒蛋白分级抽提试剂盒细胞核RIPA〔附录1〕核蛋白抽提试剂盒线粒体RIPA〔附录1〕线粒体蛋白抽提试剂盒亚细胞定位蛋白抽提试剂盒细胞裂解操作方法：1培育的细胞经预冷的PBS 漂洗2 次，裂解液中参与蛋白酶和磷酸酶抑制剂〔种类与量见本节2〕2吸净PBS，参与预冷的裂解液，〔(1 ml per 107cells/100mm dish/150cm2flask; 0.5ml per 5x106cells/60mm dish/75cm2flask).3用细胞刮子刮取贴壁细胞，将细胞及裂解液温存地转移至预冷的微量离心管中，44℃摇动30 min54℃离心12,000 rpm，20 min〔根椐细胞种类不同调整离心力〕6轻轻吸取上清，转移至预冷的微量离心管中置于冰上，即为蛋白样本，弃沉淀.A-1-2组织裂解1 用灭菌的预冷的工具分别目的组织，尽量置于冰上以防蛋白酶水解，2 将组织块放在圆底的微量离心管或Eppendorf 管中，参与液氮冻结组织于冰上均质研磨，长期可保存于-80°C，3每约5 mg 参与约300 μl 预冷的裂解液lysis buffer，冰浴匀浆后置于4℃摇动2 小时，裂解液体积与组织样本量有适当比例，〔最终的蛋白浓度至少到达0.1 mg/ml, 抱负的蛋白浓度应为1-5 mg/ml).44℃离心12,000 rpm，20 min，轻轻吸取上清，转移至预冷的微量离心管中置于冰上，即为蛋白样本，弃沉淀,A-2蛋白酶和磷酸酶抑制剂推举购商品化蛋白酶和磷酸酶抑制剂复合试剂盒或COOKTAIL。

蛋白提取制备相关产品_百替生物

蛋白提取制备相关产品蛋白抽提试剂盒-I (实体组织和细胞蛋白抽提, 100 extractions)S1250 100 次提取 700 元概述：实体组织如大脑富含磷脂、神经纤维或血管壁含大量结缔组织、而脂肪则有大量油脂，常规方法难以有效从这些组织提取蛋白。

蛋白抽提试剂盒-I用于从各种实体软组织或细胞快速提取总蛋白。

用裂解-结合缓冲液匀浆裂解实体组织，或用裂解结合缓冲液振荡重悬培养细胞，然后加入抽提试剂去除非蛋白成分，离心分离即可得到总蛋白；简便高效，30-60分钟内完成提取。

试剂盒可进行100次提取，可在1.5ml离心管微量提取也可大规模制备。

每次可提取1～100 mg实体组织或1 x 107细胞。

一次从10-100mg实体组织提取的总蛋白的量通常足以进行数十次Western Blot或免疫沉淀。

适用：(1) 各种实体软组织。

如脑、脊髓、神经结或纤维、脂肪、肝脏、消化道、肾脏、心脏、肌肉、血管、结缔组织等。

(2) 各种原代和传代细胞。

组成：(1) 裂解-结合缓冲液100 ml；(2) 抽提试剂100 ml。

每毫升裂解缓冲液和抽提试剂可提取100 mg组织或1 x 107细胞。

储存：室温2年。

蛋白抽提试剂盒-II (液体样品蛋白抽提和回收，100 extraction)S1255 100 次提取 480 元200 次提取 780 元概述：蛋白抽提试剂盒-II 用于液体样品中蛋白浓缩、提取、或脱盐、脱去垢剂、脱还原剂等。

适用于各种液体样品(10 µl～1000 ml)，如蛋白溶液、胞浆胞核蛋白提取液、细胞或微生物培养基上清液、血液、尿液、脑脊液等各种体液。

蛋白回收率95%，远高于经典的丙酮或三氯醋酸沉淀法，且可有效去除样品中的脂质，不影响后续SDS-PAGE和Western Blot实验。

可用1.5ml离心管微量提取也可大规模制备，15分钟完成提取，简便高效。

该试剂盒也适于从细胞悬液提取总蛋白。

EMSA实验指导

凝胶迁移实验(EMSA)凝胶迁移实验是一种研究DNA与蛋白质或RNA与蛋白质相互作用的常用技术，这项技术是基于DNA 蛋白质或RNA 蛋白质复合体在聚丙烯酰胺凝胶电泳中有不同迁移率的原理。

本实验是将提取到的蛋白粗提液，与生物素标记的DNA一同保温，在非变性的聚丙烯酰胺凝胶电泳上，分离复合物和非结合的探针。

DNA复合物比非结合的探针移动得慢。

EMSA中结合滞后条带的有无，以及量的多少可反映出DNA结合蛋白与DNA探针的结合活性，DNA结合蛋白的表达及活化水平。

近年来，EMSA已发展成为体外研究核酸，尤其是DNA与蛋白质相互作用的一种简单，迅速，而灵敏的方法，已成为了转录因子与核酸体外相互作用的经典方法。

实验前准备在实验开始前，先准备好本次实验所需的各种试剂盒和相关常规试剂，所需的试剂盒包括：核蛋白提取试剂盒，EMSA检测试剂盒等，需从冰箱里拿出室温解冻或冰上解冻待用。

本次实验所需的耗材和仪器有：赛默飞公司提供的的Thermo Scientific全波长扫描式多功能读数仪、QSP盒装吸头及Nunc冰盒，芬兰百得的各个量程单通道移液器，离心机，恒温水浴锅摇床等。

