生态样本制备及DNA提取方法
生物样本DNA提取与纯化的操作流程
生物样本DNA提取与纯化的操作流程DNA（脱氧核糖核酸）是生物体内的遗传物质，对于研究基因组、遗传变异以及进行分子生物学实验起着至关重要的作用。
而在进行DNA研究之前，首先需要从生物样本中提取和纯化出DNA。
本文将介绍生物样本DNA提取与纯化的操作流程。
1. 准备实验材料首先，我们需要准备一些实验材料，包括生物样本、细胞裂解缓冲液、蛋白酶K、异硫氰酸盐、乙醇、等电聚焦缓冲液、乙酸钠、等离子体DNA纯化试剂盒等。
2. 细胞裂解将生物样本（如细胞、组织等）加入细胞裂解缓冲液中，通过机械或化学方法破坏细胞膜，释放出细胞内的DNA。
可以使用离心机进行离心，将细胞沉淀下来。
3. DNA纯化将细胞裂解产物加入等离子体DNA纯化试剂盒中，经过一系列的步骤进行DNA纯化。
首先，加入蛋白酶K，消化蛋白质，使其与DNA分离。
然后，加入异硫氰酸盐，使DNA与其他核酸分离。
接着，加入乙醇，使DNA沉淀下来。
最后，使用等电聚焦缓冲液和乙酸钠进行洗涤，去除杂质。
4. DNA浓缩将纯化后的DNA溶液进行浓缩。
可以使用乙醇沉淀法，将DNA溶液与冷乙醇混合，使DNA沉淀下来。
然后，使用离心机将DNA沉淀离心，去除上清液，最后用无菌去离子水溶解DNA。
5. DNA质量检测提取和纯化的DNA需要进行质量检测，以确保其完整性和纯度。
可以使用紫外-可见分光光度计测量DNA的吸光度，判断DNA的浓度和纯度。
此外，也可以进行凝胶电泳分析，观察DNA的带状图案，判断DNA的大小和完整性。
6. 存储和保存提取和纯化好的DNA可以进行存储和保存，以备后续实验使用。
可以使用低温冰箱或液氮保存DNA，以防止其降解和损失。
通过以上的操作流程，我们可以从生物样本中提取和纯化出DNA。
这个过程需要仔细操作，并且需要注意实验室的清洁和无菌操作。
同时，不同的生物样本可能需要不同的提取和纯化方法，因此在实验过程中需要根据具体情况进行调整和优化。
总结起来，生物样本DNA提取与纯化的操作流程包括准备实验材料、细胞裂解、DNA纯化、DNA浓缩、DNA质量检测以及存储和保存。
最全DNA提取步骤
最全DNA提取步骤DNA提取是生物学研究和实践中的一项重要技术，它是获取分析DNA序列的前提。
DNA提取步骤可能会因不同实验目的和样本类型而有所差异，但通常包括以下主要步骤：1.样本选择：选择合适的样本进行DNA提取。
常见的样本包括细胞、组织、血液、口腔拭子、植物材料等。
根据样本类型的不同，选择相应的提取方法。
2.预处理样本：将样本进行必要的预处理，以去除可能干扰DNA提取和分析的物质。
例如，清洗组织或细胞以去除外部污染物，离心分离红细胞等。
3.细胞破碎：将样本中的细胞破碎，释放DNA。
常见的方法包括机械破碎、化学裂解和酶处理等。
机械破碎可以使用高压设备或超声波破碎仪，化学裂解可以使用蛋白酶K和SDS等。
4.蛋白质去除：添加蛋白酶处理样本，降解蛋白质。
蛋白酶的选择和用量会根据样本类型和实验需求而有所差异。
蛋白质降解后，可以使用酚/氯仿方法或商用DNA提取试剂盒去除蛋白质。
5.核酸沉淀：用盐酸或其他化学品调节样品的pH值，使DNA成为可溶性物质而使其他成分沉淀。
沉淀后，用离心将DNA沉淀物分离出来。
6.DNA纯化：将DNA溶液从其他杂质中纯化。
可以使用酚/氯仿法、硅胶纯化法或商用DNA纯化试剂盒。
这些方法可以去除卟啉、盐、蛋白质和其他杂质。
7. DNA溶解：将纯化的DNA溶解于适当的缓冲溶液中，使其稳定且可供后续实验使用。
可以使用Tris-EDTA（TE）缓冲液或无菌水。
8.DNA质量和浓度检测：使用分光光度计或荧光分析仪检测DNA的质量和浓度。
合适的质控参数可根据实验目的和要求来确定。
以上是常见的DNA提取步骤，但实际操作中可能会因实验目的、样本类型和材料可用性而有所不同。
因此，在进行DNA提取时，一定要根据实际需求选择合适的方法和试剂，并严格按照操作步骤进行，以确保提取的DNA质量和纯度满足实验要求。
DNA提取方法1500字
DNA提取方法1500字DNA（脱氧核糖核酸）提取是分子生物学研究和实验室诊断中一个重要的步骤。
DNA 提取对于基因组学研究、遗传学研究、犯罪学研究等领域都非常重要。
