等电聚焦电泳教案资料
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载体两性电解质分子将向阴极或阳极迁移, 带有最低等电点的分子(荷最多的负电)将最 快地向阳极迁移。当它达到净电荷是零的位置 时才停止。
其次一些低pI的载体两性电解质分子(荷其 次多的负电)也将向阳极移动,直到它的净电 荷被减少到零才停止。
㈢电泳结束后的变化 所有的载体两性电解质分子以增加pI级数的
的缓冲能力; ④在pI处具有足够的电导,导电性均匀; ⑤两性电解质载体的数目要足够多; ⑥可溶性好; ⑦对280nm的紫外光没有或仅有很低的吸光度,
不干扰样品的测定。
2.载体两性电解质的合成
加成反应
来自百度文库
丙烯酸+多乙烯多胺
Ampholine(LKB)
本质:一系列脂肪族多氨基多羧酸同系物 和异构体,具有很多既不相同又十分接 近相互连接的pI值。
pH
+
-
a
由于载体两性电解质是一系列不同
分子的两性电解质的混合物所组成的, 设 其 中 某 一 成 分 为 A, 它 的 pI=pH’, 当 环境中的pH>pH’时,它带负电荷,朝正 极移动。(图b)
pH
ApH=pH’
+
-
b
当环境pI<pH’时,它带正电荷,朝 负极移动,直至移动到它的等点电处, 在那里聚集。由于两性电解质A在它的pI 处具有一定的缓冲能力,因此在它附近 形成一个pH稳定区域。(图c)
①有一个在电泳条件下基本稳定、重 复性良好的pH梯度
②有一个抗对流的电泳材料,使已经 分离的样品不再重新混合
③电泳后有适当的方法来鉴定分离的 区带
(一)pH梯度的建立
用多种两性电解质混合物建立稳定 良好的pH梯度
1.理想的载体两性电解质(Carrier ampholytes)应具备的特征:
①分子量要小,以便与被分离大分子物质分离; ②化学性质稳定; ③各成分的pI彼此接近,并在其pI值附近有良好
pH范围:pH3~10
3.pH梯度的形成
载体两性电解质是一系列不同分 子的两性电解质的混合物,在通电后, 它们各自迁移到适当位置形成一个 连续的pH梯度。
pH梯度形成的过程
㈠没通电时的变化
所有的载体两性电解质分子都荷电,只是溶 液中荷正电和荷负电的基团数目相等,净电荷 为零。
㈡引入电场时的变化
3、蛋白质应不含盐,因盐浓度高电流大, 易发热,而且盐离子迁移至两极产生酸 碱,占据了分离的有效部位。
等电点聚焦的分离容量受下列几个因素影响:
1、聚焦后每一区带的蛋白量取决于密度梯 度所能支持的蛋白质,提高密度可以提 高分离容量;
2、容量与区带高度的平方成正比,降低电 压可使区带变宽,提高容量,但分辨率 降低,聚焦时间长,用窄的pH梯度范围 可以使区带变宽,提高分辨率。
解质即形成一个由阳极到阴极逐步增加 的pH梯度,在此体系中,不同的蛋白质 即移动到或聚焦于其相当的等电点位置 上,也就是说被聚焦于一个狭的区带中, 电泳技术中的等电点聚焦也称为聚焦电 泳。
二、IEFE的特点
(一)优点
1.分辨率高(精密度可达0.01pH单位), 灵敏度高(最低检出量达0.1ng)。
c
a. 蛋白质分子在负极端 b. 蛋白质分子在正极端 c. 蛋白质样品中各组分聚焦成区带
在这个从正极到负极pH逐渐增加的 直流电场中,当蛋白质进入这个环境, 不同的蛋白质带上不同性质和数量的电 荷,向着一定方向移动,迁移到与其相 同的等电点位置上停留下来,即被聚焦 于一个狭的区带中 ,得以分离。
进行IEFE必须具备3个条件:
NH3+ P
COOH
NH3+ P
COO-
NH2 P
COO-
pH<pI
pH=pI
pH> pI
在电泳介质中放入载体两性电解 质,当通入直流电时,两性电解质 形成一个由正极到负极逐渐增加的 pH梯度,正极附近是低pH区,负 极附近是高pH区。
蛋白质分子的电聚焦过程
+
+
pH=pI
-
—
a
b
pI1 pI2 pI3 pIn
2.电泳区带相当狭窄。 3.重复性好。
(二)缺点
1.要求用无盐溶液,而在无盐溶液中蛋 白质可能发生沉淀。
2.样品中的成分必须停留在其pI,不适用 在pI不溶或发生变性的蛋白质。
