经典实验动物的生理病理检测.ppt

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实验动物演示文稿

封闭群
突变系
近交系
F1杂交群
由不同品系或种群之间杂交产生，用于实验研究的杂交群是指两个近交系之间交配所繁殖的子一代动物Pag，e ▪ 简6 称F1代动物。兼有近交系和封闭群的特点。
保持有特殊突变基因的品系动物称为突变系动物，往往具有某些鲜明的人类疾病模型特征。
实验动物—小鼠（Mouse)
出生时体重1.5g，体长20mm左右。成年体重30-40g，体长110mm。
喜黑暗，昼伏夜动，喜欢群居，雄性好斗。胆小怕惊，对环境反应敏感，适应性差。
汗腺不发达，怕热，高温容易中暑。
Page ▪ 8
小鼠（Mouse)—一般特性
发育迅速，性成熟早
20日龄左右即可离乳，此时体重达14g（10-16g）左右，稍加饲育即可用于实验及科研（18-22g），６７周龄性成熟。雌性35-50d、雄性45-60d便可交配繁殖，配种最好在65-90日龄。
无特定病原体动物 spPeacgei▪fi4c pathogen free animal
指无可检出一切生命体的动物。进一步说，是指用现有的检测技术在动物体内外的任何部位均检不出任何微生物和寄生虫的动物。
是指在无菌动物体内植入已知微生物的动物。根据植入无菌动物体内菌落数目的不同，悉生动物可分为单菌、双菌、三菌和多菌动物。
悉生动物
SPF动物来源于无菌动物，必须饲养在屏障系统中，实行严格的微生物学控制。国际上公认SPF动物适用于所有科研实验，是目前国际标准级别的实验动物。各种疫苗生产所采用的动物应为 PageS▪ P5 F级动物。
饲养于屏障环境中或IVC系统中，其所用的饲料、垫料、笼器具都要经过消毒灭菌处理，饮用水除用高压灭菌外，也可采用PH2.5~2.8的酸化水,工作人员需换灭菌工作服鞋、帽、口罩进入动物室操作，适用于大多数科研实验。

动物尸体剖检(动物病理学课件)

2. 肝、肾、脾等内脏器官的腐败肝脏的腐败往往发生较早，变化也较明显。此时，肝
脏体积增大，质度变软，污灰色，肝包膜下可见到小气泡，切面呈海绵状，从切面可挤出混有泡沫的血水，这种变化，称为泡沫肝。肾脏和脾脏发生腐败时也可见到类似肝脏腐败的变化。
3. 尸绿动物死后尸体变为绿色称为尸绿。由于组织分解产生
对于一些群发性疾病，如传染病、寄生虫病、中毒性疾病和营养缺乏症等，通过尸体剖检，直接观察器官特征病变，结合临床症状和流行病学调查等，及早做出诊断(死后诊断)，便于及时采取有效防治措施。
3. 促进病理学教学和病理学研究尸体剖检是病理学不可分割的、重要的实际操作技术，
是研究疾病的必需手段，也是学生学习病理学理论与实践结合的一条途径。随着养殖业的迅速发展和一些新畜种、新品种的引进，临床上常会出现一些新病，一些老病也有可能发生新变化，给临床诊断造成一定的困难。对临床上出现的新问题，或新的病例进行尸体剖检，可以了解其发病情况，疾病的发生、发展规律以及应采取的防治措施。
尸体的变化
动物死亡后，因体内酶和细菌的作用以及外界环境的影响，其尸体会发生一系列的变化。在进行尸体剖检时，正确地辨认尸体变化，可以避免把某些死后变化误认为是生前的病理变化而干扰诊断。尸体的变化有多种，其中包括尸冷、尸僵、尸斑、尸体自溶、尸体腐败、血液凝固。
（一）尸冷动物死亡后，尸体温度逐渐降至外界环境温度水平的现
5．血液凝固动物死后心脏和大血管内的血液即发生凝固。当死后血液凝固较快
时，血凝块呈一致的暗红色，如死后血液凝固缓慢，血凝块分成明显的两层，上层为主要含血浆成分的淡黄色鸡脂样凝血块，下层为主要含红细胞的暗红色血凝块，这是由于血液凝固前红细胞沉降所致。因败血症、窒息及一氧化碳中毒等死亡的动物，往往血液凝固不良。血凝块表面光滑、湿润，有光泽，质柔软，富有弹性，与血管内膜易剥离。应注意与血栓区别。血栓为动物生前形成，表面粗糙，质脆而无弹性，与血管壁有粘连，不易剥离，硬性剥离可损伤内膜。在静脉内的较大血栓，可同时见到粘着于血管壁上呈白色的头部(白色血栓)、红白相间的体部(混合血栓)和全为红色的游离的尾部(红色血栓即血凝块)。

