中心静脉导管标本细菌学检验标准操作规程
中心静脉导管培养标本采集流程
中心静脉导管培养标本采集流程
1. 准备工作
- 戴无菌手套和防护装备
- 准备无菌采血管、无菌生理盐水、70%酒精棉球、无菌敷料和医用胶带等
- 将患者放置于适当位置,确保静脉导管暴露部位清晰可见
2. 皮肤消毒和隔离
- 用70%酒精棉球从插管部位向外环绕消毒皮肤,至少30厘米半径- 用无菌敷料和医用胶带隔离插管部位周围环境
3. 管腔封闭系统冲洗
- 用无菌生理盐水冲洗静脉导管的每一个管腔,以清除残留物
- 若有反向血流,采集一部分用于培养
4. 标本采集
- 用无菌采血管采集血液标本,可从每个管腔分别采集
- 采血量因检测项目而定,一般为5-10毫升
- 采血后用无菌生理盐水冲洗并锁管
5. 标本处理
- 将采集的标本标记好患者信息和采集时间
- 尽快送至微生物实验室进行培养和鉴定
6. 记录和监测
- 详细记录操作过程、临床症状和体征变化
- 密切监测患者生命体征,观察是否出现并发症
以上是中心静脉导管培养标本采集的基本流程,需要严格遵守无菌操作原则,避免污染。
同时要注意患者的舒适度和安全,采取必要的监护措施。
导管相关操作规程
导管相关血流感染预防与控制标准操作规程一、置管时（1）严格执行无菌技术操作规程。
置管时应当遵守最大限度的无菌屏障要求。
置管部位应当铺大无菌单（巾）；置管人员应当戴帽子、口罩、无菌手套，穿无菌手术衣。
（2）严格按照《医务人员手卫生规范》，认真洗手并戴无菌手套后，尽量避免接触穿刺点皮肤。
置管过程中手套污染或破损应当立即更换。
（3）置管使用的医疗器械、器具等医疗用品和各种敷料必须达到灭菌水平。
（4）选择合适的静脉置管穿刺点，成人中心静脉置管时，应当首选锁骨下静脉，尽量避免使用颈静脉和股静脉。
（5）采用本医疗机构统一购入的符合卫生行政部门批准的皮肤消毒剂消毒穿刺部位皮肤，自穿刺点由内向外以同心圆方式消毒，消毒范围应当符合置管要求。
消毒后皮肤穿刺点应当避免再次接触。
皮肤消毒待干后，再进行置管操作。
（6）患疖肿、湿疹等皮肤病或患感冒、流感等呼吸道疾病，以及携带或感染多重耐药菌的医务人员，在未治愈前不应当进行置管操作。
二、置管后（1）应当尽量使用无菌透明、透气性好的敷料覆盖穿刺点，对于高热、出汗、穿刺点出血、渗出的患者应当使用无菌纱布覆盖。
（2）应当定期更换置管穿刺点覆盖的敷料。
更换间隔时间：无菌纱布为1次/2天，无菌透明敷料为1～2次/周，如果纱布或敷料出现潮湿、松动、可见污染时应当立即更换。
（3）医务人员接触置管穿刺点或更换敷料时，应当严格执行手卫生规范。
（4）保持导管连接端口的清洁，注射药物前，应当用含碘消毒剂或75%酒精进行消毒，待干后方可注射药物。
如有血迹等污染时，应当立即更换。
（5）告知置管患者在沐浴或擦身时，应当注意保护导管，不要把导管淋湿或浸入水中。
（6）在输血、输入血制品、脂肪乳剂后的24小时内或者停止输液后，应当及时更换输液管路。
外周及中心静脉置管后，应当用生理盐水或肝素盐水进行常规冲管，预防导管内血栓形成。
（7）严格保证输注液体的无菌。
（8）紧急状态下的置管，若不能保证有效的无菌原则，应当在48小时内尽快拔除导管，更换穿刺部位后重新进行置管，并作相应处理。
中心静脉导管管尖培养 操作规程
中心静脉导管管尖培养操作规程
目的正确采集中心静脉导管尖端标本，协助诊断导管相关性血流感染。