下面我们将介绍常见的DNA提取方法。
首先，我们先了解一下DNA的来源和性质。
DNA存在于所有的活细胞中，是细胞遗传物质的载体。
DNA提取的目的是从细胞和组织样本中分离出DNA。
DNA的提取方法根据样本的来源和特点可以有所差异，但是基本步骤是相似的。
一种常用的DNA提取方法是酚-氯仿提取法。
这个方法利用酚和氯仿的不同溶解度，将DNA从其他细胞组分中分离出来。
这个方法步骤简单，适用于常见的样本来源如血液、细胞培养物等。
首先，将样本收集到离心管中。
通常需要使用离心机将样本离心，分离出细胞。
然后将细胞裂解，使DNA释放到溶液中。
裂解可以通过物理方法如冻融或超声波处理，也可以通过化学方法如蛋白酶处理来实现。
接下来，加入酚-氯仿混合液。
酚可以溶解细胞膜和蛋白质，氯仿可以溶解酚和去除其他杂质。
混合液中的DNA会被酚-氯仿分成两个层，上层是水相含有DNA，下层是酚相含有蛋白和其他细胞组分。
然后，将上层水相转移到新的离心管中。
加入等体积的异丙醇，用于沉淀DNA。
异丙醇使DNA凝聚成细丝状。
离心沉淀，取出DNA沉淀。
最后，将DNA沉淀溶解在适量的缓冲液中，并进行浓度和纯度的检测。
通常使用紫外吸收光谱法或电泳法来检测DNA的浓度和纯度。
另一种常用的DNA提取方法是离子交换法。
这个方法利用DNA带有负电荷，可以和带有正电荷的离子交换树脂结合。
这个方法适用于特定的样本如植物组织、细菌等。
首先，将样本收集到离心管中，并进行细胞裂解。
细胞裂解可以使用物理方法如冻融或超声波处理，也可以使用化学方法如蛋白酶处理。
接下来，加入含有阳离子的缓冲液。
阳离子可以和DNA结合，并使DNA和其他细胞组分分离。
然后将溶液通过离子交换树脂柱。
DNA会和阳离子结合在树脂上，杂质被洗掉。
植物提取dna的步骤及原理
植物提取dna的步骤及原理以植物提取DNA的步骤及原理为标题，本文将介绍植物提取DNA 的基本步骤以及相关原理。
植物提取DNA是指从植物细胞中分离出DNA分子的过程。
植物细胞中的DNA包含了植物的遗传信息，因此提取植物DNA对于遗传研究和基因工程具有重要意义。
下面是植物提取DNA的基本步骤：步骤一：准备样品需要选择一种适合的植物样品。
可以选择新鲜的叶片、茎段或种子作为样品。
样品应该尽可能新鲜，并且避免受到污染或损伤。
步骤二：打碎细胞将样品放入冰冻细胞研磨器中，加入研磨缓冲液，并用研磨器将样品研磨成细胞悬浮液。
研磨缓冲液中的盐和洗涤剂有助于破坏细胞壁，并释放细胞内的DNA。
步骤三：溶解细胞膜将研磨后的细胞悬浮液转移到离心管中，并加入含有洗涤剂的细胞裂解液。
洗涤剂能够破坏细胞膜，使DNA从细胞中释放出来。
步骤四：沉淀DNA将细胞裂解液置于高速离心机中进行离心，离心过程中，DNA会被沉淀到离心管底部形成一个白色的沉淀物。
离心后，将上清液倒掉，只保留沉淀物。
步骤五：洗涤DNA使用75%乙醇溶液洗涤DNA沉淀物，以去除离心过程中残留的盐和洗涤剂等杂质。
洗涤后，用吸管或微量移液器将乙醇溶液完全抽尽，避免干燥过程中DNA沉淀物溶解。
步骤六：溶解DNA将洗涤后的DNA沉淀物用适量的溶解液溶解，常用的溶解液包括TE缓冲液或纯净水。
溶解后的DNA溶液可以用于后续的实验操作，如PCR扩增、酶切等。
以上就是植物提取DNA的基本步骤，下面将简要介绍相关的原理。
DNA提取的原理主要基于细胞的破坏和DNA的溶解。
在打碎细胞的过程中，使用研磨缓冲液破坏细胞壁，释放细胞内的DNA。
细胞裂解液中的洗涤剂能够破坏细胞膜，使DNA从细胞中释放出来。
离心过程中，DNA分子由于其较大的分子量而沉淀到离心管底部，而其他细胞碎片和杂质则在上清液中。
洗涤过程中使用的乙醇溶液能够去除离心过程中残留的盐和洗涤剂等杂质。
最后，将DNA沉淀物溶解在适当的溶解液中，得到DNA溶液。
实验报告DNA提取与纯化
实验报告DNA提取与纯化一、实验目的本次实验的主要目的是掌握从生物样本中提取和纯化DNA 的方法，并了解 DNA 的性质和特点。
通过实验操作，熟悉相关实验技术和仪器设备的使用，为后续的分子生物学研究和应用奠定基础。
二、实验原理DNA 是生物体内携带遗传信息的大分子物质。
在细胞中，DNA 与蛋白质等成分结合在一起。