实验动物PPT课件

03
CATALOGUE
实验动物在科学研究中的应用
实验动物在生命科学研究中的应用
生命科学研究
实验动物在生命科学研究中发挥着重要作用，如遗传学、细胞生物学、神经科学等领域的实验研究。
基因编辑技术
利用实验动物进行基因敲除、敲入等基因编辑技术的研究，有助于深入了解基因功能和疾病发生机制。
人类疾病模型
药物研发与筛选
利用实验动物模型研究药物作用机制，提高新药研发效率和成功率，降低临床试验风险。
疾病机制研究
通过实验动物模型揭示人类疾病的发病机制，为疾病预防、诊断和治疗提供科学依据。
3
生物医学工程与组织再生
利用实验动物模型研究生物医学工程和组织再生技术，为器官移植、损伤修复等领域提供技术支持。
实验动物的疾病控制与预防
健康监测
定期对实验动物进行健康检查，及时发现异常情况。
免疫接种
根据需要制定免疫接种计划，提高动物的免疫力。
隔离与治疗
对患病动物进行隔离和治疗，防止疾病传播。
06
CATALOGUE
实验动物未来发展展望
实验动物技术的发展趋势
基因编辑技术的进一步应用
随着CRISPR-Cas9等基因编辑技术的发展，实验动物基因型和表型将更加精确可控，有助于研究特定基因功能和疾病机制。
03
豚鼠
豚鼠在免疫学研究中具有重要价值，是常用的过敏反应和免疫学实验动物。
05
04
兔子
兔子在生理学、毒理学和皮肤病学研究中较为常用，其皮肤结构和功能与人类相似。
02
CATALOGUE
实验动物的饲养管理
实验动物饲养环境
温度
实验动物饲养环境应保持恒定的温度，以满足不同实验动物

《动物病理学》课件

采集动物的血液样本，检测血液中的生化指标，了解动物体内代谢和器官功能状态。
整体动物实验
通过观察动物在受到疾病或损伤后的生理反应，分析病理生理过程和器官功能的变化。
病理形态学研究方法
肉眼观察与大体解剖
01
通过观察动物的整体外观、器官大小、色泽、质地等，初步判
断疾病或损伤的性质。
组织学观察
02
利用显微镜对组织切片进行观察，分析细胞和组织的形态结构
变化。
组织化学与免疫组织化学技术
03
利用组织化学和免疫组织化学技术，对组织中的特定成分进行
染色和定位，以揭示其功能和变化。
常见动物疾病的病
04
理学特点
传染病疾病的病理学特点
传染病疾病通常具有急性经过、全身性反应和病原体在体内迅速繁殖等特点。
传染病疾病的病理学特点包括病原体在体内的繁殖和扩散，导致组织器官的损伤和功能障碍。常见的传染病疾病包括病毒感染、细菌感染、真菌感染等，其病理学特点因病原体不同而异。
基因组学在动物病理学中的应用
基因组学在动物疾病诊断中的应用
通过基因检测技术，可以快速准确地诊断动物疾病，为早期治疗和预防提供依据。
基因组学在动物疾病预防中的应用
通过基因编辑技术，可以改良动物品种，提高抗病性能和生产性能，减少疾病的发生。
蛋白质组学在动物病理学中的应用
蛋白质组学在动物疾病诊断中的应用
疾病监测
动物病理学通过对动物群体的定期检查和监测，能够及时发现疾病的迹象和传播趋势，为采取有效措施控制疾病提供时间上的优势。
预警系统建立
基于病理学的研究结果，可以建立动物疾病预警系统，通过对历史病例数据的分析，预测未来可能发生的疾病和疫情，提前做好应对措施。

