脑脊液检验
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（2）减低：见于①细菌性脑膜炎和真菌性脑膜炎，以化脓 性脑膜炎早期减低最明显；葡萄糖含量越低，则预后越差；② 脑肿瘤；③神经梅毒；④脑寄生虫病；⑤低血糖。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
三、氯化物
（一）检测原理
➢测定的方法有硝酸汞滴定法、电量分析法、硫氰酸汞比色法、 离子选择性电极法等。临床常用电极法。
（一）检测原理
1.细菌 （1）显微镜检查（2）细菌培养（3）ELISA法
2.寄生虫 （1）显微镜检查（2）脑囊虫检查 3.梅毒螺旋体检查
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（二）质量控制
1. 苛养菌宜在床边采集和接种脑脊液标本，同时作涂片检查，以 获得初步诊断。 2.颅内脓肿需考虑标本在厌氧条件下转运和培养。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
五、蛋白电泳
（一）检测原理
➢ 常用乙酸纤维薄膜电泳法、琼脂糖凝胶电泳法。
（二）方法评价
1. 电泳条件与血清蛋白电泳相同。 2.若采用等电聚焦电泳可提高电泳图谱的分辨率。 3.高效毛细管电泳法，分辨率更强，且脑脊液标本无需浓缩。
临床基础检验学技术
➢放置12～24小时后无薄膜、凝块或沉淀。
（三）临床意义
➢脑脊液形成凝块或薄膜与其所含的蛋白质，尤其是与纤维蛋 白原的含量有关。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
➢化脓性脑膜炎的脑脊液静置1～2小时内即可出现凝固或沉淀物 ➢结核性脑膜炎的脑脊液静置12～24小时，可见液面由纤细的薄 膜形成。 ➢神经梅毒的脑脊液可有小絮状凝块。 ➢蛛网膜下腔梗阻的脑脊液呈黄色胶样凝固。
2.减低
主要见于脑脊液循环受阻；脑脊液分泌减少；脑脊液流失过 多等因素。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
第三节 脑脊液显微镜检验 （细胞学、病原学检查）
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
一、细胞学检查
（一）检测原理
1.细胞总数计数
（1）仪器计数法。 （2）显微镜计数法：直接计数法和稀释计数法。
（二）方法评价
➢脑脊液氯化物检测的方法学评价见表13-4-4。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
表13-3-4 脑脊液氯化物检测的方法学评价
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（三）质量控制
1.离子选择性电极法应及时擦去或更换电极。 2.电量分析法可选用纯试剂进行空白校正，通过预电解除去 杂质。
第十三章 脑脊液检验
（三）质量控制
1.蛋白质定性检查 （1）假阳性 （2）假阴性 （3）红细胞过多时，须离心处理。 （4）Pandy试验过于敏感
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
2.蛋白质定量检测
（1）如有多量细胞或浑浊，应先离心取上清液测定。 （2）蛋白质浓度过高，稀释后重新检测。 （3）注意磺基水杨酸-硫酸钠法手工测定。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（二）方法评价
1.蛋白质定性检查方法学评价见表13-4-2。 表13-4-2 脑脊液蛋白质定性检查方法学评价
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
2. 蛋白质定量检测方法学评价见表13-3-3。
表13-3-3 脑脊液蛋白质定量检测方法学评价
临床基础检验学技术
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
➢脑脊液同时存在胶样凝固、黄变症和蛋白质-细胞分离（蛋 白质明显增高，细胞正常或轻度增高）称为Froin-Nonne综 合征，这是蛛网膜下腔梗阻的脑脊液特点。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
四、比重
（一）检测原理 ➢常用折射仪检测比重。 （二）参考区间
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
成年人：约120m1～180m1， 总容量
新生儿：约10ml～60ml
（1）缓冲保护作用
（2）运输 生理作用
（3）调节颅内压力和pH的稳定性
（4）参与神经内分泌
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
➢通过对脑脊液的检验，可了解脑脊液的改变，达到对中枢 神经系疾病的诊断、治疗和预后判断的目的。
第十三章 脑脊液检验
2. 腔壁细胞、肿瘤细胞和污染细胞检查的临床意义。
表 脑脊液腔壁细胞、肿瘤细胞和污染细胞 检查的临床意义
