流式细胞仪细胞周期图详解

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Flow Jo软件分析细胞周期样品

Flow Jo软件分析细胞周期样品
l 把上述样品的分析应用到组中,在Flow Jo软件界面中单击打开布局编辑器,在工作台的样品空间把 “分析的细胞群体结点”拖入布局编辑器中,单击布局编辑器右上角的Batch工具。输出整个实验 组的数据。如(图五 )所示
/blog-349948-549703.html
张千 君
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(图一 )
FlowJo分 析细胞周期数据 的过程
1. 把细胞周期样品拖入FlowJo软件,双击打开原始数据。如(图二)所示:
(图 二 )
X轴选择FSC,Y轴选择SSC。分析细胞周期的细胞选择上图所示的细胞群体进行分析。 2. 在SSC/FSC图中双击分析的细胞群体,如(图三 )所示:
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Flow Jo软件分析细胞周期样品
细胞周期检 测的原理:
核酸染料可以与DNA分子特异性的结合,细胞周期检测中PI最为常用。PI为插入性核酸荧光染料,能选择 性的嵌入核酸DNA和RNA双链螺旋的碱基之间与之结合,其结合的量与DNA的含量成正比例关系,用流 式细胞仪进行分析,就可以得到细胞周期各个阶段的DNA分布状态,从而计算出各个期的百分含量。 细胞周期示意图如(图一 )所示
已有 1394 次阅读 2012-3-20 12:20 | 个人分类:FlowJo使用 | 系统分类:科研笔记 | 关键词:FLOWJO软件, 流式数据,细胞周期分析,

手把手教你流式细胞周期检测(一)

手把手教你流式细胞周期检测(一)

手把手教你流式细胞周期检测(一)细胞周期(cell cycle):指细胞从前一次分裂结束起到下一次分裂结束为止的活动过程,通常由G0/G1期、S期、G2期和M期组成。

G0/G1期:有丝分裂发生,细胞分裂成两个细胞,进入下一个细胞周期,或者进入静止期(G0期),而G0期从DNA含量上无法与G1期区分,细胞开始RNA和蛋白质的合成,但DNA含量仍保持二倍体。

S期:DNA开始合成,细胞核内DNA的含量介于G1期和G2期之间。

G2期和M期:当DNA复制成为4倍体时,细胞进入G2期。

G2期细胞继续合成RNA及蛋白质,直到进入M期。

从DNA含量我们同样无法区分G2期和M期。

流式细胞仪工作原理:将待测细胞放入样品管中,在气体的压力下进入充满鞘液的流动室。

在鞘液的约束下细胞排成单列由流动室的喷嘴喷出,形成细胞柱。

通过对流动液体中排列成单列的细胞进行逐个检测,得到该细胞的光散射和荧光指标,分析出其DNA特征。

细胞周期检测的原理:PI法是经典的周期检测方法。

PI为插入性核酸荧光染料,能选择性的嵌入核酸DNA和RNA双链螺旋的碱基之间与之结合,其结合的量与DNA的含量成正比例关系,用流式细胞仪进行分析,就可以得到细胞周期各个阶段的DNA分布状态,从而计算出各个期的百分含量。

PI染色后,假设G0/G1期细胞的荧光强度为1,那么含有双份基因组DNA的G2/M期细胞的荧光强度的理论值为2,正在进行DNA复制的S期细胞的荧光强度为1-2之间。

图片来自网络1材料准备6孔板;15ml离心管;胰酶;RNase-A;PI;无水乙醇(四度冷藏);PBS2仪器设备流式细胞仪;离心机;水浴;锡箔纸3实验步骤及注意事项:(以细胞加药为例)细胞样品的准备细胞消化和固定后不可过度吹打,防止细胞碎片1. 细胞培养:六孔板种下细胞,每孔1.5*10^6个,细胞处于生长对数期,50-80%贴壁后换含药培养液(三复孔),处理相应时间后,收细胞检测(单次流式细胞仪检测,1份样品细胞数量约106)2. 细胞处理:胰酶消化含血清培养基中和,2000 rpm 5 min,用预冷PBS重悬洗涤,小心地吸去上清,残留约50ul,不要倾倒;3. 细胞固定:1ml PBS充分重悬,成单细胞,轻轻边vortex,边缓慢滴加3ml预冷的无水乙醇,至终浓度75%,4度静置过夜(18-24h),-20度长期保存一个月(预约流式细胞仪)4. 将过夜固定好的细胞用预冷PBS 洗两次,2000rpm 5min去除 PBS 后加入200 ul PBS(约400ul),为减少细胞损失可用1.5ml离心。