动物检验检疫技术ppt课件

检验检疫方法：临床观察、病理学检查、实验室检测。
实验室检测包括病毒分离鉴定、抗原检测和核酸检测等。
高致病性禽流感的检验检疫
高致病性禽流感是由A型流感病毒引起的一种高度急性、热性、接触性传染病，对禽类危害极大。
检验检疫方法：临床观察、病理学检查、实验室检测。
实验室检测包括病毒分离鉴定、血清学检测和分子生物学检测等。
动物检验检疫可以确保动物及其产品的安全性，防止疫情扩散和危害公共安全。
检验检疫的流程与标准
流程
动物检验检疫的流程包括现场检查、取样、实验室检测、结果判定和出具证书等环节。
标准
动物检验检疫的标准包括国家法律法规、国际标准和行业规范等，以确保检验检疫工作的科学性、准确性和可靠性。
02
动物检验检疫技术
04
动物检验检疫的法规与标准
国内动物检验检疫法规
01
动物检验检疫法规概述
介绍我国动物检验检疫法规的制定背景、目的和意义，以及法规体系的
基本框架。
02
主要法规内容解读
对《动物检疫法》、《动物防疫法》等主要法规进行详细解读，包括相
关定义、适用范围、检验检疫程序、法律责任等方面的规定。
03
法规实施与监督
证书管理实践
介绍证书管理的具体实践经验，包括证书的申请、审核、签发、使用和监督等方面的规定和操作流程。
05
动物检验检疫的未来发展
新技术与新方法的应用
生物技术
利用基因组学、蛋白质组学和免疫学等生物技术，提高动物检验检疫的准确性和灵敏度。
快速检测技术
开发新型的快速检测试剂盒和仪器，实现现场快速检测和实时监控。
病理学检验技术注意事项
病理学检验技术需要具备一定的专业知识和技能，同时要注意保护动物福利和遵守相关法律法规。

动物病理诊断技术PPT课件

• 穿戴好工作衣帽，外罩橡胶或塑料围裙，戴乳胶手套并外加线手套，穿胶靴，必要时戴口罩和眼镜。 • 不慎损伤皮肤时，应立即消毒包扎。 • 剖检完毕，手的清洗消毒
五、尸体剖检的注意事项

（一）剖检时间
• 尽早，最好5h内，超过24h失去剖检意义。
• 最好白天，晚上应在充足的日光灯下进行。

（二）了解病史

打开后：检查胸腔液的量和性状，胸膜、肺脏和心脏的色泽和光滑度，有无充血、出血、粘连等。
4、腹腔器官采出

由膈处切断食管，由骨盆切断直肠，将胃、
肠、肝脏、胰脏、脾脏、一起采出，分别检
查；也可按脾、胃、肠、肝、肾的顺序分别
采出。
5、胸腔脏器采出

心脏、肺脏等的采出。
6、口腔和颈部器官检查

剥去下颌部和颈部皮肤后，用刀切断两下
• 剖检器械：解剖刀、剥皮刀、脏器刀、外科刀、脑刀、外科剪、肠剪、镊子、骨锯、骨斧、量尺、量杯、注射器、磨刀棒等 • 装检验样品灭菌平皿、棉拭子，装有固定液（10%福尔马林、95%酒精）广口瓶 • 消毒药品：3%5%来苏儿、5%石碳酸、3% 碘酊、0.2%高锰酸钾、70%酒精等

