免疫组化技术课件
免疫组化 ppt课件
荧光显微镜或电子显微镜观察。
抗体的标记
为了使抗原-抗体可见,必须将抗体标记, 利用标记物与其他物质的反应将阳性结果放大, 并转换成可见的荧光或呈现出颜色。
免疫组化常用标记物
① 荧光素:最常用的是异硫一氰酸荧光素(FITC)呈绿色荧光;四乙基罗达明(rho—damine RB200) -橙红色荧光。
1.取材:从动物或者患者取下组织材料。 2.固定:将所需要的材料进行固定,使得组织内蛋白质迅速凝 固液(甲醛),细胞内结构和成分不再发生改变。 3.脱水:固定后的组织内进行脱水,以便石蜡的浸入。脱水用 梯度酒精进行脱水。(自动脱水机) 4.浸蜡与包埋:组织放置刚过熔点的石蜡中,然后进行包埋, 将透明后浸了蜡的组织块放到盛有熔化石蜡的模块中,并使之 凝固成蜡块。(包埋机) 5.切片与贴片:( 组织切片机) (1)切片 (2)展片 (3)贴片
② 酶:辣根过氧化物酶(HRP)、碱性磷酸酶(AP)。 ③ 生物素:(Biotin) ④铁蛋白金等:主要应用于免疫电镜。 其他:如同位素(因涉及污染和防护难一般不用)
染色方法
1.直接法
用标记物(荧光素,酶等)直接标记在一抗上,标记抗体与抗原 结合。在通过显色或者荧光激发后在显微镜下观察;
2.间接法
免疫组化染色(石蜡切片)
1.烤片 65℃ 1-2h 2.常规二甲苯脱蜡,和梯度酒精水化 3.灭活内源性过氧化物酶 4.抗原修复 5.封闭 6.一抗过夜 7.加入有标记的二抗 8.显色 9.苏木素复染 10.常规梯度酒精脱水,透明,干燥 ,封片。
免疫组化应用
➢在临床上的应用 ➢在科研中的应用
在临床上的应用:
荧光素,酶标记在二抗上(二抗:抗产生一抗动物的 IgG抗体)。
3.非标记Ab桥法
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蛋白-抗体结合体
抗原
标本:组织标本和细胞标本
(1).组织标本:石蜡切片、冰冻切片、振动 切片、塑料切片、超薄切片、碳蜡切片等;
(2).细胞标本:组织印片、细胞爬片和细胞 涂片等。
石蜡切片应用:其优点是组织结构保存良好, 在病理和回顾性研究中有较大的实用价值, 能切连续薄片,组织结构清晰,抗原定位准 确。缺点在于制作时间过长,步骤繁多,易 出错。
(6).加Ⅰ抗:弃去血清,加Ⅰ抗,4℃过夜或室温下5分钟— 1小时;
(7).复温:室温复温1小时,回收Ⅰ抗,PBS液洗涤3次X5分 钟;
(5).透明化:纯酒精不能与石蜡相溶,还需用能与酒精和石蜡相溶的媒 浸液,替换出组织内的酒精,这种媒浸液称为透明剂。组织先经纯酒精 和透明剂各半的混合液浸渍1~2小时,再转入纯透明剂中浸渍。目的: 石蜡易于浸入组织; (6).浸蜡与包埋:用石蜡取代透明剂,使石蜡浸入组织而起支持作用。 通常先把组织材料块放在熔化的石蜡和二甲苯的等量混合液浸渍1~2小 时,再先后移入2个熔化的石蜡液中浸渍3小时左右,浸蜡应在高于石蜡 熔点3℃左右的温箱中进行,以利石蜡浸入组织内。通常石蜡采用熔点为 56~58℃或60~62℃两种。 (7).切片:包埋好的蜡块用刀片修成规整的四棱台,切片机切片,切片厚 度为4~7um。 (8).贴片与烤片:用粘附剂-蛋白甘油将展平的蜡片牢附于载玻片。首先 在洁净的载玻片上涂抹薄层蛋白甘油,再将一定长度蜡带(连续切片) 或用刀片断开成单个蜡片于温水(45℃左右)中展平后,捞至玻片上铺 正,或直接滴两滴蒸馏水于载玻片上,再把蜡片放于水滴上,略加温使 蜡片铺展,最后用滤纸吸除多余水分,将载玻片放入45℃温箱中干燥, 也可在37℃温箱中干燥,但需适当延长时间。
