琼脂平板倾注法操作步骤
琼脂平板测定法
琼脂平板测定法1. 简介琼脂平板测定法是一种常用的微生物检测方法，用于定量测定液体中微生物的数量。
其原理是将待测样品与含有琼脂的培养基混合，然后将混合液倒入琼脂平板中，在适当条件下培养微生物，通过观察生长的菌落数量来估计样品中的微生物数目。
琼脂平板测定法广泛应用于食品、饮料、药品等领域，以及环境监测和医疗卫生等领域。
它具有操作简便、结果可靠、灵敏度高等优点，并且可以同时检测多种不同类型的微生物。
2. 实验步骤2.1 准备工作•清洁实验台面和仪器设备，消毒操作区域。
•准备所需材料：琼脂平板、待测样品、无菌移液器、无菌试管、无菌培养皿等。
•配制适当的琼脂培养基，并进行无菌处理。
2.2 样品处理•将待测样品进行适当的预处理，如稀释、均匀搅拌等。
•取适量的样品，使用无菌移液器将其滴入无菌试管中。
2.3 倒平板•将琼脂培养基加热至液态状态，并保持在适宜的温度。
•将琼脂培养基倒入无菌培养皿中，约15-20ml左右。
•等待琼脂培养基凝固。
2.4 涂布样品•将待测样品与琼脂培养基混合均匀。
•将混合液倒入凝固的琼脂平板中。
•使用无菌棉签或针头，在平板表面上均匀地涂布样品。
•注意避免压力过大，以防止伤害琼脂平板表面。
2.5 培养•将涂布好的琼脂平板倒置放置于恰当的培养条件下（如适宜的温度、湿度等）。
•根据需要选择不同的培养时间和环境条件。
2.6 菌落计数•在适当的时间后，观察琼脂平板上的菌落生长情况。
•使用无菌计数器或放大镜进行菌落计数。
•记录菌落数量并进行统计分析。
3. 实验注意事项•操作过程中要保持严格的无菌操作，避免样品受到外界污染。
•遵守实验室安全规范，使用个人防护装备。
•注意培养条件的控制，如温度、湿度等。
•注意样品的合适稀释，以确保在合适范围内进行菌落计数。
•记录实验过程中的操作细节和结果，以备后续分析和验证。
4. 实验结果分析通过琼脂平板测定法得到的结果可以用于估计待测样品中微生物的数量。
根据菌落数量和相应的标准曲线或经验值，可以确定样品中微生物的含量是否符合相关标准要求。
脓汁和粪便标本中病原菌检测实验报告二
脓汁和粪便标本中病原菌的检测年级专业：14临床输血学号： 3140704004姓名：宁立军组别：第七组合作者：牛恺文黄可秀朱晋辉实验室：第六实验室指导老师：罗军实验的得分：一、实验目的通过革兰氏染色并在油镜下观察细菌形态结构、细菌的生化反应和细菌的血清学反应等手段区别和鉴定脓汁标本中和粪便标本中细菌，检测病原微生物，并进行细菌药物敏感性试验。
二、实验器材1器材接种环接种针打火机马克笔酒精灯电热恒温培养箱物显微镜电炉试管（带棉塞）称量纸药勺牛皮纸橡皮筋尺子锥形瓶高压蒸汽灭菌器镊子玻片吸水纸2 试剂药品普通营养琼脂培养基蒸馏水脓汁标本粪便标本石蜡油生理盐水结晶紫卢戈碘液 95%乙醇稀释复红葡萄糖微量发酵管（2支）乳糖微量发酵管（2支）青霉素抗菌素纸片链霉素抗菌素纸片庆大霉素抗菌素纸片兔血浆福氏志贺菌诊断血清三、方法与步骤1培养基制备称取一定量的肉汤培养基，至于三角烧瓶中，加入适量的蒸馏水，煮沸一次，趁热分装；称取一定量的营养琼脂培养基，至于三角烧瓶中，加入适量的蒸馏水，煮沸三次（煮至刚刚冒泡，立刻置于台面，半分钟后再煮），使完全溶解，趁热分装。
（平板培养基：以无菌操作，倾注平皿10ml，琼脂完全凝固后，平板倒放，4℃冰箱保存备用。
斜面培养基：培养基趁热斜放，培基不超过试管长度的2/3，琼脂凝固以后，4℃冰箱保存备用。
）贴上标签后灭菌使用。
2空气与人体体表细菌学检查根据空气中细菌气溶胶粒子，在地心引力的作用下，以垂直的自然方式沉降到培养基表面，培养以后，计数菌落形成单位（CFU），了解空气的污染情况。
平板盖打开，盖朝下放在平板旁，琼脂平板暴露15分钟即可。
在普通平板上接种手指上的细菌。
第1格为洗手前，第2格为洗手后，第3格为消毒后，第4格空白对照。
3细菌分离培养接种前，接种环烧灼灭菌。
取标本在平板表面上方密集涂布5～10 mm²。
烧掉接种环上多余的标本。
冷却后，应用分区划线分离法，将脓汁标本接种于营养琼脂平板（2份），粪便标本接种于伊红美蓝平板（2份）。
初始污染菌检验规程
初始污染菌检验规程初始污染菌检验规程1、准备工作1）与供试液接触的所有器具应采用可靠方法灭菌，置压力蒸汽灭菌器内121℃30min。
2）采样数量：每批产品随机抽取10件样品.3）检测标准《GB 15980-1995一次性使用医疗用品卫生标准》：≤100cfu/件次。
4）洗脱液、稀释液采用0.9％无菌氯化钠溶液。
2、试验步骤：1）用无菌手续取出10个样品，分别放入10支装有10ml0.9％无菌氯化钠溶液的试管中，将每个采样管震打80次，混匀，分别吸取1ml放入灭菌平皿，用普通琼脂培养基作倾注培养，置37℃温箱培养48±2h观察结果。