下面进入实验部分，首先介绍本实验基本操作流程为，先进行核蛋白的提取以及定量，探针标记，随后进行凝胶的配置及预电泳，根据得到的核蛋白与探针，进行样品的制备，上样进行电泳，经过电泳分离后，转移到尼龙膜上，最后进行显色。

核蛋白提取本步骤是参照NE-PER Nuclear and cytoplasmic Extraction Reagents展开的实验。

首先将现用现配的Buffer A和Buffer C配置好，Buffer A是1ml CER I加入10μl蛋白酶抑制剂，Buffer C是1ml ER Buffer加入10μl蛋白酶抑制剂.配置好，混匀后放置于冰盒中。

取数量约为5×10^6-10^7/ml的待用细胞，用预冷PBS洗涤两遍，尽可能除去上清，勿留残液，估计离心后的压积细胞体积，每10μl体积，加入100μl的Buffer A，混匀后涡旋剧烈振荡，冰上放置10-15min。

细胞核和胞浆分离机制及其动态调控

细胞核和胞浆分离机制及其动态调控细胞是生命的基本单位，存在于生物体中，是构成生物体的最小结构和功能单位。

不同于其他非细胞生物，细胞具有细胞膜、细胞质、细胞核等器官，其中，细胞核是细胞内最为重要的器官之一，是细胞总控制中心和基因存储库。

然而，当细胞分裂时，细胞核和胞浆会分离，分别进入两个新细胞中，这是因为细胞需要保证每个新细胞都具有完整的遗传物质和器官。

细胞核分离机制的演化细胞核和胞浆的分离自然界中广泛存在，其分离机制是细胞发生和演化的一部分，但不同生物体的分离机制可能有所不同。

比如，人和动物的细胞在分裂时，细胞核和胞浆是同时分裂的，而植物细胞在分裂时，只有胞浆分裂，细胞核仍在中央。

回到细胞核和胞浆的分离机制，研究表明，细胞核和胞浆的分离是由微管和微丝两种细胞骨架支撑的。

在有丝分裂中，最早被发现的是BI染色体 - 马达蛋白复合物，通过这一复合物，细胞核会被拽到新细胞的一个极端，胞浆会被拽到另一个极端。

这个复合物是由马达蛋白和微管两部分组成的，微管通过将二聚体结构交叉排列，形成一个管状结构。

在微管的动力学中，动态不稳定性是非常重要的，它允许微管快速增长和快速缩小。

微管的左右方向性由某些种类的微管组织蛋白所确定，这种蛋白能够通过诸如蛋白交联和四联肌的方式来影响微管的行为。

不同于微管，在细胞质的分离中，微丝起着至关重要的作用，微丝是细胞中质构最长的纤维，结构类似于纺锤体，可以承受压力和张力。

微丝由一种名为肌动蛋白的蛋白质维持其结构。

这种蛋白是两个相互作用的三聚体形式，可使微丝快速缩短和扭曲。

动态调节细胞核和胞浆分离就像生物体的其他组成部分一样，微管和微丝组成的分离机制也会受到动态调节。

在分离细胞核和胞浆时，这种调节尤其重要。

细胞中有许多激酶和磷酸酶，它们能够调节微管和微丝的行为。

例如，蛋白激酶B1（PKB）能够通过磷酸化蛋白11进行调节，这是一种微管关联蛋白。

这种蛋白的缺失会导致细胞分裂的异常，表明其重要性。

RNA PULL DOWN

胞质蛋白的提取：1、细胞消化下来预冷得PBS洗两遍，2000rpm离心4min。

2、500µl cold lysis buffer重悬沉淀，冰浴10min。

3、5000rpm离心5min，4°C。

上清为胞浆蛋白，沉淀为胞核部分。

4、将上清收集至另一EP管，500µl lysis buffer重悬沉淀，冰浴10min，5000rpm离心5min，4°C，弃沉淀，即得到胞核蛋白。

5、若需同时用胞浆及胞核蛋白，将二者等体积混合即可。

胞核蛋白的提取：1、收细胞，PBS洗一遍。

2、2ml PBS+2ml nuclear isolation buffer+6ml 水重悬细胞，冰浴20min。

3、离心，2500g/4度/15 min，弃上清。

4、1ML RIP buffer（加入蛋白酶抑制剂）重悬细胞。

5、超声破碎细胞25个循环左右。

6、13000rpm离心10min，弃沉淀。

RNA Pulldown1、体外转录（Biotin RNA Labeling Mix、T7 RNA polymerase），大约两小时（至浑浊）。

2、DNase I处理15分钟。

3、RNA纯化（RNeasy Mini Kit）。

4、3ug RNA，90度热击，2min。

冰上，2min。

5、加入RNA structure buffer。

6、转入室温，20min。

7、将折叠好的RNA与蛋白混合，室温孵育1h。

8、每个样中加入60ul洗过的磁珠，室温孵育1h。

9、洗五次。

10、加入SDS buffer，煮沸，进行WB鉴定。

cold lysis buffer：(胞质蛋白提取裂解液) RNA structure buffer：1mM PMSF 10 mM Tris pH 7.020units Rnasin 0.1 M KCl10mM Tris-HCl pH 7.4 10 mM MgCl210mM NaCl3mM MgCl20.1mM DTT0.5% NP40RIP buffer:（胞核蛋白裂解液）nuclear isolation buffer（核提取液）：150 mM KCl 1.28 M sucrose25 mM Tris pH 7.4 40 mM Tris-HCl pH 7.50.5 mM DTT 20 mM MgCl20.5% NP40 4% Triton X-1001 mM PMSFprotease Inhibitor。