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未封闭内源性过氧化物酶
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胃固有膜腺体
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3.假阴性反应:
⑴ 组织固定不当或固定时间过长; ⑵ 抗体效价过低或久置失效; ⑶ 组织中抗原被粘稠基质或分泌物阻隔; ⑷ DAB或H2O2的浓度不当。
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五、免疫组织化学在肿瘤诊断和鉴别诊断 中的应用
(一)在肿瘤诊断中应用免疫组织化学染色的原因: 1在常规病理活检中,通常有5~10%的疑难病例不能明确诊断。 2形态结构相似的肿瘤可为不同的组织来源(如未分化癌和恶性
在病理学外检工作中可用于对不同来源,HE难以诊断的的肿瘤进行确诊 和鉴别诊断。
其基本原理是应用抗原与抗体接触后可形成“抗原-抗体复合物”的化学 反应,以检测组织或细胞内抗原(或抗体)的技术。
2
Immunohistochemistry
Esophageal carcinoma
E-cad + in membrane Wu Ming-Yao et al.
图8
图9
图10 免疫组化结果: 肿瘤细胞Vimentin(+)
图11免疫组化结果:
肿瘤细胞(CD117+)
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抗原修复
从应用病理技术观点来看,福尔马林组织标本固定 术就像一把双刃剑:
福尔马林(10%甲醛溶液)是一经典的常规病理 诊断用组织样本固定剂,然而缺点是其对免疫组 织化学及原位杂交信号检测是有损害作用。
⑵ 背景染色低(相对); ⑶ 双PAP敏感性更高,但背景相对较重。
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(四)ABC法: 1981年美籍华人许世明发明了ABC法
Vector
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双桥PAP法原理
• 该法是PAP法的改良法,通过两次连接桥 抗体和PAP,在抗原抗体复合物上结合比 PAP法更多的酶分子,形成Ag-Ab1-Ab2PAP-Ab2-PAP复合物,最后通过PAP复合 物中的HRP催化底物显色。
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双桥PAP法技术要点
• (1)、(2)、(3)、(4)和(5)同 PAP法。
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PAP法的原理
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PAP法技术要点
• (1)、(2)、(3)和(4)同间接法。 • (5)加PAP复合物,温育,使形成Ag-
Ab1-Ab2-PAP复合物,洗涤. • (6)加底物,光镜下观察显色结果。
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PAP法的方法评价