分辨率较不连续PAGE更高,特别 适合于分离分子量相同而电荷不同 的生物大分子。
三、IEFE的基本原理
蛋白质分子在不同pH下的解离状态
办法将分别在阳、阴极之间到达它们自己的位 置而给出一个pI梯度。
电解槽中,通电后,正负两极都会发生电
极反应:
正极端反应:6H2O→O2+4H3O++4e负极端反应:4H2O+4e-→2H2+4OH-
在负极引起pH值的升高,在正极pH 下降,另外在电极槽的正极端放的是酸 性溶液,负极端放的是碱性溶液造成了 在电极附近pH的急剧变化。(图a)
等电聚焦电泳
Isoelectric Focusing Electrophoresis,IEFE
一、IEFE 定义
IEFE一种利用具有pH梯度的 支持介质分离等点电不同的蛋白 质的电泳技术。
各种蛋白质各自都有一个等电点,在一 特殊的pH环境中,蛋白质分子呈电中性, 在电场中不会迁移。
等电聚焦就是在电泳介质中放入载体 两性电解质,当通以直流电时,两性电
2.扫描与定量
激光光源强度大、单色性好,所以 对IEFE谱带的扫描最合适。 注意:操作程序和条件必须严格相同
3.其它检测方法
电泳转移 双相电泳 滴定曲线分析
蛋白质样品及分离容量
1、电聚焦有高的分辨力,一般样品不需提 纯,分析上可用来测定混合物中某一成 分的相对比例。
2、大量提纯蛋白质,则应预先初步提纯。 有些物质(如核酸)聚焦时会沉淀,应 预先除去。
pH梯度的选择
在测定未知蛋白时,可先采用 pH3-10的载体,经初步测定后改用 较窄的以提高分辨率。
(二)支持介质的选择
作用:防止扩散 抗对流
1.液体介质:蔗糖、Ficoll 2.凝胶介质:琼脂糖,葡聚糖、PAG
(三)聚焦后的检测方法
1.各种染色法
考马斯亮蓝染色 银染色 同工酶染色 专一蛋白染色 荧光标记以及免疫方法
pH
pH=pH’
A+
+
-
c
同样载体两性电解质中各种两性电
解质也会各自迁移到它们的等电点处, 由于它们的数量足够多,各自的等电点 相差很小,从而形成一个pH梯度。(图 d)
pH
+
-
d
假设在一个系统中含有极多的有 适当的等电点和它的等电点处有一 定的缓冲能力的两性电解质,因此 形成的pH梯度将是连续平滑的。
其次一些低pI的载体两性电解质分子(荷其 次多的负电)也将向阳极移动,直到它的净电 荷被减少到零才停止。
㈢电泳结束后的变化 所有的载体两性电解质分子以增加pI级数的
的缓冲能力; ④在pI处具有足够的电导,导电性均匀; ⑤两性电解质载体的数目要足够多; ⑥可溶性好; ⑦对280nm的紫外光没有或仅有很低的吸光度,
不干扰样品的测定。
2.载体两性电解质的合成
加成反应
来自百度文库
丙烯酸+多乙烯多胺
Ampholine(LKB)
本质:一系列脂肪族多氨基多羧酸同系物 和异构体,具有很多既不相同又十分接 近相互连接的pI值。
pH
+
-
a
由于载体两性电解质是一系列不同
分子的两性电解质的混合物所组成的, 设 其 中 某 一 成 分 为 A, 它 的 pI=pH’, 当 环境中的pH>pH’时,它带负电荷,朝正 极移动。(图b)
pH
ApH=pH’
+
-
b
当环境pI<pH’时,它带正电荷,朝 负极移动,直至移动到它的等点电处, 在那里聚集。由于两性电解质A在它的pI 处具有一定的缓冲能力,因此在它附近 形成一个pH稳定区域。(图c)
①有一个在电泳条件下基本稳定、重 复性良好的pH梯度
②有一个抗对流的电泳材料,使已经 分离的样品不再重新混合
③电泳后有适当的方法来鉴定分离的 区带
(一)pH梯度的建立
用多种两性电解质混合物建立稳定 良好的pH梯度
1.理想的载体两性电解质(Carrier ampholytes)应具备的特征:
①分子量要小,以便与被分离大分子物质分离; ②化学性质稳定; ③各成分的pI彼此接近,并在其pI值附近有良好
pH范围:pH3~10
3.pH梯度的形成
载体两性电解质是一系列不同分 子的两性电解质的混合物,在通电后, 它们各自迁移到适当位置形成一个 连续的pH梯度。
pH梯度形成的过程
㈠没通电时的变化