提取 DNA 的基本原理是利用化学和物理方法破坏细胞结构，使 DNA 从细胞中释放出来，然后通过去除蛋白质、RNA 等杂质，达到纯化 DNA 的目的。
常用的方法包括：1、细胞裂解：使用裂解液破坏细胞膜和核膜，使细胞内容物释放。
2、去除蛋白质：加入蛋白酶或酚/氯仿等试剂，使蛋白质变性沉淀。
3、沉淀 DNA：通常使用乙醇或异丙醇等有机溶剂，使 DNA 沉淀出来。
三、实验材料与设备（一）实验材料1、新鲜的动物肝脏组织或植物叶片。
2、生理盐水。
3、裂解液（包含去污剂、盐等成分）。
4、蛋白酶 K。
5、酚/氯仿混合液。
6、无水乙醇、异丙醇。
7、 70%乙醇。
8、 TE 缓冲液（TrisEDTA 缓冲液）。
（二）实验设备1、离心机。
2、移液器。
3、恒温水浴锅。
4、涡旋振荡器。
5、冰箱。
6、微量紫外分光光度计。
四、实验步骤1、样本处理称取适量的动物肝脏组织或植物叶片，用生理盐水清洗干净，剪碎或研磨成匀浆。
2、细胞裂解将处理好的样本转移至离心管中，加入适量的裂解液，充分混匀，置于恒温水浴锅中孵育一段时间，使细胞充分裂解。
3、去除蛋白质加入蛋白酶 K，混匀后在适当温度下孵育，以降解蛋白质。
加入酚/氯仿混合液，涡旋振荡混匀，然后离心，使水相和有机相分离。
此时，蛋白质等杂质主要存在于有机相中，而 DNA 则在水相中。
4、 DNA 沉淀将上清液转移至新的离心管中，加入适量的无水乙醇或异丙醇，轻轻颠倒混匀，可见白色的 DNA 沉淀出现。
5、洗涤 DNA离心收集 DNA 沉淀，弃去上清液。
加入适量的 70%乙醇，轻轻洗涤沉淀，再次离心，去除乙醇。
DNA实验流程范文
DNA实验流程范文一、DNA提取1.收集样品：选择需要提取DNA的样品，如细菌、动物或植物组织等。
2.细胞破碎：将样品研磨或切碎，使细胞破碎释放DNA。
3.细胞溶解：将破碎的样品加入溶解液，溶解细胞膜和细胞器膜。
4.蛋白酶处理：加入蛋白酶，消化细胞蛋白质，释放DNA。
5.DNA沉淀：加入盐溶液，将DNA沉淀到溶液底部。
6.洗涤：反复用酒精洗涤DNA沉淀，去除杂质。
7.DNA溶解：用适量的缓冲溶液溶解DNA。
二、DNA纯化1. 加入酶：加入RNase（核糖核酸酶）酶，消化DNA上的RNA。
2.加入盐溶液：加入盐溶液，使DNA释放出来形成沉淀。
3.洗涤：用酒精洗涤DNA沉淀，去除杂质。
4.脱水：将洗涤后的DNA沉淀在常温下干燥。
三、DNA扩增（PCR）1.反应混合物制备：将待扩增的DNA样品与引物（特异性序列）和PCR反应缓冲液混合。
2.反应条件设定：设置PCR反应的温度和时间条件。
3.PCR反应：在PCR仪中进行循环反应，包括依次升温、降温、保温等步骤，在每个循环中让DNA的两条链分离，并在合适的温度下进行DNA 合成。
4.PCR产物检测：将PCR产物进行电泳分析，观察是否得到了目标DNA片段。
四、测序1.测序混合物制备：将PCR产物与引物和测序反应缓冲液混合。
2. 测序反应：将测序混合物放入测序仪中，通过荧光标记的 ddNTP （二氧异链苷酸）与待测序的DNA链末端的碱基进行连接。
3. 信号检测：测序仪会记录下每个ddNTP的荧光信号，并将其转化为序列。
五、序列分析1.序列校对：将测序仪测得的荧光信号转化为序列，并与参考序列进行比对，校对测序的准确性。
2.序列剪切：去除测序前后的引物序列。
3.序列分析：将测得的序列进行进一步的分析，如比对数据库相似序列、预测蛋白质编码区域等。
六、结果解读和报告1.分析结果：结合序列分析结果，解读DNA的特征和功能。
2.结果报告：将实验结果整理成报告，包括序列数据、分析结果和结论。
dna提取方法
dna提取方法DNA提取方法。
DNA提取是分子生物学研究中的重要步骤，它是从细胞或组织中分离出DNA分子的过程。
在实验室中，我们常常需要从不同来源的样本中提取DNA，以进行PCR扩增、测序、鉴定等分子生物学实验。
因此，熟练掌握DNA提取方法对于科研工作者来说至关重要。
1. 样本的准备。
在进行DNA提取之前，首先需要准备样本。
样本可以是血液、组织、细胞培养物、植物材料等。
不同的样本来源需要采用不同的提取方法，因此在进行提取之前，需要对样本进行适当的处理，如细胞裂解、组织破碎等，以确保样本中的DNA能够被充分释放出来。
