翻译好的罗氏公司Tunel试剂盒操作说明方案

罗氏(R o c h e)公司T u n e l试剂盒操作说明书(Insitucelldeathdetectionkit-POD法)

一、原理：

TUNEL（TdT-mediateddUTPnickendlabeling）细胞凋亡检测试剂盒是用来检测组织细胞在凋亡早期过程中细胞核DNA的断裂情况。其原理是荧光素（fluorescein）标记的dUTP在脱氧核糖核苷酸末端转移酶（TdTEnzyme）的作用下，可以连接到凋亡细胞中断裂DNA的3’-OH末端，并与连接辣根过氧化酶（HRP，horse-radishperoxidase）的荧光素抗体特异性结合，后者又与HRP底物二氨基联苯胺（DAB）反应产生很强的颜色反应（呈深棕色），特异准确地定位正在凋亡的细胞，因而在光学显微镜下即可观察凋亡细胞；由于正常的或正在增殖的细胞几乎没有DNA断裂，因而没有3‘-OH形成，很少能够被染色。本试剂盒适用于组织样本（石蜡包埋、冰冻和超薄切片）和细胞样本（细胞涂片）在单细胞水平上的凋亡原位检测。还可应用于抗肿瘤药的药效评价，以及通过双色法确定细胞死亡类型和分化阶段。

二、器材与试剂

器材：光学显微镜及其成像系统、小型染色缸、湿盒（塑料饭盒与纱布）、塑料盖玻片或封口膜、吸管、各种规格的加样器及枪头等；

试剂：试剂盒含：

1号（蓝盖）EnzymeSolution酶溶液：TdT10×、

2号（紫盖）LabelSolution标记液：荧光素标记的dUTP1×、

3号（棕瓶）Converter-POD:标记荧光素抗体的HRP；

自备试剂：PBS、双蒸水、二甲苯、梯度乙醇（100、95、90、80、70%）、

DAB工作液（临用前配制，5μl20×DAB+1μL30%H2O2+94μlPBS）、

ProteinaseK工作液（10-20μg/mlin10mMTris/HCl，pH7.4-8）或细胞通透液（0.1%TritonX-100溶于0.1%柠檬酸钠，临用前配制）、

苏木素或甲基绿、DNase1（3000U/ml–3U/mlin50mMTris-HCl，pH7.5，10mMMgCl2，1mg/mlBSA）等。

三、实验步骤

操作流程图：制作石蜡切片→脱蜡、水合→细胞通透→加TUNEL反应液→加converter-POD→与底物DAB反应显色→光学显微镜计数并拍照。

具体操作步骤（石蜡包埋切片的检测）：

1.用二甲苯浸洗2次，每次5min；

2.用梯度乙醇（100、95、90、80、70%）各浸洗1次，每次3min；

注：上面两步是针对石蜡切片样本的处理

4.用ProteinaseK工作液处理组织15-30min在21–37°C（温度、时间、浓度均需摸索）如果凋亡细胞染色较弱时，可用高浓度的

ProteinaseK（400μg/mL）处理5分钟。其它替代方法：石蜡切片的预处理也可根椐实际情况可采用下述三种替代方法之一，即

蛋白酶K处理的步聚改用下述方法，其余步聚均相同：

替代方法1:将脱蜡及水合好的切片浸入通透液中8-10min（通透液：0.1%TritonX-100溶于0.1%柠檬酸钠，需新鲜配制）

替代方法2：将脱蜡及水合好的切片浸入胃蛋白酶或胰蛋白酶中8-10min（胃蛋白酶：0.25%-0.5%溶于HClPH2，胰蛋白酶0.25%-0.5%溶于0.01NHCl）

替代方法3:将脱蜡及水合好的切片浸入含200ml0.1M的柠檬酸缓冲液PH6的塑料盒中，

置于微波炉中350W（低档）处理5min。

5.PBS漂洗2次；

6.制备TUNEL反应混合液：

处理组用50μl1号液+450μl2号液混匀；

而阴性对照组仅加50μl2号液，

阳性对照组先加入100μlDNase1，反应在15~25℃×10min，后面步骤同处理组。7.玻片干后，加50μlTUNEL反应混合液（阴性对照组仅加50μl2号液）于标本上，加盖玻片或封口膜在暗湿盒中反应37℃×1h。

8.PBS漂洗3次；

9.可以加1滴PBS在荧光显微镜下计数凋亡细胞（激发光波长为450~500nm，检测波长为515~565nm）；

10.玻片干后加50μl3号液（converter-POD）于标本上，加盖玻片或封口膜在暗湿盒中反应37℃×30min。

11.PBS漂洗3次；

12.在组织处加50~100μlDAB底物，反应15~25℃×10min；

13.PBS漂洗3次；

14.拍照后再用苏木素或甲基绿复染，几秒后立即用自来水冲洗。梯度酒精脱水、二甲苯透明、中性树胶封片。

15.加一滴PBS或甘油在视野下，用光学显微镜观察凋亡细胞（共计200~500个细胞）并拍照。可结合凋亡细胞形态特征来综合判断（未染色细胞变小，胞膜完整但出现发泡现象，晚期出现凋亡小体，贴壁细胞出现邹缩、变圆、脱落；而染色细胞呈现染色质浓缩、边缘化，核膜裂解，染色质分割成块状/凋亡小体）

对于培养细胞的预处理：

①在载玻片上铺一层薄薄的多聚赖氨酸，干燥后在去离子水中漂洗，干燥后4℃保存；

②适当方法诱导细胞凋亡，同时设未经诱导的对照组，各组离心收集约1×106个细胞，PBS洗一次，重悬，加到铺好的多聚赖氨酸载玻片上，自然干燥，使细胞很好的吸附到载玻片上；

③将吸附细胞的载玻片在4%多聚甲醛中固定25min；

④PBS浸洗二次，每次5min；

⑤将吸附细胞的载玻片在0.2%的TritonX-100中处理5min；

⑥PBS浸洗二次，每次5min；

后续操作如同石蜡包埋切片的6-15

四、注意事项

1.进行PBS清洗时，每次清洗5min。

2.PBS清洗后，为了各种反应的有效进行，请尽量除去PBS溶液后再进行下一步反应。

3.在载玻片上的样本上加上实验用反应液后，请盖上盖玻片或保鲜膜，或在湿盒中进行，这样可以使反应液均匀分布于样本整体，又可以防止反应液干燥造成实验失败。

4.TUNEL反应液临用前配制，短时间在冰上保存。不宜长期保存，长期保存会导酶活性的失活。

5.如果20×DAB溶液颜色变深成为紫色，则不可使用，需重新配制。

6.用甲基绿（MethylGreen）染液（3-5%甲基绿溶于0.1M醋酸巴比妥PH4.0）染色后，请用灭菌蒸馏水清洗多余的甲基绿。然后进行洗净（100%乙醇）、脱水（二甲苯）透明、封片后通过光学显微镜观察操作。如果此时使用80~90%的乙醇洗净时，甲基绿比较容易脱色，注意快速进行脱水操作。

7.2号液含甲次砷酸盐和二氯钴等致癌物，可通过吸入、口服等途径进入机体，注意防护。