流式细胞检测服务之细胞周期

流式细胞检测服务之细胞周期

流式细胞仪分析DNA(细胞周期)通过核酸染料标记DNA,并由流式细胞仪进行分析,可以得到细胞各个时期的分布状态,计算出G0/G1%,S%及G2/M/%,借此可以了解细胞的增殖能力,在肿瘤病理学研究中,通常以S期细胞比率作为判断肿瘤增殖状态的指标。

正常细胞具有较恒定的DNA含量,而细胞癌变过程中结构和/或染色体的异常是很常见的。

这种变化在流式分析中以DNA倍体指数的形式表现出来,这一指数对于肿瘤的早期诊断,交界瘤、间叶组织肿瘤的良恶性判断提供了重要的辅助指标。

细胞周期操作步骤:1. 收获细胞于流式管中,加入3-4ml的PBS清洗细胞。

2. 1000rpm离心10分钟,弃上清。

3. 逐滴加入5ml或更多预冷的70-80%的乙醇,涡旋混匀细胞,4°C避光过夜(>18小时)。

4. 1000-1500rpm 离心细胞10分钟,弃上清。

之后清洗细胞2次以去除所有的乙醇。

注:第一次用1x PBS,第二次用染色液(货号:554656)。

5. 细胞染色:每管样本需10^6细胞。

具体操作如下:1) 对于PI/RNase 染色,将细胞重悬于0.5 mL PI/RNase 染色液(货号:550825)。

2) 对于7-AAD染色,将细胞重悬于0.1 mL 染色液(货号:554656),同时加入20 μL7-AAD 染色液(货号:559925)6. 室温避光孵育15分钟。

7. 分析前4°C避光保存样本。

1小时之内上流式细胞仪检测。

正常细胞周期分析细胞周期检测所需产品:使用说明:DNA染料,尤其是PI,具有较强的粘性。

样本上机检测之后,应遵照仪器说明书仔细清洗流式细胞仪,以免对下一位操作者结果造成影响。

固定好的细胞可保存长达12个月(储存于70-80% 的乙醇,置于-20°C保存).。

流式分析细胞周期

流式分析细胞周期

流式分析细胞周期
最近在做加药物的细胞周期,做了好几次,出现如下图的流式拟合图,师姐们都说你这样的拟合是强行的拟合,s期不明显,需要重新做,可是做了好多次还是这样的结果。

望专家教教我是哪里出错。

做细胞周期的步骤是:
1. 先铺板,2E5/孔。

过夜培养后加药(24h)
2. 再经过24h后可以进行测量。

3. 收集上清,并用PBS洗涤,再用胰酶消化,接着用PBS再洗一遍(在15ml管子中进行)
4. 1500转离心,小心去除上清,加入1ml的预冷PBS(记得要冲洗一下管壁),混匀后吸到1.5ml管中,再次在大厅中的离心机1500转4-5min(经过这样的一遍洗涤即可)
固定
5. 用枪吸走上清,剩余50ul左右,切勿吸走细胞,随后➕300ul 预冷PBS(用左手拿着EP管小拇指抵住涡旋震荡仪,右手拿住吸有700ul的乙醇的枪)缓慢打入其中,(这个过程尽量要慢)
6. 置于-20°冰箱中20min(有的说1h),若是过夜要要置于4°(有的说4h以上)
7. 1500转离心3-5min,小心吸上清
8. 加入1ml预冷PBS,重悬
9. 1500转离心3-5min,吸取上清,轻弹
染色
10. 0.5ml/管的碘化丙锭染色液(PI)缓慢加入,并充分的混匀
11. 37°避光30min
先配好染色的溶液
12. 4°避光存放2h
13. 上流式仪。

