活性氧的检测方法
dcfh-da活性氧检测原理
dcfh-da活性氧检测原理DCFH-DA(Dichlorofluorescein Diacetate)是一种常用的细胞活性氧(ROS)检测试剂,常用于测量细胞内ROS的水平。
下面将详细介绍DCFH-DA活性氧检测原理。
活性氧(ROS)是包括超氧阴离子(O2^-)、过氧化氢(H2O2)和羟基自由基(·OH)等化学物质的总称,它们在细胞内被不同的酶系统产生,并在一定程度上参与调节细胞的生理功能。
然而,当细胞内ROS的产生量超过细胞应对能力时,ROS会产生一系列不利于细胞健康的效应,如氧化应激、炎症反应和细胞凋亡等,从而引发多种疾病的发生。
DCFH-DA是一种脂溶性染料,可以通过细胞膜进入细胞内。
一旦进入细胞内,细胞内酯酶会水解DCFH-DA成为非荧光染料DCFH (Dichlorofluorescein)。
DCFH在细胞内没有荧光,但当与ROS接触时,ROS会氧化DCFH成为强荧光荧光素(DCF)。
DCF既可以通过细胞色素c还原成DCFH,也可以通过氧化还原酶系统产生交替的氧化还原反应。
这使得DCF在细胞内荧光物质充分利用细胞内不同环境中ROS含量变化敏感性。
DCFH-DA活性氧检测的原理主要包括两个方面:首先,DCFH-DA通过脂溶性能够迅速进入活细胞,然后在细胞中被酯酶水解为DFCH,DFCH可以被氧化成强荧光的DCF。
然后,DCF可以发射可见光区的绿色荧光,并且荧光的强度和ROS的浓度呈正相关关系。
因此,通过测量DFC发出的荧光信号的强度,可以间接反映细胞内ROS的水平。
在实际的检测过程中,研究人员通常将DFCH加入到细胞培养基中,培养一段时间以使DFCH进入细胞内。
然后,用PBS(磷酸盐缓冲液)彻底地洗涤细胞,以去除细胞外的DFCH。
然后,通过显微镜或流式细胞术等方法观察细胞内的强荧光信号,并定量测量荧光强度。
通过与一系列的标准曲线比较,可以将荧光信号转换为ROS浓度。
综上所述,DCFH-DA活性氧检测利用DFCH的荧光属性实现了细胞内ROS水平的可视化和定量测量。
植物中活性氧的检测方法
生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN
2007 年第 5 期
植物中活性氧的检测方法
祁艳 王冬梅
( 河 北 农 业 大 学 生 命 科 学 学 院 , 保 定 071001)
摘 要: 主要对超氧阴离子自由基( O 2-·) 、过氧化氢( H2O 2) 等活性氧的检测方法, 包括化学发光法、分光光度法、荧 光染色法, EPR 波谱学方法、DAB 组织染色法和电子显微技术检测法等进行了综述, 并简单介绍了最近发展起来的一些新 技术。
1.3 荧光染色法 运用荧光染色技术可进行活体和离体亚细胞水
平的 H2O2 检测。常用的荧光染料有 2' , 7' -二氯氢化荧 光 素 二 乙 酯 ( dichlorofluorescein diacetate, DCFHDA) 、 4-aminoantipyrine、7-羟-6 甲 基 香 豆 素 ( scopoletin) 、 Amplex Red( N-acetyl-3, 7-dihydrophenoxazine) 及 高 香 草 醛 酸 ( homovanillic acid) 等 。在 辣 根 过 氧 化 物 酶 的 催 化 下 , H2O2 可 氧 化 这 些 物 质 生 成 极 易 检 测 的 发 荧 光 的 物 质 , 此 法 简 便 有 效 , 应 用 广 泛 。有 研 究 者 用 荧 光染色法检测了豌豆( Pisumsativum) 叶片衰老过程中 线 粒 体 、过 氧 化 物 酶 体 中 的 H2O2[10]及 萝 卜 ( Raphanus sativus) 种 子 在 萌 发 过 程 中 经 光 照 、GA、ABA 调 控 下 H2O2 的 释 放 [11]。 Orozco-Ca′rdenas 等 [12]曾 用 Amplex Red 定 量 检 测 了 番 茄 ( Lycopersicon esculentum) 叶 片 提 取 液 中 的 H2O2。 本 研 究 室 陈 晓 波 [13]以 激 发 子-原 生质体简化实验系统模拟叶锈菌侵染小麦叶片的 互 作 体 系 , 利 用 荧 光 探 针 DCHFDA 标 记 H2O2, 并 借 助 激 光 扫 描 共 聚 焦 显 微 镜 ( CLSM) 来 研 究 植 物 抗 病 过 程 中 微 丝 骨 架 与 ROS 的 关 系 , 取 得 了 良 好 效 果 ; 笔者用该法成功检测了受叶锈菌侵染的小麦叶片 中 ROS 的 变 化 ( 待 发 表 ) 。
活性氧的检测方法
。然
而, 这 些 方 法 均 不 能 定 量 测 定 生 物 体 内 OH 的含量。随后根据 OH 可使胸腺嘧啶 或胸腺嘧 啶核苷羟 化的原理 来测定 OH , 此法虽检测 OH 较专一, 但操作较繁琐, 药 品较 昂贵, 一般实验 室使用受 到局限。 80 年代末, Babbs 等
1 2 [ 19 ]