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
图
图
脑脊液脉络丛细胞 脑脊液原始粒细胞
（急性粒细胞白血病）
图 脑脊液肿瘤细胞 （胃癌转移）
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
二、病原学检查
第十三章 脑脊液检验
（一）检测原理
➢ 除溶菌酶外多用酶速率法，溶菌酶多数采用比浊法进行测定。
（二）质量控制
1. 避免溶血出现假性增高。 2. 避免高温、剧烈振荡果。
（三）参考区间 脑脊液主要酶参考区间见表13-4-5。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（四）临床意义
表13-4-5 脑脊液主要酶参考区间及浓度增高的临床意义
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（四）参考区间
1.蛋白质定性：阴性或极弱阳性。 2.蛋白质定量：
腰椎穿刺：0.2～0.4g/L； 脑室穿刺：0.05～0.15g/L； 小脑延髓池穿刺：0.1～0.25g/L。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（五）临床意义
➢脑脊液蛋白含量增高，是血脑屏障被破坏的标志，常见于：
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
表 脑脊液的颜色变化及临床意义
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
二、透明度
（一）检测原理
➢肉眼观察脑脊液透明度变化，分别以“清晰透明”、“ 微浑”、“浑浊”等描述。
（二）参考区间
➢清晰透明。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（三）脑脊液的临床意义
➢透明度与其所含有的细胞和细菌数量有关。
（一）检测原理
1.蛋白质定性检查 常用方法： 潘迪试验（Pandy试验） 硫酸铵试验（Ross-Jone试验、Nonne-Apelt试验） Lee-Vinson 试验
2.蛋白质定量检测 常用方法： 磺基水杨酸-硫酸钠比浊法双缩脲法、染料结合 法、免疫学法
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
表 脑脊液蛋白质定性检查原理
（四）参考区间
成人：120～130mmol/L；儿童：111～123mmol/L。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（五）临床意义
➢ 脑脊液氯化物含量约为血浆的1.2～1.3倍。 1.减低：见于①细菌性或真菌性脑膜炎早期等；②细菌性脑
膜炎的后期；③呕吐、肾上腺皮质功能减退症和肾脏病变；④ 病毒性脑炎、脊髓灰质炎、脑肿瘤。
（三）参考区间
阴性
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（四）临床意义
1.细菌检查：排除污染因素，检出细菌均视为有病原菌感染。 2.寄生虫检查：检出寄生虫虫卵和虫体即可诊断为寄生虫病。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
第四节 脑脊液化学与免疫学检验
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
一、蛋白质
（三）质量控制
1.细胞计数：
（1）及时检查（2）校正（3）形态（4）辨别
2.分类计数：
（1）离心速度不宜过快、时间过长。 （2）细胞涂片应厚薄均匀，固定时间不能太长，更不能高 温固定。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（四）参考区间
红细胞：
无；
白细胞：
成人（0～8）×106/L，
儿童（0～15）×106/L；
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
脑脊液检验
临床基础检验学技术
本章内容
第一节 脑脊液的标本采集与处理 第二节 脑脊液理学检验 第三节 脑脊液显微镜检验 第四节 脑脊液化学与免疫学检验 第五节 脑脊液检验的临床意义
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
脑脊液（cerebrospinal fluid，CSF） 主要是由脑室脉络丛通过主动分泌和超滤作用以及脑室的室管 膜和蛛网膜下腔产生，循环流动于脑室、蛛网膜下腔和脊髓中 央管中的一种无色透明液体。
2.白细胞计数
（1）仪器计数法。
（2）显微镜计数法：直接计数法和稀释计数法。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
3.白细胞分类
（1）仪器分类法。 （2）显微镜分类法：①直接分类法：单个核细胞和中性粒细 胞所占的比例，以百分数表示。②染色分类法制备涂片后 Wright染色。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