2）用肉眼直接计数，然后用5-10倍放大镜检查，有否遗漏。
若培养皿上有2个或2个以上的菌落重叠，可分辩时仍以2个或2个以上菌落计数。
3）计算公式为：菌数/件次=平均菌数×稀释倍数/件次。
阴性对照试验：将使用的0.9％无菌氯化钠溶液吸取1ml放入无菌平皿中，注入培养基，凝固，倒置培养。
制备2个平板均不得有菌生长。
3、注意事项：1）在无菌操作台上做试验，防止环境对样品的再次污染，采取一切措施防止人为对样本的污染。
2）由于细菌种类繁多，差别甚大，计数时一般用透射光于培养皿背面或正面仔细观察，不要漏计培养皿边缘生长的菌落，并须注意细菌菌落与培养基沉淀的区别，必要时用显微镜鉴别。
编制：审核：批准：ZC-14-8初始污染菌监测操作规程1范围适用于对刚包装好的外科手套和检查手套的初始污染菌的监测和对新购进的小包装（接触手套的小包装）的监测。
第一个月每周进行一次监测，如果监测结果是稳定的以后每个月监测一次，如果3个月都稳定，监测周期改为每季度一次。
2职责质管部负责取样、按ISO 11737进行试验、如试验结果初始污染菌超过6 cfu/cm2,要及时查找原因，提出改进措施，包括工艺中产品防护和进行环境消毒。
3生物负载测定方法A.1概要A.1.1生物负载测定，可使用不同的方法内容。
倾注平板法的流程和注意事项
倾注平板法的流程和注意事项英文回答：Pour plate method, also known as the slump cone method, is a commonly used technique for determining theworkability of fresh concrete. It involves measuring the consistency and fluidity of the concrete by observing the deformation of a concrete cone when it is lifted and allowed to slump.The procedure for conducting the pour plate method is as follows:1. Prepare the slump cone: Clean the slump cone and wet it with water. Place it on a level, non-absorbent surface.2. Fill the cone with concrete: Fill the slump cone with freshly mixed concrete in three equal layers. Each layer should be compacted using a tamping rod, with 25 strokes for each layer.3. Remove the excess concrete: After filling the cone, strike off the excess concrete using a trowel, ensuringthat the top of the cone is level and smooth.4. Lift the cone: Hold the handles of the slump cone firmly and lift it vertically in a smooth and steady motion. Avoid any twisting or jerking movements.5. Observe the slump: Measure the difference in height between the original height of the cone and the height of the concrete after it slumps. This is known as the slump value.The slump value indicates the workability of the concrete. A higher slump value indicates a more workableand fluid concrete, while a lower slump value indicates a stiffer and less workable concrete. The appropriate slump value depends on the specific application and requirementsof the concrete.中文回答：倾注平板法，也称为塌落锥法，是一种常用的测定新鲜混凝土可塑性的技术。