• PAP法未经化学交联,故避免了抗体和酶活性 的降低,并省去酶标记抗体需纯化的繁琐过程。 PAP是由2个抗酶抗体和3个过氧化物酶分子组 成的复合物,稳定性好,酶分子不易在染色冲 洗过程中脱落。PAP中不存在游离的免疫球蛋 白,不易产生非特异性染色,因而特异性、敏 感性和重复性良好,比直接染色法、间接染色 法和酶桥法更敏感。缺点是PAP复合物制备过 程较复杂。
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免疫组化技术要点
• 标本的制作 • 抗体的选择 • 温育 • 改善标本的透过性 • 设立对照试验 • 免疫组化的结果判断
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标本的制作
• 标本的类型
1.组织切片:①冷冻切片;②石蜡切片 2.印片 3.涂片
• 标本的固定 • 标本的保存 • 酶消化处理
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设立对照试验
• (6)加Ab2,温育,形成Ag-Ab1-Ab2PAP-Ab2复合物,洗涤。
免疫组化技术实用篇教学课件
2023免疫组化技术实用篇教学课件pptcontents •免疫组化技术简介•免疫组化技术实验流程•免疫组化技术实验数据分析和解读•免疫组化技术实验优化和提升•免疫组化技术前沿进展和发展趋势目录01免疫组化技术简介免疫组化技术是一种用于研究生物组织中蛋白质表达和分布的生物学技术。
定义免疫组化技术分为直接法和间接法两大类,其中间接法应用最为广泛。
分类定义与分类直接法利用特异性抗体直接与组织切片中的目标抗原进行反应,形成抗原-抗体复合物,再用标记物进行显色,以检测抗原的存在。
间接法利用特异性抗体与组织切片中的目标抗原进行反应,形成抗原-抗体复合物,再用标记物进行显色,以检测抗原的存在。
免疫组化技术的原理1免疫组化技术的应用23免疫组化技术可用于疾病诊断,如癌症、自身免疫性疾病等。
疾病诊断免疫组化技术可用于科学研究,如在细胞和分子水平上研究生物大分子的相互作用和功能。
科学研究免疫组化技术可用于药物研发,如检测药物在组织中的分布和作用。
药物研发02免疫组化技术实验流程包括组织样本、抗体、抗原等;实验准备实验材料准备如显微镜、染色机等;实验仪器准备熟悉实验操作流程和注意事项。
实验操作准备切片制作将组织样本制作成切片,并进行脱蜡、水化等处理;加一抗将抗体稀释后加入切片中,孵育适宜时间;抗原修复使用抗原修复液对切片进行修复,以暴露出抗原;加二抗将标记有荧光素的二抗加入切片中,孵育适宜时间;阻断加入阻断液,以抑制内源性过氧化物酶活性;观察与拍照用荧光显微镜观察染色结果,并进行拍照记录。
实验步骤及操作流程实验注意事项实验前务必熟悉操作流程和注意事项;对于不同的组织类型和抗体,应根据具体情况调整实验条件和操作步骤;实验过程中要注意安全,避免受伤和感染;在实验过程中要保持实验室的清洁和整洁,遵守实验室规范。
03免疫组化技术实验数据分析和解读03定量PCR使用荧光定量PCR技术,检测样本中特定基因的表达水平,分析免疫组化染色的结果。
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免疫组化的作用
组织或细胞中凡是能作为抗原或半抗原, 如蛋白质、多肽、氨基酸、多糖、磷脂、 受体、酶、激素、核酸及病原体等都可 用相应的特异性抗体进检测。