流式细胞仪

流式细胞仪

Purdue University Cytometry Laboratories
流式细胞术的临床应用
45
临床常见应用
1.检测淋巴细胞亚群,监测细胞免疫状态 2.白血病/淋巴瘤免疫分型
3.HLA组织配型及HLA与某些疾病的关系
4.干祖细胞的定量及成分分析.
5.其它:血小板PAIg:粘附分子;TCR多态性检测;
• ②可进行多参数测量,可以对同一个细胞做有关物理、
化学特性的多参数测量,并具有明显的统计学意义;
• ③是一门综合性的高科技方法,它综合了激光技术、
计算机技术、流体力学、细胞化学、图像技术等从多 领域的知识和成果;
• ④既是细胞分析技术,又是精确的分选技术。
5
• 概要说来,流式细胞术主要包括了样品的液流
22
• 目前的流式细胞仪大多采用氩离子激光器,因为
488nm的激光器能够激发一种以上的荧光。光
源的谱线愈接近被激发物质的激发光谱的峰值,
所产生的荧光信号愈强。FITC的激发光谱如图
3-3所示, 488nm非常接近FITC的激发光谱的
峰值,所以FITC被激发时会表现出最强荧光信
号,而当FITC被其波谱范围内的其它波长激发
的技术。从开始设想到第一台仪器的问世,科技工作者进行 了不懈的努力。随着各相关技术的迅速发展,FCM技术已 经成为日益完善的细胞分析和分选的工具。
2
• FCM仪器分为二大类:
• 一类为台式机,其特点为:仪器的光路调节系统固定,
自动化程度高,操作简便,易学易掌握。BD公司的临床 型 FACScan也是最早可用于临床诊断的仪器。
肿瘤癌基因及 抑癌基因蛋白产物的检测;细胞内酶; 耐药蛋 白的分析等等。

流式细胞仪细胞周期图详解

流式细胞仪细胞周期图详解

1
流式细胞术检测细胞周期
1. 纵坐标Cell Number:即计数到的有效细胞数;
2. 横坐标DNA Content:即DNA量,为什么用DNA量来区别各周期
3. G1、G2、S三期在上图已经用箭头标示;
4. 右侧数字含义:Mean G1=19
5.4即G1期DNA含量平均值为195.4;%G1=73.6即G1期细胞数占总数的73.6%;
①G1期(gap1),指从有丝分裂完成到期DNA复制之前的间隙时间;
② S期(synthesis phase),指DNA复制的时期;
②G2期(gap2),指DNA复制完成到有丝分裂开始之前的一段时
间;④ M期又称D期(mitosis or division),细胞分裂开始到结束。


3、流式细胞结果图各参数的意义:
前面讲过,常用的流式细胞术分析细胞周期的方法是依据细胞DNA 含量(横坐标)来分析的:
G1期:细胞DNA复制还没有开始,也是DNA含量最少的,即流式检测结果图的第一个峰;
S 期:细胞开始复制,到完成复制,是一个一倍DNA到二倍DNA 的过程,在流式结果图中显示期跨度特别大(第二个不高但很宽的峰);
G2期:DNA复制完成至分裂的一段时间,此时细胞内含二倍DNA,在流式结果图中的第二个峰;
M期:细胞分裂过程,此时细胞内也是二倍DNA,用DNA含量的方法是无法与G2期分开,所以有第三峰明显升高时报告:G2/M期阻滞。

流式细胞周期结果图解读.docx

流式细胞周期结果图解读.docx

流式检测细胞周期操作步骤1. 细胞培养:取对数生长期的细胞,按1×106cells/ mL以1mL接种24孔板或2mL接种于6孔板内,进行所需的处理(比如加入药物),特定时间后终止培养,进行下一步的实验。

2. 细胞固定:800rpm离心5min,收集细胞沉淀,弃上清,用预冷PBS洗涤两次,加入预冷75%乙醇,于4℃固定4h以上。

3. 细胞染色:1500rpm离心5min,弃上清,以3mL的PBS洗涤一次,加入400uL溴化乙锭(PI,50ug/mL),100ul RNase A(100ug/mL ),4℃避光孵育30min。

4. 流式分析:以标准程序用流式细胞仪检测,一般计数2~3万个细胞,结果用细胞周期拟和软件ModFit分析。

注:上机前要以50um尼龙网膜或35um细胞过滤器过滤细胞!因为PI具有很强的粘附性,容易使细胞聚团!流式细胞周期结果图解读1、纵坐标Cell Number:即计数的有效细胞数;2、横坐标DNA Content:即DNA含量;3、G1、G2、S三期在图中已经标示;4、右侧数字含义:Dip G1-53.84% at 55.56,即G1期DNA含量平均值为55.56;53.84%即G1期细胞数占总数的53.84%;Dip G2-5.64% at 107.72,即G2期DNA含量平均值为107.72,5.64%即G2期细胞数占总数的5.64%;以此类推…流式细胞周期结果图的意义,主要从细胞周期的角度看各参数的意义:1、细胞周期指由细胞分裂结束到下一次细胞分裂结束所经历的过程,所需的时间叫细胞周期时间。