方法有酶法、 碘释放法、 共轭双键检测 法、 烃类气体测定法[ 3 ] 等。酶法专一性强, 操作简便、 可准确定量, 但需要谷胱甘肽过 氧化物酶, 而该酶提纯较麻烦, 产量低, 难适 应多种样品的常规分析要求 , 结果偏差大, 碘释放法局限性大。共轭双键检测法, 虽简 便 , 但干扰因素多, 也难于广泛应用 , 烃类气 体测定法同样难于广泛应用。目前 , 使用较 多的是丙二醛测定法 , 此法是测定脂类过氧 化最终产物丙二醛 ( MDA) 。它的产量的多 少就表示过氧化程度的大小, 因此以 M DA 作为膜脂过氧化的指标。其中硫代巴比妥 酸 ( T BA) 比色法是最常用 的, T BA 法虽然 简单、 经 济, 为 许 多 实 验 室 广 泛 采 用 , 但 T BA 与 MDA 的反应不专一, 许多生物物质 可与 T BA 发生阳性反应[ 2 ] 。近年, 发展的 高效液相色谱法 ( HPL C) 则避免了 T BA 法 的 缺 点, 可 以 专 一 地 直 接 测 定 M DA 。 HPL C 法虽然专一、 灵敏、 快速 , 但仍不能取 代 T BA 法, 因为当样品很多, 又需在短时间 内测定完时 , 还是 T BA 法方便。它可以同 时测定许多样品 , 不像 H PLC 法那 样只能 一个个地测 , 且 H PLC 仪器价格昂贵, 一般 实验无法购置。 Est erbauer 和 Slater( 1981) 也证明两法结果有很好的相关性。这些都 说明 T BA 法虽受到批评, 但还是一个简单、 可靠的 经 济方 法。利 用 T BA 法, 潘 瑞 炽
DCFHDA活性氧检测方法
DCFHDA活性氧检测方法DCFH-DA(2',7'-二氯荧光二乙酸)是一种常用于检测细胞内活性氧的荧光探针。
DCFH-DA最初作为一种检测脂质过氧化和活性氧产生的荧光探针而被引入。
在细胞内,DCFH-DA可以被酯酶水解成DCFH(2',7'-二氯荧光二酚),而DCFH与活性氧反应生成Dichlorofluorescein(DCF)产生强烈的绿色荧光。
DCFH-DA检测法被广泛应用于反应氧化应激和自由基生成的过程。
DCFH-DA检测法实际上是一种间接测定活性氧的方法。
原理基于DCFH-DA能够通过酯酶水解成DCFH,而DCFH可以直接或通过活性氧来氧化生成DCF。
因此,DCF的荧光强度与细胞内的活性氧水平成正相关。
DCFH-DA检测法常用于检测细胞或组织中的过氧化氢(H2O2)、羟自由基(•OH)、超氧阴离子(O2•-)等活性氧物种。
DCFH-DA检测法的步骤如下:1.细胞准备:将需要检测活性氧的细胞培养在合适的培养基中,保证细胞的活力和完整性。
2.DCFH-DA处理:将培养的细胞离心,去除培养基,并用含有适当浓度的DCFH-DA的PBS缓冲液重新悬浮细胞。
DCFH-DA可在一定浓度下直接添加到细胞培养基中,也可在细胞中预处理一段时间。
3.洗涤:DCFH-DA可渗透细胞膜进入细胞内,在细胞酯酶的作用下,水解成DCFH。
洗涤细胞是必要的,以去除外源DCFH-DA和水解后生成的DCFH。
4.活性氧诱导:将细胞暴露在产生活性氧的刺激剂中,如过氧化氢、辐射、药物等。
较为常用的是使用刺激物H2O2,细胞可暴露在适当浓度的H2O2中一段时间。
5.荧光显微镜观察:在刺激剂作用一定时间后,将细胞离心,取得细胞沉淀。
用PBS洗涤,使得测量时背景荧光最小。
6.荧光检测:将洗涤好的细胞沉淀悬浮于含PBS的离心管中,通过流式细胞术或荧光显微镜测量活性氧生成后的荧光信号。
DCFH-DA检测方法的优势在于具有响应迅速、敏感度高、操作简单等特点。
活性氧(ROS)测定试剂盒说明书
②、波长设置:最佳激发波长 500(50015nm),最佳发射波长 525 (53020 nm)。也可按照 FITC 荧光检
测条件检测。 ③、结果以荧光度值表示。
四、细胞样本操作步骤:(可用激光共聚焦显微镜观察,也可用于流式细胞仪、荧光酶标仪、荧光分光度 计测定)
二、试剂组成及保存: 1、0.1ml 10mM DCFH-DA in DMSO,20℃保存。 2、1ml 活性氧供氢体,4-8℃保存。
三、组织样本操作步骤:(可用激光共聚焦显微镜观察,也可用于流式细胞仪、荧光酶标仪、荧光分光度 计测定)
1、单细胞悬液制备: 方法 1、采用单细胞悬液制备仪制备单细胞悬液。 方法 2、酶消化法: 方法 3、机械法(网搓法):
本试剂盒仅用于科研实验
1、直接将探针加入培养液中: ①、直接将 DCFH-DA 探针加入无血清培养基中:一般按照 1 :1000 用无血清培养液稀释 CFH-DA。加入的体积以能充分盖住细胞为宜, 通常对于 6 孔板的一个孔加入稀释好的 DCFH-DA 不少于 1ml。 ②、取一份不加探针,只加入培养基的细胞设为阴性对照管。阳性对照管:取一份已加入探针的细胞,同 时加入活性氧供氢体诱导细胞,推荐该试剂的工作浓度为 20~100µM。 ③、37℃孵育细胞 30min~几小时,通常为 30~60min 即可,孵育时间长短与细胞类型、刺激条件、DCFH-DA 浓度有关。一般阳性对照在刺激细胞 30 分钟左右,即可观察到明显的绿色荧光。 ④、吸去培养液,利用无血清培养液或者 0.01MPBS 反复吹打,肉眼观察瓶底由半透明(细胞单层连接成 片)转为透明,细胞层几乎全部吹打到 PBS 中。 ⑤、将细胞悬液全部收集到 1.5ml 离心管中。用无血清培养液或者 PBS 洗涤 2 次,以充分去除未进入细 胞内的 DCFH-DA。1000rpm/min,5min,吸净上清后加入 PBS 重新悬浮细胞进行测定。
活性氧检测试验方案
活性氧检测试验方案活性氧(reactive oxygen species,ROS)是一个广泛存在于植物、动物和微生物细胞中的有害物质,在细胞内氧化还原反应中扮演重要角色。
活性氧包括超氧阴离子(O2-)、过氧化氢(H2O2)、羟基自由基(·OH)等,具有强氧化性。
活性氧在正常细胞代谢和维持细胞信号传导途径中发挥重要作用,但在细胞内过量生成会对细胞结构和功能造成损害,引发细胞衰老和死亡,促进炎症反应,以及导致一系列疾病的发生,包括心血管疾病、癌症、神经退行性疾病等。
活性氧检测是研究活性氧与细胞过程和疾病发生关系的重要手段。
常用的活性氧检测方法包括荧光探针染色法、电子自旋共振(electronspin resonance,ESR)法、流式细胞仪法、化学法等。