各种琼脂平板
HE琼脂成分脙胨12g牛肉膏3g乳糖12g蔗糖12g水杨素2g胆盐20g氯化钠5g琼脂18～20g蒸馏水1000mL0.4%溴麝香草酚蓝溶液16mLAndrade指示剂20mL甲液20mL乙液20mLpH7.5制法将前面七种成分溶解于400mL蒸馏水内作为基础液；将琼脂加入于600mL蒸馏水内，加热溶解。
加入甲液和乙液于基础液内，校正pH。
再加入指示剂，并与琼脂液合并，待冷至50～55℃，倾注平板。
注：①此培养基不可高压灭菌。
②甲液的配制硫代硫酸钠34g柠檬酸铁铵4g蒸馏水100mL②乙液的配制去氧胆酸钠10g蒸馏水100mL②Andrade指示剂酸性复红0.5g1mol/L氢氧化钠溶液16mL蒸馏水100mL将复红溶解于蒸馏水中，加入氢氧化钠溶液。
数小时后如复红褪色不全，再加氢氧化钠溶液1～2mL。
3SS为强选择性培养基.其成分除了有必要的胨、牛肉膏等氮、碳源外，其他则为选择性抑制剂和缓冲剂。
如柠檬酸钠、胆盐、硫代硫酸钠的协同作用及煌绿共同来抑制肠道非病原性细菌及部分大肠杆菌的生长。
对志贺菌属及沙门菌属相对抑制性较弱。
硫代硫酸钠有助于大肠菌的着色，柠檬酸铁能缓解某些药物对病原菌的毒副作用，同时与细菌产物起反应呈黑色菌落。
中性红指示剂可把分解乳糖和不分解乳糖的细菌鉴别开，前者为红色菌落，后者为无色菌落。
葡萄糖半固体发酵管葡萄糖半固体发酵管成分蛋白胨1g牛肉膏0.3g氯化钠0.5g1.6%溴甲酚紫酒精溶液0.1mL葡萄糖1g琼脂0.3g蒸馏水100mLpH7.4制法将蛋白胨、牛肉膏和氯化钠加入于水中，校正pH后加入琼脂加热溶解，再加入指示剂和葡萄糖，分装小试管，灭菌121℃ 15 min。
三糖铁琼脂三糖铁琼脂(换用方法)成分蛋白胨15g脙胨5g牛肉膏3g酵母膏3g乳糖10g蔗糖10g葡萄糖1g氯化钠5g硫酸亚铁0.2g硫代硫酸钠0.3g琼脂12g酚红0.025g蒸馏水1000mLpH7.4制法将除琼脂和酚红以外的各成分溶解于蒸馏水中，校正pH。
菌落总数测定
（（一一））、、样样品品的稀稀释释及及做做平平板板
6、及时将15 mL～20 mL 冷却至46 ℃ 的平板计数琼脂培养基（可放置于 46 ℃±1 ℃恒温水浴箱中保温）倾 注平皿，并转动平皿使其混合均匀。
1ml 1ml 1ml
生理盐 水
1:10
1:100 1:1000 1:10000
1ml
25g/m 1ml
食品中菌落总数的测定
一、菌落总数
• 食品检样经过处理，在一定条件下 （如培养基、培养温度和培养时间等） 培养后，所得每g（mL）检样中形成的 微生物菌落总数。
二、菌落总数测定的意义
1、判定食品被细菌污染的程度及卫生质量。 2、预测食品存用的期限长短。 3、了解细菌在食品中的繁殖动态。
三、设备和材料
除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设 备和材料如下：
• 恒温培养箱：36 ℃±1 ℃，30 ℃±1 ℃。 • 冰箱：2 ℃～5 ℃。 • 恒温水浴箱：46 ℃±1 ℃。 • 天平：感量为0.1 g。 • 均质器。 • 振荡器。 • 无菌吸管：1 mL（具0.01 mL 刻度）、10 mL（具0.1
4、上述 操作程序，制备10 倍系列稀释样品 匀液。每递增稀释一次，换用1 次1 mL 无 菌吸管或吸头。
（（一一）、、样样品品的的稀稀释释及及做做平平板 板
5、根据对样品污染状况的估计，选择2 个～3 个适宜稀释度的样品匀液（液体样 品可包括原液），在进行10 倍递增稀释 时，吸取1 mL 样品匀液于无菌平皿内， 每个稀释度做两个平皿。同时，分别吸 取1 mL 空白稀释液加入两个无菌平皿内 作空白对照。
性选择培养温度和时间？
资料源自网络
(四)、检验注意事项
1、对照平板出现几个菌落时，要追加对照 平板；
手部微生物监测标准操作规程
一、适用范围1．评价医务人员洗手、卫生手消毒、外科手消毒的效果。
2．怀疑医院感染暴发或流行与手的传播有关时.二、监测时机在接触患者前或进行诊疗活动前采样.三、采集方法i．被检人洗手或手消毒后，在接触患者前或进行诊疗活动前采样。
2．被检人将双手伸出,五指并拢。
3。
检查者取2支无菌棉拭子，并浸于含相应中和剂的无菌洗脱液中。
4．取_支棉拭子在一只手手指曲面，从指根到指端往返涂擦2次(一只手涂擦面积约30cm2),并随之转动采样棉拭予；按同样方法用另一支棉拭予涂擦另一只手。
5．剪去操作者手接触部位，将2支棉拭子投入10ral含相应中和剂的无菌洗脱液试管内，立即送检。
四、标本检测（一）带菌量检测(平皿倾注法)1．将采样管在混匀器上震荡20s或用力振打80次左右。
2．将无菌吸管分别吸取lmJ待检样品接种于2个直径为90mm无菌平皿中。
3．再加入已熔化的45—48℃的营养琼脂15．18ml，边倾注边摇匀，待琼脂凝固。