剖检人员自身防护

切开腹腔后，立即检查腹腔液的性状和量；有无腹膜炎、腹
水和腹腔积血；肠管有无变位、破裂；膈的紧张度及有无破
裂；大网膜的脂肪含量、有无出血和炎症。
3、胸腔的打开

先沿季肋部切去膈肌，再用刀或骨剪切断肋软骨与胸骨连接部，再把刀伸入胸腔划断脊柱两侧肋骨和胸椎连接部的胸膜和肌肉，然后用两手向外按压两侧胸壁肋骨，则肋骨和胸椎连接处的关节脱离或折裂而使胸腔敞开。
模块一尸体剖检概述

实验动物的生理病理检测

神经科学研究
利用生理病理检测技术，对实验动物的神经系统功能进行检测和分析，探索神经疾病的发病机制和治疗方法。
毒理学研究
通过对实验动物暴露于有毒物质后的生理病理变化进行检测，评估有毒物质的毒性和危害程度。
实验动物的生理病理检测展望
06
与挑战
新技术与方法在生理病理检测中的应用
分子生物学技术
01
利用PCR、基因芯片等技术检测实验动物基因表达和突变情况
经济性原则
在满足实验要求的前提下，尽量选择价格合理、易于饲养和管理的实验动物。
重复性原则
实验结果应具有可重复性，以便进行统计学分析和比较。
实验动物的伦理问题
动物福利
确保实验动物享有适当的饲养环境、营养、医疗和心理健康。
替代、减少和优化
尽量使用非动物实验方法，减少实验动物数量，优化实验设计以减少动物痛苦。
组织切片技术
显微镜观察
通过取实验动物的组织样本，经过固定、脱水、包埋、切片等步骤，制成组织切片，用于观察组织结构和病理变化。
通过光学显微镜或电子显微镜观察组织切片，分析组织结构和病理变化，如炎症、肿瘤、坏死等。
染色技术
利用不同的染色方法和染料，对组织切片进行染色，以显示不同组织和细胞的形态和结构，便于病理分析和诊断。
代谢组学技术
通过分析实验动物体液或组织中的代谢物组成和含量变化，揭示病理过程中的代谢异常和疾病机制。
影像学技术
利用X射线、CT、MRI等影像学技术，对实验动物进行无创性检查，观察和分析病理过程中的形态和结构变化。
生理病理检测在生物医学研究
05
中的应用
疾病模型的建立与验证
动物疾病模型的建立

实验动物组织病理学

实验动物组织病理学1 实验动物组织病理学的概述实验动物组织病理学是一门研究实验动物器官、组织、细胞的病理变化及其病因、病理生理和病理治疗的学科。

通过对实验动物进行病理学观察和分析，能够更好地了解疾病的发生机制，为临床病理诊断和治疗提供实验依据。

2 实验动物组织病理学的重要性实验动物组织病理学研究对生物医学研究和药物开发起着至关重要的作用。

通过实验动物病理学观察和分析，可以对药物的毒性和安全性进行评估，确保新药的开发符合人体安全标准；同时，实验动物组织病理学研究也为研究生物医学疾病提供了重要的实验基础。

3 实验动物组织病理学的应用实验动物组织病理学的应用领域广泛。

在药物开发中，通过实验动物组织病理学评估药物毒性和安全性，选择最有效的药物剂量；在医疗中，通过实验动物组织病理学对医疗器械进行检测，保证医疗器械的安全和有效性；在环境卫生中，实验动物组织病理学可以用来评估环境污染对生物的危害等。