下面是一种基于荧光探针的活性氧检测实验方案,具体步骤如下:材料:1.细胞培养样本(如细胞系或原代细胞)2.活性氧检测荧光探针(如2',7'-二氯二羟苯基-4'-巯基吡啶,DCFH-DA)3.PBS(磷酸缓冲盐溶液)4.离心管5.无菌1.5mL离心管6.显微镜玻片7.荧光显微镜8.细胞培养基实验步骤:1.把细胞培养在合适的培养基中,保持在37°C的恒温培养箱中,条件合适时使其达到对照组的80%~90%接种度。
2.将细胞分装到离心管中,每支40mL细胞悬液。
3.加入DCFH-DA溶液,终浓度为10mM,使细胞充分吸收荧光探针。
将培养管放入37°C恒温培养箱中孵育30分钟以进行探针进入细胞。
4.将细胞洗涤剂去除,用PBS洗涤细胞3次以除去多余探针。
5.加入1mL的PBS溶液,留出0.5mL的悬液放入1.5mL离心管中,以进行离心。
去除上清液,避免细胞牵涉。
6.加入1.5mLPBS溶液,留出0.5mL的悬液放入1.5mL离心管中离心,去除上清液。
7.将取得的细胞悬液滴在显微镜玻片上,并加盖玻片。
在荧光显微镜下观察细胞活性氧的荧光信号强度。
活性氧的检测方法
活性氧检测试剂盒(Reactive oxygen species assay kit)是一种利用荧光探针DCFH-DA进行活性氧检测的试剂盒。
DCFH-DA本身没有荧光,可以自由穿过细胞膜,进入细胞内后,可以被细胞内的酯酶水解生成DCFH。
而DCFH不能通透细胞膜,从而使探针很容易被装载到细胞内。
细胞内的活性氧可以氧化无荧光的DCFH生成有荧光的DCF。
检测DCF 的荧光就可以知道细胞内活性氧的水平。
本试剂盒提供了活性氧阳性对照试剂Rosup以便于活性氧的检测。
Rosup是一种混合物(compound mixture),浓度为50mg/ml。
一、注意事项1、探针装载后,一定要洗净残余的未进入细胞内的探针,否则会导致背景较高。
2、探针装载完毕并洗净残余探针后,可以进行激发波长的扫描和发射波长的扫描,以确认探针的装载情况是否良好。
3、尽量缩短探针装载后到测定所用的时间(刺激时间除外),以减少各种可能的误差。
4、为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
二、使用说明1、装载探针对于刺激时间较短(通常为2小时以内)的细胞,先装载探针,后用活性氧阳性对照及自己感兴趣的药物刺激细胞。
对于细胞刺激时间较长(通常为6小时以上)的细胞,先用活性氧阳性对照及自己感兴趣的药物刺激细胞,后装载探针。
原位装载探针:本方法仅适用于贴壁培养细胞。
按照1:1000用无血清培养液稀释DCFH- DA,使终浓度为10微摩尔/升。
去除细胞培养液,加入适当体积稀释好的DCFH-DA。
加入的体积以能充分盖住细胞为宜,通常对于六孔板的一个孔加入稀释好的DCFH-DA的体积为1毫升。
37℃细胞培养箱内孵育20分钟。
用无血清细胞培养液洗涤细胞三次,以充分去除未进入细胞内的DCFH-DA。
通常活性氧阳性对照在刺激细胞20-30分钟后可以显著提高活性氧水平。
收集细胞后装载探针:按照1:1000用无血清培养液稀释DCFH-DA,使终浓度为10微摩尔/升。
ros测定方法
ros测定方法ROS也就是活性氧,它的测定方法还挺有趣的呢。
一种常见的方法是化学发光法。
这就像是给ROS装上了一个小信号灯。
有专门的化学试剂,当它们和ROS相遇的时候,就会产生发光现象。
就好像两个好朋友见面,特别兴奋,然后就发出光芒来告诉我们:“ROS在这儿呢!”不过呢,这个方法需要一些比较精密的仪器来检测发光的强度,这样才能准确知道ROS的量。
还有比色法。
这有点像给ROS做个色彩测试。
通过特定的反应,让ROS和一些试剂发生作用后产生颜色变化。
就像变魔术一样,本来无色或者一种颜色,和ROS一接触就变成另一种颜色啦。
然后我们可以用比色计去测量颜色的深浅,颜色越深呢,就说明ROS的含量越高。
这方法比较简单直接,不需要特别复杂的设备,就像我们用眼睛看颜色一样,不过当然是用仪器看的更准啦。
荧光法也很常用哦。
想象一下,ROS在这个方法里就像个小明星,在特定的荧光试剂下会闪闪发光。
我们通过检测荧光的强度来确定ROS的量。
这种方法很灵敏呢,就像小猫咪的耳朵一样,能很敏锐地捕捉到ROS的存在。
但是呢,荧光容易受到很多因素的干扰,就像小明星可能会被周围的灯光或者环境影响一样,所以做这个测定的时候要很小心地排除干扰因素。
电子自旋共振法就比较高大上啦。
它能直接检测到ROS的未成对电子,就像能直接看到ROS的小秘密一样。
不过这个方法的仪器可就不便宜啦,就像豪车一样,不是谁都能轻松拥有的。
但是它的准确性那可是相当高的,对于那些对ROS测定要求特别精确的研究来说,这个方法就像一个超级英雄一样厉害。
不管是哪种方法,都像是我们探索ROS这个小世界的工具。
就像探险家有不同的工具去探索未知的大陆一样,科学家们也用这些方法去了解ROS在生物体内的奥秘呢。
dcfh检测活性氧步骤
活性氧:活性氧(reactive oxygen species , ROS)是体内一类氧的单电子还原产物,,是电子在未能传递到末端氧化酶之前漏出呼吸链并消耗大约2 %的氧生成的,包括氧的一电子还原产物超氧阴离子(O2·-)、二电子还原产物过氧化氢(H2O2)、三电子还原产物羟基自由基(·OH)以及一氧化氮等。
ROS 的产生主要是线粒体由状态Ⅲ向状态Ⅳ转换中高氧的环境和高还原态的呼吸链使大量电子漏出并还原氧分子而形成。
基本信息:氧是生命运动过程中不可缺少的一种气体, 人们一旦处于缺氧或者供氧不足的环境中, 就会感到憋气的痛苦甚至死亡。
所以, 自从1770 年代初英国人Joseph Priestley 发现氧以来, 氧一直被人们认为是一种对人体百益而无一害的气体。