2. 常用的DNA提取方法。
目前常用的DNA提取方法包括酚/氯仿法、盐类沉淀法、硅胶柱法、磁珠法等。
这些方法各有特点，适用于不同类型的样本和实验需求。
在选择提取方法时，需要根据样本的性质、实验的目的以及实验室条件等因素进行综合考虑。
酚/氯仿法，这是一种传统的DNA提取方法，通过酚/氯仿混合物将DNA从其他细胞成分中分离出来。
这种方法操作简单，适用于小规模的样本提取，但需要注意酚/氯仿对操作者和环境的危害。
盐类沉淀法，盐类沉淀法利用盐类溶液中DNA的溶解度随浓度变化而发生变化的特性，将DNA从溶液中沉淀出来。
这种方法适用于大规模样本提取，操作简单，且不需要有机溶剂，对实验室环境影响较小。
硅胶柱法，硅胶柱法利用硅胶膜的吸附作用，将DNA从其他成分中分离出来。
这种方法提取的DNA纯度较高，适用于对DNA纯度要求较高的实验，如测序、克隆等。
磁珠法，磁珠法利用磁珠颗粒与DNA之间的亲和作用，将DNA从混合物中分离出来。
这种方法操作简便，适用于高通量样本提取，且可以实现自动化操作，提高提取效率。
3. 实验操作注意事项。
在进行DNA提取实验时，需要注意以下几个方面的操作事项：严格遵守实验操作规程，做好个人防护，避免接触有害化学物质；样本的处理要细致，避免污染和损伤，以确保提取的DNA质量；在使用盐类沉淀法、硅胶柱法和磁珠法时，需要注意各步骤的温度、离心速度、洗涤液的配制等细节，以确保提取效果；实验后要对提取的DNA样品进行储存，避免冻融和污染，以保证后续实验的顺利进行。
DNA提取原理和方法
化学方法与机械方法的比较
化学方法和机械方法是常用的 DNA 提取方法。化学方法依靠试剂的化学反应，而机械方法则通过物理力学的 作用来破坏细胞。
细胞壁的化学胶的应用
一种常用的 DNA 提取方法是使用含有化学胶的溶液来破裂细胞壁，这种方法可以高效地提取 DNA 并同时去除 其他细胞组分。
组织样本选择和准备
选择合适的组织样本对 DNA 提取至关重要。不同组织类型需要不同的处理方 法，如可选择血液、组织切片或唾液等样本。
细胞破裂和裂解
为了释放细胞内的 DNA，我们需要使用适当的方法破坏细胞壁和细胞膜，如 物理方法、酶处理或化学溶解。
DNA 的纯化和提取
通过纯化和提取步骤，我们可以将 DNA 与其他细胞组分分离，从而获得纯净的 DNA 样本，以便后续分析和应 用。
DNA 提取原理和方法
DNA 提取是分子生物学和遗传学研究中的基础步骤。本演示将介绍 DNA 的提 取原理、各种方法以及在实验室和日常生活中的应用。
什么是 DNA？
DNA，即脱氧核糖核酸，是一种存储遗传信息的分子。它在细胞中起到了 传递遗传信息和控制细胞功能的重要作用。
DNA 提取的意义和应用
DNA 提取是研究遗传学、进化生物学、法医学等领域的基础。它广泛应用于基因组测序、亲子鉴定、疾病诊 断和基因工程等领域。
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超实用干货！生态样本制备及DNA提取方法2016-07-15姚美玲诺禾致源“众里寻她千百度，蓦然回首，那人却在灯火阑珊处”苦苦追寻的她小编为您找到啦~ 今天小编要带大家共同解密常见生态样本的取样方法以及DNA提取方法，让你的生态样本制备轻松在握，不再成为你的困惑，赶紧来看看有没有你关注的生态样本类型吧！常见生态样本一览表1. 普通土壤1）取样方法根据研究目的确定采样范围，取样器具要事先消毒灭菌处理。
采样时应去除表面浮土，使用乙醇火烧的铲子挖取地下5~20cm的土层，去除可见杂质后，土壤过2mm筛网。
每个样品从3个或以上采样点采集并混合，去除杂质后，每5~10g分为一份，保存于无菌离心管中，置于0℃以下运回实验室，用于抽提DNA。
如不能马上实验，置于-80℃保存。
2）提取方法手工提取参考文献：Clegg C D, Ritz K, Griffiths B S. Direct extraction of microbial community DNA fromhumified upland soils [J]. Letters in Applied Microbiology, 1997, 25(1):30-33.推荐试剂盒：MoBioPowerSoil®DNA Isolation Kit2. 根际土壤1）取样方法取样器具要事先消毒灭菌处理，采集20cm深的根际土壤置于50mL的无菌管里，迅速放在液氮里储存，用20目的筛子过筛，去除植物根、动物残骸以及其他杂质后分装到无菌离心管里，每管3~5g，密封后立即放于-80℃储存备用。