4．将平皿置于(36±1)℃温箱培养48h，计数菌落数。
5．计算公式：细菌总数(cfu／cm2）=平板上菌落数×稀释倍数／60(cm2)（二）细菌种类鉴定1．将无菌增菌肉汤培养液试管置于（36±1)℃温箱培养24—48h。
2．若无菌增菌肉汤培养液试管浑浊,应根据实际情况选择血平板、中国蓝平板、双S平板、麦康凯平板或各种商用快速筛选平板进行细菌接种。
3．接种后将平板置于(36±1）℃温箱培养24—48h,挑取可疑菌落进行微生物学鉴定,必要时做药敏。
六、注意事项1．结果判定：卫生手消毒后细菌总数应≤10cfu／cm2；外科手消毒细菌总数应≤5cfu／cm2。
2．应根据所用方法,选择含相应中和剂的无菌洗脱液.3．倾注时温度必须控制在45—48℃，温度过高可致细菌死亡，过低则影响倾注效果。
4，当怀疑医院感染暴发或流行与手的传播有关时,监测目的在于考察实际工作中医务人员手卫生状况，虽然同样在接触患者前或进行诊疗活动前采样,但医务人员不一定进行了手卫生。
实验微生物接种技术讲解
实验微生物接种技术讲解实验微生物接种技术讲解微生物接种篇一：实验微生物接种技术一、目的：学习微生物工作的基本接种方法，建立纯培养技术中的“无菌”概念，掌握无菌操作技术。
二、原理：所谓接种就是将一定量的纯种微生物在无菌操作条件下转移到另一已灭菌，并适宜于该菌生长繁殖所需的培养基上的过程。
本实验要求严格进行无菌操作，一般是在无菌操作台或在实验室内火焰旁进行。
根据不同的实验目的和培养方式，可以采用不同的接种工具和接种方法。
三、实验材料：斜面培养基、液体培养基、平板培养基、记号笔、酒精灯、接种针、消毒酒精、涂布棒等。
四、操作步骤（一）无菌操作菌种分离或移接工作应在无菌环境中进行，接种室、接种箱或超净工作台是常用的接种环境。
用前先清洁好卫生，再进行消毒处理。
可用紫外线灯和甲醛熏蒸的双重作用，或用3%来苏尔及其他表面消毒进行喷雾。
操作者的手应先用肥皂洗净，再用酒精棉球消毒；整个操作过程都要靠近酒精灯火焰；接种工具在用前和用后必须在灯焰上灭菌；棉塞不得乱放，操作中只能夹在手上；不能有跑、跳等力度大的动作，以免引起空气大振动而增加染菌机会。
（二）接种方法（1）斜面接种：从已长好微生物的菌种管移接到另一斜面管的方法。
此法用于好气性微生物的接种。
左手持菌种管和斜面管，使斜面向上，并尽量放平。
用右手先将棉塞拧转松动，再拿接种环，用右手的小指、无名指和手掌拨下棉塞并夹紧，同时将管口在火焰上燃烧一圈，接种环灼烧灭菌后插入管内，冷却、挑菌，立即转入斜面管底部，沿斜面划曲线或直线。
图1.斜面接种示意图（2）液体接种：由斜面菌接种到液体培养基（如试管或三角瓶等）中的方法。
操作与上法基本一致，只是在将接种环送入液体培养基中时使环在液体与管壁接触的地方轻轻磨擦，使菌体分散，然后塞上棉塞，再轻轻摇动均匀，即可培养。
如果菌种是培养在液体培养基中时，一般用移液管或滴管接种。
（3）穿刺接种：用接种针挑取菌种后，插入深层固体培养基内，（不要刺到底部），再沿原路拔出，此法用于厌气性细菌接种、检查细菌的运动能力。
菌种的分离与纯化
接种、分离纯化和培养技术一、接种将微生物接到适于它生长繁殖的人工培养基上或活的生物体内的过程叫做接种。
１、接种工具和方法在实验室或工厂实践中，用得最多的接种工具是接种环、接种针。
由于接种要求或方法的不同，接种针的针尖部常做成不同的形状，有刀形、耙形等之分。
有时滴管、吸管也可作为接种工具进行液体接种。
在固体培养基表面要将菌液均匀涂布时，需要用到涂布棒。
（图３－３）图３－３接种和分离工具1．接种针 2.接种环 3.接种钩 4.5.玻璃涂棒 6.接种圈 7.接种锄 8.小解剖刀常用的接种方法有以下几种：１）划线接种这是最常用的接种方法。
即在固体培养基表面作来回直线形的移动，就可达到接种的作用。
常用的接种工具有接种环，接种针等。
在斜面接种和平板划线中就常用此法。
２）三点接种在研究霉菌形态时常用此法。
此法即把少量的微生物接种在平板表面上，成等边三角形的三点，让它各自独立形成菌落后，来观察、研究它们的形态。
除三点外，也有一点或多点进行接种的。
３）穿刺接种在保藏厌氧菌种或研究微生物的动力时常采用此法。
做穿刺接种时，用的接种工具是接种针。
用的培养基一般是半固体培养基。
它的做法是：用接种针蘸取少量的菌种，沿半固体培养基中心向管底作直线穿刺，如某细菌具有鞭毛而能运动，则在穿刺线周围能够生长。
４）浇混接种该法是将待接的微生物先放入培养皿中，然后再倒入冷却至45°C左右的固体培养基，迅速轻轻摇匀，这样菌液就达到稀释的目的。
待平板凝固之后，置合适温度下培养，就可长出单个的微生物菌落。
５）涂布接种与浇混接种略有不同，就是先倒好平板，让其凝固，然后再将菌液倒入平板上面，迅速用涂布棒在表面作来回左右的涂布，让菌液均匀分布，就可长出单个的微生物的菌落。