相关知识导管相关性血流感染的确诊标准：静脉置管>48小时后出现发热等感染表现，导管管尖和血培养或成对血培养（即分别经中心静脉导管、对侧肢体
外周静脉采血）均培养出同种细菌，并除外其他部位的感染，拔管后发热
等症状缓解。
用物
患者/家属教育 1 为了预防感染和空气栓塞，穿刺点需用不透气敷贴密闭覆盖24
小时后除去。
2 穿刺点有少量渗血不必慌张，如果渗血较多需通知护士及时更换
敷贴，并进行局部压迫止血。
护理记录 1 中心静脉导管拔除日期和时间。
2 拔管过程中患者有无不适，导管完整性、有无脓液、气味、穿刺点情
况等。
风险防范中心静脉管尖培养操作过程中存在空气栓塞、标本污染等风险。
临床微生物标本采集送检要求
龚瑞娥 中南大学湘雅医院
1
临床微生物标本送检意义
• 明确诊断 • 合理选用抗感染药物，提高感染治愈率 • 了解细菌耐药情况 • 及时发现感染及暴发
2
细菌学标本送检基本原则
• 及时采集 • 在抗菌药物使用前采集 • 采样时严格执行无菌操作 • 采样后及时送检 • 送检标本应注明来源和目的
13
闭锁性脓肿、瘘采样
• 穿刺 • 引流 • 开放性瘘 • 闭锁性瘘
14
结果分析
• 革兰染色阳性 • WBC>＋ • 细菌培养阳性 • 细菌培养阴性
15
血标本采集
• 采集时机 • 血量 • 室温 • 厌氧培养
16
采血部位与时机
• 通常为肘静脉，切忌在静滴抗菌药物的静 脉处采血。
• 除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不 应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管 常伴有定植菌存在。
18
为什么不采集单瓶的血培养
• 有研究表明，对于全自动的血培养仪，分 析24小时内采集满3套（每套为1瓶需氧，1 瓶厌氧，每套采血量20ml，每瓶10ml）分 离率，第一套检出率73.1%，第2套累积检 出率为89.7%，第三套累积检出率为98.3%。
19
采血指征时机
20
中心静脉导管监测采血要求
保留导管
拔除导管
从该可疑的CR-BSI患者采 从独立的外周静脉无菌采 集至少2套血培养，其中 集2套血培养。无菌状态 至少一套来自外周静脉， 下取出导管并剪下5cm导 并做好标记，另一套则 管尖端或近心断做半定量 从导管中心采集，2个来 或定量培养 源的采血时间必须接近 （不›5分钟）并做好标 记
21
3
及时送检
中心静脉导管标本细菌学检验标准操作规程
中心静脉导管标本细菌学检验标准操作规程1. 目的规范中心静脉导管标本细菌学检验标准操作规程，确保检验结果准确可靠。
2. 适用范围中心静脉导管细菌培养。
3. 标本中心静脉导管标本。
4. 试剂、仪器4. 1革兰染液、氧化酶试剂、3%触酶、血琼脂平板、巧克力平板、麦克凯平板、相关生化试剂等。
4.2 VITEK鉴定系统；革兰阴性菌鉴定卡（GNI+）、革兰阴性菌药敏卡（GNS）、革兰阳性菌鉴定卡（GPI）、革兰阳性菌药敏卡（GPS）、真菌鉴定卡（YBC）、药敏纸片、TBA 板条等，有效期及储存条件参见试剂说明书。
4.3 接种针、接种环、电热灼烧器、显微镜、孵育箱、CO2培养箱等。
5. 细菌鉴定和药敏质控参见《质量管理程序》6. 检验步骤用无菌镊子将5cm导管（近心端）在血琼脂平板和麦康凯平板上交叉滚动四次，然后弃之，在35°C，5%-10%CO2孵育箱培养18-24小时，根据菌落及染色形态特点，作出初步判断，再按各类细菌的生物学特性进行鉴定。