可是, 科学技术迅速发展起来的今天, 我们知道, 不管是空气中的氧还是水中的溶解氧都具有较高的氧化性, 与一般的金属铁一样, 处于空气中的人体各部位都在不断地受到氧的腐蚀而“生锈” , 当然这种腐蚀与铁不同, 它体现在人体的细胞水平上。
特别是人体各种器官随着年龄的增大不断地老化更是这种腐蚀“生锈”的直观表现。
1969 年McCord 与Fridovich 发现, 在生化反应过程中O2 获得一个电子还原生成超氧自由基(O-2 ), 进而经过红血球的分离精制后获得O-2 的清除灭活酶, 并命名为超氧化物歧化酶(superoxide dismultase , SOD)。
这一发现激发了大批的科学研究者致力于O-2 的生成过程、反应活性、毒性、生理和病理等等各方面的研究, 去探索解明SOD 在生理学上的意义。
同时由O-2 衍生出来的过氧化氢(H2O2)、羟自由基(·OH)、激发态氧(一重态氧或称单线态氧,O2)也受到了人们的重视。
所谓的活性氧, 概括地说, 是指机体内或者自然环境中由氧组成, 含氧并且性质活泼的物质的总称:主要有一种激发态的氧分子, 即一重态氧分子或称单线态氧分子(O2);3 种含氧的自由基, 即超氧阴离子自由基(O-2 )、羟自由基(·OH)和氢过氧自由基(HO2);2 种过氧化物, 即过氧化氢(H2O2)和过氧化脂质(ROOH)以及一种含氮的氧化物(NO)等。
活性氧检测试验方案
活性氧检测试验方案活性氧检测是一种用于评估物质或生物体中产生的活性氧(ROS)水平的方法。
ROS是一类极具活性的氧化物质,可在正常细胞代谢中产生,并参与多种生理过程。
然而,当ROS的产生超过细胞的抗氧化能力时,就会导致氧化应激,对细胞和组织造成损害,并与一系列疾病的发生和发展相关。
为了测量活性氧的水平,可以使用一系列的试剂和方法。
以下是一个可能的活性氧检测实验方案:实验材料:1.活体组织样本(例如细胞培养物、小鼠肝脏组织等)2.PBS缓冲液3.DCFDA(二氟荧光二乙酸盐)染料溶液4.活性氧产生剂(例如H2O2)5.抗氧化剂(例如维生素C)6.血红素(免疫染色用)实验步骤:1.准备工作:a.将DCFDA溶液按照说明书的要求稀释到适当的浓度。
b.用PBS缓冲液洗涤和预处理样本,去除可能影响实验结果的其他物质。
2.观察基础水平:a.取一小部分样本,不加任何试剂,放入显微镜观察台下。
b.使用适当的增强型荧光显微镜观察样本的荧光强度和分布。
3.活性氧产生实验:a.取适量的样本放入显微镜观察台下。
b.添加一定浓度的活性氧产生剂(例如H2O2),混匀。
c.立即在显微镜观察荧光信号的变化。
d.记录荧光信号的强度和分布。
4.抗氧化剂实验:a.取适量的样本放入显微镜观察台下。
b.添加一定浓度的抗氧化剂(例如维生素C),混匀。
c.立即在显微镜观察荧光信号的变化。
d.记录荧光信号的强度和分布。
5.数据分析:a.使用图像分析软件测量荧光信号的平均强度和荧光染色的面积。
b.对每个样本的数据进行统计分析,如平均值、标准误差等。
c.使用统计学方法(如t检验或方差分析)比较不同处理组之间的差异。
总结:通过以上步骤,可以获得活性氧的水平,评估其在不同条件(如活性氧产生剂和抗氧化剂的存在与否)下的变化。
这个实验方案可以用于研究活性氧在细胞和组织中的作用,以及评估抗氧化剂的功效。
活性氧的检测方法
活性氧的检测方法
活性氧的检测方法有多种,常用的方法有以下几种:
1. 化学反应法:通过活性氧与某些化学试剂(如氧化还原剂、荧光探针等)发生反应,生成有颜色或荧光的产物,再利用光谱仪或荧光光谱仪测定其吸光度或荧光强度,从而间接测定活性氧的含量。
2. 电化学法:利用电化学方法,如电极或电化学传感器,测定活性氧的产生量或消耗量,从而反映活性氧的含量。
3. 生物学方法:利用活性氧对生物体的影响进行测定,如细胞毒性实验、DNA 损伤实验等。
4. 光生光化学方法:利用活性氧对某些光敏染料或光敏细胞的氧化反应,通过测定产生的光信号,来定量测定活性氧的含量。
5. 磁共振法:通过核磁共振技术,利用活性氧与某些标记剂(如自由基捕获剂)的相互作用,从而测定活性氧的含量。
需要注意的是,不同的活性氧种类具有不同的化学性质和反应特点,因此选择合适的检测方法需要根据具体的活性氧种类和实验需求进行选择。
DCFHDA活性氧检测方法
DCFHDA活性氧检测方法DCFH-DA是2,7-二氯二氟荧光酮酰丙二酸对苯二酰肼的简称。
它是一种常用的活性氧检测分子,可用于检测细胞内和细胞外生成的活性氧物种,如超氧阴离子、过氧化氢和羟自由基等。
下面介绍DCFH-DA活性氧检测的原理、操作步骤和应用。
原理:DCFH-DA分子是无色的,能够穿过细胞膜进入细胞内。
一旦进入细胞内,DCFH-DA会被内源酯酶迅速水解成无色的2',7'-二氯荧光酮酮基(DCFH),该分子对氧自由基不敏感。
当细胞内有活性氧物种存在时,这些活性氧物种(如超氧阴离子、过氧化氢等)会氧化DCFH为高度荧光的2',7'-二氯荧光酮基(DCF)。
DCF的荧光强度与活性氧物种的浓度成正比,因此可以通过测量DCF的荧光强度来间接测量活性氧物种的生成。
操作步骤:1.将DCFH-DA溶解在适当的有机溶剂(如二甲基亚砜、乙酸乙酯等)中制备为一定浓度的工作溶液。
2.将细胞或组织样品均匀洒在培养皿或载玻片上。
3.向细胞或组织样品中加入适量的DCFH-DA工作溶液,使其浓度达到合适范围(通常在1-10μM之间)。
4.将细胞或组织样品置于37°C的孵化箱中培养一定时间,通常为30分钟。
5.随后,用PBS或其他缓冲液洗涤样品,以去除细胞外的游离DCFH-DA。
6.在荧光显微镜下观察细胞的荧光图像,并使用适当的激发波长和发射波长测量荧光强度。