7、SP反应 • 加入SP后放入37度烤箱中30 min。 • 用PBS洗5次×5 min; 8、显色 • 加入DAB(快速滴入,观察染色情况,倒掉染 液),显色时间控制在约5 min(3~10 min), 由镜下观察颜色控制时间。0.05%DAB(避光) (1:20储备液):5 ul 20×DAB+0.1 ul 30% H2O2+95 ul PBS。1%DAB储备液的配制:50mg DAB+5ml 0.05 mol/L PBS充分溶解,-20 ℃保 存。
2、细胞通透、封闭内源性过氧化物酶 • 用封闭通透液浸润切片30 min(RT避 光)。配法是用预热40 ml PBS加120ul TritonX-100(曲拉通X-100又称清洁剂) 加热几分钟后,临用前加400 ul 30% H2O2。 • PBS溶液洗3次×3 min。 3、抗原修复暴露抗原决定族 • 切片放入0.01 M柠檬酸钠缓冲溶液 (pH6.0)后,在微波炉里高火4 min至 沸腾后,再加热约6 min×4次,每次间 隔补足液体,防止干片
4、封闭非特异性蛋白 • PBS溶液洗3次×3 min; • 将切片取出,周围水分用滤纸吸干,用组化笔在组织周 围画上圈,在圆圈内组织滴入5%羊血清(与二抗来源 一致)后放入湿盒中,室温30(10~30)min; 5、一抗孵育 • 甩去切片上的羊血清,用滤纸擦干组织周围残留血清, 直接加入已稀释的一抗(1:250、500、1000)后, 放入湿盒中室温1小时,然后4度过夜,从冰箱中取出 需37 ℃复温45 min。 6、二抗孵育 • 将一抗倒掉并用PBS洗5 min×5次; • 用滤纸将圆圈周围的水吸去,加入已稀释的二抗后放 入37 ℃恒温烤箱中30 min(回收)。 • 用PBS洗5次×5 min;
《免疫组化技术》课件
高灵敏度、高特异性、定位准确、可 定量分析等。
免疫组化技术的应用领域
肿瘤诊断与鉴别诊断
检测肿瘤标志物,辅助 临床诊断。
病理学研究
探索疾病发生、发展机 制,为新药研发提供依 据。
药物作用机制研究
研究药物作用靶点,评 估治疗效果。
生物医学研究
用于基因表达、蛋白质 定位等研究。
免疫组化技术的发展历程
结果解读的注意事项
排除非特异性染色
非特异性染色可能导致假阳性或假阴性结果, 需通过设立对照等方式排除。
结合临床资料
结合患者的临床资料,如病史、症状、体征等 ,综合分析免疫组化结果的临床意义。
参考相关文献和指南
查阅相关文献和指南,了解目标蛋白的表达与疾病的关系,提高结果解读的准 确性。
05 免疫组化技术的优缺点
抗原的修复与暴露
去除抗原的掩蔽作用,使 抗原暴露出来。
使用蛋白酶、抗原提取液 等。
热修复、酸修复等。
暴露方法 修复方法
目的
抗体孵育与洗涤
抗体选择
单克隆抗体、多克隆抗体等 。
孵育条件
温度、时间、抗体浓度等。
洗涤目的
去除未结合的抗体,减少非 特异性结合。
显色反应与复染
显色反应
酶促反应、化学反应等。
提高特异性
开发更特异的抗体或采用多重免疫组化技术 ,降低交叉反应的发生率。
增强结果稳定性
通过标准化实验操作和质控,确保实验结果 的稳定性和可靠性。
06 免疫组化技术的应用案例
肿瘤诊断与鉴别诊断
肿瘤诊断
通过免疫组化技术检测肿瘤组织中的 特异性抗原,有助于确定肿瘤的性质 和来源,为临床提供准确的诊断依据 。
19世纪末
免疫组化技术课件课件精选课件
色
色
阳性细胞的染色特征:
①阳性细胞的染色分布有三种: 胞浆;细胞核;细胞膜表面
②阳性细胞分布:灶性;弥漫性
③染色强度不一
④切片边缘,刀痕or组织折叠,坏死,挤压区, 胶原结缔组织等常表现为相同的阳性染色强度。
对于阳性结果的定量判断: -,+,++,+++等分级和计数统计
第二十六页,本课件共有45页
第三十七页,本课件共有45页