６）液体接种从固体培养基中将菌洗下，倒入液体培养基中，或者从液体培养物中，用移液管将菌液接至液体培养基中，或从液体培养物中将菌液移至固体培养基中，都可称为液体接种。
７）注射接种该法是用注射的方法将待接的微生物转接至活的生物体内，如人或其它动物中，常见的疫苗预防接种，就是用注射接种，接入人体，来预防某些疾病。
平板倾注法的操作方法
平板倾注法的操作方法
平板倾注法是一种常用的测量液体密度的方法，其操作方法如下：
1. 准备一块平板或称重瓶。
平板应选用平整的表面，瓶口应封闭。
2. 用天平称量平板的质量，并记录下来。
若使用瓶子，则将瓶子称重，记录下来。
3. 取一定量的待测液体，用滴管或注射器将液体缓缓滴入瓶中，直到液体的表面接触到瓶口为止。
4. 用纸巾或棉签擦拭去除液体滴在瓶外的残余。
5. 阅读天平上的质量数值，记录下液体所占的总质量。
6. 将所测液体的质量减去瓶子（或平板）的质量，得到液体的质量。
7. 使用所测液体的质量和其体积的关系密度=质量/体积）以计算液体的密度。
这样，就可以通过平板倾注法测量待测液体的密度了。
采样方法(手和皮肤黏膜消毒效果监测)
3.17.6 手和皮肤黏膜消毒效果监测3.17.6.1 采样时间:在消毒后立即采样。
3.17.6.2 采样方法(1) 手的采样:被检人五指并拢，用浸有含相应中和剂的无菌洗脱液的棉拭子在双手指屈面从指根到指端往返涂擦2 次(一只手涂擦面积约30cm2)，并随之转动采样棉拭子，剪去操作者手接触部位，将棉拭子投入10ml 含相应中和剂的无菌洗脱液试管内，立即送检。
(2) 皮肤粘膜采样:用5cm×5cm的标准灭菌规格板，放在被检皮肤处，用浸有含相应中和剂的无菌洗脱液的棉拭子1 支，在规格板内横竖往返均匀涂擦各5 次，并随之转动棉拭子，剪去手接触部位后，将棉拭子投入10ml 含相应中和剂的无菌洗脱液的试管内，立即送检。
不规则的粘膜皮肤处可用棉拭子直接涂擦采样。
3.17.6.3 检测方法(1) 细菌总数检测:将采样管在混匀器上振荡20s或用力振打80 次，用无菌吸管吸取1.0ml 待检样品接种于灭菌平皿，每一样本接种2个平皿，内加入已溶化的45℃～48℃的营养琼脂15ml～18ml，边倾注边摇匀，待琼脂凝固，置36℃±1℃温箱培养48h，计数菌落数。
采样结果计算方法：平板上菌落数× 稀释倍数细菌总数(cfu/cm2)＝────────────────采样面积(cm2)(2) 致病菌检测:按3.17.15的原则执行。
3.17.6.4 结果判定(1) 消毒洗手Ⅰ、Ⅱ类区域工作人员：细菌总数≤5cfu/cm2，并未检出金黄色葡萄球菌、大肠杆菌、铜绿假单孢菌为消毒合格。
Ⅲ类区域工作人员：细菌总数≤10cfu/cm2，并未检出金黄色葡萄球菌、大肠杆菌为消毒合格。
Ⅳ类区域工作人员：细菌总数≤15cfu/cm2，并未检出金黄色葡萄球菌、大肠杆菌为消毒合格。
母婴同室、婴儿室、新生儿室及儿科病房的工作人员手上，不得检出沙门菌、大肠杆菌、溶血性链球菌、金黄色葡萄球菌为消毒合格。
(2)皮肤黏膜:参照手的卫生学标准执行。
初始污染菌检验规程
A.3.1接触板
A.3.1.1接触板或玻璃片可用于将凝固的培养基放在样品表面上，使存活微生物能附着在培养基表面，然后再培养接触板或玻璃片，至形成可以计数的菌落。
A.3.1.2该系统的优点在于易于使用，结果与凝固的培养基的接触表面直接相关。
A.3.1.3表面上天然集聚的细胞群、菌落在琼脂介面散布、琼脂干燥、可能存在的厌氧菌等都是潜在的不利因素。
A.2.1.6有些处理方法可能会分解待测产品(例如碎解、袋蠕动和涡旋)。分解的材料会给微生物计数造成困难，这时则需要进行其他处理，如将分解的材料从洗提液中分离出来。应注意保证所得到的计数具有代表性。
A.2.1.7应尽力尽快将试验样品移至试验室。如果必须要推迟转送，试验样品的保存条件应能避免微生物的丢失或改变。应规定贮存的最长时间。干燥可能是微生物数量减少的重要原因，所以在选择贮存条件和贮存时间时应加以考虑
A.4.2.2通常需要一真空或正压(有些情况下)源。应注意避免负压过大，这会引起滤膜变形或损坏。
A.4.2.3进行培养时，滤膜可以放在琼脂表面或放在浸泡了营养媒介的吸水纱布垫上。滤膜表面上形成的菌落可以计数，也可从滤器上分离出来进行定性。A.4.2.4膜过滤尤其适用于微生物浓度较低的悬液。
A.4.2.5从洗提液中取出微生物时，当怀疑液体基质中含有杀灭或抑制微生物时，膜过滤特别适用，先将洗提液中的微生物过滤出来，并可在培养前对滤膜上的微生物进行冲洗。但是有些类型的膜滤器可以吸收或释放抑制微生物生长的物质，所以只使用那些适于给微生物计数的滤膜是很重要的。滤膜和洗提液应相容。
0,1%蛋白胨peptone通用
林格氏溶液