胞质蛋白或核蛋白提取方法

胞质蛋白或核蛋白提取方法实验目的从细胞和动物组织制备核蛋白和胞浆蛋白。

实验试剂核蛋白/胞质蛋白提取试剂盒。

实验步骤（一）细胞蛋白提取（1）取5-10×106个细胞，在4℃，500×g条件下离心2-3 min，小心吸取培养基，尽可能吸干，收集细胞。

（2）用冷PBS洗涤细胞2次，每次洗涤后尽可能吸干上清。

（3）每20 μL冷的Buffer A，2 μL蛋白酶抑制剂混合物，高速涡旋振荡15 s，置冰上10 min。

（4）再次高速涡旋振荡5 s，然后在4℃，16000×g条件下离心5 min。

（5）快速将上清吸入另一预冷的干净离心管，即可得到胞浆蛋白，请置于冰上或-80℃冰箱保存备用。

（6）在沉淀中加入200 μL冷的Buffer B，2 μL蛋白酶抑制剂混合物，高速涡旋振荡15 s。

（7）置冰上40 min，每隔10 min高速涡旋振荡15 s。

（8）在4℃，16000×g条件下离心10 min。

（9）快速将上清吸入另一预冷的干净离心管，即可得到核蛋白。

（二）组织蛋白提取（1）取适量组织样本剪碎，加冷PBS，用组织匀浆器匀浆至无明显肉眼可见固体（或用液氮研磨），置冰上5 min，小心将上清吸入另一预冷的干净离心管。

（2）在4℃，500×g条件下离心2-3 min，弃上清。

（3）按照细胞蛋白的提取方法的第三步骤往下操作即可。

（4）上述蛋白提取物请分装后于-80℃冰箱保存备用。

注意事项（1）实验过程中的所有试剂须预冷；所有器具须放-20℃冰箱预冷。

（2）整个过程须保持样品处于低温状态。

细胞核蛋白和细胞浆蛋白的提取方法

蛋白质分离与提取是生命科学研究基础中的基础，分离细胞核蛋白和细胞浆蛋白，不仅可以
用于研究蛋白在细胞内的定位，而且很多时候分离出来的核蛋白可以用于转录调控方面的研究，例如WB，EMSA(也称gel shift)，footprinting，报告基因，酶活性分析等。

Abbkine细胞核蛋白&胞浆蛋白提取试剂盒（KTP3001）
细胞核蛋白&胞浆蛋白提取试剂盒组分：原理：通过细胞浆蛋白抽提试剂，在低渗透压条件下，使细胞充分膨胀，然后破坏细胞膜，释放出细胞浆蛋白，然后通过离心得到细胞核沉淀。

最后通过高盐的细胞核蛋白抽提试剂抽提得到细胞核蛋白。

∙细胞浆蛋白溶液A (CES A)
∙细胞浆蛋白溶液B (CES B)
∙核提取溶液 (NES)
∙DTT (500X)
∙蛋白酶抑制剂 (100X)
∙
另外还有蛋白酶抑制剂套装（Cocktail）
特点：
多功能—适合从新鲜的哺乳动物组织和培养细胞中提取蛋白，提取的蛋白纯度高且保持天
然活性，绝少交叉污染。

快速方便—不到两小时就能纯化出非变性的活性蛋白质。

兼容性好—适用于各种下游检测，包括蛋白质印迹、凝胶转移检测、蛋白质分析、报告基因检测和酶活性检测等。

蛋白质分离提取效果展示：
使用α-tubulin内参抗体（A01080）分别检测胞浆蛋白与核蛋白提取物。

使用Histone H3内参抗体（A01070）分别检测胞浆蛋白与核蛋白提取物。

*C : Cytoplasmic ，胞浆蛋白；N : Nuclear ，核蛋白。

westernblot原理及步骤

westernblot原理及步骤蛋白免疫印迹即Werstern blot，是将印迹技术与抗原-抗体反应的特异性相结合的检测技术，用于分离和检测生物标本中的某一特定蛋白。

其基本原理实混合蛋白质样本通过凝胶电泳分离后，通过特殊虹吸或电场装置印迹至固相介质（NC膜或PVDF 膜）上，将针对待测蛋白的特异性抗体作用于滤膜上，利用抗体上偶联的酶降解底物在滤膜上生成有色沉淀物或化学发光产物，从而显示出待测蛋白的存在及量。

Western blot原理通过电泳区分不同的组分，并转移至固相支持物，通过特异性试剂（抗体）作为探针，对靶物质进行检测，蛋白质的Western印迹技术结合了凝胶电泳的高分辨率和固相免疫测定的特异敏感等多种特点，可检测到低至1～5ng（最低可到10－100pg）中等大小的靶蛋白。

Western blot实验步骤一、样本制备1、样本的来源：细胞培养上清；细胞（胞浆蛋白、胞膜蛋白、胞核蛋白）；组织匀浆2、不同样本有不同的提取方式：蛋白完全裂解液、RIPA、胞核/胞浆3、蛋白的提取：裂解前加入蛋白酶抑制剂、磷酸酶抑制剂使其终浓度为1mM4、蛋白定量：BCA检测法(灵敏度高，操作简单，常用)、Bradford 检测法、Lowry 检测法、UV测量、电泳检测5、样本上样前的处理：蛋白提取液和SDS上样缓冲液（Loading buffer）以一定的比例上样6、蛋白变性：95-100℃变性5分钟（为了能使抗体接触到抗原表位，必须将蛋白的三维结构打开，因此需要将蛋白变性，核蛋白要增加裂解液体积和超声破碎次数，煮样时间延长至10-15min）二、上样与电泳原理：裂解后的蛋白质样本经过高速离心去除不溶物后，再经SDS上样缓冲液95-100℃变性5分钟，使带有强负电荷的SDS与带有弱电荷的蛋白质结合，大量的SDS可掩盖蛋白质本身的电荷量，只显示SDS的负电荷，在pH8.6~pH8.8的Tris-甘氨酸不连续SDS-PAGE（聚丙烯酰胺凝胶）系统中，蛋白质的电泳与自身电荷量无关，只和其分子大小有关，从而将蛋白质按分子量大小顺序分离。