免疫组化用于病理诊断及鉴别诊断原则: ①免疫组化用于病理诊断及鉴别诊断,必须以HE染色的
形态学为基础,免疫组化只能作为辅助手段。不能把 免疫组化染色作为诊断的“金标准”。
②免疫组化对良、恶性的判断仅供参考。
③免疫组化用于判断组织起源,分型,预后的估计。
④免疫组化染色不好或出现相互矛盾的结果时,以形态学为 准。
第四页,本课件共有45页
显示物: ➢酶标反应:
①碱性磷酸酶(Alkatine phasphotase,AP)
AP与不同的底物(萘酚As-Mx、快蓝、快红)作用, 可形成不同颜色的终产物。用新品红(New fuchsine) 显色,可形成不溶于有机溶剂的红色沉淀,不褪色。
②辣根过氧化酶(Horseradise peroaidase,) HRP:底物为DAB-四盐酸二氨基联苯胺,产生棕色 沉淀,不溶于有机溶剂,不褪色。
前列腺特异性抗原(PSA): 甲胎蛋白(AFP):
甲状腺球蛋白(Tg):
第三十页,本课件共有45页
软组织标记
软组织:全身各处的纤维结缔组织,脂肪组织,
肌肉组织,滑膜组织及血管淋巴组织。
肌动蛋白(Actin):分布于所有的肌型细胞中
肌红蛋白(Myoglobin):是骨骼肌肌浆中的一种
免疫组化课件PPT课件
李
三 华
特点
优点
特异性强,定位准;
结果直观;
形态学改变与功能和代谢相结合;
组织标本可用石蜡保存进性回顾性研究。
缺点
步骤多,影响实验成败的因素多;
以定位、定性和半定量研究为主,绝对定量
分析尚需标准化。
第四页,共28页。
中
心
实
验
室 李 三 华
二 免疫组化技术的基本步骤
1.制片
组织切片(石蜡切片、冰冻切片)
IHC,WB,FC,ELISA,IP; 石蜡切片(IHC-P),冰冻切片(IHC-Fr),
甲醛固定冰冻切片(IHC-FoFr)。 (5)与抗原结合的部位
亚型, C-或N-,胞外区域或胞内区域。 (6)公司,价格。
第十七页,共28页。
中
心
实
验 室 李 三
国外主要抗体试剂公司
华
用途
公司
用途
最全 离子通道
李
三
华
常用酶
辣根过氧化物酶( Horseradise peroaidase,HRP)
底物:DAB(四盐酸二氨基联苯胺),产物为棕褐色。
碱性磷酸酶(Alkatine phasphotase, AP)
底物:NBT(四氮唑蓝),产物为紫蓝色。
葡萄糖氧化酶(glucoseoxdase,GOD)
底物:葡萄糖,产物为蓝色。
第二页,共28页。
中
心 实 验 室
李
应用
三
华
凡是组织细胞内具有抗原性的物质
(肽类、蛋白质、细胞因子、受体、激素
、神经递质、核酸、表面抗原)或抗体均
可用免疫组织化学方法显示而进行定性、
定位分析或定量研究,进而深入研究其
免疫组化实验方法ppt课件
适量的叠氮钠或硫柳汞以防腐 (6)温度和时间:较高的反应温度(37℃)可加速抗原抗体结合反应,
低温有利于抗原抗体结合率的提高 (7)洗涤:除去未结合抗原或抗体,除去非特异性吸附造成的背景染色。
选用自来水、生理盐水或PBS等,加去污剂并在洗涤过程中加以振摇
免疫组化实验标本
• 组织标本(石蜡切片和冰冻切片)
• 细胞标本(组织印片、细胞爬片和细胞涂 片)。
• 石蜡切片对于组织形态保存好,且能作连 续切片,有利于各种染色对照观察;还能 长期存档;
3
火灾袭来时要迅速疏散逃生,不可蜂 拥而出 或留恋 财物, 要当机 立断, 披上浸 湿的衣 服或裹 上湿毛 毯、湿 被褥勇 敢地冲 出去
(4)切片经染色后,应及时观察并照相。切片在4℃ 冰箱内过夜,其荧光强度将减弱约30%。