7. 结果报告7.1 若48小时无细菌生长，报告“培养2日无细菌生长”。
7.2 报告菌名和抗菌药物药敏试验结果。
8. 注意事项8.1 如血琼脂平板上生长≥15个菌落，提示有潜在导管相关性感染，应进行细菌鉴定和药敏试验，同时建议抽血作血培养。
8.2 若为2种细菌生长，且菌落计数均≥15个菌落/平板，均应进行细菌鉴定和药敏，建议作血培养确证。
9 临床意义判断中心静脉导管是否有细菌生长，指导临床医师是否拔除导管还是保留导管。
参考文献[1]吴爱武主编.床微生物学与检验实验指导.第三版. 北京：人民卫士出版社，2007[2]中华医学重症医学专业委员会. 血管内导管相关感染的预防与治疗指南（2007）.2007编写人：AAA、BBB 操作人：本室操作人员批准人：。
血培养标本采集 (2)精选全文
可编辑修改精选全文完整版血培养标本细菌学采集、运送、验收标准操作规程1．目的标准血培养标本细菌学采集、运送、验收标准操作规程，确保检验结果精确可靠。
2. 范围微生物实验室受理血培养瓶。
3. 职责3.1 医护人员正确采集血培养标本送检。
3.2 临床科室标本运输人员负责及时将血培养标本送至检验科微生物室。
2血培养指证2.1患者出现寒战，发热〔≥38℃〕或低温〔≤36℃〕.2.2白细胞增多〔＞10×109/L，特别有“核左移〞未成熟的或带状的白细胞增多〕皮肤粘膜出血；血液病患者出现粒细胞减少〔成熟的多形核白细胞<1×109/L〕，血小板减少等.2.3疑心血流感染时，医院内肺炎.2.4留置中心静脉导管超过72h.2.5感染性心内膜炎、骨髓炎、昏迷。
2.6有严峻根底疾病、免疫缺陷伴全身感染病症、多器官衰竭。
2.7临床医生疑心有血流感染可能的其他情况.〔血压降低，CRP 升高及呼吸快〕。
2.8新生儿菌血症，应同时做尿液和脑脊液培养。
3血培养采集3.1采集血量：采血量以培养基的 1/10 为宜，成人每瓶采集：5～10ml,婴儿每瓶采集：1～2ml。
儿童每瓶采集：2～5 ml。
婴幼儿病人，一般只抽一瓶需氧瓶进行培养，无需常规做厌氧瓶。
3.2血培养份数和采血时间对疑心菌血症的成人患者，推举同时采集2-3套〔不同部位〕血培养标本。
婴幼儿患者，推举同时采集2次〔不同部位〕血培养标本。
一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份培养或一套血培养。
屡次采血不应在同一部位进行，应更换部位。
对于间歇性寒颤或发热应在寒颤或体温顶峰到来之前0.5-1小时采集血液。
对于某些全身性和局部感染患者采血培养的建议：〔一瓶需氧瓶，一瓶厌氧瓶为一套，或者两套需氧瓶为一套〕急性发热疑心菌血症者，应尽量在抗菌药使用之前，在10分钟内于不同部位采集两套血培养标本。
对于非急性感染，疑心有菌血症者，应在24h内于不同部位采集2-3份血标本，每次采血的间隔不应小于3h，并应于抗菌给药前采血。
中心静脉导管(CVC)感染的危险因素及护理对策
中心静脉导管（CVC）感染的危险因素及护理对策摘要：从导管因素、置管部位、置管时间及操作技术方面等对引起中心静脉导管感染的因素进行了分析，诊断并针对性提出了护理对策。
关键词：中心静脉导管、感染、因素、分析。
引言：中心静脉置管技术在临床已得到广泛应用,它不仅为危重病人的抢救提供了开放的静脉通道,使静脉高营养( PN)等治疗得以进行, 而且还能经导管( SWAN-GANZ CATHETER) 获得中心静脉压( CVP)等血流动力学参数,是一种有效的治疗与监测手段。