Western_Blot过程步骤详解

做了五个月的Western Blot ，有一点点小心得，给新手点经验．蛋白提取：１．总蛋白提取（胞膜，胞浆，胞核）：组织匀浆后,15000g, 4度, 20分钟后,取上清.Buffer:NP40 750ul, 脱氧胆酸钠0.5克, SDS 0.1克, 加1*PBS 至100ml. 再加入PMSF(7.4mg/ml) 0.1ml. (现用现加)7.4mg/ml PMSP异丙醇溶液: 取A mg PMSF 加A/7.4 ml 异丙醇.工厂-20度储存２．组织膜蛋白提取：所在操作冰上进行（1）取组织，用PBS冲洗干净组织上的血液. 加入10ml Buffer A , 用剪刀尽可能剪碎组织,于冰上充分匀浆。

每次30秒,重复3-5次.（2）离心机1000rpm，4℃离心10min 后，所得上清液转入超速离心管。

(去掉大块组织及结缔组织)（3）100000g，4℃离心1hr, 弃去上清.(此为胞浆蛋白,若只提取胞浆蛋白,可用10000rpm, 4度, 30分钟离心，取上清即可)。

沉淀用适量的Buffer B重悬，4度过夜后，分装至EP管，Eppendorf 台式离心机10000rpm，4℃离心30min。

（4）收集所得上清液即为膜组份。

Buffer A：0.32M 蔗糖，5mM Tris-HCl（PH 7.5），120mM KCl，1mM EDTA, 1mM EGTA, 0.2mM PMSF, 1ug/ml Leupeptin, 1ug/ml Pepstatin A, 1ug/ml Aprotinin。

冰上预冷。

Buffer B 20mM HEPES（PH 7.5），10% 甘油，2% Triton X-100, 1mM EDTA, 1mM EGTA, 0.2mM，PMSF, 1ug/ml Leupeptin, 1ug/ml Pepstatin A, 1ug/ml Aprotinin。

冰上预冷。

所得蛋白分装EP管（每管约50ul），取一管测蛋白浓度，其它放入-70度深冻冰箱保存。

Western Blot概述及步骤

W estern Blot概述及步骤Western Blot概述及步骤Western Blot（WB）是通过聚丙烯酰胺电泳根据分子量大小分离蛋白后转移到杂交膜上，然后通过一抗/二抗复合物对靶蛋白进行特异性检测的方法。

WB进行蛋白质分析最流行和作成熟的技术之一，超过60% 的生命科学工作者使用该方法。

根据凝胶电泳的类型，WB可分为：*还原（变性）WB：最常用的一类，使用SDS-PAGE电泳。

主要是来检测蛋白质的特性、存在与否、蛋白质的同源性以及估计蛋白质的分子量等*非还原（非变性）WB：主要用来分析蛋白质的结构、保持蛋白的活性的。

一般不使用SDS、DTT等变性剂。

成功完成Western Blot检测，必须满足4个条件：*凝胶洗脱：转移期间蛋白质必须从凝胶中洗脱出来，如果蛋白质还截留在凝胶中，将无法在膜上进行分析* 吸附到膜上：在转移过程中蛋白质必须吸附到膜上，如果蛋白不吸附，将无法在膜上进行分析*处理期间仍截留在膜上：在转移后的处理过程中蛋白质必须保持吸附在印迹膜上*处理过程中可接近：被吸附的蛋白质必须能够与检测试剂接触，如果蛋白质被掩盖则无法检测成功进行WB检测，则设置合适正确的对照是必不可少的，只要正确设置了这些对照，即可快速和准确的找到WB的问题所在，并保证实验结果的准确性和特异性！一般需要设置的对照如下：*阳性对照：明确表达检测蛋白的组织或细胞，用于检测抗体的工作效率*阴性对照：明确不表达检测蛋白组织或细胞，用于检测抗体的特异性*二抗对照：不加一抗，用于检测二抗的特异性*内参对照：检测标本的质量和二抗系统*空白对照：不加一抗和二抗；用于检测膜的性质和封闭的效果Western Blot概述及步骤Western Blot（WB）是通过聚丙烯酰胺电泳根据分子量大小分离蛋白后转移到杂交膜上，然后通过一抗/二抗复合物对靶蛋白进行特异性检测的方法。