所有的载体两性电解质分子都荷电,只是溶 液中荷正电和荷负电的基团数目相等,净电荷 为零。
㈡引入电场时的变化
3、蛋白质应不含盐,因盐浓度高电流大, 易发热,而且盐离子迁移至两极产生酸 碱,占据了分离的有效部位。
等电点聚焦的分离容量受下列几个因素影响:
1、聚焦后每一区带的蛋白量取决于密度梯 度所能支持的蛋白质,提高密度可以提 高分离容量;
2、容量与区带高度的平方成正比,降低电 压可使区带变宽,提高容量,但分辨率 降低,聚焦时间长,用窄的pH梯度范围 可以使区带变宽,提高分辨率。
解质即形成一个由阳极到阴极逐步增加 的pH梯度,在此体系中,不同的蛋白质 即移动到或聚焦于其相当的等电点位置 上,也就是说被聚焦于一个狭的区带中, 电泳技术中的等电点聚焦也称为聚焦电 泳。
二、IEFE的特点
(一)优点
1.分辨率高(精密度可达0.01pH单位), 灵敏度高(最低检出量达0.1ng)。
c
a. 蛋白质分子在负极端 b. 蛋白质分子在正极端 c. 蛋白质样品中各组分聚焦成区带
在这个从正极到负极pH逐渐增加的 直流电场中,当蛋白质进入这个环境, 不同的蛋白质带上不同性质和数量的电 荷,向着一定方向移动,迁移到与其相 同的等电点位置上停留下来,即被聚焦 于一个狭的区带中 ,得以分离。
进行IEFE必须具备3个条件:
NH3+ P
COOH
NH3+ P
COO-
NH2 P
COO-
pH<pI
pH=pI
pH> pI
在电泳介质中放入载体两性电解 质,当通入直流电时,两性电解质 形成一个由正极到负极逐渐增加的 pH梯度,正极附近是低pH区,负 极附近是高pH区。
蛋白质分子的电聚焦过程
+
+
pH=pI
-
—
a
b
pI1 pI2 pI3 pIn
2.电泳区带相当狭窄。 3.重复性好。
(二)缺点
1.要求用无盐溶液,而在无盐溶液中蛋 白质可能发生沉淀。
2.样品中的成分必须停留在其pI,不适用 在pI不溶或发生变性的蛋白质。
分辨率较不连续PAGE更高,特别 适合于分离分子量相同而电荷不同 的生物大分子。
三、IEFE的基本原理
蛋白质分子在不同pH下的解离状态
办法将分别在阳、阴极之间到达它们自己的位 置而给出一个pI梯度。
电解槽中,通电后,正负两极都会发生电
极反应:
正极端反应:6H2O→O2+4H3O++4e负极端反应:4H2O+4e-→2H2+4OH-
在负极引起pH值的升高,在正极pH 下降,另外在电极槽的正极端放的是酸 性溶液,负极端放的是碱性溶液造成了 在电极附近pH的急剧变化。(图a)
等电聚焦电泳
Isoelectric Focusing Electrophoresis,IEFE
一、IEFE 定义
IEFE一种利用具有pH梯度的 支持介质分离等点电不同的蛋白 质的电泳技术。
各种蛋白质各自都有一个等电点,在一 特殊的pH环境中,蛋白质分子呈电中性, 在电场中不会迁移。
等电聚焦就是在电泳介质中放入载体 两性电解质,当通以直流电时,两性电
2.扫描与定量
激光光源强度大、单色性好,所以 对IEFE谱带的扫描最合适。 注意:操作程序和条件必须严格相同
3.其它检测方法
电泳转移 双相电泳 滴定曲线分析
蛋白质样品及分离容量
1、电聚焦有高的分辨力,一般样品不需提 纯,分析上可用来测定混合物中某一成 分的相对比例。
2、大量提纯蛋白质,则应预先初步提纯。 有些物质(如核酸)聚焦时会沉淀,应 预先除去。
pH梯度的选择
在测定未知蛋白时,可先采用 pH3-10的载体,经初步测定后改用 较窄的以提高分辨率。
(二)支持介质的选择
作用:防止扩散 抗对流
1.液体介质:蔗糖、Ficoll 2.凝胶介质:琼脂糖,葡聚糖、PAG
(三)聚焦后的检测方法
1.各种染色法
考马斯亮蓝染色 银染色 同工酶染色 专一蛋白染色 荧光标记以及免疫方法
pH
pH=pH’
A+
+
-
c
同样载体两性电解质中各种两性电
解质也会各自迁移到它们的等电点处, 由于它们的数量足够多,各自的等电点 相差很小,从而形成一个pH梯度。(图 d)
pH
+
-
d
假设在一个系统中含有极多的有 适当的等电点和它的等电点处有一 定的缓冲能力的两性电解质,因此 形成的pH梯度将是连续平滑的。