4 实验动物组织病理学的常用技术常用的实验动物组织病理学技术包括组织切片、染色和显微镜观察等。

组织切片是指将动物组织切成薄片后，在显微镜下进行观察和分析。

染色则是将切片进行染色处理，这样可以更好地显示细胞核、细胞质等细胞组分，以便于更好地观察和分析。

显微镜观察是指利用显微镜对染色后的组织切片进行观察和分析，通过观察异变细胞、细胞内和细胞之间的关系等，来推断细胞发生变化的原因和机制。

5 实验动物组织病理学的未来发展趋势未来的实验动物组织病理学发展趋势将注重对细胞、组织和器官的定量研究。

此外，随着各种新技术和生物学研究的发展，包括基因工程和分子生物学在内的一些新技术也将应用在实验动物组织病理学研究中。

6 总结实验动物组织病理学是一门非常重要的学科，为药物开发、医疗卫生和环境卫生等领域提供了实验手段和依据。

通过实验动物组织病理学的观察和分析，能够更好地理解细胞和组织的病理变化，为疾病的诊断和治疗提供依据，是一项不可或缺的研究领域。

第三章常用实验动物PPT课件

13
2.选择结构简单，又能反映研究指标的实验动物
灵长类虽然进货程度高，但数量少，得到难，如前面所谈的粥样硬化动物模型，鸽比猴效果好，复制时病变部位常在小动脉，即使出现在大动脉，与人类分布不同。又如果蝇具有繁殖快，生活期短（12天），染色体数量少（4 对），唾液染色体易制作等优点，因此是遗传学研究的好材料。
2021
35
4、喜食肉类和脂肪性饲料，饲料中需有一定的动物蛋白质和脂肪。
5、正常犬鼻呈油状滋润，人以手背触之有凉感，它能灵敏地反映全身的健康情况。
6、智力发达、记忆力强、感情丰富。 7、寿命10--20年。
2021
36
（二）解剖生理特点 1、骨骼： ❖犬无锁骨，肩胛骨由骨骼肌连接躯体。
❖有阴茎骨。
❖繁殖期6月龄~3岁，妊娠期30~33天，哺乳期：25~45天
2021
24
雌雄辨别
Female
Male
2021
25
（三）繁殖与饲养管理：
母兔每月发情2~3次,发情周期8~15天,持续 3~5天,在雌期间配种较为顺利.
配种方法: 1.自然交配法 2.人工辅助交配法 3.人工授精
2021
26
环境温度:20~26℃,湿等可引起非感染性发热。
3、药品生物检定中热源的检查常用兔。（三）生殖生理和避孕药的研究
利用家兔诱发排卵的特点进行各种研究。
2021
32
（四）眼科的研究
眼球大，便于操作，两眼对照实验。
（五）胆固醇代谢和动脉粥样硬化的研究
对胆固醇吸收率高，清除率低。与人病变相似。
2、犬的汗腺很不发达，散热主要靠加速呼吸频率，舌伸出口外喘式呼吸。
2021

实验动物的生理、生化、免疫、血液学等各项指标的检测方法

实验动物的生理、生化、免疫、血液学等各项指标的检测方法实验动物的种类繁多，各种指标的检测方法往往各不相同，而且每个人在做动物试验时所需要检测的指标也各不相同，每个人掌握的测定方法也各不相同。

能到本版来的各位战友相信都做过动物试验，也检测过实验动物的指标，希望各位战友能将自己检测实验动物的各种指标时所使用的方法拿出来与大家分享。

以至于dxy能够将各位的实用方法系统的组织起来，形成一个比较完善的实验动物常用指标的检测方法！抛砖引玉：一．体重的测量方法动物体重的测量一般使用普通天平或电子天平等称量仪器，在称量前应禁食（不禁水），以减少食物对体重的影响。