➢腰椎穿刺：1.006～1.008； ➢脑室穿刺：1.002～1.004； ➢小脑延髓池穿刺：1.004～1.008。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（三）临床意义
1.增高
主要见于化脓性脑膜炎、结核性脑膜炎等颅内各种炎症性病变； 脑肿瘤、脑出血、脑积水等颅内非炎症性病变；高血压、动脉硬 化等颅外因素等。
（二）方法评价
1.细胞计数
（1）仪器计数法精密度高、速度快、报告及时。形态学 报警，必须进行显微镜计数法复查。
（2）显微镜计数法操作繁琐，但可作为校正仪器的参考 方法。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
2.白细胞分类计数
表 脑脊液白细胞分类计数的方法学评价
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
✓化脓性脑膜炎时，脑脊液呈明显乳白色浑浊。 ✓结核性脑膜炎时，脑脊液呈毛玻璃样浑浊。 ✓穿刺损伤带入红细胞，脑脊液可呈轻微的红色浑浊。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
表 脑脊液新鲜出血与陈旧性出血的鉴别
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
三、凝固性
（一）检测原理 ➢肉眼观察脑脊液放置是否有沉淀、凝块或薄膜。 （二）参考区间
第十三章 脑脊液检验
二、标本处理
1、应立即送检，并于1小时内检验完毕。 2、若不能及时检查，需在2～4℃环境下保存，4小时 内完成检验。 3、标本放置过久可导致细胞破坏、葡萄糖等化学成分 分解、细菌溶解等，影响检验结果。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
第二节 脑脊液理学检验
临床基础检验学技术
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（五）临床意义
➢脑脊液葡萄糖的高低与血糖浓度、血-脑脊液屏障的通透 性、葡萄糖的酵解程度有关。
1.生理性变化 （1）早产儿及新生儿 （2）饱餐或静脉注射葡萄糖后
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
2.病理性变化
（1）增高：见于①脑或蛛网膜下腔出血所致的血性脑脊液 ；②病毒性脑膜炎或脑炎；③急性颅脑外伤、中毒、缺氧、脑 出血等所致丘脑下部损伤等；④糖尿病等。
第十三章 脑脊液检验
一、颜色
（一）检测原理
肉眼观察脑脊液颜色变化，分别以无色、乳白色、红色、棕色、 黑色、绿色等描述。
（二）参考区间 无色或淡黄色。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（三）临床意义
➢当中枢神经系统有炎症、损伤、肿瘤或梗阻时，破坏了血-脑 脊液屏障，使脑脊液成分发生改变，而导致其颜色发生变化。
1.中枢神经系统炎症 2.神经根病变 3.椎管内梗阻 4.其他
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
二、葡萄糖
（一）检测原理
➢ 多采用葡萄糖氧化酶法和己糖激酶法。
（二）方法评价
1.葡萄糖氧化酶法 反应特异性低。 2. 己糖激酶法 特异性和准确性。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（三）质量控制
有核细胞分类：多为淋巴细胞及单核细胞（7:3）
内皮细胞偶见。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
图 脑脊液中淋巴细胞
图 脑脊液中中性粒细胞
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（五）临床意义
1.脑脊液细胞数增高的程度及细胞种类的临床意义
表 脑脊液细胞数增高及细胞分类的临床意义
临床基础检验学技术
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
第一节 脑脊液的标本采集与处理
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
一、标本采集
➢脑脊液标本的采集一般由临床医师通过腰椎穿刺采集
★每管2ｍL脑脊液 第1管 化学与免疫学检查 第2管 微生物检查 第3管 常规检查
★疑有恶性肿瘤，另采集1管作脱落细胞检查。
临床基础检验学技术
2.增高：主要见于肾炎、心力衰竭、尿毒症、脱水和浆液性 脑膜炎等。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
四、酶
➢ 临床检测常用酶：
✓ 天冬氨酸氨基转移酶（AST） ✓ 丙氨酸氨基转移酶（ALT） ✓ 乳酸脱氢酶（LD） ✓ 腺苷脱氨酶（ADA） ✓ 肌酸激酶（CK） ✓ 溶菌酶（LZM）
临床基础检验学技术
1. 将标本用量加倍可提高检测的灵敏度。 2.病理情况下脑脊液常含有细胞和细菌，应在留取标本后及时 检测。 3. 不能及时处理需要加适量防腐剂预防假性降低。
（四）参考区间