(5)调整抗体稀释度以获得最佳染色效果,以背景 非特异性染色最小为标准,对每一批抗体必须试验 摸索,找出最佳稀释度。
(6)所购抗体应及早使用,尽量减少抗体溶液的冻 融次数。
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火灾袭来时要迅速疏散逃生,不可蜂 拥而出 或留恋 财物, 要当机 立断, 披上浸 湿的衣 服或裹 上湿毛 毯、湿 被褥勇 敢地冲 出去
(2)非醛类固定剂:适用于多肽类激素的组织固定,常与戊二醛或多聚 甲醛混合使用。
(3)丙酸及醇类固定剂:沉淀蛋白质和糖,保存抗原性较好。但对低分 子蛋白质、多肽及胞浆内蛋白质的保存效果较差,和其它试剂混合使 用加以解决,如加冰乙酸、乙醚、氯仿、甲醛等。
3.常用的固定方法--浸入法和灌注法(适用于动物实验研究)
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火灾袭来时要迅速疏散逃生,不可蜂 拥而出 或留恋 财物, 要当机 立断, 披上浸 湿的衣 服或裹 上湿毛 毯、湿 被褥勇 敢地冲 出去
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隔水热抗原修复法:
①切片脱蜡至水。
②0.3%H2O2甲醇处理切片10分钟。
③自来水洗,蒸馏水洗。
④切片放入0.01M柠檬酸盐缓冲液(PH6.0)中,
边同容器一起放入水锅中加热,其间应不断用温
度计测其温度,待抗原修复液的温度达到有效温
度后(92℃↑)。即开始计时,持续40分钟。 ⑤待抗原修复液恢复至室温后,PBS洗3次,随后 按选定好的免疫组化染色方法进行染色。
② 间接法
间接法也称夹心法,是将酶标记在第二抗 体上(第二抗体为抗第一抗体的抗体), 形成抗原-第一抗体-第二抗体-HRP复合物, 然后进行显色。该法要求第二抗体与第一 抗体应是不同种属的动物产物。间接法应 用广泛,只需标记一种二抗就可以检测众 多相同种属来源的一抗。
免疫组化SP法的基本步骤
(1)石蜡切片脱蜡至水。 (2)抗原修复 (3)3% H2O2室温孵育5~10min,以消除内源性过氧化物酶的活性。 (4)蒸馏水冲洗,PBS洗。 (5)5%~10%正常山羊血清(PBS稀释)封闭,室温孵育10min。倾去 血清,勿洗,滴加适当比例稀释的第一抗体或即用型第一抗体,37℃孵育 2h或4℃过夜。 (6)PBS冲洗,5min×3次。 (7)滴加适当比例稀释的二抗,37℃或室温孵育10~30min。 (8)PBS冲洗,5min×3次。 (9)滴加适当比例稀释的辣根酶标记链霉卵白素(PBS稀释)或辣根酶标记 链霉卵白素工作液,37℃或室温孵育10~30min。 (10)PBS冲洗,5min×3次。 (11)显色剂显色(DAB或AEC)。 (12)自来水充分冲洗,梯度乙醇脱水,二甲苯透明,苏木精复染,中性树 胶封片。
荧 光: 在激发光(荧光显微镜提供)的照射下,能发 出较激发光波长更长的可见光并随照射停止而消失 荧光显微镜: 荧光显微镜的光源提供各种激发光,如 紫外光、蓝紫光(有不同的波长范围), 使受检标本内的荧光物质发出发射光
海马细胞 微管蛋白 绿色(胞体、树突) 轴突终末蛋白 红色(突触)
培养的成纤维细胞 微管呈绿色 核呈蓝色
抗原暴露和修复
石蜡包埋材料大都用甲醛固定保存,固定剂 甲醛使蛋白质发生凝固, 在发生凝固的过程中可 引起自身和不同蛋白质之间通过甲基化桥使蛋白 质发生交联, 导致蛋白质三级或四级结构的折叠 方向发生改变, 并形成网络状结构而掩盖抗原决 定蔟。 染色不理想,甚至出现假阴性,因而在 进行免疫组化反应之前,需要抗原暴露和修复, 可使抗原决定簇重新裸露。 抗原暴露和修复常用方法有二种, 一是用酶消 化, 二是用热处理(微波辐射法、高压法及隔水加 热法)