Balgon Ringer1/4强度溶解藻酸钙棉拭
Dissolution of BalBium alginate swaAs
教你一招丨标准平板菌落计数法
教你一招丨标准平板菌落计数法检测食品中微生物数量，一般采用标准平板菌落计数法(SPC)对食品中的活的微生物进行菌落形成单位(CFU)数量的检测，即将部分样品取出混合均匀，用适当的稀释液进行梯度稀释，取一定量的稀释液涂布或倾注琼脂平板，在合适的温度下培养一定的时间，然后通过肉眼观察或电子计数器对所有可见菌落进行计数。
虽然日常检测大多采用倾注平板的方法，但是涂布法在检测热敏性菌体方面更有优势，能取得更好的计数结果，而且更适合于严格好氧菌。
涂布法的缺点是涂布时琼脂表面不干燥和培养后菌落蔓延导致无法计数。
(一)菌落计数器平板上的菌落个数可用肉眼直接观察进行计数，也可以借助仪器进行。
菌落计数器是一种数字显示式自动细菌检验仪器。
由计数器、探笔、计数池等部分组成，计数器采用CMOS集成电路精心设计， LED数码管显示，字高13mm,清晰明亮，配合专用探笔，计数灵敏准确。
黑色背景式计数池内，荧光灯照明，菌落对比清楚，便于观察。
菌落计数器分手动、半自动和全自动三种类型，可根据对精确度的要求，选择不同的计数器。
使用方法： (1)接通电源，平板去盖，皿底朝下放入计数器后开始计数，从平板的顶部开始计数，用方格线标记防止重复计数，利用这种机械式手动计数器，计数每一个菌落，无论多小或不典型。
(2)将探笔插入仪器上的探笔插孔内。
打开计数器，接通电源，计数池也内灯亮，并且显示窗内显示明亮，可以进行计数。
把待检的培养皿皿底朝上放入计数池内，并用探笔在培养皿底面对菌落进行计数，点到的菌落处被标上颜色，显示窗内数字会自动累加。
用放大镜仔细检查，确认点数无遗漏后，显示窗内的数字即为该培养皿内的菌落数。
使用注意事项：仪器要放在平整牢固的试验台上，点数时，探笔不要过于倾斜，轻点至有弹跳感，数字即可显示。
仪器应防尘，放大镜表面的灰尘，要用纯化水清洗后，再用镜头纸擦拭干净即可，另外还应防潮、防剧烈震动、防日光曝晒、防酸碱等，使用完后加防护罩。
微生物实验室sop
临床微生物学检验(sop)确保高压效果的可靠性。
【适用范围】蒸气式高压锅。
【该SOP变动程序】本标准操作程序的改动，可由任一使用本SOP的工作人员提出，并报经下述人员批准签字：专业主管、科主任。
【操作方法】1．将水加到高压锅内至其刻度线，将欲灭菌物品放入锅内，关闭锅门，拧紧螺丝并确认已经封闭。
2．打开排气阀。
3．打开蒸汽开关，向锅内输入蒸汽或接通电源，使产生蒸汽。
4．观察排气阀的排气情况，待排出的气体由冷气变为蒸汽，压力表达到0.05mPa 时，关闭排气阀。
5．观察压力表，当压力升至0.15mPa时，开始计时。
6．压力达0.15mPa后，可调节进气阀，减少进气量，维持压力并使其稳定在0.15mPa。
电加热时，可切断电源，维持压力持续15分钟，至多不超过30分钟，否则营养物质破坏。
7．关闭进气阀门或切断电源，让锅内物品自然冷却，不可马上打开排气阀，以免发生意外。
8．待锅内压力降为零时，可打开锅盖，取出物品。
操作人员部门主管质量负责人姓名 ****** ****** ****** 日期 **年**月**日确保培养箱温度恒定。
【适用范围】各种类型隔水式、温度设定为27℃、35℃、42℃、56℃培养箱。
【该SOP变动程序】本标准操作程序的改动，可由任一使用本SOP的工作人员提出，并报经下述人员批准签字：专业主管、科主任。
【操作方法】1．培养箱应放置于水平地面（或坚固的水平台），电源电压须匹配。
2．从注水口先将隔水箱内的水注满到浮标要求的位置。
3．将温度调节旋扭调至所需温度，然后将电源开关拨至“开”处。
4．每次使用时应在培养箱顶部插入标准温度计，监测实际温度。
5．培养箱工作温度波动范围应控制在±10C以内。
6．培养箱正面贴有温度记录表，记录每天上班和下班时温度，如温度超出正常范围，指示该温度的刻度应划上红圈，并把修正温度记录下来。
7．培养箱内外应保持清洁。
操作人员部门主管质量负责人姓名 ****** ****** ******日期 **年**月**日保证培养基的质量。
药敏试验的操作方法及注意事项
药敏试验的操作方法及注意事项
（1）M-H平板的制备：将在约56℃恒温的无菌M-H琼脂倾注直径为90mm的平板，其厚度4mm。
（2）比浊管的配置：0.5麦氏比浊管的配置：取0.048mol/L的氯化钡溶液（1.175%w/v，BaCl2•2H2O）0.5ml，加至99.5ml0.18mol/L的硫酸溶液（1%v/v）中，不断搅拌使成混悬液。
取4～6ml硫酸钡混悬液，置与稀释菌悬液相同规格的具塞试管中，密封，室温避光保存。
（3）菌液的制备：A 肉汤法：无菌挑取菌落于MH肉汤中，摇菌2-6h；B 直接法：无菌挑取4-5个菌落于PBS中，混匀。