➢ 腰椎穿刺：2.5～4.4mmol/L； ➢ 脑室穿刺：3.0～4.4mmol /L； ➢ 小脑延髓池穿刺：2.8～4.2mmol/L。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
三、氯化物
（一）检测原理
➢测定的方法有硝酸汞滴定法、电量分析法、硫氰酸汞比色法、 离子选择性电极法等。临床常用电极法。
（一）检测原理
1.细菌 （1）显微镜检查（2）细菌培养（3）ELISA法
2.寄生虫 （1）显微镜检查（2）脑囊虫检查 3.梅毒螺旋体检查
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（二）质量控制
1. 苛养菌宜在床边采集和接种脑脊液标本，同时作涂片检查，以 获得初步诊断。 2.颅内脓肿需考虑标本在厌氧条件下转运和培养。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
五、蛋白电泳
（一）检测原理
➢ 常用乙酸纤维薄膜电泳法、琼脂糖凝胶电泳法。
（二）方法评价
1. 电泳条件与血清蛋白电泳相同。 2.若采用等电聚焦电泳可提高电泳图谱的分辨率。 3.高效毛细管电泳法，分辨率更强，且脑脊液标本无需浓缩。
临床基础检验学技术
➢放置12～24小时后无薄膜、凝块或沉淀。
（三）临床意义
➢脑脊液形成凝块或薄膜与其所含的蛋白质，尤其是与纤维蛋 白原的含量有关。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
➢化脓性脑膜炎的脑脊液静置1～2小时内即可出现凝固或沉淀物 ➢结核性脑膜炎的脑脊液静置12～24小时，可见液面由纤细的薄 膜形成。 ➢神经梅毒的脑脊液可有小絮状凝块。 ➢蛛网膜下腔梗阻的脑脊液呈黄色胶样凝固。
2.减低
主要见于脑脊液循环受阻；脑脊液分泌减少；脑脊液流失过 多等因素。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
第三节 脑脊液显微镜检验 （细胞学、病原学检查）
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
一、细胞学检查
（一）检测原理
1.细胞总数计数
（1）仪器计数法。 （2）显微镜计数法：直接计数法和稀释计数法。
（二）方法评价
➢脑脊液氯化物检测的方法学评价见表13-4-4。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
表13-3-4 脑脊液氯化物检测的方法学评价
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（三）质量控制
1.离子选择性电极法应及时擦去或更换电极。 2.电量分析法可选用纯试剂进行空白校正，通过预电解除去 杂质。
第十三章 脑脊液检验
（三）质量控制
1.蛋白质定性检查 （1）假阳性 （2）假阴性 （3）红细胞过多时，须离心处理。 （4）Pandy试验过于敏感
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
2.蛋白质定量检测
（1）如有多量细胞或浑浊，应先离心取上清液测定。 （2）蛋白质浓度过高，稀释后重新检测。 （3）注意磺基水杨酸-硫酸钠法手工测定。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（二）方法评价
1.蛋白质定性检查方法学评价见表13-4-2。 表13-4-2 脑脊液蛋白质定性检查方法学评价
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
2. 蛋白质定量检测方法学评价见表13-3-3。
表13-3-3 脑脊液蛋白质定量检测方法学评价
临床基础检验学技术
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
➢脑脊液同时存在胶样凝固、黄变症和蛋白质-细胞分离（蛋 白质明显增高，细胞正常或轻度增高）称为Froin-Nonne综 合征，这是蛛网膜下腔梗阻的脑脊液特点。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
四、比重
（一）检测原理 ➢常用折射仪检测比重。 （二）参考区间
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
成年人：约120m1～180m1， 总容量
新生儿：约10ml～60ml
（1）缓冲保护作用
（2）运输 生理作用
（3）调节颅内压力和pH的稳定性
（4）参与神经内分泌
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
➢通过对脑脊液的检验，可了解脑脊液的改变，达到对中枢 神经系疾病的诊断、治疗和预后判断的目的。
第十三章 脑脊液检验
2. 腔壁细胞、肿瘤细胞和污染细胞检查的临床意义。
表 脑脊液腔壁细胞、肿瘤细胞和污染细胞 检查的临床意义
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
图
图
脑脊液脉络丛细胞 脑脊液原始粒细胞
（急性粒细胞白血病）
图 脑脊液肿瘤细胞 （胃癌转移）
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