WB进行蛋白质分析最流行和作成熟的技术之一，超过60% 的生命科学工作者使用该方法。

完整版膜蛋白提取

1别离组织膜蛋白的方法1、取组织,参加10ml Buffer A 于冰上充分匀浆.2、J6-HC离心机800rpm , 4 c离心10min后,所得上清液转入超速离心管.3、100000g , 4c离心1hr.弃去上清,沉淀用适量的Buffer B重悬,冰上孵育2hr后分装至EP 管, Eppendorf 台式离心机10000rpm , 4 c离心30min.4、收集所得上清液即为膜组份.Buffer A : 0.32M 蔗糖,5mM Tris-HCl (PH 7.5), 120mM KCl , 1mM EDTA,1mM EDTA,0.2mM PMSF, 1ug/ml Leupeptin, 1ug/ml Pepstatin A, 1ug/ml Aprotinin .冰上预冷.Buffer B : 20mM HEPES (PH 7.5 ) , 10% 甘油,2% Triton X-100, 1mM EDTA, 1mM EDTA,0.2mM PMSF, 1ug/ml Leupeptin, 1ug/ml Pepstatin A, 1ug/ml Aprotinin .冰上预冷.2取约0.1g肝组织,参加2ml粉碎缓冲液,冰浴中超声粉碎,每次20秒,间隔30秒,共3 次,4° c 105xg条件下离心2小时,上清液为胞浆蛋白,沉淀局部参加1ml胞膜蛋白提取液,超声粉碎,4.c 105xg条件下离心2小时,上清液为胞膜蛋白.样品蛋白含量测定采用酚试剂法.3我们实验室提取膜蛋白的方法如下：1.将细胞种于T75或T175的培养瓶中培养数天,细胞铺满瓶底后,吸去培养液.将PBS/EDTA 溶液(NaCl:0.1M,NaH2PO4:0.01M,EDTA:0.04%) 参加量以覆盖细胞为止,置于培养箱或在超净台内消化3〜5分钟,如仍未脱落瓶底,用吸管吹打,使细胞完全脱落.2.收集细胞悬液于10毫升或50毫升的离心管中,1000rpm离心10分钟,去上清液.3. 按2.5毫升(T75 ) /每瓶或5毫升(T175/每瓶参加冰冷的匀浆液(HEPES:50mM,PH7.4,MgCl2:3mM,EGTA:1mM )于离心管中,将溶液和沉淀转移到匀浆器中,匀浆.4.将匀浆液转入离心管中, 参加适量的Tris - HCl (50mM, PH7.4)4oC, 18000rpm (40000g) 10分钟.在沉淀中参加同前量的匀浆液,再匀浆,匀浆后参加适量的tris-HCl buffer. 4度18000rpm(40000g)离心,共离心三次.5.在最后一次离心彳#到沉淀中按250微升每瓶(T75)或500微升每瓶(T175)参加tris-HClbuffer,匀浆,取50微升匀浆液测量蛋白浓度.6.按实验要求,将匀浆分装于1毫升的Eppendoff管中,其于-80oC冰箱中待用.主要基于膜蛋白分子量较大,在40000g时易沉降来别离.做膜蛋白的免疫荧光, 可以用荧光抗体染色, 然后用荧光显微镜或共聚焦显微镜观察,具体的protocol可以找到,就不多说了.需要注意的是,要弄清楚你所使用的一抗结合部位是在膜蛋白的胞外结构域还是胞内结构域,如果是胞外,可以直接染色；如果在胞内,那么需要用无水甲醇在-20度处理10min,使细胞膜通透,然后再用抗体孵育,这样抗体才能进入细胞内与蛋白结合. 一般对膜蛋白的提取都是采用梯度离心或者高速离心的方法别离,可是我们现有的离心机都无法到达所需要的转速,所以我们试着采用分布溶解分布沉淀的方法.1)预冷的pbs洗去组织血液,除去结缔组织、脂肪.2) 4 C剪碎,加bufferA玻璃匀浆器匀浆至无大块状物,10 C超声波10min ,重悬,再破碎5—10min.3)12000rpm 离心10min,沉淀用bufferB 重悬,20 C超声波10min.4)12000rpm 离心10min,沉淀用bufferC 抽提.5)12000rpm离心10min,所得上清含有9%的膜蛋白.6)12000rpm离心10min,沉淀加bufferD沸水煮5min , 12000rpm离心10min,上清含有1%的膜蛋白. bufferA: 40mM Tris basebufferB: 8M urea ,100mM DTT, 40mM Tris basebufferC: 6-7M urea, 0.2mmol/L PMSF,40mM Tris basebufferD: 1% SDS, 50mM DTT,25%Glycerol,in 0.4M Tris-HCl pH8.8我们做的是动物组织的膜蛋白,提出来电泳条带还可以,只是我们没有专一膜蛋白抗体来检测提出来的是否是膜蛋白.但是这个方法是可行的5三、蛋白提取操作步骤I实体组织蛋白的提取1、组织样本(200〜300mg)尽量去除脂肪组织和结缔组织等非目的组织,于冰上剪碎；2、组织样本中参加1mL Lysis Buffer (注：使用前,每mL Lysis Buffer参加1科L蛋白酶抑制剂和1科L 1M DTT ),置玻璃均浆器冰上均质30〜50次(或超声破碎细胞, 每次30 S ,3〜4次,每次间隔1 min),置于冰上冷却.均质或超声破碎细胞后应镜检,细胞破碎率不小于90%;3、将均浆液转移至冷的离心管中,于4C, 3000 rpm离心10 min,弃沉淀；4、取上清转移至新冷离心管中,于4 C , 14 000 rpm离心30 min ,所得上清转至新管中, 即为胞浆蛋白,分装冷冻保存；5、取沉淀,参加1mL冷的抽提Buffer,涡旋振荡混匀后,4c放置10〜15min；【注：因抽提Buffer在室温时会分层,请务必于4c混匀后参加】6、4 ℃ , 3000rpm离心5min ,取上清转移至新管(注意勿将沉淀带入上清),进行下步提取;7、置于37 c水浴10min；8、室温,13 000rpm离心5min ,样品分成上层和下层〔含膜蛋白〕；【注：建议使用进口透明性较好的微量离心管,可见下层为含膜蛋白的有机相. 上下两层因均为透明,只在交界处有一折光线,需仔细观察才可见到.或室温静置30分钟〜1小时亦可见分层.以下亦同.】9、取下层,参加500d L冰冷灭菌水,4c放置5min； 10、置于37 c水浴10min； 11、室温,13 000rpm离心5min ,样品分成上层和下层〔含膜蛋白〕；12、取下层,参加500d L冰冷灭菌水,4c放置5min；13、置于37 c水浴10min；14、室温,13 000rpm离心5min ,样品分成上层和下层〔含膜蛋白〕；15、最终得到的下层即为膜蛋白提取物,BCA法测定蛋白含量〔因残留有机相可能影响测定结果,此含量为相对参考值〕,分装冷冻保存.6用RIPA强配方,把脱氧胆酸钠浓度调整至1.0%,同时参加NP-40和Triton X-100 ,浓度均为1%.我刚做了一个7次跨膜蛋白,LHR的WB.7提取总蛋白的方法不能用于膜蛋白的提取, 提供一个常用的方法：先别离膜,在提取膜蛋白. 这类方法在园子里有不少介绍. 我们实验室曾经采用蔗糖梯度超速离心别离膜,据说效果还可以.您可以试一下.呵呵——8细胞破碎后,先低速离心,除去未破碎的细胞和大的细胞碎片.保存上清,超速离心,可获得细胞膜.然后用detergent溶液萃取,就可以得到膜蛋白溶液了.9我有新的问题了...哪位仁兄有好的提取细胞膜蛋白的裂解液配方...我的膜蛋白总提不出来.我的细胞是HEPG2;目的蛋白是LDL受体；我的配方是这样的：4%CHAPS , 8 mol/L urea, 0.1 mmol/L leupeptin, and 1.5 mmol/L phenylmethylsulfonyl fluoride但是总提不出来....