如果进行长期的实验时，应每隔7～10天称量一次。

小鼠、大鼠：称量可用普通的天平或者电子秤称重。

兔、豚鼠：可直接放在婴儿秤上称重，从婴儿秤圆形刻度盘上读取动物体重。

犬：经训练后可直接放在磅秤上称重。

未经驯服的犬，先将犬嘴绑好，由实验员把犬抱起站在磅秤上称重，记下读数，减去实验员体重，即为动物体重。

二．体温的测定方法动物体温测定可采用普通体温计（肛表、口表）或半导体温度计，为防止测定过程中动物挣扎，以至于挫伤肠壁或折断体温计，在测定前应先固定好动物。

肛表测温可由实验者右手固定体温计，3分钟后取出观察读数。

半导体点温度计在测定时可立即从温度表上读取温度数。

测定温度时应注意如下几点：（1）检查肛表水银柱是否已甩下来，半导体点温度计的指针是否指在零位。

（2）环境温度对动物体温的测定有一定的影响，一般环境温度应控制在18～28℃。

（3）测量温度时应连续测定2～3次，取平均值。

（4）插入直肠的深度取决于动物的大小，犬、猫、兔3.5~5cm，豚鼠3.5cm，大鼠、小鼠1.5~2.0cm。

为了使插入深度一致，可用胶皮管套在温度计上，作为“限止环”。

（5）每次测定时间要一致。

一般体温计放入直肠内固定时间为3分钟，而每天测定的时间也大致一样，如第一次在上午测定，以后均应在上午测定。

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(三)白细胞分类计数
采血推片干燥染色计数形态鉴别：（1）嗜中性粒细胞：10-12um，有嗜中性颗粒。
（2）嗜酸性粒细胞：略大于嗜中性粒细胞，颗粒大，位于核外，粉红色，核明显，常分两叶。
（3）嗜碱性粒细胞：略大于嗜中性粒细胞，颗粒粗大压在核上，呈紫色，核不明显。
（4）淋巴细胞：8-15um，一般圆的多，核偏一边，核染色质排列成斑块状，较致密。核与胞浆比例为 9：1或8：2。胞浆呈浅蓝色，有时有灰青颗粒。核的形状以圆形最多。
2．骨髓细胞分类将小鼠解剖后，取l或2节胸骨作骨髓涂片，经甲醇固定后，用瑞氏或姬姆染液染色：分类计数500个骨髓有核细胞。
3．骨髓粒细胞分裂指数小鼠腹腔注射0.1mL(50ug) 秋水仙碱溶液，5h后，取作骨髓涂片，经甲醇固定，用瑞氏或姬姆染液染色，计数每1000个粒细胞中分裂的粒细胞数。
测定体温除了用肛表外，还可用半导体点温度计可立即从温度表上读取温度数。
各种成年动物的正常体温
动物体温变动范平均体温动物体温变动范平均体温种类围（℃ ）（ ℃ ）种类围（℃ ）（ ℃ ）
猿猴 38.3-38.9 38.6
大鼠 38.5-39.5 39.0
犬 38.5-39.5 39.0
(五) 血细胞比容容量及红细胞降率(血沉)测定
1．血细胞比容容量测定
常用Wintrobe测定法：测定时，以EDTA二钠作为抗凝剂，5mL静脉血加1滴EDTA二钠，以细而长的吸管吸取抗凝血，插入Wintrobe管底部，自上而下轻轻地把血液注入至刻度10处，不能夹有气泡，在校准过的离心机内以3000r／min的速度离心30min，压紧的红细胞的高度(mm)即为血细胞比容容量数值，常以百分率表示。
二、体温的测定方法
动物体温测定是动物实验中最常用的检测指标之一。在测定前应先固定好动物。一般测大鼠或小鼠
体温时，左手带上布手套，将鼠抓起，并将鼠固定于实验者手心，同时用环指和小指把鼠尾固定；兔则可用左臂夹住兔体，左手提起尾巴，犬可固定在台上，然后右手持头瑞涂上少许凡士林的肛表，由肛门插入直肠一定深度。测量时间3min。
2．红细胞沉降率的测定