二、病原学检查
第十三章 脑脊液检验
（一）检测原理
➢ 除溶菌酶外多用酶速率法，溶菌酶多数采用比浊法进行测定。
（二）质量控制
1. 避免溶血出现假性增高。 2. 避免高温、剧烈振荡果。
（三）参考区间 脑脊液主要酶参考区间见表13-4-5。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（四）临床意义
表13-4-5 脑脊液主要酶参考区间及浓度增高的临床意义
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（四）参考区间
1.蛋白质定性：阴性或极弱阳性。 2.蛋白质定量：
腰椎穿刺：0.2～0.4g/L； 脑室穿刺：0.05～0.15g/L； 小脑延髓池穿刺：0.1～0.25g/L。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（五）临床意义
➢脑脊液蛋白含量增高，是血脑屏障被破坏的标志，常见于：
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
表 脑脊液的颜色变化及临床意义
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
二、透明度
（一）检测原理
➢肉眼观察脑脊液透明度变化，分别以“清晰透明”、“ 微浑”、“浑浊”等描述。
（二）参考区间
➢清晰透明。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（三）脑脊液的临床意义
➢透明度与其所含有的细胞和细菌数量有关。
（一）检测原理
1.蛋白质定性检查 常用方法： 潘迪试验（Pandy试验） 硫酸铵试验（Ross-Jone试验、Nonne-Apelt试验） Lee-Vinson 试验
2.蛋白质定量检测 常用方法： 磺基水杨酸-硫酸钠比浊法双缩脲法、染料结合 法、免疫学法
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
表 脑脊液蛋白质定性检查原理
（四）参考区间
成人：120～130mmol/L；儿童：111～123mmol/L。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（五）临床意义
➢ 脑脊液氯化物含量约为血浆的1.2～1.3倍。 1.减低：见于①细菌性或真菌性脑膜炎早期等；②细菌性脑
膜炎的后期；③呕吐、肾上腺皮质功能减退症和肾脏病变；④ 病毒性脑炎、脊髓灰质炎、脑肿瘤。
（三）参考区间
阴性
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（四）临床意义
1.细菌检查：排除污染因素，检出细菌均视为有病原菌感染。 2.寄生虫检查：检出寄生虫虫卵和虫体即可诊断为寄生虫病。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
第四节 脑脊液化学与免疫学检验
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
一、蛋白质
（三）质量控制
1.细胞计数：
（1）及时检查（2）校正（3）形态（4）辨别
2.分类计数：
（1）离心速度不宜过快、时间过长。 （2）细胞涂片应厚薄均匀，固定时间不能太长，更不能高 温固定。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（四）参考区间
红细胞：
无；
白细胞：
成人（0～8）×106/L，
儿童（0～15）×106/L；
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
脑脊液检验
临床基础检验学技术
本章内容
第一节 脑脊液的标本采集与处理 第二节 脑脊液理学检验 第三节 脑脊液显微镜检验 第四节 脑脊液化学与免疫学检验 第五节 脑脊液检验的临床意义
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
脑脊液（cerebrospinal fluid，CSF） 主要是由脑室脉络丛通过主动分泌和超滤作用以及脑室的室管 膜和蛛网膜下腔产生，循环流动于脑室、蛛网膜下腔和脊髓中 央管中的一种无色透明液体。
2.白细胞计数
（1）仪器计数法。
（2）显微镜计数法：直接计数法和稀释计数法。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
3.白细胞分类
（1）仪器分类法。 （2）显微镜分类法：①直接分类法：单个核细胞和中性粒细 胞所占的比例，以百分数表示。②染色分类法制备涂片后 Wright染色。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
➢腰椎穿刺：1.006～1.008； ➢脑室穿刺：1.002～1.004； ➢小脑延髓池穿刺：1.004～1.008。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（三）临床意义
1.增高
主要见于化脓性脑膜炎、结核性脑膜炎等颅内各种炎症性病变； 脑肿瘤、脑出血、脑积水等颅内非炎症性病变；高血压、动脉硬 化等颅外因素等。