2）提取方法手提方法可参考：[1] Niemi R M, Heiskanen I, Wallenius K, et al.Extraction and purification of DNA in rhizosphere soil samples for PCR-DGGEanalysis of bacterial consortia [J]. Journal of Microbiological Methods, 2001,45(3):155-165[2] Wang J, Wu G, Li W, et al. A DNA extraction method used for evaluation of diversityof the plant rhizosphere microbial community[J]. 2013推荐试剂盒：MoBio PowerSoil®DNA Isolation Kit 或MoBio PowerSoilHigh-Throughput DNA Isolation Kit3. 水体1）取样方法根据研究目的确定采样深度和范围，采集好的水样需要通过滤膜进行过滤，可以根据水样的浑浊程度选择相应孔径的滤膜，之后置于-80℃保存备用。
清亮水样：可选择小孔径的滤膜，一般选0.22μm 或0.45μm 的滤膜，过滤水样体积大于10L；浑浊水样：过滤前静置分离悬浮颗粒，也可以用大孔径的滤膜预过滤一遍，再用小孔径的滤膜进行过滤。
2）提取方法∙手提DNA可参考文献：∙[1] Arumugam R, Chan X Y, Yin W F, et al. Metagenomic analysis ofMicrobial Diversity of Tropical Sea Water of Georgetown Coast, Malaysia [J]. Life Science Journal,2013, 10(3).[2] Shi P,Jia S, Zhang X X, et al. Metagenomic insights into chlorination effects onmicrobial antibiotic resistance in drinking water [J]. Water Research, 2013,47(1): 111-120.∙推荐试剂盒：∙Po werWater®Sterivex ™ DNA Isolation Kit (MoBio, USA)4. 活性污泥及海洋沉积物1）取样方法活性污泥：从曝气池中取25mL 悬浮的活性污泥样本放入无RNA 酶的管中，迅速放入液氮并运送到实验室提取DNA；地表沉积物：取距地表0-10cm 的地表沉积物，每个位点取1-2kg 的沉积物装入消毒聚乙烯塑料袋中，立刻置于0℃运到实验室进行DNA提取。
2）提取方法∙推荐试剂盒：∙FastDNA®Spin Kit for Soil (MP Biomedicals, USA) 或UltraClean®Mega Soil DNA Isolation kit(MoBio，USA)进行提取并利用PowerClean® DNAClean-Up kit (MoBio，USA)进行纯化。
注：每个样本提取两次并将提取好的DNA 混为一管以减少DNA 提取的潜在偏好性，参考Cai L, Yu K, Yang Y, et al. Metagenomic exploration reveals highlevels of microbial arsenic metabolism genes in activated sludge and coastalsediments [J]. Applied microbiology and biotechnology, 2013,97(21): 9579-9588.5. 植物内生菌1）取样方法用流水冲洗植物根样本表面并摘掉小侧根，粘根土壤粒要进行化学消毒（95%的次氯酸钠2min），用无菌玻璃珠在无菌水中剧烈摇晃，物理去除细菌。