但中心静脉置管所致感染的几率也在增高,已成为医院内感染的重要部分,约占院内感染的 10 %～ 15 % 。
为减轻患者反复静脉穿刺的痛苦,避免外周静脉药物外渗、静脉炎等并发症的发生及中心静脉置管引起的相关感染已成为医院感染的常见并发症。
这引起了国内外护理同行的重视，对其发生的原因进行了大量的研究，并提出了一些相应的对策，现综述如下：1 中心静脉导管相关性感染因素1.1导管因素导管因素主要集中于导管材料的选择上，此类材料要求不易引起血栓和感染，并具备良好的生物相容性，目前，硅及聚氨酯为CVCs的主要材料，应用聚氯乙烯导管血栓性静脉炎发生率高达70%，硅胶管仅为20%，多腔导管较之单腔导管感染机会增多，因为多腔导管通道多、管腔分隔，岁虽可满足不同成分液体同时输入，避免药物的配伍禁忌，但增加了接头污染的机会。
文献报道：单腔导管感染率为8.3%，双腔导管感染率高达37.3%。
1.2置管部位置管部位应根据不同的疾病而定。
如血液透析病人可选择颈内静脉、锁骨下静脉、股静脉3种方式。
锁骨下静脉置管安全可靠，保留时间长，适合门诊透析病人。
颈内静脉置管操作方法易掌握，保留时间长，适合昏迷病人。
股静脉置管操作方法简便，术后并发症少，但不宜长时间保留。
3种置管方式各有利弊，应根据病人的具体情况来选择。
气管切开病人不宜选用颈内静脉置管，易被痰液污染；老年病人尽量不用锁骨下静脉置管，易造成气胸；股静脉置管易被二便污染，且不方便观察。
静脉采血的无菌操作流程及评分标准
静脉采血的无菌操作流程及评分标准静脉采血是医疗工作中常见的操作之一，在临床实践中具有重要的意义。
为了确保采血的准确性和安全性，无菌操作流程及相应的评分标准是必不可少的。
本文将介绍静脉采血的无菌操作流程，并详细阐述了评分标准。
一、无菌操作流程1. 准备工作在进行静脉采血之前，需要做好充分的准备工作：- 洗手：将双手用流动水和合适的洗手剂进行洗手，至少要洗净指甲缝和手腕部位，并用干净的纸巾或者洗手纸擦干。
- 穿戴个人防护用具：佩戴一次性手套、口罩和帽子，确保头发和口鼻部分完全被遮盖住，以防止细菌的污染。
- 准备工具：准备好针头、采血管、消毒棉球、一次性注射器等相关的工具。
2. 患者准备- 人员准备：在进行操作前，医务人员应通过询问患者的相关病史等信息，确保其无禁忌症。
- 选择合适的位置：选择合适的静脉采血部位，常见的选择有桡动脉、尺动脉等，根据具体情况选择。
3. 皮肤消毒- 准备无菌物品：取出已经浸泡在消毒液中的消毒棉球。
- 消毒操作：用无菌消毒棉球沿着静脉采血部位的周围进行顺时针或逆时针的旋转消毒，持续约30秒，确保消毒彻底。
4. 采血操作- 选择适当的针头：根据患者的血管情况和需求，选择合适的针头。
- 穿刺操作：将选好的针头沿着静脉采血部位的方向插入皮肤，注意插入的深度。
- 固定针头：插入后将针头固定住，避免移动或脱落。
- 采集血样：用一次性注射器连接采血管，将该采血管插入针头的连接接口，慢慢采集所需血样。
- 采集结束：采集结束后，拔掉针头，将所采血样放入相应的容器中。
- 堵针：用无菌棉球轻轻按压穿刺点，以防止出血。
5. 垃圾处理- 处理一次性用具：将一次性手套、消毒棉球等废弃物分类投放到相应的垃圾袋中，确保无菌操作的完整性。
- 清洁工具：对使用过的工具进行清洁、消毒，并放置在指定位置。
二、评分标准为了确保静脉采血的质量和安全性，评分标准是必要的。