急！ ! ! ! !呵呵,CHAPS提取膜蛋白水平较差,尝试参加1%ASB-14 ,或者参加1 % Triton X-100,与CHAPS联合抽提.另外最好参加2M thiourea.祝好运1.6% Triton X-100, 5 mol/L urea, 0.1 mmol/L leupeptin, and 1.5 mmol/L phenylmethylsulfonyl fluoride ;2M thiourea; thiourea很贵吗我现在没有,又要急着用,能不能不用thiourea??thiourea不是很贵,merck250g才300多rmb.电泳时可以考虑用ASB-14 , sb3-10.没有的话,提取最好加点NP-40, 2M thiourea还是要的,要是有TBP就更好了.NP lysis buffer.NP 配方,stock solution 20ml (50mM Tris-HCL (PH8.0), 5mMEDTA, 0.05%NaN3, 0.14M NaCL, 100mM NaF), 1% Nonidet P40, 0.2TIU/ml aprotinin, 1.5uM pepstatin A, 20mM Iodoacetamide.NP配好后分装,-80度保存.用之前,参加NaV和PMSF.混匀后立即置于冰上.10如果你研究的蛋白表达比拟丰富没有必要提取膜蛋白,直接用RIPA裂解液裂解后离心取可溶性蛋白变性做WB就可以了；如果你蛋白的含量低或抗体特异性很差的话,你应该用试剂盒或超速离心提取膜蛋白,可以起到富集和纯化的作用,使你更容易得到好的结果！11RAPI的裂解液只能说是强的非变性裂解液,而算不上是强的变性裂解液.提取膜蛋白一般都在变性条件下才可以.所以,你应该改用其他更适合的强的变性裂解液,如含SB3-10、DM、ASB-14等膜助溶剂,或者SDS-Bolied loading bufffer,2-D 裂解液7M thiourea+2M urea 也可以12组织膜蛋白提取：所在操作冰上进行(1)取组织,用PBS冲洗干净组织上的血液.参加10ml Buffer A ,用剪刀尽可能剪碎组织,于冰上充分匀浆.每次30秒,重复3-5次.(2)离心机1000rpm , 4 C离心10min后,所得上清液转入超速离心管.(去掉大块组织及结缔组织)(3)100000g, 4c离心1hr,弃去上清.(此为胞浆蛋白,假设只提取胞浆蛋白,可用10000rpm, 4 度,30分钟离心,取上清即可).沉淀用适量的Buffer B重悬,4度过夜后,分装至EP管, Eppendorf 台式离心机10000rpm, 4 C 离心30min.(4)收集所得上清液即为膜组份.Buffer A :0.32M 蔗糖,5mM Tris-HCl (PH 7.5), 120mM KCl , 1mM EDTA, 1mM EGTA,0.2mM PMSF, 1ug/ml Leupeptin, 1ug/ml Pepstatin A, 1ug/ml Aprotinin .冰上预冷.Buffer B 20mM HEPES (PH 7.5), 10% 甘油,2% Triton X-100, 1mM EDTA, 1mM EGTA, 0.2mM , PMSF, 1ug/ml Leupeptin, 1ug/ml Pepstatin A, 1ug/ml Aprotinin .冰上预冷.所得蛋白分装EP管(每管约50ul),取一管测蛋白浓度,其它放入-70度深冻冰箱保存.如果要定量的话,最好能立即根据浓度,参加上样缓冲,煮沸, 4度保存.反复冻融蛋白会降解,浓度不准.13我用来抽提大鼠脑组织细胞膜蛋白方法：取两只大鼠的整个脑组织,参加10ml Buffer A 于冰上充分匀浆.J6-HC离心机800rpm , 4 C离心10min后,所得上清液转入超速离心管.100000g, 4c离心1hr.弃去上清,沉淀用适量的Buffer B重悬,冰上孵育2hr后分装至EP管,Eppendorf台式离心机10000rpm, 4 C 离心30min.所得上清液即为膜组份.Buffer A : 0.32M 蔗糖,5mM Tris-HCl 〔PH 7.5〕,120mM KCl , 1mM EDTA,1mM EDTA, 0.2mMPMSF, 1ug/ml Leupeptin, 1ug/ml Pepstatin A, 1ug/ml Aprotinin .冰上预冷.Buffer B ： 20mM HEPES 〔PH 7.5〕, 10%甘油,2% Triton X-100, 1mM EDTA, 1mM EDTA, 0.2mM PMSF, 1ug/ml Leupeptin, 1ug/ml Pepstatin A, 1ug/ml Aprotinin .冰上预冷.CHAPS〔一种离子去污剂〕是提取膜蛋白的常用试剂一般用10mMol的浓度即可,你可以试试加到你的Buffer中,看效果如何.不过此药品很贵！lysis buffer的选择依赖于你所研究蛋白质的位置和性质：1〕细胞浆蛋白〔可溶性〕：Tris Buffer2〕细胞浆蛋白〔结合到细胞骨架〕：Tris-Triton buffer3〕膜结合蛋白：Np-40或RIPA4〕核蛋白：RIPA5〕线粒体蛋白：特殊的抽提裂解液6〕全细胞蛋白：Np-40 or RIPAWestern blotAdipose tissue membrane protein was extracted from approx. 20mg of adipose tissue. PAGE was performed according to Laemmli [ 8]. A portion of 2 g of adipose t issue membrane protein was applied per lane. In addition, 10 q of mononuclear cell membrane protein 〔corresponding to 1.7 106 mononuclear cells〕 was applied and used as a positive control for verification of blotting, incubation and detection. Tank blotting to nitrocellulose was performed according to standard protocols, with transfer for 3h at 70V and 15 C.°The blots were incubated with 1 闵/ml rabbit anti-〔human b2-adrenoceptor〕 IgG 〔Santa Cruz Biotechnology Inc.