1、细胞周期可分为四个阶段:①G1期(gap1),指从有丝分裂完成到期DNA复制之前的间隙时间;②S期(synthesis phase),指DNA复制的时期;③G2期(gap2),指DNA复制完成到有丝分裂开始之前的一段时间;④M期又称D期(mitosis or division),细胞分裂开始到结束。

流式细胞仪检测细胞周期操作步骤(仅供参照)

流式细胞仪检测细胞周期操作步骤(仅供参照)

流式细胞仪检测细胞周期操作步骤取对数生长期的A549细胞,按1×106 cells/ mL以1mL接种于100mm培养皿内↓24h后,进行所需的处理(比如加药,照射)↓特定时间后终止培养,进行下一步的实验↓收集原培养液,洗后的PBS和消化后的细胞,将三者混匀放入15ml离心管中↓1000rpm离心5min(短时低速离心)↓弃上清,用1.5ml预冷PBS,1000rpm离心5min后去除PBS和细胞悬液内的细胞碎片↓加入1.5ml预冷PBS,在涡旋状态下加入3.5ml无水乙醇,混匀后,于4℃固定30min,或-20℃长期保存。

↓1000r/min,离心5min↓将乙醇吸除,加PBS清洗混匀↓1000r/min,5min再离心一遍,将残留在细胞上的乙醇除去↓吸除离心管内PBS,加入200ul PBS和2ul的RNA酶(0.25mg/ml)(37℃下孵育30min)↓加入0.5ml的50ug/ml的PI溶液室温下避光染色30min↓将离心管内的细胞过滤(300um尼龙网膜)至含有PBS的EP管中(PI 具有很强的粘附性,容易使细胞聚团),标记EP管↓提前一天网上预约↓开机(先开仪器后开软件)↓流式细胞仪的结构一般分为5部分:①流动室及液流驱动系统;②激光光源及光束成形系统;③光学系统;④信号检测、存贮、显示、分析系统;⑤细胞分选系统。

↓检测前先涡旋使细胞混匀悬浮呈单个细胞,然后插入流式细胞仪上↓流动室内充满鞘液,细胞排成单列由喷嘴中心喷出,形成细胞液柱↓液柱与激光束相交,细胞上的荧光染料被激发产生荧光(488nm激发光源)↓荧光信号变成电信号输出到计算机,软件分析(荧光染料和细胞DNA分子特异性结合,可以检测出细胞周期各时相细胞比例)↓在用第三方软件分析之前,将流式结果按如下所示导出结果分析——Modfit软件分析图片拷贝:直接Ctrl+C。

流式细胞周期结果图解读(仅供参照)

流式细胞周期结果图解读(仅供参照)

流式检测细胞周期操作步骤1. 细胞培养:取对数生长期的细胞,按1×106cells/ mL以1mL接种24孔板或2mL接种于6孔板内,进行所需的处理(比如加入药物),特定时间后终止培养,进行下一步的实验。

2. 细胞固定:800rpm离心5min,收集细胞沉淀,弃上清,用预冷PBS洗涤两次,加入预冷75%乙醇,于4℃固定4h以上。

3. 细胞染色:1500rpm离心5min,弃上清,以3mL的PBS洗涤一次,加入400uL溴化乙锭(PI,50ug/mL),100ul RNase A(100ug/mL ),4℃避光孵育30min。

4. 流式分析:以标准程序用流式细胞仪检测,一般计数2~3万个细胞,结果用细胞周期拟和软件ModFit分析。

注:上机前要以50um尼龙网膜或35um细胞过滤器过滤细胞!因为PI具有很强的粘附性,容易使细胞聚团!流式细胞周期结果图解读1、纵坐标Cell Number:即计数的有效细胞数;2、横坐标DNA Content:即DNA含量;3、G1、G2、S三期在图中已经标示;4、右侧数字含义:Dip G1-53.84% at 55.56,即G1期DNA含量平均值为55.56;53.84%即G1期细胞数占总数的53.84%;Dip G2-5.64% at 107.72,即G2期DNA 含量平均值为107.72,5.64%即G2期细胞数占总数的5.64%;以此类推…流式细胞周期结果图的意义,主要从细胞周期的角度看各参数的意义:1、细胞周期指由细胞分裂结束到下一次细胞分裂结束所经历的过程,所需的时间叫细胞周期时间。