（二）方法评价
1.细胞计数
（1）仪器计数法精密度高、速度快、报告及时。形态学 报警，必须进行显微镜计数法复查。
（2）显微镜计数法操作繁琐，但可作为校正仪器的参考 方法。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
2.白细胞分类计数
表 脑脊液白细胞分类计数的方法学评价
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
✓化脓性脑膜炎时，脑脊液呈明显乳白色浑浊。 ✓结核性脑膜炎时，脑脊液呈毛玻璃样浑浊。 ✓穿刺损伤带入红细胞，脑脊液可呈轻微的红色浑浊。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
表 脑脊液新鲜出血与陈旧性出血的鉴别
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
三、凝固性
（一）检测原理 ➢肉眼观察脑脊液放置是否有沉淀、凝块或薄膜。 （二）参考区间
第十三章 脑脊液检验
二、标本处理
1、应立即送检，并于1小时内检验完毕。 2、若不能及时检查，需在2～4℃环境下保存，4小时 内完成检验。 3、标本放置过久可导致细胞破坏、葡萄糖等化学成分 分解、细菌溶解等，影响检验结果。
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
第二节 脑脊液理学检验
临床基础检验学技术
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
（五）临床意义
➢脑脊液葡萄糖的高低与血糖浓度、血-脑脊液屏障的通透 性、葡萄糖的酵解程度有关。
1.生理性变化 （1）早产儿及新生儿 （2）饱餐或静脉注射葡萄糖后
临床基础检验学技术
第十三章 脑脊液检验
2.病理性变化
（1）增高：见于①脑或蛛网膜下腔出血所致的血性脑脊液 ；②病毒性脑膜炎或脑炎；③急性颅脑外伤、中毒、缺氧、脑 出血等所致丘脑下部损伤等；④糖尿病等。
第十三章 脑脊液检验
一、颜色
（一）检测原理
肉眼观察脑脊液颜色变化，分别以无色、乳白色、红色、棕色、 黑色、绿色等描述。
（二）参考区间 无色或淡黄色。
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第十三章 脑脊液检验
（三）临床意义
➢当中枢神经系统有炎症、损伤、肿瘤或梗阻时，破坏了血-脑 脊液屏障，使脑脊液成分发生改变，而导致其颜色发生变化。
1.中枢神经系统炎症 2.神经根病变 3.椎管内梗阻 4.其他
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第十三章 脑脊液检验
二、葡萄糖
（一）检测原理
➢ 多采用葡萄糖氧化酶法和己糖激酶法。
（二）方法评价
1.葡萄糖氧化酶法 反应特异性低。 2. 己糖激酶法 特异性和准确性。
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（三）质量控制
有核细胞分类：多为淋巴细胞及单核细胞（7:3）
内皮细胞偶见。
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第十三章 脑脊液检验
图 脑脊液中淋巴细胞
图 脑脊液中中性粒细胞
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第十三章 脑脊液检验
（五）临床意义
1.脑脊液细胞数增高的程度及细胞种类的临床意义
表 脑脊液细胞数增高及细胞分类的临床意义
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第十三章 脑脊液检验
第一节 脑脊液的标本采集与处理
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第十三章 脑脊液检验
一、标本采集
➢脑脊液标本的采集一般由临床医师通过腰椎穿刺采集
★每管2ｍL脑脊液 第1管 化学与免疫学检查 第2管 微生物检查 第3管 常规检查
★疑有恶性肿瘤，另采集1管作脱落细胞检查。
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2.增高：主要见于肾炎、心力衰竭、尿毒症、脱水和浆液性 脑膜炎等。
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四、酶
➢ 临床检测常用酶：
✓ 天冬氨酸氨基转移酶（AST） ✓ 丙氨酸氨基转移酶（ALT） ✓ 乳酸脱氢酶（LD） ✓ 腺苷脱氨酶（ADA） ✓ 肌酸激酶（CK） ✓ 溶菌酶（LZM）
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1. 将标本用量加倍可提高检测的灵敏度。 2.病理情况下脑脊液常含有细胞和细菌，应在留取标本后及时 检测。 3. 不能及时处理需要加适量防腐剂预防假性降低。
（四）参考区间
➢ 腰椎穿刺：2.5～4.4mmol/L； ➢ 脑室穿刺：3.0～4.4mmol /L； ➢ 小脑延髓池穿刺：2.8～4.2mmol/L。