应用:DCFH-DA活性氧检测方法可以广泛应用于生物医学研究中,如研究细胞氧化损伤、炎症反应、抗氧化剂活性等。
此外,DCFH-DA还可用于评估药物的抗氧化性能、测量环境中的活性氧物种水平等。
这种方法具有快速、灵敏和简便的优点,广泛应用于细胞和分子生物学研究领域。
总之,DCFH-DA活性氧检测方法通过测量DCF的荧光强度来间接测量细胞内和细胞外活性氧物种的生成水平。
它是一种简单而有效的方法,可以广泛用于活性氧相关的研究和分析。
活性氧测定各种方法及原理
评述与进展 活性氧测定的基本原理与方法林金明3 屈 锋 单孝全(中国科学院生态环境研究中心,北京100085)摘 要 综述了过氧化氢(H 2O 2)、一重态氧(1O 2)、超氧阴离子自由基(・O -2)以及羟自由基(・OH )等活性氧的测定方法。
侧重介绍活性氧的化学反应法、捕捉法和直接测定法的基本原理和最新的进展情况,并比较了这几种方法的各自特点。
关键词 活性氧,化学发光,自由基,评述 2001211208收稿;2002205205接受本文系中国科学院“百人计划”和国家杰出青年科学基金资助项目(N o.20125514)1 活性氧氧是生命运动过程中不可缺少的一种气体,人们一旦处于缺氧或者供氧不足的环境中,就会感到憋气的痛苦甚至死亡。
所以,自从1770年代初英国人Joseph Priestley 发现氧以来,氧一直被人们认为是一种对人体百益而无一害的气体。
可是,科学技术迅速发展起来的今天,我们知道,不管是空气中的氧还是水中的溶解氧都具有较高的氧化性,与一般的金属铁一样,处于空气中的人体各部位都在不断地受到氧的腐蚀而“生锈”,当然这种腐蚀与铁不同,它体现在人体的细胞水平上。
特别是人体各种器官随着年龄的增大不断地老化更是这种腐蚀“生锈”的直观表现。
1969年McC ord 与Fridovich 1发现,在生化反应过程中O 2获得一个电子还原生成超氧自由基(O -2),进而经过红血球的分离精制后获得O -2的清除灭活酶,并命名为超氧化物歧化酶(superoxide dismultase ,S OD )。
这一发现激发了大批的科学研究者致力于O -2的生成过程、反应活性、毒性、生理和病理等等各方面的研究,去探索解明S OD 在生理学上的意义。
同时由O -2衍生出来的过氧化氢(H 2O 2)、羟自由基(・OH )、激发态氧(一重态氧或称单线态氧,1O 2)也受到了人们的重视。
近10多年来,活性氧在人体内的作用受到人们极大的关注,报道了大量有关活性氧,特别是超氧自由基和羟自由基与机体细胞的许多功能活动以及各种疾病,如癌、动脉硬化、糖尿病、心脑血栓、缺氧再灌注综合症、感染以及衰老效应等相关的研究论文和著作2~8,引起人们对活性氧的普遍兴趣,从而激发了人们更深入地去研究活性氧的各种特性,开发各种相关的抗氧化、抗衰老物质,在医学和分子生物学领域已成为一项广泛引起重视的研究课题。
光反应性活性氧(ROS)测定试验方法
附件5光反应性活性氧(ROS)测定试验方法ReactiveOxygenSpecies(ROS)AssayforPhotoreactivity1范围本方法规定了化妆品用化学原料光反应性活性氧(RoS)测定试验的基本要求和方法。
本方法适用于预测化妆品用化学原料的潜在光毒性。
2试验目的预测化妆品用化学原料是否具有潜在光毒性。
3定义下列术语和定义适用于本方法。
3.1光反应性Photoreactivity化学物质由于吸收光子而与另一个分子发生反应的性质。
3.2光毒性Phototoxicity皮肤一次接触化学物质后,继而暴露于紫外线照射下所引发的一种皮肤毒性反应,或者全身应用化学物质后,暴露于紫外线照射下发生的类似反应。
本方法所述光毒性包括光刺激性、光过敏性和光遗传毒性。
3.3辐照度Irradiance照射到某一表面的紫外线或可见光的强度,单位为瓦每平方米(W∕m2)或亳瓦每平方厘米(m∖V∕cm2)o 3.4光照剂量Doseoflight照射到某一表面的紫外线或可见光的量[=强度X时间(秒)],单位为焦耳每平方米(J∕m2)或焦耳每平方厘米(J∕cm2)。
3.5活性氧种类ReactiveOxygenSpecies,ROS活性氧种类,包括单线态氧和超氧阴离子。
3.6单线态氧SingIetOxygen,SO由光辐照化学物质通过11型光化学反应产生的一种自由基。
3.7超氧阴离子SuperoxideAnion,SA由光辐照化学物质通过I型光化学反应产生的一种自由基。
4试验原理一些具有光反应性的化学物质暴露于紫外线时,吸收某一波长光子,诱导发色团激发,激发能量转移到氧分子上,发生光化学反应,产生活性氧(包括单线态氧SO和超氧阴离子SA),活性氧是光毒性反应中的重要中间物质。
单线态氧和咪哇反应生成的过氧化物中间体对N,N-二甲基-4-亚硝基苯胺(RNo)具有漂白作用,使其在440nm下的吸光度降低。
超氧阴离子与氯化硝基四氮嘎蓝(NBT)反应生成NBT+,其在56Onm波长下具有光吸收。
血液中活性氧含量计算公式
血液中活性氧含量计算公式活性氧是指一类具有较高活性的氧化剂,包括超氧阴离子、羟自由基、过氧化氢等,它们在机体内能够引起细胞损伤和炎症反应。
血液中的活性氧含量是一个重要的生理指标,它反映了机体内氧化应激的程度,对于了解机体抗氧化能力和疾病的发生发展具有重要意义。
血液中活性氧含量的计算公式可以通过测定血液中活性氧的浓度来得到。
一般来说,可以通过检测血液中超氧化物歧化酶(SOD)活性、过氧化氢酶(CAT)活性和谷胱甘肽过氧化物酶(GPx)活性来间接反映血液中活性氧的含量。
这些酶类物质在机体内起着重要的抗氧化作用,通过测定它们的活性可以推断出血液中活性氧的含量。
具体的计算公式如下:活性氧含量 = SOD活性 + CAT活性 + GPx活性。