1、细胞周期可分为四个阶段:①G1期(gap1),指从有丝分裂完成到期DNA复制之前的间隙时间;②S期(synthesis phase),指DNA复制的时期;③G2期(gap2),指DNA复制完成到有丝分裂开始之前的一段时间;④M期又称D期(mitosis or division),细胞分裂开始到结束。

利用流式细胞仪分析细胞存活率、细胞周期、ROS

利用流式细胞仪分析细胞存活率、细胞周期、ROS

利用流式细胞仪分析细胞存活率、细胞周期、ROS1测定细胞存活率1.1取对数生长期的细胞,均以4×105/mL密度接种于6孔细胞培养板上;1.2培养过夜后,用相应药物处理细胞;1.3 消化收集细胞,包括培养液中悬浮的死细胞;1.4 300g离心5 min,去上清;1.5 加1mL PBS缓冲液重悬细胞,再次离心去上清1.6 最后重悬细胞于含5 μg/mL碘化丙啶(propidium iodide, PI)的PBS缓冲液中(PI buffer:3.4 mM 柠檬酸钠(Trisodium Citrate), 9.65 mM NaCl, PI 20 mg/mL, 0.03% Nonidet P-40 , 配于H2O中);1.7 避光冰上孵育10 min,上流式细胞仪测定细胞存活率。

2测定细胞周期2.1取对数生长期的细胞,均以4×105/mL密度接种于6孔细胞培养板上;2.2培养过夜后,用相应药物处理细胞;2.3 消化收集细胞,包括培养液中悬浮的死细胞;2.2 收集的细胞经PBS缓冲液洗一次后,去上清,将细胞逐滴加入70%预冷的乙醇中,4℃避光固定30 min;2.3 加BSA,离心去上清,重悬细胞于PBS缓冲液,再次离心,去上清;2.4 重悬细胞于含100 unit/mL RNA酶的PBS缓冲液中,避光37℃处理30 min;2.5 加2 mg/mL PI至终浓度50 μg/mL,避光孵育30 min,过滤后上流式细胞仪分析。

3测定胞内ROS的积聚3.1取对数生长期的细胞,均以4×105/mL密度接种于6孔细胞培养板上;3.2培养过夜后,用相应药物处理细胞;3.3 消化收集细胞;3.2 PBS缓冲液清洗一次,随后重悬细胞于1mL的PBS缓冲液中;3.3加荧光探针CM-H2 DCFDA至终浓度1 M/mL,37℃孵育30 min,上流式细胞仪分析活细胞内ROS的积聚情况。

流式细胞仪检测凋亡和细胞周期等应用

流式细胞仪检测凋亡和细胞周期等应用

荧光信号
使用不同荧光标记的单克隆抗体染色,做多色 分析
荧光信号的强弱,反映了细胞抗原的表达含量
荧光样本制备
双色直接染色
端粒(荧光蛋白)
六)细胞内钙离子测定
1×106/ml的细胞悬液, 加入终浓度为1-5μmol/ml Fluo-3/AM,充分混匀, 室温避光作用60分钟。 以HEPES缓冲的Hank’s平衡盐溶液洗三次,重悬于 0.5ml同样的溶液,上流式细胞仪检测。 根据报告中给出的样品荧光强度计算细胞内钙离子 的浓度。
Apoptosis: 13.66 % Mean: 27.48
图 FCM测试细胞周
R1
期分布和凋亡
根据凋亡细胞的特点来检测
在形态上,早期细胞核固缩,染色体边集在核 膜内侧显新月体形、核碎裂;细胞浆和细胞器 密度增高、细胞体积变小;细胞膜皱折卷曲, 但早期细胞膜的完整性未受到破坏
凋亡细胞的FSC ?SSC ? 细胞坏死时,细胞肿胀,FSC ?,SSC ?
Date acquired: 14-Jan-03 File: 7Gy 4hr.001 Source: dongbo DIPLOID: 100.00 % Dip G0-G1: 73.12 % at 48.16 Dip G2-M: 9.59 % at 96.33 Dip S: 17.29 % G2/G1: 2.00 Dip %CV: 6.04
FCM检测胞内钙离子、 膜电位和线粒体功能
M1阴性界限划分完全是根据阴性对照!如下图:红色部分代表阴性对照,即: 所检测的物质在阴性组中的基础表达量,可以理解为背景、静息状态下、基础 水平、未受刺激时等。蓝色部分即阳性组,也就是接受刺激后,功能状态下、 药物作用后等。
六. 分选:
用荧光探针标记的细胞,可被有效地分离出来, 用于分选的效率较高的仪器国内较少,台式机