之后用手术刀片划开根部组织以释放内生菌，用无菌玻璃珠在9%的生理盐水中振荡，在30℃的条件下振荡4h以分离内生菌，之后用5μm滤膜过滤，15000r，4℃离心收集沉淀并置于液氮中保存。
2）提取方法∙内生真菌样本DNA提取参考文献：∙Sessitsch A, Hardoim P, Döring J, et al. Functional characteristics of an endophytecommunity colonizing rice roots as revealed by metagenomic analysis [J]. Molecular Plant-Microbe Interactions, 2012, 25(1): 28-36.∙内生细菌样本DNA提取方法参考文献：∙Shi Y W, Yang H, Zhang T, et al. Illumina-based analysis of endophytic bacterialdiversity and space-time dynamics in sugar beet on the north slope of Tianshanmountain [J]. Applied microbiology and biotechnology, 2014, 98(14): 6375-6385.6. 空气1）取样方法（采样使用的器具要每天进行更换，并且使用75%的酒精进行洗涤）a.收集目标区域的空气微颗粒，采用不同孔径大小的无菌滤膜进行目的颗粒的筛选，如果不分颗粒小大，可直接选取最小孔径的无菌滤膜进行过滤，以保证空气微生物最大程度上被过滤下来；将过滤好的无菌滤膜迅速密封，置于-80℃条件下进行保存；截取适当大小的滤膜放在含有1×PBS缓冲液的50mL离心管中，于4℃条件下，用200g加速度离心3h；最后温和漩涡处理，使用0.2μm的Supor200 PES Membrane Disc Filter过滤重悬液后待提取。
2）提取方法∙手提可参考文献：∙[1] Jiang W, Liang P, Wang B, et al. Optimized DNA extraction and metagenomic sequencingof airborne microbial communities.[J]. Nature Protocols, 2015, 10(5):768-79[2] Yooseph S, Andrews-Pfannkoch C, Tenney A, et al. A Metagenomic Framework for the Studyof Airborne Microbial Communities [J]. Plos One, 2013, 8(12): e81862；∙推荐试剂盒：∙MoBioPowerSoil DNA isolation kit7.物体表面1）取样方法将所研究的物体放在事先灭好的无菌容器当中，加入PBS缓冲液后进行振荡，使得微生物从物体表面充分的脱落并聚集在PBS缓冲液当中，之后直接提取PBS缓冲液中的微生物或者将缓冲液用滤膜过滤之后再进行DNA的提取。
2）提取方法提取具体流程可参考文献：HewittK M, Gerba C P, Maxwell S L, et al. Office space bacterial abundance and diversityin three metropolitan areas [J]. 2012.今天小编就先为大家整理到这里，不知道是否解开了你心中的疑惑呢？如果你有更棘手的样本不知该如何处理就请积极留言吧，关注度高的样本类型小编可以为大家再整理一期。
那有些人可能就问了，我的样本也很常见啊，为什么没有我心心念念的生物样本呢？别急呀，小编下期将会继续带大家解密生物样本类型的取样方法以及DNA提取方法，敬请期待吧~微生物事业部姚美玲丨文案武苾菲丨编辑配图来源于网络，侵删为你读文献为你分享资源为你分析研究思路为你提供最前沿的科研动态学霸，逗逼，科学家，文艺青年同在！诺禾致源丨提供领先的基因组学解决方案长按识别二维码，关注诺禾致源。