以下是一些常用的评分标准：1. 洗手和穿戴个人防护用具：对医务人员进行洗手和穿戴个人防护用具的过程进行评分，包括严格遵守洗手程序、个人防护用具是否齐全等。
导管相关血流感染标本采集
导管相关血流感染标本采集
时机：
1.使用抗菌药物前、停用抗生素后
2.寒战开始时、发热高峰前0.5-1小时采血，不知晓发热规律时
在寒战或发热半小时后采血
3.如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物使用前采集
部位:
1.同时分别从外周静脉两个部位采集标本
2.因特殊原因自留置导管内采血时，对侧肢体血培养标本应选
择从外周静脉采集
消毒方法:
1.橡皮塞:用75%酒精反复摩擦、消毒血培养瓶;用无菌棉签或纱
布清除表面剩余酒精
2.皮肤:用75%酒精消毒采集处皮肤位点，消毒液接触皮肤时间
至少30秒，待干;再用碘伏消毒采集处皮肤位点，消毒液接触皮肤至少1-2分钟，待干
顺序:
1.按先厌氧瓶、后需氧瓶顺序采集，每个部位应需氧和厌氧培养
各一瓶
血量:
2.成人每培养瓶采血8-10ml,5分钟内完成采集
3.婴幼儿每培养瓶（儿童瓶）采血1-5ml，采集量是总血量的1%
保留导管∶
1.分别从外周静脉和导管内各采取1套血培养标本
2.在培养瓶上标注采集部位，送往微生物实验室
不保留导管:
1.在外周静脉采集2套血培养标本
2.同时通过无菌操作剪取已拔出的导管尖端5cm,放置于无
菌瓶中送往微生物实验室。
中心静脉留置导管护理操作规程
中心静脉留置导管护理操作规程
◆上机
1.消毒、铺无菌巾。
2.抽吸出管腔内肝素盐水（每腔1.5-2ml）弃去，并检查导管的通畅性（快速回
抽）。
3.如遇导管血栓，回抽不能或不畅，不可强行推注，并通报医生，必要时溶栓
处理：尿激酶1～2万u+NS2-3ml轻缓注入腔内，关卡停留15～30分钟后，再试以回抽。
4.连通血路通管，开启血泵后，检查供血端的流量是否充足，回血端的静脉压
是否过高。
如遇供血不足，可试以短时的管路反接观察，并注意及时正接过来。
5.检查连接口，妥善固定管路，盖以无菌巾。
◆下机封管
1.先用生理盐水若干毫升冲净导管内血液，直至导管内无血迹。
2.充注肝素盐水封管。
肝素浓度：一般情况为20～25mg/ml；有出血倾向者
5-10mg/ml；必要时或用低分子肝素液封管，充注量1.3-1.5ml/腔（用5ml以下的注射器）。
3．关闭夹子，拧紧管帽，纱布覆盖、固定。
★上、下机应尽量减少导管接口暴露时间，避免污染。
◆换药
1.每次透析均予换药。
透析间隔在5天以上者，在其间应另加一次换药。
2.消毒范围要足够大，包括皮肤和导管两部分，彻底消除血痂，污垢。
3.换药中要检查局部皮肤有无感染、导管的固定是否妥当，发现异常情况应及时通报医师，并作相应处理。
附：封管每支肝素2ml，加NS3ml，A端注1.3ml，V端注1.1ml。
心导管检查操作技术规范
心导管检查操作技术规范1.术前准备：在进行心导管检查之前，需要准备适当的设备和药物，如导管、导丝、透视机、造影剂等。
医生需要对患者的病史进行评估，并向患者解释检查的目的、过程、风险和可能遇到的并发症。
术前还要检查患者的过敏史，避免使用患者已知的过敏源。
2.静脉穿刺：心导管检查需要经过静脉穿刺将导管插入患者的静脉内，通常是通过股静脉或锁骨下静脉进行。
在进行穿刺前，医生应对穿刺部位进行局部麻醉，并进行消毒。