组织切片中内源性酶的阻断
内源性过氧化物酶 主要存在于红细胞、 嗜中性粒细胞、单核细胞、嗜酸性粒细胞 和组织内。阻断方法:最常用 0.3%~0.5%H2O2-甲醇液,作用 15~30min,阻断液必须使用时新鲜配制。 由于阻断内源性过氧化物酶常同时导致被 测抗原变性(使特异性着色减弱),而大 部分组织不含有内源性过氧化物酶,所以 阻断内源性过氧化物酶一般不必作为常规 步骤。
组织的透明、浸蜡、包埋
组织透明的目的是便于浸腊包埋 组织透明不彻底的原因主要是固定、脱水 不良以及透明剂的纯度不够。 最常用的透明剂为二甲苯 浸蜡包埋是使蜡进入到组织中使其变硬便 于切片。蜡的熔点一般为56-58 ℃。
包埋蜡的温度应与组织块温度接近。
组织石蜡包埋
大组织:75%乙醇30~120min,85%乙醇30~
%乙醇Ⅰ1h、Ⅱ1h、Ⅲ过夜或2h,无水乙醇Ⅰ、Ⅱ 和Ⅲ各30min,二甲苯Ⅰ15min、Ⅱ10min、Ⅲ10min (肉眼观察),石蜡Ⅰ30min,石蜡Ⅱ30min,石蜡 Ⅲ1~2h。
切
片
载玻片的清洁:
清洁液浸泡24小时后依次自来水、双蒸馏水 洗,95%酒精浸泡2小时,擦拭干净。如需开 展原位杂交,还需将玻片240℃烤2h。
胃蛋白酶消化法:
主要用于细胞间质抗原的检测, 如纤维蛋白及各 类胶原的现示。使用工作浓度为0.4%。 配制方法: 称取400mg胃蛋白酶加入到 100ml 0.01mol/L HCl中, 组织切片在 37℃消化30~60min。
胰蛋白酶消化法:
最常用,主要用于细胞内抗原的检测。使用 工作浓度为0.05~0.1%。 配制方法: 称取0.05g或0.1g胰蛋白酶及 0.1g无水氯化钙, 加入到100ml蒸溜水 中, 待溶解后用0.1mol/L NaOH调 PH值至7.6。 组织切片在37℃消化10~40min。
蛋白酶K消化法
主要用于原位杂交前标本的处理, 常用的工作 浓度为0.025mg/ml(25ug/ml)。 配制方法: 称取0.025mg蛋白酶K加入到 1mlPK缓冲液中。(PK缓冲液: 1mol/L PH8.0的Tris-Hcl 10ml;0.5mol/L EDTA 10ml; 双蒸水80ml, 三液充分混合即可)。
切片的制作
组织的固定 组织石பைடு நூலகம்包埋 切片
组织材料的固定
目的:
使细胞内蛋白质凝固,终止胞内酶活 化反应,防止细胞自溶,保持细胞固有形 态与结构,防止细胞脱落,去除干扰抗原 抗体反应的类脂,最主要的是保存组织细 胞的抗原性,在染色和反复清洗的过程中 使抗原不致释放。
影响固定的因素
1. 温度 一般固定液固定效果随温度升高而 加强,以室温22 ℃ 为常用。
没有一个抗体受到共价键标记,保留了免疫活性,因此
敏感性大大提高。非标记抗体免疫酶常用的有酶桥法, 辣根过氧化物酶抗辣根过氧化物酶复合物 (peroxidase antiperoxidase complex method, PAP)法、碱性磷酸酶抗碱性磷酸酶复合物(APAAP)
3.多聚螯合物酶法
该法是以高分子葡聚糖多聚化合物或氨基 酸为骨架与抗体结合,将抗体(一抗或二 抗)与HRP结合在一起,形成葡聚糖 +HRP+抗体的巨大复合物,然后通过酶的 底物进行显色。该法简便、敏感性高。其 方法包括EPOS法(enhanced polymer one-step staining)、EnVision法(又 称为ELPS法 enhance labelled polymer system)、UIP法、Power Vision法。