流式细胞仪检测细胞周期

流式细胞仪检测细胞周期

流式细胞仪检测细胞周期9、采用流式细胞仪(FCM)研究MG63细胞周期FCM检测细胞周期原理流式细胞仪(flow cytometry或flow cytomyter,FCM)又称荧光活化细胞分拣器(fluorescence activated cell sorter,FACS)是20世纪60年代后期利用激光器和层流流动室而建立的一种用于测定放射性染色体的新技术。

细胞周期(cell cycle)是指连续分裂的细胞从上一次有丝分裂结束到下一次有丝分裂完成所经历的整个过程,包含G1期、S期、G2期、M期四个阶段(图1)。

细胞的生命开始于产生它的母细胞的分裂, 结束于它的子细胞的形成,或是细胞的自身死亡。

通常将通过细胞分裂产生的新细胞的生长开始到下一次细胞分裂形成子细胞结束为止所经历的过程称为细胞周期。

在这一过程中,细胞的遗传物质复制并均等地分配给两个子细胞。

用FCM 进行细胞周期分析是通过测定细胞中DNA量而完成的。

测定DNA含量后,可用FCM配备的细胞周期分析软件(例如Becton Dickinson公司的Cell FIT)对其进行自动分析。

此测定的细胞周期按照DNA的量分可为Go/G1期、S期及G2/M期。

FCM检测细胞周期流程①培养MG63细胞在6 孔板内依次放入对照组和3 个实验组钛片各40 片,接种密度为 4 × 105/ ml。

培养至细胞汇合后,每孔加矿化液2. 5 ml( 含10 nmol/L 地塞米松,10 mmol/L β -甘油磷酸钠,50 μg/ml 抗坏血酸的培养液) 。

分别培养3、5、10、15d 后,每组各取出5 个钛片移至新的6 孔板内,将钛片表面细胞消化离心收集。

② PBS清洗经消化收集的细胞2~3次,调整细胞密度为1×106个/ml;③将细胞悬液100ul转移至试管中;④ 加入FITC标记的annexin V和PI溶液,轻轻混匀;⑤室温避光放置10~15min;⑥ 加入400ul缓冲液,将全部液体转移至FCM分析用试管;⑦ 尽快进行FCM分析(用FCM进行细胞周期分析是通过测定细胞中DNA量而完成的。

流式细胞仪检测凋亡和细胞周期等应用PPT

流式细胞仪检测凋亡和细胞周期等应用PPT

Quad UL UR LL LR
Eve nts % Ga te d X Mean Y Mean 254 2.40 37.47 461 .3 6
106 7 10.08 816 .8 6 468 .8 9 529 1 49.98 19.57 4.41 397 5 37.55 418 .8 0 9.87
图 Annexin V/PI双标记分析细胞凋亡和坏死
二)肿瘤诊断与抗肿瘤药物研究
1. 肿瘤诊断
DNA异倍体的出现是癌变的一个重要标志 细胞的增殖能力的大小也可反映肿瘤的生物
学特征 利用流式细胞仪进行细胞周期分析和DNA
倍性分析,辅助肿瘤诊断,包括监测癌前病 变、肿瘤的早期诊断和肿瘤细胞学诊断。
肿瘤组织中的各种DNA倍体
2倍体
异倍体
4倍体
FCM分析白血病免疫表型, 快速、特异、 准确,重复性好,能区分细胞起源、划 分其分化发育阶段等,对白血病的诊断 与分型、治疗方案选择与预后判断、发 病机理研究等有重要价值。
五) 细胞内蛋白的分析:
细胞破膜后将细胞内某一蛋白成分 进行荧光标记,用流式细胞仪进行测量 分析,同表型分析一样,可以测量出这 种阳性细胞的数量和这种蛋白的相对含 量。荧光探针多为FITC。
51
FCM检测胞内钙离子、 膜电位和线粒体功能
M1阴性界限划分完全是根据阴性对照!如下图:红色部分代表阴性对照,即: 所检测的物质在阴性组中的基础表达量,可以理解为背景、静息状态下、基础 水平、未受刺激时等。蓝色部分即阳性组,也就是接受刺激后,功能状态下、 药物作用后等。
六. 分选:
用荧光探针标记的细胞,可被有效地分离出来, 用于分选的效率较高的仪器国内较少,台式机
Date acquired: 14-Jan-03 File: 7Gy 4hr.001 Source: dongbo DIPLOID: 100.00 % Dip G0-G1: 73.12 % at 48.16 Dip G2-M: 9.59 % at 96.33 Dip S: 17.29 % G2/G1: 2.00 Dip %CV: 6.04