之后，医生应准确插入导管，确保导管顺利进入血管，同时避免血管穿透或血肿形成。
3.导管操作：导管插入后，医生需要进行导丝操作，带领导丝穿过心脏的瓣膜，使导管能够到达要检查的血管部位。
在操作导丝时，医生应注意力量的掌握，避免压迫血管壁，造成血管损伤或痉挛。
4.造影剂注射：在进行心脏血管造影前，医生需要准备合适的造影剂，并注射进入相应的血管。
在注射时，医生应注重剂量的准确掌握，避免过量造成不必要的负荷。
同时，医生需要注意速度的控制，保证造影剂均匀地流过心脏血管。
5.X线透视：6.检查结束及后续处理：心导管检查结束后，医生应将导管缓慢撤出血管，检查穿刺部位是否有渗血或血肿的情况，并进行适当的处理。
若有需要，可采取适当的止血措施。
同时，医生还应对患者的术后护理进行指导，并告知患者可能遇到的并发症和应急处理方法。
心导管检查是一项复杂且创伤较大的心血管检查方法。
医生在进行操作时，应严格遵循操作技术规范，确保检查的准确性和安全性。
在操作中，医生应保持专注、耐心和细致，避免粗心大意，以减少并发症的发生。
同时，医生还应与团队成员密切合作，互相配合，以确保检查顺利进行。
总之，心导管检查是一项重要的心血管检查方法，操作技术规范对于检查结果的准确性和安全性至关重要。
医生应熟悉并严格遵循相应的操作要求，不断提高自身技术水平，为患者提供更优质的医疗服务。
导管内采集血培养操作流程及评分标准
顺序错
污染
-5
-5
10、30分钟内送检
5
超时
-5
11、导管暂停输液，抗生素封管
5
酌情扣分
-5
12、整理用物，洗手，记录、签名
5
少一步
-2
注意
事项
1、严格无菌操作原则。
10
少一点
-3
2、普通血培养不在导管中抽血
3、两个血培养阴性，确定导管未被感染，再启用
5
少一点
-1
操
作
步
骤
1、携用物至床边，用2种方法确认患者身份进行核对
5
未核对
-5
2、向患者/家属解释血液化验的目的
5
未解释
-5
3、将病人放置合适体位，充分暴露操作区域（注意保暖及病人隐私权的保护）。
5
未安置好体位
-5
4、洗手（用手消剂）
5
未洗手
-5
5、用75%酒精棉球用机械力摩擦消毒肝素帽或可来福，待干，时间7秒以上，15下或以上
导管内采集血培养操作流程及评分标准
项目
内容
分值
扣分标准
扣分
目的
按照正确的方法采集血培养，排除Cvc/picc导管感染
5少一点Biblioteka -5用物准备注射盘、75%酒精棉球（独立包装）、2付针筒（其中1付10-20ml抽好NS）、采血针、2套培养瓶、手消剂
5
少一件
-1
素质要求
仪表大方，衣帽整洁，修剪指甲，洗手，戴口罩。
5
手法错误
-5
6、抽导管20ml标本血（如双腔导管各抽10ml）
5
方法错误
-5
7、将标本血先注厌氧瓶再注需氧瓶各10 ml。
静脉检测操作流程及标准
静脉检测操作流程及标准一、介绍静脉检测是一种常用的医学操作，用于获取患者的静脉血样本。
本文档将介绍静脉检测的操作流程及标准，以确保准确安全地进行该操作。
二、操作流程1. 准备工作- 确保操作者已经完成必要的培训，了解静脉检测的操作技术和安全要求。
- 检查所需设备的完整性和有效性。
- 准备消毒液、手套、消毒棉球等必要的材料和器械。
2. 患者准备- 向患者解释静脉检测的目的和过程，并获得其同意。
- 让患者保持舒适的姿势，并让其伸展或握紧手部，以便易于定位静脉。
3. 选择静脉- 用肉眼观察患者的手臂，寻找表面可见、适合操纵的静脉。