〕, and were then re-incubated with alkaline phosphatase-labelled goat anti-rabbit antibody. Detection was performed using DDAO [9H-(1,3-dichloro-9,9-dimethylacridin-2-one-7-yl)] phosphate (Pro-Q Western Blot Stain Kit; Molecular Probes Inc.) on a Fujifilm FLA-3000 instrument.Quantification of b2-adrenoceptor protein was performed by determining the fluorescence intensity of b2-adrenoceptor-antibody-immunoreactive bands. The concentration of b2-adrenoceptor protein is expressed as the intensity of the immunoreactive bands of the tissue samples in relation to the intensity of the immunoreactive bands of the mononuclear cell membrane protein internal standard. Like others before us trying to isolate the b2-adrenoceptor [9], we observed several immunoreactive bands on our Western blots ( Figure 1). On all blots we found a single major band at 57kDa and several smaller immunoreactive bands (38-52kDa). Theb2-adrenoceptor is known to have a molecular mass of 64kDa and to be very fragile, so the immunoreactive bands on our blots must represent proteolytic degradation products and/or secondarily modified b2-adrenoceptor. When trying toquantify the receptor it is therefore uncertain whether to include all visible bands [total band area (T)] or to include only the single major band (S). We have done both. Figure 1 shows the area included in determining the intensity of the single major band and total band area intensity.All blots were loaded with the same amount of membrane protein per well, but since we wished to determine the level of protein expression in relation to individual cells, the concentration is expressed as intensity of b2-adrenoceptor protein per ng of DNA. The coefficient of variation based on 13 double determinations was 28% for total band area determinations and 29% for single major band determinations14凯基膜蛋白提取试剂盒凯基膜蛋白和胞浆蛋白提取试剂盒一、描述：本试剂盒提供独特的组份提取细胞及组织中的膜蛋白.其原理是裂解细胞后,先离心别离出质膜粗提物,再利用特殊的抽提Buffer,选择性地别离提取膜蛋白,抽提Buffer含一种特殊的去污剂,在4c时所有的蛋白质均可都溶于抽提Buffer,但在37c时,抽提Buffer分为水相和去污相；此时亲水性蛋白溶于水相,疏水的膜蛋白溶于去污剂相中,根楣该性质别离出膜蛋白.产物不仅含细胞膜蛋白,也含胞器质膜蛋白.提取方法简单,可靠, 快速.获得的膜蛋白纯度高,可用于PAGE电泳、Western Blot、免疫共沉淀等后续研究. 二、试剂盒组份三、蛋白提取操作步骤I实体组织蛋白的提取1、组织样本〔200〜300mg〕尽量去除脂肪组织和结缔组织等非目的组织,于冰上剪碎；2、组织样本中参加1mL Lysis Buffer 〔注：使用前,每mL Lysis Buffer参加1科L蛋白酶抑制剂和1 ^L 1M DTT 〕,置玻璃均浆器冰上均质30〜50次〔或超声破碎细胞,每次30 S ,3〜4次,每次间隔1 min〕,置于冰上冷却.均质或超声破碎细胞后应镜检,细胞破碎率不小于90%;3、将均浆液转移至冷的离心管中,于4C, 3000 rpm离心10 min,弃沉淀；4、取上清转移至新冷离心管中,于 4 C , 14 000 rpm离心30 min ,所得上清转至新管中, 即为胞浆蛋白,分装冷冻保存；5、取沉淀,参加1mL冷的抽提Buffer,涡旋振荡混匀后,4c放置10〜15min；【注：因抽提Buffer在室温时会分层,请务必于4c混匀后参加】6、4 ℃ , 3000rpm离心5min ,取上清转移至新管〔注意勿将沉淀带入上清〕,进行下步提取；7、置于37 c水浴10min；8、室温,13 000rpm离心5min ,样品分成上层和下层〔含膜蛋白〕；【注：建议使用进口透明性较好的微量离心管,可见下层为含膜蛋白的有机相. 上下两层因均为透明,只在交界处有一折光线,需仔细观察才可见到.或室温静置30分钟〜1小时亦可见分层.以下亦同.】9、取下层,参加500d L冰冷灭菌水,4c放置5min；10、置于37 c水浴10min；11、室温,13 000rpm离心5min ,样品分成上层和下层〔含膜蛋白〕；12、取下层,参加500d L冰冷灭菌水,4c放置5min；13、置于37 c水浴10min；14、室温,13 000rpm离心5min ,样品分成上层和下层〔含膜蛋白〕；15、最终得到的下层即为膜蛋白提取物,BCA法测定蛋白含量〔因残留有机相可能影响测定结果,此含量为相对参考值〕,分装冷冻保存.四、SDS PAGE电泳操作步骤1、进彳T PAGE电泳前,取该提取物,每100 dL膜蛋白提取物,参加约300 dL的溶解Buffer 和约100 dL三氯乙酸〔TCA〕试剂, 混匀后置冰上20〜30 min后,13 000rpm ,离心15 min ,尽可能除去上清；2、沉淀参加1mL丙酮,室温静置10min后,13 000rpm离心15 min；3、弃上清,沉淀真空旋干或置冰上枯燥约10 min 〔敞开离心管盖〕,参加适当体积的LoadingBuffer 〔使用前每100 ^L Loading Buffer参加2〜5dL疏基乙醇〕溶解,彻底分散〔枪头反复吹吸或剧烈涡旋〕；【注：参加Loading Buffer后如有局部难溶物,可取上清继续上样；如参加Loading Buffer 后澳酚蓝转呈黄色,此为少量TCA残留所致,不影响电泳结果.请参照Marker标准.】4、上样进行SDS PAGE电泳.五、考前须知：1、所有的试剂及器具均需预冷后使用.细胞或组织量需到达要求.2、抽提Buffer 4 C时,为混悬状态,请于此温度下混匀后吸取参加粗提物中.3、室温25c〜37c时,抽提Buffer需静置30分钟以上可看到分上下两层,其中约9/10 至4/5为上层水相,下层只占1/10至1/5为有机相.4、因产品采用不透明的包装瓶,因此无法观察到上述分层现象,可将该BUFFER倒入玻璃烧杯或试管中静置30分钟〜1小时可见分层.5、TCA试剂具强腐蚀性,操作时请带适宜的手套并注意防护.六、储存蛋白酶抑制剂-200C, Loading Buffer室温保存,其余40C,保存一年。