流式细胞仪细胞周期图详解

流式细胞仪细胞周期图详解

1
流式细胞术检测细胞周期
1. 纵坐标Cell Number:即计数到的有效细胞数;
2. 横坐标DNA Content:即DNA量,为什么用DNA量来区别各周期
3. G1、G2、S三期在上图已经用箭头标示;
4. 右侧数字含义:Mean G1=19
5.4即G1期DNA含量平均值为
195.4;%G1=73.6即G1期细胞数占总数的73.6%;
1 G1期(gap1),指从有丝分裂完成到期DNA复制之前的间隙时间;
② S期(synthesis phase),指DNA复制的时期;
2 G2期(gap2),指DNA复制完成到有丝分裂开始之前的一段时
间;④ M期又称D期(mitosis or division),细胞分裂开始到结束。

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3、流式细胞结果图各参数的意义:
前面讲过,常用的流式细胞术分析细胞周期的方法是依据细胞DNA含量(横坐标)来分析的:
G1期:细胞DNA复制还没有开始,也是DNA含量最少的,即流式检测结果图的第一个峰;
S 期:细胞开始复制,到完成复制,是一个一倍DNA到二倍DNA的过程,在流式结果图中显示期跨度特别大(第二个不高但很宽的峰);
G2期:DNA复制完成至分裂的一段时间,此时细胞内含二倍DNA,在流式结果图中的第二个峰;
M期:细胞分裂过程,此时细胞内也是二倍DNA,用DNA含量的方法是无法与G2期分开,所以有第三峰明显升高时报告:G2/M期阻滞。

细胞周期

细胞周期

细胞周期(Cell cycle)一、目的:使学生了解如何利用流式细胞仪判别细胞周期和低套数染色体细胞(hypodiploid cell)。

二、原理:细胞周期一般分成四个时期,G 1 期、S 期、G 2 期及M 期(图一)。

M(mitotic) 期,为细胞分裂的时期,S(synthesis) 期为细胞之DNA 复制合成时期,在 M 期之后,S 期 开始之前称为G 1 期,在 S 期之后 M 期开始之前的时期称为G 2 期。

最初并不了解介于 M 期 与 S 期之间细胞的发生情形,故命名为 gap 期,即空档时期,而后方知于此二时期细胞仍在生长。

细胞周期中各期的细胞DNA 含量不同,故可以细胞内DNA 之含量判别细胞周期。

Propidium iodine (PI) 是一种荧光剂,可和DNA 结合,当以波长488 nm 之光激发后,会发出波长625 nm 之荧光。

但PI 无法进入细胞膜完整的细胞,故需先以酒精固定细胞,并使细胞膜上产生小洞,PI 才得以进入细胞内,故可利用此染剂作为侦测细胞周期之细胞特性之用。

细胞死亡方式目前分为细胞坏死(necrosis)及细胞凋亡(apoptosis) 。

细胞凋亡时会产生凋亡小体(apoptotic body),其细胞膜仍完整,但其内所包含之DNA 则较正常之G 1细胞为少,故称之为低套数染色体细胞(hypodipoid cell)。

判别细胞凋亡时,细胞可用PI 染色,测定细胞周期,在G 1期前可看到一波峰,此即为hypodiploid cell ,即为凋亡之细胞(图二)。

流式细胞仪是目前常用来分析细胞特性上各种参数的技术。

当一细胞混合液以直接或间接方式标定荧光物质后,经流式细胞仪内的雷射光激发后,依据发出荧光之颜色及强弱,区分出样品混合液内不同特性之细胞,此类流式细胞仪称之fluorescence activated cell scanner (FACS) ,若再加装细胞分类器(cell sorter),则可以进一步利用其具有的电场将特性不同的细胞予以分类图一.细胞周期。