- 触摸患者的手臂，感受静脉的质地和位置，并选择适合的静脉。
4. 皮肤准备- 佩戴手套，并用消毒液消毒待穿刺的部位。
- 等待消毒液干燥后，再进行下一步操作。
5. 穿刺- 拿起已经消毒的针头，保持适当角度和方向插入静脉。
- 确保针头进入静脉后，慢慢推进穿刺针，以获取血液样本。
6. 采集样本- 用消毒棉球轻压穿刺点，防止出血。
- 用采血器或注射器采集所需的血液样本。
7. 完成操作- 卸下使用过的手套，将针头安全地放置在指定的中。
- 对患者穿刺点进行消毒处理，以预防感染。
- 向患者解释操作已完成，并告知相关注意事项。
三、操作标准- 操作者应具备相关培训和资质，了解静脉检测的操作流程和安全要求。
- 所使用的设备和器械应符合卫生和安全标准，经过有效消毒和清洁。
- 患者隐私和尊重应得到充分考虑，并获得其明确同意。
- 操作过程中应严格遵守无菌原则，以防止感染发生。
- 操作完成后，设备和器械应妥善清洁和消毒，以保证下次使用时的安全和有效性。
以上即为静脉检测操作流程及标准的简要介绍。
操作者应始终严格按照标准操作，以确保操作的准确性和安全性。
导管标本的采集与检验单规范
二.呼吸机导管标本的采 集
• 1.最简单易行的方法是通过吸痰管接 标本收集瓶，经气管插管或气管切开 套管吸引获取标本，然后进行细菌培 养。 • 2.标本采集后需尽快送至实验室 (<2h) • 3.检验项目为：导管内痰培养+药敏
• 检验项目为：导管内痰培养+药敏
三.导管尿标本的采集
• 1.直接导尿：按常规方法会阴局部消 毒后，用导尿管直接经导尿插入膀胱， 获取膀胱尿液。可减少尿液标本污染， 可准确地反应膀胱感染情况;但有可能 下尿道细菌引入膀胱，导致继发感染， 一般不提倡使用。
导管标本的采集与 检验单的规范
一.血管内导管尖端标本 的采集
• 1. 血管内导管尖端的采集方法 • 1.1 用75%酒精清洁导管周围皮肤 • 1.2 无菌手续移动导管，剪取尖端末 梢5cm，直接置入无菌杯中 • 1.3 立即送检，常规培养不超过 15min，4℃保存不超过2h。操作如图
• 2. 检验项目为：血.留置导尿：用碘伏消毒尿道口处导
尿管壁，用联空针筒的细针斜穿管壁 抽吸尿液；或拔去闭式引流的集尿袋， 弃去导尿管前段尿液，留无污染的膀 胱内尿液数毫升送检。不可从集尿袋 的下端管口留取标本。
• 检验项目为：导管尿培养+药敏（插入 导管第 ---天 ）
静脉采集血培养标本操作方法
静脉采集血培养标本操作方法及评分标准
相关知识点
一、进行血培养的指征
1.发热≥38°C，伴下列任何一项：
A.寒颤
B.肺炎
C.留置深静脉导管超过五天
D.白细胞＞18×109/L
E.感染性心内膜炎
F.收缩压低于90mmHg
2. 发热≥39.5°C时
3.无其他原因可以解释的感染
二、采集血标本时应注意的事项
1.采集血标本前须告知患者注意事项
2.根据不同的检验项目选择标本容器，掌握不同标本所需血量
3.患者接受静脉输液、输血治疗时，尽量避免采集血液标本，以免干扰检验结果；必须采集时应避免在输液侧采血
4.当血液标本及抗生素治疗的医嘱同时出现时，须先抽取血培养再给予抗生素药物治疗
5.采集血标本过程中避免溶血，采血后，不管用何种真空采血管或血培养瓶，均需颠倒混匀5—6次，但严禁振摇。
导管培养标本采集技术操作规程及评分标准
项目
评分标准及细则
分值
扣分及
原因
得分
准备质量15分
1.衣帽整齐，规范洗手，戴口罩；（一项不符合要求扣1分）