其中,SOD活性、CAT活性和GPx活性分别代表超氧化物歧化酶、过氧化氢酶和谷胱甘肽过氧化物酶的活性。
这些酶类物质在体内具有重要的抗氧化作用,能够清除体内的活性氧,保护细胞免受氧化损伤。
测定血液中活性氧含量的方法可以采用化学发光法、比色法、电化学法等。
其中,化学发光法是一种常用的测定方法,它通过检测血液中活性氧的发光强度来间接反映活性氧的含量。
比色法则是通过检测血液中的色素变化来测定活性氧的含量,而电化学法则是通过检测血液中的电流变化来测定活性氧的含量。
血液中活性氧含量的计算公式可以帮助我们了解机体内氧化应激的程度,对于预防和治疗氧化应激相关疾病具有重要的意义。
通过测定血液中活性氧的含量,可以及时发现机体内的氧化应激反应,采取相应的干预措施,保护细胞免受氧化损伤,维护人体健康。
除了测定血液中活性氧含量,我们还可以通过其他方法来评估机体内氧化应激的程度。
例如,可以测定血液中抗氧化物质的含量,如维生素C、维生素E、谷胱甘肽等,它们能够中和体内的活性氧,保护细胞免受氧化损伤。
此外,还可以测定血液中氧化应激标志物的含量,如丙二醛、羰基蛋白等,它们是氧化应激反应的产物,能够反映机体内氧化应激的程度。
dhe探针检测ros步骤
dhe探针检测ros步骤
使用DHE(二氢乙啶)探针检测ROS(活性氧)的步骤如下:
1.溶解DHE成为stock溶液。
2.将DHE加到需要检测的样品中,如分离后的线粒体样品。
一般所用DHE浓度为5~20
μM。
将加有DHE的样品在适宜温度(如37°C)下孵育一定时间(如30分钟),让DHE能进入细胞内。
3.用荧光分光光度计检测该样品的荧光强度。
DHE在与ROS发生反应后,能被氧化成为
红色荧光的二氢乙烯八酮(DHEO)。
因此检测荧光强度即可反映ROS的含量。
激发波长一般选择为485nm,发射波长选择580nm。
4.根据标准曲线,计算出样品中的ROS浓度。
制作DHE标准曲线时,需要使用已知浓度
的H2O2或其他ROS作为标准品。
5.在不同时间点重复检测,以观察ROS浓度的变化。
请注意,使用DHE检测ROS的主要限制在于DHE自身也可能产生背景荧光,有部分DHE可能还原成未氧化的形式。
但总的来说,DHE仍是一种敏感、有效的ROS检测方法,它能很好地反映线粒体样品中ROS的变化情况。
流式细胞术检测活性氧
流式细胞术检测活性氧一,摘要活性氧(ROS)是包含羟基自由基或具有不成对电子的过氧化物的分子。
在健康的需氧细胞中,ROS是作为氧化磷酸化,氧化还原酶或金属催化的氧化产物以受控速率自然生成的。
但是,在某些应激条件下,尤其是暴露于环境氧化剂和某些导致氧化应激的药物中,可能会诱导产生ROS。
过量的ROS可能会破坏包括DNA,蛋白质和脂质在内的细胞构件,最终导致细胞死亡。
细胞渗透性2',7'-二氯二氢荧光素二乙酸酯(H2DCFDA)是广泛使用的ROS指示剂。
还原的非荧光素H2DCFDA可被细胞内ROS氧化并转化为荧光2',7'-二氯荧光素(DCF)。
本文应用H2DCFDA标记细胞内ROS,并通过流式细胞仪检测DCF强度。
二,材料和试剂1.需要分析的细胞(本方案在A549, CL1-0, 和IMR-90 细胞上成功实践过)2.Dulbecco's Phosphate-buffered saline (DPBS)3.2’,7’-dichlorofluorescein diacetate (H2DCFDA) (Life Technologies, InvitrogenTM, catalog number: D-399 )4.Anhydrous DMF (N,N-dimethylformamide) (Sigma-Aldrich, catalog number: 227056 )5.N-acetyl-L-cysteine (NAC) (Sigma-Aldrich, catalog number: A7250 )6.Hydrogen peroxide (H2O2) (Sigma-Aldrich, catalog number: 349887 )7.5 ml polystyrene BD falcon round-bottom tube with cell strainer cap (BD Biosciences, catalog number: 352235 )8.Sodium Chloride (NaCl)9.Potassium Chloride (KCl)10.Potassium Phosphate, monobasic (KH2PO4)11.Sodium Phosphate, dibasic (Na2HPO4)12.DPBS (参见配方)13.H2DCFDA stock (10 mM) (参见配方)14.NAC stock (1 M) (参见配方)15.H2O2 stock (1 M) (参见配方)三,设备1.流式细胞仪2.水浴锅3.离心机四,过程1.将细胞用完全培养基在37 °C和5% CO2的6cm皿中培养。
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展。直到 1969 年 McCord 和 Fridovich[ 1] 发现 了清 除 超氧 化物 自由 基的 超氧 物 岐化 酶 ( SOD) 并研究其生物学作用, 提出了氧毒性 的超氧化物自由基学说后 , 人们才开始逐步 认识到自由 基在生物 体内存在 的危害 , 同 时 , 由于分子生物学的迅猛发展, 研究短寿 命的自由基的方法有所突破, 带动自由基生 物学的发展 , 使自由基生物学这门学科渗透 到医学、 植物生理学、 病理学等许多学科中, 显示出其极大的发展前景。 生物学、 医学最先研究活性氧的方法, 有脉冲射解 、 快速停流 、 顺磁共振和自旋 搜集技术 [
[ 3] .