Western Blotting(半干转) 超级详细步骤

Western Blotting Analysis Guide（半干转）Western blotting (半干转)可分为以下9个步骤：一、蛋白的提取A．总蛋白提取1. 将收集的细胞或组织(约0.1 g)从-80°C冰箱取出，按1:10 (w:v)加入冰浴的蛋白裂解液(RIPA)；并加入1/10体积的蛋白酶抑制剂（PMSF）2. 用Dounce 手动匀浆器或电动匀浆器，匀浆细胞或组织（注意：全程冰上操作，每个样品用Dounce 上下抽动相同的次数，电动匀浆器匀浆相同的转速及时间）3. 冰上静置20 min 后，12000 rpm 离心，4 °C，15 min，取上清。

B．核蛋白提取1. 称取100 mg 肝脏冰冻组织置于Dounce 手动匀浆器，加入1 mL 冰浴的核蛋白裂解液A，上下抽动5下（注意：全程冰上操作，不同组织上下抽动需摸条件，匀浆后能看到些许小组织块）2. 将匀浆液倒入1.5 mL 离心管，瞬时离心30 s3. 上清倒入另一1.5 mL 离心管，冰浴5 min4. 3000 rpm 离心，4 °C，10 min，上清倒入另一1.5 mL 离心管收集（此为胞浆蛋白）5. 沉淀加入50 μL 核蛋白裂解液B 吹打，冰浴20 min6. 12000 rpm 离心，4 °C，20 min，将上清吸入0.5 mL 离心管收集（此为核蛋白）。

二、蛋白浓度的测定在碱性条件下，BCA 与蛋白质结合时，蛋白质将Cu2+还原为Cu+，一个Cu+螯合二个BCA 分子，工作试剂由原来的苹果绿形成紫色复合物，最大光吸收强度与蛋白质浓度成正比。

1．BCA标准品和样品的准备：（BCA标准品为5mg/mL）配制1mg/mL的标准品：取10 μL原标准品+ 40 μL PBS缓冲液混匀，浓度为1mg/mL 配制0.25 mg/mL的标准品：取5 μL上述1mg/mL的标准品+ 15 μL PBS缓冲液混匀，浓度为0.25 mg/mL样品用水以1– 5倍稀释，并且将蛋白裂解液用PBS缓冲液按相同的比例稀释作为样品的空白对照（建议样品稀释2倍，不同组织使用不同稀释倍数）。