免疫酶组织化学
酶标记抗体法
非标记抗体免疫酶法 多聚螯合物酶法
酶标记抗体法
是用结合物将酶标记(共价键或非共价键方法结合)在 抗体分子上,通过抗原-抗体反应使抗原-抗体复合物 上带有酶分子,再借助酶对底物的特异性催化作用, 在抗原-抗体反应部位形成不溶性有色产物,在显微镜 下观察组织中抗原的性质和分布。可用作标记抗体的 酶有多种,但最常用的为辣根过氧化物酶 (horseradish peroxidase, HRP)和碱性磷酸酶 (alkaline phosphatase, AKP)其方法可分直接法 和间接法两种。 直接法 直接法是将酶(如HRP)直接标记在特异性抗体上, 然后与组织中的相应抗原相结合,形成抗原-抗体HRP复合物,最后进行显色。
120min,95%乙醇Ⅰ 2h,95%乙醇Ⅱ 2h,95%乙 醇Ⅲ过夜,无水乙醇Ⅰ30 ~60min,无水乙醇 Ⅱ30~60min,无水乙醇Ⅲ60min~120min,二甲苯 Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ各15min(可视观察结果而定),石蜡 Ⅰ30min,石蜡Ⅱ1~2h,石蜡Ⅲ2~3h。
小组织:75%乙醇30min,85%乙醇30min,95
直接加热法 最常用, 操作方法是将介质溶液用烧 杯在电炉上加热至100℃, 放入切片 并保持95~100℃20min, 在室温 中自然冷却20min即可。 热修复热介质 0.01mol/L PH6.0 柠檬酸缓冲液, 最常用。
微波辐射抗原修复法:
①切片脱蜡至水。 ②0.3%H2O2甲醇处理10分钟。 ③自来水洗,蒸馏水洗。 ④0.01M柠檬酸盐缓冲液(PH6.0),于微波炉内 微波辐射10分钟。 ⑤待修复液自然降至室温后,PBS洗3次,随后按 选好的免疫组织化学的染色方法进行染色。
直接法
间接法
免疫荧光技术 免疫荧光技术将 荧光素作为标记物 使组织细胞中形成的抗原抗体复合物在荧光显 微镜下可见,从而显示抗原物质的定位
荧光素
作为染料在激发光照射下能产生荧光的一类化合物
1.异硫氰酸荧光素 FITC 2.四乙基罗达明 3.四甲基异硫氰酸罗达明 4.藻红蛋白 ▲ 呈现不同的荧光: 绿色荧光 (FITC) 橙色荧光 橙红色荧光 红色荧光等
切片粘合剂的使用:
多聚赖氨酸(分子量200KD):0.05%浓度, 浸泡5分钟,60℃烤箱烘烤一小时或室温过夜 干燥备用。
切片:
石蜡切片:
(1)连续切片按序贴在玻片的下1/3。 (2)60℃烤片3-8h。 (3)切片厚2~4μ m。 (4)切片刀要快 (5)编上号 (6)切片可在4℃保存数年
冰冻切片:
2、非标记抗体免疫酶法
在酶标记抗体过程中可降低部分抗体和酶的活性,使得抗
体的效价降低。另外,血清中的非特异性抗体也可被酶
标记,引起非特异性背景。非标记抗体免疫酶法是先用 酶(HRP或AKP)去免疫动物,使其产生抗酶抗体,再 将该抗酶抗体与酶结合,形成五环的复合物,例如PAP (HRP)、APAAP(AKP)等复合物。该复合物由于
组织抗原
抗体
标记物
1 2 3 4 荧光 酶 亲和技术 金标
标记抗体
免疫细胞化学反应原理:
组织抗原
+
标记的抗原抗体复合物
标记抗体
两种免疫细胞化学反应方法
直接法
间接法
组织与细胞材料的制备 免疫组织化学方法 应用
组织与细胞材料的制备
组织石蜡切片制作 组织冰冻切片制作 细胞爬片制作 细胞涂片制作