第2期
陈惠萍等:
活性氧的检测方法
15
SOD 作用的底物 , 故原则上许多检 测 SOD 的方 法, 如化 学 发光、 NBT ( 氮 蓝四 唑 ) 还 原、 细胞色素、 连苯三酚、 肾上腺素都可以用 来检测生物系统的 O2. , 但干扰因素很多, 实 际应 用时困难不 少[ 4~ 6] 。 1976 年 Elest ner 等 提出用羟胺氧化反应来检测生物材料 的 O 2. 。此法灵敏 度高, 专一性好 , 药 剂价 廉。能同时检测大量样品。但叶绿素等色 素含量严重影响比色测定。王爱国等 为 了消除这些干扰 , 对实验步骤进行了改进, 并在分离时以乙醚取代正丁醇 , 检测了四季 豆幼苗叶片 叶绿体在光 暗下衰老 过程 O2 产生速率, 其结果与 McRac 等
1
、 水稻
[ 17]
、 眉豆
[ 18]
等植物上观察到
的现象类似。 4
1
O2 的检测 早在 1930 年 , M ulliken 通过 分子轨道
的计算就已 预言单 线态氧的 存在, 但 直至 1963 年 Khan 和 Kasa 发现 可以 用 NaOCl 和 H 2 O2 反应来产 生单线态氧才 使该领域 研究 得以迅速发展。用于1 O 2 检测的 方法 有化学发光法、 猝灭剂抑制法、 在2 H 2 O 中延 长寿命法、 产物分析法等几种方法 。其 1 中最直接的检 测方法是观察 O2 的化学发 光, 这种方法需要聚集较大量的1 O2 才能检 测出来。使用1 O 2 猝灭剂抑制 1 O2 参与的反 应, 最常使用的是类胡萝卜素, 它以物理方 式或猝灭 1O 2 而自 身并不发生任 何化学反 应。此外还有叔胺、 维生素 E 、 氮化合物、 四 甲基 乙烯、 2, 5
摘要 关键词
简述近代植物组织活性氧的检测方法及其例证。 活性氧 自由基 检测
凡是含有不成对电子的分子、 原子或离 子都统称为自由基。所有的自由基都有极 高的化学活性 , 非常活泼, 具有很强的氧化 能力, 常常与相邻的物质迅速反应, 寿命极 短且浓度低, 可以发生链式反应。生物自由 基是通过生物体自身代谢产生的一类自由 基, 具备一般自由基所具有的上述特点。 生物 体内的 自由基 主要是 指活性 氧。 所谓活性氧就是氧的某些中间代谢产物或 含氧的衍生 物质, 具有比氧 更强的氧 化能 力。在植物组织中, 活性氧类型主要有: 超 氧阴离子( O2. )、 过氧化氢 ( H 2 O2 ) 、 羟自由基 ( OH ) 、 单线 态氧 ( 1 O2 ) 和脂质过 氧化自由 基( ROO ) 等。它们存在于植物细胞壁、 叶 绿体、 线粒体、 微粒体和细胞核等部位。在 正常情况下 , 活性 氧水平很 低不会引 起伤 害, 细胞内活性氧的产生与清除处于一种动 态平衡状态。一旦这种平衡被打破 , 就可能 产生伤害作用 , 首当其冲的就是膜系统, 导 致膜脂过氧化或脱脂化, 膜差别透性丧失, 离子大量外渗 , 引起一系列生理生化变化, 代谢紊乱 , 严重时植物死亡。 50 年代初期出现了自由基生物学 , 但由 于当时借助的是电子共振仪来研究自由基 , 其仪器昂贵 , 难于普及, 阻碍了这一学科的发
[ 12] [ 13] [ 14]
。然
而, 这 些 方 法 均 不 能 定 量 测 定 生 物 体 内 OH 的含量。随后根据 OH 可使胸腺嘧啶 或胸腺嘧 啶核苷羟 化的原理 来测定 OH , 此法虽检测 OH 较专一, 但操作较繁琐, 药 品较 昂贵, 一般实验 室使用受 到局限。 80 年代末, Babbs 等
第 6卷 第 2期
V ol. 6 N o. 2
华南 热 带 农 业 大 学 学 报
JO U RN AL O F SOU TH CHIN A U N IV ERSIT Y O F TRO PICA L A G RICU LTU R E
2000 年 6 月
Jun. 2000
活性氧的检测方法
陈惠萍
( 华南热带农业大学农学院 海南儋州 571737)
[ 16] [ 15]
幼苗叶片叶绿体中由 1 O2 所介导的 NDA 漂 白作用明显加强, 这种漂白作用可为 1O 2 的 清除剂 Car 显著抑制, 而为促进 O 2 形成 的光敏化剂 RF( 核黄素 ) 和 NB( 亚甲基蓝 ) 所促进, NDA 的漂白与 Car 、 Chl 的 降解及 膜脂过氧化产物 MDA 的增加存在 极显著 的相关 关系。用以上 各种方法对 1 O2 进行 检测 的报 道尚 少, 也许是 1 O2 在体 内寿 命 短 , 难以检测的缘故。 5 脂类过氧化物( M DA) 的检测
9]ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
1 OH 、 O2. 、 O 2 比较 而言, H 2 O2 是最稳 定的