流式细胞检测细胞晚期凋亡原理与图解

流式细胞检测细胞晚期凋亡原理与图解

流式检测细胞周期与晚期凋亡样品处理流程原理:在生物细胞中,DNA含量是恒定的参量,DNA含量随着细胞增殖周期各时期不同而发生变化,G0期细胞被认为是不参与细胞周期循环的一群细胞,即为静止细胞,其细胞为恒定的二倍体DNA含量,G1期细胞具有增殖活性,参与细胞周期循环,G1和G0期细胞DNA 含量相同,均为二倍体,当细胞进入S期后,DNA含量逐渐增加,从二倍体到四倍体,一直到细胞DNA倍增结束,进入G2期,最终进入M期。

荧光染料和细胞DNA分子可特异性结合,具有一定的量效关系:DNA含量与荧光染料的结合成正比,荧光脉冲与直方图通道值成正比根据细胞凋亡时在细胞、亚细胞和分子水平上所发生的特征性改变。

这些改变包括细胞核的改变、细胞器的改变、细胞膜成分的改变和细胞形态的改变等,其中细胞核的改变最具特征性。

由于核的改变造成各种荧光染料对凋亡细胞DNA可染性发生改变,细胞凋亡时,核酸内切酶激活,导致DNA广泛断裂,这是细胞凋亡的特征性表现,由于细胞膜的通透性增加和固定剂的影响,使DNA不能完全封闭在细胞中,凋亡细胞DNA含量减少,DNA直方图上显示在G1期前面出现一个DNA含量减少的亚二倍体峰,又称凋亡峰!样品处理:1.胰蛋白酶消化法收集处理好的细胞,做成单细胞悬液2.1000r/min离心5min,收集沉淀。

3.沉淀用PBS洗2次,1000r/min离心5min,收集沉淀。

4.细胞沉淀用4℃预冷的70%的冰乙醇(预冷的70%酒精)1ml重悬,4℃过夜。

即可送检。

5.3000r/min离心1min离心去除固定液,用PBS洗2次,加入300ul -500ul PI与RNA酶混合液(PI 50ug/ml,RNA酶10ug/ml)6.将细胞沉淀弹散,放入37℃温箱中,孵育30min7.上机检测8. 结果判断:在前散射光对侧散射光的散点图或地形图上,凋亡细胞与正常细胞相比,前散射光降低,而侧散射光可高可低,与细胞的类型有关;在分析PI荧光的直方图时,先用门技术排除成双或聚集的细胞以及发微弱荧光的细胞碎片,在PI荧光的直方图上,凋亡细胞在G1/G0期前出现一亚二倍体峰。

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流式细胞术检测细胞周期
1. 纵坐标Cell Number:即计数到的有效细胞数;
2. 横坐标DNA Content:即DNA量,为什么用DNA量来区别各周期
3. G1、G2、S三期在上图已经用箭头标示;
4. 右侧数字含义:Mean G1=19
5.4即G1期DNA含量平均值为195.4;%G1=73.6即G1期细胞数占总数的73.6%;
①G1期(gap1),指从有丝分裂完成到期DNA复制之前的间隙时间;
② S期(synthesis phase),指DNA复制的时期;
②G2期(gap2),指DNA复制完成到有丝分裂开始之前的一段时
间;④ M期又称D期(mitosis or division),细胞分裂开始到结束。


3、流式细胞结果图各参数的意义:
前面讲过,常用的流式细胞术分析细胞周期的方法是依据细胞DNA 含量(横坐标)来分析的:
G1期:细胞DNA复制还没有开始,也是DNA含量最少的,即流式检测结果图的第一个峰;
S 期:细胞开始复制,到完成复制,是一个一倍DNA到二倍DNA的过程,在流式结果图中显示期跨度特别大(第二个不高但很宽的峰);G2期:DNA复制完成至分裂的一段时间,此时细胞内含二倍DNA,在流式结果图中的第二个峰;
M期:细胞分裂过程,此时细胞内也是二倍DNA,用DNA含量的方法是无法与G2期分开,所以有第三峰明显升高时报告:G2/M期阻滞。

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