2.明确检验目的，了解患者的诊断、治疗、应用抗生素情况和患者寒战、发热情况；（做不到不得分）
3.用物齐全：清洁治疗盘、无菌治疗巾、无菌棉签、一次性真空采血器、20ml注射器，拆线包、无菌手套、无菌纱布、无菌透明敷贴，血培养瓶2套、无菌容器，吉尔碘皮肤消毒液、75%酒精、速干手消毒剂，止血带、弯盘、利器盒，标签（或条形码）；（少一种扣1分）
3.采集方法、量及采集时间正确，按时送检；（一项不符合要求扣1分）
4.标本留取方法正确：血液注入血培养瓶后轻轻摇匀，瓶塞中心部盖上无菌棉球固定；（不符合要求不得分）
5.操作过程中能做到关心患者，以病人为中心，确保安全。（做不到不得分）
5
2
3
3
2
注意事项
1.采集标本的时机尽可能选在应用抗生素之前。
2.留取导管标本应与采集血培养标本同时进行，采集时间宜在5分钟内完成。
4.核对检验单，检查标本容器是否完好，填写容器标签各项内容（或条形码）并粘贴于容器上；（少做一项扣1分）
5.将用物按使用顺序置于治疗车上；（不符合要求不得分）
3
3
4
3
2
操作流程质量70分
1.将用物推至患者床旁，核对患者的床号、姓名，告知患者操作的目的 、方法及配合要点；（一项不符合要求扣2分）
2.再次核对检验单、标本容器，协助患者取合适体位。（未做不得分）
③洗手，打开拆线包，戴无菌手套；（一项不符合要求扣2分）
④缓慢移出导管，检查导管尖端是否完整，立即用纱布压迫穿刺点；（一项不符合要求扣2分）
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中心静脉导管标本细菌学检验标准操作规程
1. 目的
规范中心静脉导管标本细菌学检验标准操作规程，确保检验结果准确可靠。
2. 适用范围
中心静脉导管细菌培养。
3. 标本
中心静脉导管标本。
4. 试剂、仪器
4. 1革兰染液、氧化酶试剂、3%触酶、血琼脂平板、巧克力平板、麦克凯平板、相关生化试剂等。
4.2 VITEK鉴定系统；革兰阴性菌鉴定卡（GNI+）、革兰阴性菌药敏卡（GNS）、革兰阳性菌鉴定卡（GPI）、革兰阳性菌药敏卡（GPS）、真菌鉴定卡（YBC）、药敏纸片、TBA 板条等，有效期及储存条件参见试剂说明书。
4.3 接种针、接种环、电热灼烧器、显微镜、孵育箱、CO2培养箱等。
5. 细菌鉴定和药敏质控
参见《质量管理程序》
6. 检验步骤
用无菌镊子将5cm导管（近心端）在血琼脂平板和麦康凯平板上交叉滚动四次，然后弃之，在35°C，5%-10%CO2
孵育箱培养18-24小时，根据菌落及染色形态特点，作出初步判断，再按各类细菌的生物学特性进行鉴定。
7. 结果报告
7.1 若48小时无细菌生长，报告“培养2日无细菌生长”。
7.2 报告菌名和抗菌药物药敏试验结果。
8. 注意事项
8.1 如血琼脂平板上生长≥15个菌落，提示有潜在导管相关性感染，应进行细菌鉴定和药敏试验，同时建议抽血作血培养。
8.2 若为2种细菌生长，且菌落计数均≥15个菌落/平板，均应进行细菌鉴定和药敏，建议作血培养确证。
9 临床意义
判断中心静脉导管是否有细菌生长，指导临床医师是否拔除导管还是保留导管。
参考文献
[1]吴爱武主编.床微生物学与检验实验指导.第三版. 北京：人民卫士出版社，2007
[2]中华医学重症医学专业委员会. 血管内导管相关感染的预防与治疗指南（2007）.2007
编写人：AAA、BBB 操作人：本室操作人员批准人：。