（4）比浊：将制备好的菌液与比浊液管置比色卡上对着光源比较，适当情况下可用无菌生理盐水或肉汤稀释菌悬液，使两者浊度一致，即菌悬液的浓度为0.5标准麦氏单位。
（5）涂菌：用无菌棉签浸入细菌悬液中，将拭子在试管上壁轻轻挤压以挤去过多的菌液。
棉签在三个方向均匀抹琼脂表面（每次转60℃）最后沿平板内缘涂抹一周，使菌液均匀分布。
（6）贴药敏片：用无菌镊子或纸片分配器将抗菌纸片粘贴于M-H琼脂的表面，一旦纸片贴上，不能移动；一般一个平皿贴5-6个药敏片。
（7）培养：一般细菌：37℃培养16～18h；流感和副流感嗜血杆菌：5%CO2 37℃16-18h。
（8）用游标卡尺取抑菌环直径，根据CLSI标准。
判断待测菌对抗生素是敏感，中介还是耐药，选择敏感药物进行疾病治疗。
中介是一个缓冲区，若无敏感药物可提高中介药物的浓度来使用。
【2017年整理】平板计数琼脂培养基
PCA平板计数琼脂培养基平板计数琼脂培养基即PCA，是在08GB中用于菌落总数测定的配方：1、成分胰蛋白胨 5.0g酵母浸粉 2.5g葡萄糖 1.0g琼脂 15.0g蒸馏水1000mlpH 7.0士0.22、制法：将上述成分加于蒸馏水中，煮沸溶解，调节pH。
分装试管或锥形瓶，121℃高压灭菌15min。
LST 月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤简称LST，在08GB中是用于大肠菌群的检测，大肠杆菌的计数，金黄色葡萄球菌的检测。
配方：1、成分：胰蛋白胨或胰酪胨 20.0g氯化钠 5.0g乳糖 5.0g磷酸氢二钾 2.75g磷酸二氢钾 2.75g月桂基磺酸钠0.1g蒸馏水1000mlpH 6.8士0.22、制法：将上述成分溶解于蒸馏水中，调节pH ，分装到有玻璃小导管的试管中，每管10ml。
121℃高压灭菌15min。
煌绿乳糖胆盐肉汤BGLB煌绿乳糖胆盐肉汤简称BGLB，在08国标中是用于大肠菌群的检测配方：1、成分：蛋白胨10.0g乳糖 10.0g牛胆粉溶液 200.0ml0.1%煌绿水溶液 13.3ml蒸馏水1000mlpH 7.2士0.12、制法：将蛋白胨、乳糖溶解于500ml蒸馏水中，加入牛胆粉溶液200.0ml（将20.0g脱水牛胆粉溶于200ml的蒸馏水中，pH7.0-7.5）用蒸馏水稀释到975ml，调节pH至7.4，再加入0.1%煌绿水溶液13.3ml，用蒸馏水补足到1000ml，用棉花过滤后，分装到有玻璃小导管的试管中，每管10ml。
121℃高压灭菌15min。
V-P试剂 Voges-Proskauer试剂V-P试剂是V oges-Proskauer试剂的简称，用于副溶血性弧菌的V-P试验。
配方：1、成分甲液α-萘酚 5.0g无水乙醇100.0ml乙液氢氧化钾40.0g用蒸馏水加至1000ml2、试验方法将3%氯化钠胰蛋白胨大豆琼脂生长物接种3%氯化钠MR-VP培养基，36℃士1℃培养48h。
倾注平板法测定水中细菌菌落总数
实验1 倾注平板法测定水中细菌菌落总数一、实验目的了解水中菌落总数测定的意义，原理；熟悉水样的采集与保存；掌握倾注平板法测定水的菌落总数的技术方法，及正确进行结果的卫生评价。
二、实验原理样品中的微生物细胞充分分散开，使其均匀分布于平板中的培养基内。
经培养后，单个细胞及聚在一起的细胞可以生长繁殖，形成一个肉眼可见的菌落，统计菌落数目，即可用以评价样品中的微生物的数量。
水中细菌菌落总数是指1ml水样在营养琼脂培养基中，37℃经24h培养后所生长的菌落数。
用平板菌落计数测定水中细菌菌落总数，仅包括一群在营养琼脂上生长发育的嗜中温性需氧的和兼性厌氧的细菌菌落总数。
三、仪器与试剂营养琼脂、高压蒸汽灭菌器、恒温培养箱、灭菌平皿、放大镜、灭菌采样瓶、灭菌刻度吸管、制备培养基用一般设备:量筒，三角烧瓶，pH计或精密pH 试纸等。
四、实验方法检验程序：水样做成几个适当倍数的稀释液选择2~3个适宜稀释度，各以1ml分别加入灭菌平皿内，每个浓度同时做2个平皿。
同时做营养琼脂空白对照。
每皿加入适量营养琼脂37℃ 24h菌落计数报告操作步骤：1、检测细菌的水样采集与保存1）选择容量500ml的磨口带塞无色细口瓶，在采样前必须洗净，瓶口包扎后灭菌备用。
2）按无菌操作采集水样，采水量为瓶容量的80％左右，以便检验时充分摇动，使菌胶团分散。
3）在采集加氯消毒水样时，采样瓶应在消毒前，按每500ml水样加入1.5％硫代硫酸钠溶液2ml，以中和水中的余氯，终止氯的持续杀菌作用；然后，121℃高压灭菌20min备用。
4）水样采集后，应立即记录水样名称、时间、地点等项目，从速检验，一般不应超过2h，置冰箱保存时也不应超过4h。
2、水样的检测1) 用力振摇水样20～25次，以分散可能存在的菌胶团。