活性氧。测定 H 2 O2 的方法较多 , 有碘滴定 法、 分光光度法、 化学发光法、 荧光法等测定 方法[ 3 ] 。由于过氧化氢酶和过氧化物酶可 以清除体内产生的 H 2 O2 , 故还可以通过测 定这 两类 酶的 活性来 估测 H 2 O 2 的水 平。 总的来说, 这些方法受到多种因素影响, 如 样品杂 质、 人 为因 素、 灵 敏 度 等。林 植 芳 等 在 M acNev in 等 及 P at terson 等 方法的基础上, 对 H 2 O2 含量测定进行了改 进 , 此法步骤为 : 叶片或叶绿体加冷丙酮提 取 , 然后取 1 mL 提取 液加 0. 1 m L 20 % T iCl4 浓 H Cl 液, 0. 2 mL 浓氨水。生成的过 氧化物 T i 复合物用 3 000 r/ min 速度离 心 10 min, 沉淀再用丙酮悬浮洗涤 5 次以减 少色 素 的 干 扰。最 后 将 沉 淀 溶 于 3 mL 1mol/ L H 2 SO4 中, 410 mm 波长 测定光 吸
2]
, 然而这些技术所需要的仪器
十分昂贵, 一般实验室无法购置。近代对活 性氧的检测虽有较大进展 , 但因活性氧在体 内活泼 , 产生的量相对较少 , 因此, 到目前为 止 , 活性氧的检测技术并未彻底解决 。这 无疑大大影响了研究活性氧的进展。为此, 寻找出简便、 易行、 可靠的活性氧检测方法, 将有助于活性氧在有关研究领域的开展。 1 O2. 的检测 最先用于检测 O2 的方法有: 电子顺磁 共振波谱分析法及酶学分析法等 。这些 方法局限性大, 灵敏度也不高。由于 O 2. 是
[ 9] . [ 8] [ 7]
法 , 他们利用这一方法成功地检测到百草枯 处理的水生植物浮萍( Lamnamin) 和多年生 野黑麦( LaL ium pererne) 中 OH 的产生, 并 且首次观察到生物系统中致死剂量的 OH 水平, 此法采用 DMSO 为 OH 的分子探针, 以 DMSO 与 OH 的 反应产 物甲基 亚磺 酸 ( M et hanesulfinic acid, MSA) 作为 OH 形成 的标志 : CH 3 SO CH 3 + OH ! CH 3 SOOH + CH 3 DM SO 与 OH 氧化后形成的单一而又 稳定的产物 M SA 易从组织中提取出来, 且 可用分光光度计测定。所以 DMSO 是捕获 OH 的理想分子探针 , 对 OH 检测来说 , 这 是个突破。首次直接检测生物体内活性氧 存在及实际水平 , 无疑为我们研究生物体内 活性氧的相互关系及调节机理奠定了基础。 但此法冗长而繁琐, 所用药剂毒性较大, 灵 敏度较低, 有待于我们在实验中不断改进。 3 H 2 O2 的检测 H 2 O2 在 化 学上 常 作 为 弱 氧 化剂 , 与
用电子自
旋共振检测结果规律相似。这两者各有优 点, 电子自旋共振法虽操作相对简便, 但所 用仪器昂贵, 而羟胺氧化法所需费用则要低 得多。运用羟胺氧化法时还必须严格控制 反应系统 pH< 8. 0, 并尽可能降低反应中的 溶解氧及铁含量 , 这样测出的 O 2. 产生速率 才更接近实际水平。 2 OH 的检测 由于 OH 是生 物 体 内最 活 泼 的活 性 氧, 寿命极短, 故给检测带来了困难。过去 人们主要是根据 SOD 和 CAT 对其产生的 抑制作用以及 OH 清除剂 ( 如乙醇 、 甘露 醇、 叔丁醇、 苯甲酸钠、 生育酚等) 对其产 生的 清除作用 等来估测 OH 水平。此 外, 还可用 DMPO ( 5, 5 二 甲基 1 吡咯 啉 N 氧化物 ) 作为自旋捕获剂进行电子顺 磁共振 ( EPR ) 自旋捕获以及检测蛋氨酸 形成乙烯的速率等估测 OH 的产生[
[ 10~ 11]
发现了一 种新的方
16
华南热带农业大学学报
第6卷
收。按同样程 序制备 H 2 O2 标准曲线。此 法简便快捷 , 易掌握易操作, 保证在较短时 间内 完成 对 H 2 O2 的检 测, 从而 提高准 确 度。许长成等 采用此法进行实验 , 证实 大豆叶片 H 2 O2 在干旱条件很快累积, 与在 黄麻
甲基 呋喃、 9, 10 二 苯基
2
酮。O2 的寿命在 H 2 O 中比在 H 2 O 中长得 多, 故在 H 2 O 中寿命延长法可以确定某个 反应是否产生1 O 2 或有1 O2 的参与。产物分 析法也可以用于1 O2 的检测。有人认为1 O2 的检测比其它活性氧困难。在微粒体等完 整细 胞器中检测 1 O2 已 获得成功。但 在植 物方面, 尤其是完整叶绿体中 O2 的检测仍 然不完善。蒋 明义等 [ 20] 参照 Chakraborty 和 T ripat hy [ 21] 所采用的方法 , 以 H is( 组氨 酸) 作为1 O2 的分子捕获 剂, 用分 光光度法 检测 NDA( 对亚硝基二甲基苯胺) 的漂白反 应作 为1 O2 产生的指标。检测了水稻 叶绿 体中1 O 2 的产生 , 实验证实, 在- 0. 8MP a 渗 透胁迫及 250 mol. m