以干燥草酸钾和草酸铵或EDTA二钠作为抗凝剂，将抗凝血加入Wintrobe管内到刻度10 处，垂直放置，记录1h红细胞沉降的毫米数。测定时应在22—27℃之间的室温下进行。
二、造血功能常用指标的检查
1．骨髓细胞计数将小鼠颈椎脱位处死，取l根股骨，用10mL 3％醋酸溶液冲出骨髓细胞，在血细胞计数器上计数4个大方格的细胞数，所得细胞数乘以2.5X100000，即为l根股骨中骨髓有核细胞数。
实验动物的生理病理检测
第一节一般体征的检查与测量方法
一、体重的测量方法
动物体重借助称量仪器测量小鼠、大鼠：称重可用带游码的普通天平或电
子秤称重。兔、豚鼠：可直接放在婴儿秤上称重，从婴儿
秤圆形刻度盘上读取动物体重。犬：经训练后可直接放在磅秤上称重。未经驯
服的犬，先将犬嘴绑好，由实验员把犬抱起站在磅秤上称重，记下读数，减去实验员体重，即为动物体重。
（5）单核细胞：15-20um，胞浆浅淡，核肾形多有压迹．核染色质疏松，核两端常切断胞浆。
(四) 稀释液0.4mL，取动物静脉血20mm3 ，迅速挤于稀释液内，立即充分摇匀。
(2)放置4—10min，待溶液呈透明红色，说明红细胞已经充分溶解，
充分摇匀，取l小滴加入计数池。
四、呼吸频率的测定方法
动物呼吸频率和呼吸深度的改变是实验时常见的症状之一，对阐明药物作用的机制具有重要意义。
因此在实验前后必须注意检查动物的呼吸节律、频率、深度的变化。这些变化可标志出呼吸器官的功能状态。频而表浅的呼吸是肺通气量不足的症状。
动物呼吸频率的测定方法十分简单：首先使动物处于相对安静状态，以肉眼观察并记录呼吸的次数，一般要求记录1min的呼吸次数。
(3)放置10一15min，待血小板完全下沉后，先将中央大方格移至低倍镜视野内，再转以高倍镜，数5个中方格内的血小板数。
(4)血小板大小形态不一致，但均呈折光的发亮淡蓝色小点，大小约红细胞的1／7—1／2，呈不规则圆形或长圆形。在计数时必须来回扭动显微镜微调，不要遗漏计数。
(5)计算：5个中方格的总和×l 000=1mm3血液的血小板数。
检查犬、猫、兔等较大动物的脉搏时，先将动物略加固定，待其安静后，用右手伸入动物股部内侧，食指和中指压于血管上左右滑动，可感觉到血管象富有弹性的橡皮管在指下滑动。按脉的大小、强弱和软硬，分别施以轻压、中压和重压，体会脉搏的性质和节律。
小动物的脉搏可直接在动物左侧胸部用手触及心跳最明显处，计数一定时间，算出每分钟心跳次数。
第二节血液及造血功能常用指标的检查方法
一、血液常用指标的检查
（一）红细胞计数
动物红细胞计数可用普通的血细胞计数器，也可用光电比浊法。
方法（试管法）：
用血红蛋白吸管吸取静脉血20mm3 ，挤入盛有4mL红细胞稀释液的华氏小试管中摇匀，滴入计数池，静置3min，在高倍镜下数中央大方格中的5个中方格中红细胞数量，相加，计算（5格的总和×10000即为每1/2mm3 内的红细胞数）。
(二)白细胞计数
与红细胞计数一样，可用普通的血细胞计数器，也可用电子血细胞计数机计数。
计数方法：
用血红蛋白吸管吸取动物静脉血至20mm3处，立即挤入盛有0.4ml白细胞稀释液的小试管内，充分摇匀，将混悬液滴一小滴入计数池，静置3min，在低倍镜下数四角4个大方格的白细胞数，计算（4格白细胞总数 ×50=1mm3 的白细胞总数。
小鼠 37.0-39.0 38.0
猫 38.0-39.5 38.7
鸡 41.6-41.8 41.7
兔 38.5-39.5 39.0
鸽 41.5-42.5 42.0
豚鼠 37.8-39.5 38.6
猪 38.0-40.0 39.0
三、脉搏的检查方法
检查脉搏较为重要，可以根据脉搏频率和性质，判断动物心脏和血液循环状态以诊断动物的疾病及判定其预后。