2) 以无菌操作法吸取10ml充分混匀的水样，注入盛有90ml灭菌水的玻璃瓶中，混匀成1:10稀释液。
3）吸取1:10稀释液1ml注入盛有9ml灭菌水试管中，混匀成1:100稀释液，按同法依次稀释成1:1000、1:10000稀释液等备用。
(环境管理)初始污染菌检验规程
初始污染菌检验规程1、准备工作1）与供试液接触的所有器具应采用可靠方法灭菌，置压力蒸汽灭菌器内121℃30min。
2）采样数量：每批产品随机抽取10件样品.3）检测标准《GB 15980-1995一次性使用医疗用品卫生标准》：≤100cfu/件次。
4）洗脱液、稀释液采用0.9％无菌氯化钠溶液。
2、试验步骤：1）用无菌手续取出10个样品，分别放入10支装有10ml0.9％无菌氯化钠溶液的试管中，将每个采样管震打80次，混匀，分别吸取1ml放入灭菌平皿，用普通琼脂培养基作倾注培养，置37℃温箱培养48±2h观察结果。
2）用肉眼直接计数，然后用5-10倍放大镜检查，有否遗漏。
若培养皿上有2个或2个以上的菌落重叠，可分辩时仍以2个或2个以上菌落计数。
3）计算公式为：菌数/件次=平均菌数×稀释倍数/件次。
阴性对照试验：将使用的0.9％无菌氯化钠溶液吸取1ml放入无菌平皿中，注入培养基，凝固，倒置培养。
制备2个平板均不得有菌生长。
3、注意事项：1）在无菌操作台上做试验，防止环境对样品的再次污染，采取一切措施防止人为对样本的污染。
2）由于细菌种类繁多，差别甚大，计数时一般用透射光于培养皿背面或正面仔细观察，不要漏计培养皿边缘生长的菌落，并须注意细菌菌落与培养基沉淀的区别，必要时用显微镜鉴别。
编制：审核：批准：ZC-14-8初始污染菌监测操作规程1范围适用于对刚包装好的外科手套和检查手套的初始污染菌的监测和对新购进的小包装（接触手套的小包装）的监测。
第一个月每周进行一次监测，如果监测结果是稳定的以后每个月监测一次，如果3个月都稳定，监测周期改为每季度一次。
2职责质管部负责取样、按ISO 11737进行试验、如试验结果初始污染菌超过6 cfu/cm2,要及时查找原因，提出改进措施，包括工艺中产品防护和进行环境消毒。
3 生物负载测定方法A.1 概要A.1.1 生物负载测定，可使用不同的方法内容。
琼脂平板倾注法操作步骤
①含菌液体稀释方式与琼脂涂抹法相同。
②取适当稀释度的菌液0.5-1.0ml加入无菌空平皿内。
③将溶化并保温在45-48℃的营养琼脂向每个已接种菌液的平皿内倾注15-18m1，边倾注边摇匀；④琼脂倾注后，翻转使平皿底朝上，置37℃温箱培育48小时，计数菌落数。
(3)判断结果：
①一般用肉眼观察，必要时用放大镜检查，先记下各平板上的菌落数，再求出同一稀释度平板上生长的平均菌落数，选取菌落数在30-300个之间的平板作为菌落总数测定的标准，每个稀释度使用2-3个平板分别求出平均数；②未经稀释的原液在平板上生长不足30个者，亦应计数，将计数结果换算成每毫升原液的菌落数；②若有两个稀释度平板上生长的菌落数均在30-300个之间，应报告两种稀释度菌落数的均数；④若有一个平板菌落不到平板面积的一半，而其余一半中菌落分布均匀时，可计算半个平板菌落数乘以2，代表全平板菌落数；⑤若所有稀释度的平均菌落数均不在30-300个之间应作废；
⑥平板间或同一稀释度间的误差率超过10％者均应作废；⑦误差率
菌落数在100个以内时，按其实有数据报告，大于100个时，采用两位有效数字，在两位有效数以后的数值以四舍五入的方法计算。
也可用10的指数来表示。
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①含菌液体稀释方式与琼脂涂抹法相同。
②取适当稀释度的菌液0.5-1.0ml加入无菌空平皿内。
③将溶化并保温在45-48℃的营养琼脂向每个已接种菌液的平皿内倾注15-18m1，边倾注边摇匀；④琼脂倾注后，翻转使平皿底朝上，置37℃温箱培育48小时，计数菌落数。
(3)判断结果：
①一般用肉眼观察，必要时用放大镜检查，先记下各平板上的菌落数，再求出同一稀释度平板上生长的平均菌落数，选取菌落数在30-300个之间的平板作为菌落总数测定的标准，每个稀释度使用2-3个平板分别求出平均数；②未经稀释的原液在平板上生长不足30个者，亦应计数，将计数结果换算成每毫升原液的菌落数；②若有两个稀释度平板上生长的菌落数均在30-300个之间，应报告两种稀释度菌落数的均数；④若有一个平板菌落不到平板面积的一半，而其余一半中菌落分布均匀时，可计算半个平板菌落数乘以2，代表全平板菌落数；⑤若所有稀释度的平均菌落数均不在30-300个之间应作废；
⑥平板间或同一稀释度间的误差率超过10％者均应作废；⑦误差率
菌落数在100个以内时，按其实有数据报告，大于100个时，采用两位有效数字，在两位有效数以后的数值以四舍五入的方法计算。
也可用10的指数来表示。